微生物室消毒灭菌原始记录单

微生物检验原始记录受理编号：检（20 ）号第页/共页检验依据卫生部《消毒技术规范》2002版一、实验器材1．试验菌株：大肠杆菌，菌株号：1022，培养代数代，营养琼脂斜面培养基培养，培养条件：2．试剂及培养基配制、灭菌见《试剂及培养基配制记录C》：第1次；第2次；第3次。

3.恒温培养箱（36±1°C）：编号 SCCDC 。

4. 载体：玻片（10mm×10mm）.5．样品名称：，批号：。

二、试验方法1．试验步骤：按《消毒技术规范》2002版2.1.5.2红外线消毒碗柜和2.1.5.7臭氧消毒柜消毒效果监测方法进行。

2．培养条件受理编号：检（）号第页/共页三、结果阳性对照：接种稀释倍数：平皿生长菌数： cfu/皿菌液浓度： cfu/片。

对数值：阴性对照：菌生长。

阳性对照：接种稀释倍数：平皿生长菌数： cfu/皿菌液浓度： cfu/片。

对数值：阴性对照：菌生长。

阳性对照：接种稀释倍数：平皿生长菌数： cfu/皿菌液浓度： cfu/片。

对数值：阴性对照：菌生长。

受理编号：检（）号第页/共页四. 结果处理：三次试验平均结果阳性对照：菌液浓度： cfu/片。

对数值：阴性对照：菌生长。

五.计算公式：（1）接种稀释倍数=V×A×B=5.0×A×1.0=5A式中V为PBS体积(5ml)；A为接种前中和管液体稀释倍数；B接种样液体积。

（2）试验组菌片菌数或阳性对照菌片菌数=平皿生长平均菌数×接种稀释倍数（3）杀灭对数值=lg（阳性对照菌片菌数）－lg（试验组菌片菌数）（以下空白）检验者：复核者：。

