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染色体组型分析李昱静生物工程三班 2009343014 E2组一、染色体组型定义：各种生物染色体的形态、结构和数目都是相对稳定的。
每一细胞内特定的染色体组成叫染色体组型。
二、染色体组型分析定义：又叫核型分析。
对生物某一个体或某一分类单位（亚种、种等）的体细胞的染色体按一定特征排列起来的图象（染色体组型）的分析。
一般有四种方法。
不同物种的染色体都有各自特定的形态结构（包括染色体的长度、着丝点位置、臂比、随体大小等）特征，而且这种形态特征是相对稳定的。
因此，染色体核型分析是植物种质资源遗传性研究的重要内容。
三、染色体组型分析方法：（1）常规的形态分析。
选用分裂旺盛细胞的有丝分裂中期的染色体制成染色体组型图，以测定各染色体的长度（微米）或相对长度（％），着丝粒位置及染色体两臂长的比例（臂比），鉴别随体及副缢痕的有无作为分析的依据。
（2）带型分析。
显带技术是通过特殊的染色方法使染色体的不同区域着色，使染色体在光镜下呈现出明暗相间的带纹。
每个染色体都有特定的带纹，甚至每个染色体的长臂和短臂都有特异性。
根据染色体的不同带型，可以更细致而可靠地识别染色体的个性。
（3）着色区段分析。
染色体经低温、KCl和酶解，HCl或HCl与醋酸混合液体等处理后制片，能使染色体出现异固缩反应，使异染色质区段着色可见。
在同源染色体之间着色区段基本相同，而在非同源染色体之间则有差别。
因此用着色区段可以帮助识别染色体，作为分析染色体组型的一种方法。
（4）定量细胞化学方法。
即根据细胞核、染色体组或每一个染色体的DNA含量以及其他化学特性去鉴别染色体。
如DNA含量的差别，一般能反映染色体大小的差异，因此可作为组型分析的内容。
染色体组型分析有助于探明染色体组的演化和生物种属间的亲缘关系，对于遗传研究与人类染色体疾病的临床诊断也非常重要。
四、染色体组型分析计算：（1）染色体组型分析主要包括染色体长度、染色体臂比、着丝点位置、次缢痕等。
染色体的长度差异有两种，一种是不同种、属间染色体组间相对应的染色体的绝对长度差异，一种是同一套染色体组内不同染色体的相对长度差异。
染色体组型分析名词解释染色体组型分析是一种用于分析基因遗传变异情况的方法，可以指导个体和家系临床检测、疾病分析和对病患进行治疗。
它是一种利用现代分子生物学技术，通过宏大的DNA序列组装技术，进行基因组结构研究、基因之间关系研究以及遗传学研究的一种分析方法。
染色体组型分析的核心步骤是将DNA识别为染色体组型。
其中的染色体组型可以通过扩增和测序技术进行鉴定，这是一种利用抗原-抗体反应原理奠定的免疫原理。
扩增技术包括聚合酶链反应（PCR）、环复制（RM）和可编程DNAR，可以根据指定的基因片断来扩增DNA序列。
DNA测序技术则可以根据基因序列全部或部分序列来进行测试，它的原理是：将检测的片断元素特异性加标，再利用平台上的特定识别条件，对DNA片断进行精确定位，最终根据检测到的DNA序列，确定染色体的组型。
染色体组型分析的结果可以转化为遗传图谱，来证明个体与家系中不同染色体位点型的情况。
染色体组型分析具有诊断精度高、可靠性强等优点，因此，已经广泛应用在早期遗传疾病筛查、分子病理学诊断以及肿瘤治疗方面，并得到了广泛应用。
例如，染色体组型分析可以用于早期遗传病筛查。
通过比较与疾病相关的染色体组型，可以发现最有可能的遗传性病因，从而促进早期诊断和治疗。
此外，染色体组型分析还可以用于分子病理学诊断。
可以根据病变部位的染色体组型，与正常组织的染色体组型进行比较，从而判断病变的病理学类型。
此外，染色体组型分析还可以用于肿瘤治疗，可以根据染色体组型，挑选出最佳的治疗方案，从而提高患者治疗效果。