工作指引名称:无尘车间微生物检测指引1 适用范围适用于无尘车间工作台面,工人手,沉降菌,浮游菌和纯化水的微生物检测工作.2 参考文件2.1 GB/T 16293~16294 医疗工业洁净(室)区浮游菌和沉降菌的测试方法2.2 中华人民共和国药典2015年版二部附录XIJ 微生物限度检查法2.3 GB 15980 一次性使用医疗用品卫生标准2.4 COP09 菌量监控程序3 定义3.1 浮游菌:悬浮在空气中的活的微生物粒子,使用专用的仪器,通过专门的培养基,在适宜的生长条件下繁殖到可见的菌活数.3.2 沉降菌:空气中的活的微生物粒子,通过专门的培养基,在适宜的生长条件下繁殖到可见的菌活数.3.3 CFU:菌落形成单位colony-forming unit.4 职责4.1 实验工程师:熟悉测试,指导实验员测试,检查测试报告.4.2 实验员:负责按照指引执行微生物采样工作并出具报告.5 指引5.1 试剂/培养基的配制5.1.1 根据采样数量,按规定要求配制好培养基;5.1.2 将配制好的培养基分装到三角瓶中密封用白纸包好;将平皿用白纸包好,所有物品经121℃高压蒸气灭菌30min;5.1.3 灭菌结束后将培养基冷却至45～50℃后倾注到无菌平皿中,凝固,倒置,置36±1℃培养18～24小时,不得有菌生长;5.1.4 根据采样数量,用量筒分装0.9%生理盐水10ml至试管中密封用白纸包好,将相应数量的平皿,移液管,试管,带塞三角瓶,棉拭子用白纸包好,所有物品经121℃高压蒸气灭菌30min;5.1.5 灭菌结束后将培养基置于60～70℃的恒温水浴中,生理盐水管待冷却后可到无尘车间进行采样;5.2 实验员每周对生产车间进行微生物检测,采样点的数量如下:5.2.1 无尘车间微生物检测的采样点共27个;工作指引名称:无尘车间微生物检测指引具体采样点为: 沉降菌5个; 浮游菌3个; 工作桌面8个,工人手8个,为工人桌面采样点的相应点; 更衣室1个; 纯化水2个;生产车间采样点的数量仅供参考,可根据生产车间的生产情况进行更改.5.3 工作台面微生物采样按以下步骤进行:5.3.1 先将灭菌生理盐水管标记好测试位置和序号;5.3.2 实验员带上无菌手套,用75%酒精将手,定位架和剪钳进行消毒,必要时用酒精灯烧灼定位架和剪钳,加速酒精挥发;5.3.3 选定采样位置,固定好定位架;5.3.4 取出灭菌棉拭子,打开灭菌生理盐水管塞子,将棉拭子浸入灭菌生理盐中,待棉拭子湿透后,在试管壁上轻压数下,除去过多的水分;5.3.5 用棉拭子在定位架内来回涂抹10次;5.3.6 将棉拭子与手接触的部份剪去,棉拭子头放入灭菌生理盐水管中送检;5.3.7 每对一个采样点采样结束后,应用75%酒精对手,定位架和剪钳进行消毒.5.4 工人手微生物采样按以下步骤进行:5.4.1 将灭菌生理盐水管作好标记,与工作台面的采样标记相对应;5.4.2 用75%酒精对手进行消毒,取出灭菌棉拭子,打开灭菌生理盐水管塞子,将棉拭子浸入灭菌生理盐中,待棉拭子湿透后,在试管壁上轻压数下,除去过多的水分;5.4.3 要求被检人五指并拢,将浸有灭菌生理盐水的棉拭子在右手指曲面,从指尖,甲沟至指端来回涂擦10次;5.4.4 将棉拭子与手接触的部份剪去,棉拭子头放入灭菌生理盐水管中送检;5.4.5 每对一个采样点采样结束后,应用75%酒精对手剪钳进行消毒.5.5 沉降菌采样步骤如下:5.5.1 将培养皿按采样位置作好标记;5.5.2 布置采样点时,应尽量避开尘粒较集中的回风口;5.5.3 将培养皿放置在离地0.8～1.5m左右的工作桌面上,揭开培养皿盖子,使培养基暴露在空气中采样30min;5.5.4 全部采样结束后,将培养皿盖上并倒置.5.5.5 培养皿在用于检测时,为避免培养皿运输或搬动过程造成的影响,应同时进行阴性对照试验,每次或每个区域取1个对照皿,与采样皿同法操作但不需暴露采样,然后与采样后的培养皿一起放入培养箱内培养,结果应无菌落生长.工作指引名称:无尘车间微生物检测指引5.6 浮游菌采样步骤如下:5.6.1 采样前,先用75%酒精清洗采样器的顶盖,转盘及罩子的内外面;5.6.2 开启浮游菌采样器,使仪器中的残余消毒剂蒸发,时间不少于5min,并检查流量并根据采样量调整设定采样时间,每个采样点采样500L;5.6.3 布置采样点时,采样点位置应离地0.8～1.5m左右,送风口测点位置应离开送风面30cm左右;5.6.4 用75%酒精对手进行消毒后,将培养皿放入转盘内,盖上多孔取样头盖子,揭开保护盖,开启浮游菌采样器进行采样;5.6.5 采样结束后,对已采样的培养皿作上标记;5.6.6 全部采样结束后,用75%酒精轻轻喷射仪器内罩子的内壁和转盘;5.6.7 培养皿在用于检测时,为避免培养皿运输或搬动过程造成的影响,应同时进行阴性对照试验,每次或每个区域取1个对照皿,与采样皿同法操作但不需暴露采样,然后与采样后的培养皿一起放入培养箱内培养,结果应无菌落生长.5.7 纯化水采样步骤如下:5.7.1 打开水龙头,让水自流10min后,用已灭菌的带塞三角瓶取样100ml,作样品1;5.7.2 同法操作,作样品2;5.7.3 采样结束后,将瓶口密封,样品送至实验室进行检测.5.8 采样后的微生物检测5.8.1 以培养皿采样的,将培养皿倒置,于36±1℃培养24～48小时,计数;5.8.2 以采样管采样的,将采样管在调速振荡器上振打30min, 混匀后在洁净工作台上稀释成10-1或10-2的倍数浓度;用已灭菌的移液管吸取1ml各稀释度溶液注入无菌平皿中,立即倾注培养基,混匀,凝固,置36±1℃培养24～48小时,计数;5.8.3 纯化水中微生物的检测步骤如下:5.8.3.1 取供试品10ml,用PH7.0无菌气化钠-蛋白胨缓冲液稀释成1:10,1:102,1:103等稀释级的供试液;5.8.3.2 取相应稀释级的供试液1ml置无菌平皿中,立即倾注培养基,混匀,凝固,倒置培养,每稀释级每种培养基至少制备2个平皿;5.8.3.3 另取试验用的稀释液1ml置无菌平皿中,注入培养基,混匀,凝固,倒置培养,作阴性对照,每种计数用的培养基各制备2个平皿,均不得有菌生长;5.8.3.4 除另有规定外,细菌培养3天,霉菌,酵母菌培养5天,逐日观察菌落生长情况,必要时,可适当延长培养时间到7天进行菌落计数并报告;工作指引名称:无尘车间微生物检测指引5.8.3.5 细菌,酵母菌宜选取平均菌落数小于300cfu, 霉菌宜选取平均菌落数小于100cfu的稀释级,作为菌数报告(取两位有效数字)的依据.以最高的平均菌落数乘以稀释倍数的值报告1ml供试品中所含的菌数.5.9 结果判定5.9.1 工作台面菌量应≦250cfu/cm2;5.9.2 工人手菌量应≦300 cfu/hand;5.9.3 沉降菌数10 000级应≦3个/皿,100 000级应≦10个/皿;5.9.4 浮游菌浓度10 000级应≦100个/m3,100 000级应≦500个/m3;5.9.5 纯化水菌量应≦100cfu/ml;5.10 如以上的检测结果有菌量超标时,实验员应立即通报相关部门并按COP14.03的要求发出内部纠正行动要求表作出跟踪及纠正改善行动.5.11 注意事项5.11.1 所有样品采样结束后应于1小时内送至实验室进行检测,当天采样的样品必须在当天完成检测;5.11.2 如样品不能立即检测,必须放入冰箱内冷藏(约4℃).5.12 检测报告编号规则M-FF-XXX-YYYYFF: 设备编号XXX: 测试报告流水号YYYY: 年份6 文件保存期限:相关检测报告保存五年.7 附录7.1 试剂/培养基配制实验原始记录7.2 无尘车间菌量检测报告工作指引名称:无尘车间微生物检测指引附录7.1试剂/培养基配制实验原始记录工作指引名称:无尘车间微生物检测指引附录7.2 无尘车间菌量检测报告(英文)工作指引名称:无尘车间微生物检测指引附录7.2 无尘车间菌量检测报告(中文)工作指引名称:无尘车间微生物检测指引修订履历。

菌落总数、大肠菌群检验原始记录编号：002 品名：取样日期：取样量：一、菌落总数(实验仪器：SP-02型生化培养箱，LX-01型立式压力蒸汽灭菌器)1.检测设备：培养箱：℃，高压蒸汽灭菌锅温度：℃，压强：Mpa ，灭菌时间：min2.检测条件：温度：℃，湿度：%检测方法：GB4789.2-2016用刻度吸管吸取样品液1ml注入9ml无菌生理盐水的试管中混匀，制成1：10的样品均液。

按上述操作，制成10倍系列稀释样品均液。

根据对样品污染状况的估计，选择2-3个稀释度，每个稀释度分别吸取1ml样品稀释均液加入2个平皿内，同时分别吸取1ml无菌生理盐水加入2个无菌平皿做空白对照。

倾注15ml-20ml 46 ℃左右的PCA培养基，静置冷却，倒置于36±1℃的恒温培养箱中培养48h±2h。

二、大肠菌群(实验仪器：SP-02型生化培养箱，LX-01型立式压力蒸汽灭菌器)1.检测设备：培养箱：℃，高压蒸汽灭菌锅温度：℃，压强：Mpa ，灭菌时间：min2.检测条件：温度：℃，湿度：%培养开始：年月日时，培养结束：年月日时，培养时间：h检测方法：GB/T 4789.3-2003用刻度吸管吸取样品液1ml注入9ml无菌生理盐水的试管中混匀，制成1：10的样品均液。