染色体组型分析对于认识遗传学及肿瘤、先天性疾病以及疾病的病理发生机制有着重要的意义。
它有助于提高对基因的认识和遗传变异的认识，为肿瘤的恶性程度和治疗方法提供基础，为遗传预防和家系基因检测提供依据等。
总之，染色体组型分析是一种新兴的基因分析方法，其优势在于准确性高，并可以在短时间内得到结果，因此受到科学界和检测机构的重视与推广。
它可以为临床检测、肿瘤分析及疾病的治疗提供参考，为科学研究提供指导，是一种非常具有意义的分析方法。
染色体组分析染色体组分析是对生物某一个体或某一分类单位（亚种、种等）的体细胞的染色体按一定特征排列起来的图象（染色体组型）的分析。
[拼音]：ransetizu fenxi[外文]：genome analysis扩展：对异源多倍体植物的染色体组来源进行的分析。
方法主要是将异源多倍体植物与假定的基本种杂交，然后观察杂交子代在减数分裂过程中染色体的配对行为。
在减数分裂中，同源染色体通过配对（联会）形成二倍体，非同源染色体因不能联会而呈单倍体状态。
如果异源多倍体植物和基本种的杂交子代的减数分裂过程中出现相当于基本种染色体基数的二倍体，便说明异源多倍体的一个染色体组来源于这一基本种。
某些基因能干扰染色体的配对，从而给二倍体分析带来困难或错误。
英国细胞遗传学家R.赖利等在60年代中发现小麦5B染色体的长臂上有一个基因ph，它使部分同源染色体的联会受到阻碍。
在拟山羊草（Aegilops speltoides）中还有阻碍作用更大的基因。
在玉米和小麦中发现的不联会基因可以使同源染色体在减数分裂中以单价体形式出现。
因此，在染色体组分析中还常采用一些辅助的方法，包括解剖学、组织学、形态学、生物化学（特别是同工酶分析）的方法。
染色体组分析有助于对物种起源的了解，也可以为倍性育种提供参考资料。
美国细胞遗传学家T.H.古得斯皮德和R.E.克劳森在1928年首先用二倍体分析方法研究了具有48个染色体的栽培烟草(Nicotiana tabacum)的起源。
最初根据形态特征认为它的祖先是两种二倍体野生烟草：林烟草（N.sylvestris，2n=24）和绒毛烟草(N.tomentosa，2n=24)。
染色体组分析结果说明栽培烟草与二者分别杂交得到的子代在减数分裂中都只出现12个二倍体，说明栽培烟草与这两个二倍体物种间都有一个染色体组是相同的。
但是林烟草与绒毛烟草的杂交子代在减数分裂中却出现24个单价体，说明它们的染色体组是完全不同的。
人类染色体组型分析
人类染色体组型分析是一项针对人类染色体的研究和分析。
染色体是一种体细胞内的结构，其中包含了人类遗传信息的大部分。
人类的染色体通常是成对存在的，每个细胞核中有23对染色体，其中包括22对常染色体和1对性染色体。
核型分析是一种通过显微镜观察和分析细胞核中染色体的形态和数量来确定染色体组型的方法。
通过染色体的显带图谱可以确定染色体的编号和结构异常，如染色体数目增加或减少、片段缺失、断裂、重排等。
FISH技术是一种利用荧光探针结合到特定区域的染色体上来分析染色体组型的方法。
这种技术可以用于检测染色体数目异常、结构重排、小片段缺失和重复序列等。
SNP分析是一种通过检测单核苷酸多态性位点来分析染色体组型的方法。
SNP是一种常见的基因变异形式，可以用于研究染色体间的基因关联性、种群遗传学研究和个体基因型的检测。
DNA测序技术是一种通过测定DNA序列来分析染色体组型的方法。
这种技术可以帮助确定染色体上的基因组结构、变异位点以及其对基因功能和疾病风险的影响。
此外，人类染色体组型分析还可以用于进化学研究、种群遗传学研究和个体基因型的检测。
通过对不同人群之间及个体间染色体组型的比较分析，我们可以了解人类种群间的遗传关系、进化历史和变异特征。