按上述操作，制成10倍系列稀释样品均液。

根据对样品污染状况的估计，选择2-3个稀释度，每个稀释度接种三管。

将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管中，接种量在1ml以上者，用双料乳糖胆盐发酵管，1ml及1ml以下者，用单料乳糖胆盐发酵管，每个稀释度接种三管，置于36±1℃的恒温培养箱中培养24h±2h ，如果所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性，如有产气者，则将产气的发酵管分别转接种在伊红美蓝琼脂平板上，置于36±1℃的恒温培养箱中培养18h±2h，然后取出观察菌落形态，并做革兰氏染色和证实试验。

节后复工前／后厂区消毒杀菌记录表节后复工前/后厂区消毒杀菌记录表日期：XXXX年XX月XX日地点：厂区名称责任人：XXX项目：节后复工前/后厂区消毒杀菌为确保员工的健康与安全，经过XXXX公司（以下简称本公司）的综合安排和相关标准要求，特进行节后复工前/后厂区的消毒杀菌工作，现将具体操作记录如下：1. 消毒杀菌日期：XXXX年XX月XX日操作人员：XXXX消毒剂使用情况：消毒剂名称：XXXX消毒剂用量：XX升使用方法：根据产品说明书的指导，将消毒剂稀释至标准浓度后，使用喷雾器或拖把进行喷洒或擦拭。

消毒范围：XX区域，包括但不限于生产车间、办公区域、餐厅、更衣室、洗手间等。

消毒时间：XX时XX分至XX时XX分备注：记录消毒剂使用情况、使用方法和范围，以及消毒操作所涉及的时间。

2. 消毒杀菌日期：XXXX年XX月XX日操作人员：XXXX消毒剂使用情况：消毒剂名称：XXXX消毒剂用量：XX升使用方法：根据产品说明书的指导，将消毒剂稀释至标准浓度后，使用喷雾器或拖把进行喷洒或擦拭。

消毒范围：XX区域，包括但不限于生产车间、办公区域、餐厅、更衣室、洗手间等。

消毒时间：XX时XX分至XX时XX分备注：记录消毒剂使用情况、使用方法和范围，以及消毒操作所涉及的时间。

3. 消毒杀菌日期：XXXX年XX月XX日操作人员：XXXX消毒剂使用情况：消毒剂名称：XXXX消毒剂用量：XX升使用方法：根据产品说明书的指导，将消毒剂稀释至标准浓度后，使用喷雾器或拖把进行喷洒或擦拭。

消毒范围：XX区域，包括但不限于生产车间、办公区域、餐厅、更衣室、洗手间等。

消毒时间：XX时XX分至XX时XX分备注：记录消毒剂使用情况、使用方法和范围，以及消毒操作所涉及的时间。

4. 消毒杀菌日期：XXXX年XX月XX日操作人员：XXXX消毒剂使用情况：消毒剂名称：XXXX消毒剂用量：XX升使用方法：根据产品说明书的指导，将消毒剂稀释至标准浓度后，使用喷雾器或拖把进行喷洒或擦拭。

水质类卫生细菌学检测原始记录
样品编号 第 页,共 页 样品名称： 样品状态： □正常 □异常 实验室温度： ℃ 湿度： % 仪器名称： 电热恒温培养箱 仪器型号： 360型 仪器编号：
检测依据： GB/T 5750.12-2006 生活饮用水标准检验法
微生物指标
检测程序及结果：
总大肠菌群（滤膜法）：取100mL 水样经微孔滤膜抽滤，将滤膜贴于品红亚硫酸钠培养基，37℃ 24±2h
耐热大肠菌群：取100mL 水样经微孔滤膜抽滤，将滤膜贴于MFC 培养基上，隔水式培养箱内44.5℃ 24
检测起止时间 年 月 日 时 起 年 月 日 时止
检测者： 复核者：
检测原始记录、检测报告副本、样品检测流转单等合并归档保存。