总结来说，人类染色体组型分析是一项研究和分析人类染色体的重要技术。
它在医学、生物学和人类遗传学等领域具有广泛的应用价值，为我们进一步了解和探索人类遗传信息的传递和变异提供了有力的工具。
染色体组型分析实验报告
染色体组型分析是遗传相关性研究的基础，它可以用来
鉴定个体的表现型，进一步确定疾病的发病特点，以及进行群体种质传承的探索等。
本次实验我们通过使用常见的细胞分析技术，结合基因分析仪器，以传统和现代分析方法，来处理和分析样品，从而识别和研究染色体组型差异。
在实验过程中，我们先在实验培养室完成了细胞分析，
利用玻片技术染色，并运用点阵染色，观察染色体分布和特征。
接着，我们选取样品，进行分子染色体分析，以测定每一条染色体的坐标。
最后，运用改良的FISH技术，对样品进行测序，利用染色体包膜特有的染色序列，进行染色体组型分析，以获得有效的种群组型信息。
经过上述实验，我们验证了染色体组型分析实验的可行性，它为进一步确定染色体变异的模式提供了一条有效的途径。
本次实验在获取有效种群组型信息，确定个体表现型和群体种质传承等方面取得了良好的效果，为后期研究奠定了坚实的基础。
植物染色体组型分析
姓名：刘云超学号：2009361017班级：生工4班组别：4组
一、实验原理
1、染色体组型：各种生物染色体的形态、结构和数目都是相对稳定的。
每一细胞内特定的染色体组成叫染色体组型。
2、染色体组型分析（核型分析）：就是研究一个物种细胞核内染色体的数目及各种染色体的形态特征，如对染色体的长度、着丝点位置、臂比、随体有无等观测，从而描述和阐明该生物的染色体组成，为细胞遗传学、分类学和进化遗传学等研究提供实验依据。
3、染色体组型分析大都采用植物根尖等分生组织中的细胞有丝分裂中期，因为此期染色体具有较典型的特征，且易于计数；在进行核型分析时，染色体制片要求分裂相为染色体分散，互不重叠，能清楚显示着丝点位置。
然后通过显微摄影，测量放大照片上的每个染色体的长度和其它形态特征，依次配对排列，编号，并对各对染色体的形态特征作出描述。
二、实验目的
观察分析植物细胞有丝分裂中期染色体的长短、臂比和随体等形态特征；学习染色体组型分析的方法；练习显微摄影的操作过程，拍摄和印放显微照片。
三、实验材料
蚕豆、玉米、黑麦、洋葱的根尖（或木本植物的茎尖），或幼嫩花蕾，经固定，染色，压片（方法参见实验二十八），显微摄影，得染色体照片。
也可以由实验室提供染色体制片或放大照片。
四、实验器具和药品
显微镜，测微尺，毫米尺，镊子，剪刀，绘图纸。
如无现成的染色体照片需备摄影显微镜以及有关摄影器材。
五、实验步骤
1、测量：依次各测量染色体长臂和短臂的长度，随体计入臂长与否须注明。
根据显微测量或放大照片测量、记录染色体形态测量数据如下：
绝对长度（μm）=放大的染色体长度÷放大倍数
染色体组总长度=该细胞单倍体全部染色体长度（包括性染色体）之和
相对长度（%）=每个染色体长度÷染色体组总长度×100
臂比=长臂长度÷短臂长度
着丝粒指数=短臂÷该染色体长度×100
例表（表格于实验结果中）
2、配对：根据测量数据，即染色体相对长度、臂率、着丝粒指数、次缢痕的有无及位置、随体的形状和大小等进行同源染色体的剪贴配对。
3、排列：
⑴染色体对从大到小依次排列；等长染色体对，短臂长的在前；具随体染色体、性染色体可单独排在最后。
⑵异源的染色体要分别排列（如小麦的A、B、D染色体组）
4、剪贴：把上述已经排列的同源染色体按先后顺序粘贴在绘图纸上。
粘贴时，短臂向上、长臂向下，各染色体的着丝粒排在一条直线上。
所得组型图。
5、分类：臂比是反应着丝点在染色体上的位置。
根据此可确定染色体所属的形态类型。
染色体形态类型：臂比（长臂/短臂）形态类型
1～1.7M中着丝粒染色体；
1.71～3.0SM近中着丝粒染色体；