微生物检验室沉降菌测试原始记录评定标准十万级w 10CFU 皿；万级w 3CFU 皿；百级w 1CFU 皿RSB60-00°C采样点图示 见附图：报告日期 _________结 论 _______________________ 检验者 ____________ 复核者 ___________________RSB64-00固体制剂车间沉降菌测试原始记录（2）编 号______________________ 测试依据SPG108-01环境温度________________ °C培养基批号__________________ 测试单位 ______________ 测试状态 ______________ 相对湿度% _____________培养温度 ______________采样点图示 见附图：评定标准：十万级w 10CFU皿；万级w 3CFU皿；百级w 1CFU皿结论___________________检验者_________________ 复核者______________RSB63-00 固体制剂车间沉降菌测试原始记录（1 ）评定标准： 十万级w 10CFU/皿； 万级w 3CFU/皿； 百级w 1CFU/皿 结 论 检验者 复核者 _____________________RSB61-00原料车间沉降菌测试原始记录编 号 ______________________ 测试单位 ________________ 测试依据SPG108-01 测试状态 _______________环境温度 _______________ ° C 相对湿度% ______________ 培养基批号 _________________ 培养温度 _________________ °C 静压差 ___________________ 检测日期 __________________ 报告采样点图示 见附图：日期评定标准：十万级w 10CFU/皿；万级w 3CFU/皿；百级w 1CFU/皿检验者复核者RSB62-00 原料车间沉降菌测试原始记录评定标准：十万级w 10CFU皿；万级w 3CFU皿；百级w 1CFU皿结论检验者复核者____________________RSB61-01 原料车间沉降菌测试原始记录编号测试单位测试依据SPG108-01 测试状态环境温度°C相对湿度% 培养基批号培养温度静压差检测日期采样点图示见附图：报告日期 _________评定标准：十万级w 10CFU/皿；万级w 3CFU/皿；百级w 1CFU/皿结论________________ 检验_______________ 复核者_______________。

微生物检验原始记录
培养基配制：见培养基配制记录
样品制备：按GB/T 4789 的要求进行
□ 1.固体样品：无菌称取25g样品加225mL生理盐水，均质；稀释倍数：□1:10 □1:100 □1：1000 □ 2.液体样品：需稀释的，无菌称取25mL样品加225mL生理盐水，混匀；稀释倍数：□1:10 □1:100 □1：1000
□ 3.液体样品：不需要稀释的直接吸取样液检验
□菌落总数：检验依据：□GB 4789.2 -2010 □GB/T 5750.12-2006
检验时间：菌落总数：霉菌和酵母：
□大肠菌群：检验依据：GB/T4789.3-2003
注：“—”表示在选择性培养基上无可疑菌落生长检验时间：
检验时间：
□总大肠菌群：检验依据：GB/T 5750.12-2006
注：“—”表示在选择性培养基上无可疑菌落生长检验时间：
注：“—”表示在选择性培养基上无可疑菌落生长检验时间：
检验时间
□致病菌□沙门氏菌□志贺氏菌□金黄色葡萄球菌
□螨：检验依据 GB 317.4-.10-2006
检测人：复核人：
微生物限度检验记录（复合膜）
检验人：复核人：
微生物限度检验记录（辅料）
检验人：复核人：
微生物限度检验记录（铝箔、PVC硬片）
检验人：复核人：
微生物限度检验记录（半成品、成品）
检验人：复核人：
微生物限度检验记录（辅料）
检验人：复核人：。

一、微生物药品配制1.生理盐水：称取 8.5g 氯化钠溶于 1000ml 蒸馏水中，分装， 121 摄氏度高压灭菌 20min。

（国标 15min）。

2.平板计数琼脂（菌落总数）：称取23.5g 于1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 121 摄氏度高压灭菌 15min，冷却至 46 摄氏度左右备用。

3.平板计数琼脂（嗜冷菌）：称取23.5g 和1g 脱脂乳粉于1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 121 摄氏度高压灭菌 15min，冷却至 46 摄氏度左右备用。

4.脑心浸液琼脂：称取 50g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 121 摄氏度 20min 高压灭菌后备用。

临用前每250ml 加入0.5ml 维生素 B12，B12 为 1mg/ml。

5.孟加拉红琼脂：称取 31.6g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 121 摄氏度 20min 高压灭菌后备用。

6.月桂基硫酸盐胰蛋白栋：称取 35.6g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装于有倒立发酵管的试管中，每管10ml，121 摄氏度高压灭菌 15min 后备用。

双料 LST 除蒸馏水外，其余成分加倍。

7.煌绿乳糖胆盐：称取 40g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装于有倒立发酵管的试管中，每管 10ml，121 摄氏度高压灭菌15min 后备用。

8.1mol 氢氧化钠：称取 40g 氢氧化钠溶于 1000ml 蒸馏水中。

9.1mol 盐酸：移取浓盐酸 90ml，用蒸馏水稀释至 1000ml。

10.LB 营养琼脂：称取34g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 121 摄氏度 15min 高压灭菌后备用。

11.营养肉汤：称取 19g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装，121 摄氏度 15min 高压灭菌后备用。

12.抗生素 1 号培育基：称取 26g 于 1L 蒸馏水中，加热煮沸至完整溶解，分装， 115 摄氏度 30min 高压灭菌后备用。

微生物检验原始记录
检测记录与结果
培养基配制：见培养基配制记录
样品制备：按GB/T 4789的要求进行
□1.固体样品：无菌称取25g样品加225mL生理盐水，均质：稀释倍数：口1:10 01:100 口1： 1000 □2.液体样品：需稀释的，无菌称取25mL样品加225mL生理盐水，混匀：稀释倍数：口1:10 01:100□ 1： 1000
□3.液体样品：不需要稀释的直接吸取样液检验
口大肠菌群：检验依据：GB/T4789. 3-2003
口大肠菌群：检验依据：GB 4789. 3-2010
口总大肠菌群：检验依据：GB/T 5750. 12-2006
口大肠埃希氏菌：检验依据：GB/T 5750. 12-2006
口致病菌口沙门氏菌□志贺氏菌□金黄色葡萄球菌
检验依据:DGB 4789. 4-2010 DGB 4789. 5-2012 OGB 4789. 10-2010
GB 317. 4-. 10-2006
检测人:复核人:
微生物限度检验记录(复合膜)
检验人:复核人:
微生物限度检验记录(辅料)
检验人:复核人:
微生物限度检验记录（铝箔、PVC硬片）
检验人:复核人:
微生物限度检验记录（辅料）
微生物限度检验记录（半成品、成品）
检验人:复核人:
微生物限度检验记录（辅料）
检验人:复核人:。

饲料微生物检验原始记录样品编号：检验开始时间：年月日样品名称：检验完成时间：年月日检测项目：检测依据：一、菌落总数、霉菌总数以无菌操作称（量）取样品25g（或10g）,加入225ml（或90ml）的无菌生理盐水中，均质后，做成1∶10样品液。

取1∶10稀释液1ml加入到9ml生理盐水中，混匀，做成1∶100样品均液。

以上法制备10倍系列稀释样品均液。

选择2-3个适宜稀释度的样品均液，吸取1ml样品均液于无菌平皿内，每个稀释度做2个平皿。

同时，分别吸取1ml空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照，及时将15-20ml 冷至46℃的营养琼脂培养基倾注平皿，转动平皿使其混合均匀，凝固后，可在培养基表面倾注冷至46℃的水琼脂培养基4ml, 凝固后翻转平板，置 30±1℃培养小时，计数平板上菌落数（CFU）。

霉菌计算及结果：细菌菌落数（CFU/g,ml）：霉菌菌落数（CFU/g,ml）：二、大肠菌群测定：按菌落总数测定方法制备lO0、10-1、10-2、10-3、10-4……稀释液。

选择3个适宜的连续稀释度的样品均液，每个稀释度接种3管乳糖胆盐发酵管，每管接种1ml（接种量超过1ml，则用双料乳糖胆盐发酵管），36±1℃培养24±2h，观察倒管内是否有气泡产生，对于24±2h产气者，用接种环从产气的乳糖胆盐发酵管中分别取培养物一环，分别转种到在伊红美蓝琼脂平板上，36±1℃培养18h～24h，观察菌落形态，并做确证实验。

如果所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性。

注：○+产酸产气；+产酸不产气或有可疑菌落；-不产酸不产气或无可疑菌落；G-b革兰氏阴性杆菌；G+b革兰氏阳性杆菌；G+c革兰氏阳性球菌。

结果：根据证实为总大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，得 MPN/100g(mL)。

电子天平编号：使用状况试验前：试验后：培养箱编号：使用状况试验前：试验后：检测人：校核人：审核人：三、产气荚膜梭菌以无菌操作称取样品25g（ml）加入225ml蛋白胨生理盐水稀释液，均质后，做成1∶10稀释液。