3.01～7.0 ST近端着丝粒染色体；
＞7.01T端着丝粒染色体；
SAT随体染色体。
7、综合描述
⑴计数体细胞染色体数目：统计细胞数≥30，85%具有恒定一致的数目；
⑵以分裂中期、高质量的体细胞染色体图像作为形态描述，以5个以上的细胞染色体，测其平均值。
⑶核不对称系数（Ask）＝长臂总长÷全组染色体总长×100%
⑷染色体的长短：按Kuo等的方法，以染色体相对长度系数（I.R.L）组成划分染色体的长短，即I.R.L≥1.26为长染色体（L）；1.01≤I.R.L≤1.25为中长染色体（M2）；0.7 6≤I.R.L≤1.00为中短染色体（M1）；I.R.L﹤0.76为短染色体（S）。
2n=24=8L+2M2+10M1 +4S。
相对长度系数（I.R.L）= 每条染色体的相对长度÷染色体的平均相对长度
染色体长度比＝最长染色体长度÷最短染色体长度
染色体组型类型1A为最对称型，4C为最不对称型。
⑹染色体组型的公式：芍药 2n=2x=10=8M(2Sat)+2SM=6M+2SAT+2SM
⑺
染色体组型模式图：根据各染色体的相对长度平均值绘制一坐标图。
横轴上标明各染色体序号，每一染色体与其序号相对应，纵轴表示相对长度值(％)，零点绘在纵轴的中部，并与各染色体的着丝点相对应。
此即为该细胞的染色体组型模式图。
六、实验报告
1．提交染色体永久或半永久制片2张。
2．做出某一物种的染色体型组图、染色体组型分析表、染色体组型模式图。
注意事项
1.种子萌发时的水分、温度控制
2.预处理和解离的时间
3.压片时尽量不要移动
4.细胞分裂高峰期取材
附：染色体制片方法 (以蚕豆根尖为例)
(1)取材：将蚕豆种子萌发。
待种子根长至1cm左右，在上午8:00～10:00之间，切下长约0.5-1.0cm的根尖，进行预处理。
(2)预处理：目的使分裂细胞的染色体缩短和比较分散，便于压片观察。
预处理是在固定以前进行，方法是将材料切下放入以下溶液：①0.05～0.2％秋水仙碱水溶液中处理3～4 h；②对二氯苯饱和水溶液中处理3-4h；③8-羟基奎啉0.002mol/L处理3～4h；④在0～3℃下冷冻处理24h。
(3)固定：通常用Carnoy固定液固定3-24h。
固定后换入70％酒精中3～8℃下保存。
(4)离析：将保存在70％酒精中的根尖，换入蒸馏水，然后移入1N盐酸中，在60℃的水浴中离析8-10min；或用酸酒精（浓盐酸：95%酒精=1：1）处理8min。
(5)水洗：离析后必须用水洗净残留盐酸，否则会影响染色。
(6) 染色：将根尖移入改良苯酚品红染液中染色min；或将根尖移入4％铁矾水溶液中，媒染20～30min，水洗净后再放入0.5％苏木精水溶液染色3～5h。
(7)压片：用镊子夹取根尖一段，放在载玻片上，迅速捣碎根尖，盖上盖玻片，用铅笔的橡皮头轻压，使材料分散成一薄层。
(8)镜检：将材料压好后，放置显微镜下观察。
若要作永久保存，可将玻片放在电冰箱中冷冻，结了冰霜后便可揭下盖玻片，然后将沾有材料的玻片分别与另外干净的盖玻片和载玻片进行封片处理，制作永久玻片。
也可按以下步骤制成永久制片：
(1)将压片直接倒放在盛有1/2 45％醋酸+ 1/2 95％酒精的培养皿中，并使玻片稍成倾斜(一边可垫上一玻棒)。
待过5～10min，即可见盖玻片从载玻片上脱落下来，此时即按原来位置翻开。
(2)将已分开的载玻片与盖玻片，用吸水纸吸去边去多余的醋酸液，换入冰醋酸+无水酒精(1：1)中，3min 。
(3)将载玻片与盖玻片移入无水酒精中(二次)，每次3min。
(4)移入无水酒精+二甲苯(1：1)，3 min。
(5)移入二甲苯(二次)，各3 min。
(6)用加拿大树胶按原来的位置封藏玻片。
(7)移入温箱烘干(20～30℃)，3h，即得永久制片。
