TRAIL诱导Hela细胞凋亡的线粒体信号通路
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TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡机制研究进展
杨燕;冯作化;张桂梅
【期刊名称】《国际肿瘤学杂志》
【年(卷),期】2004(031)002
【摘要】肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAIL)与死亡受体结合后,可启动凋亡信号转导.在产生一系列凋亡分子的同时,胞内抗凋亡分子也被诱导产生,但单一因素在TRAIL凋亡信号调控网络中并不起决定作用,而是多因素制衡的一个动态过程决定细胞生死.了解TRAIL通路的精确调控机制及肿瘤的遗传背景,对于研究TRAIL在肿瘤治疗中的应用具有决定性作用.现综述近年来TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡胞内机制的研究进展.
【总页数】4页(P83-86)
【作者】杨燕;冯作化;张桂梅
【作者单位】430030,武汉,华中科技大学同济医学院生物化学与分子生物学
系;430030,武汉,华中科技大学同济医学院生物化学与分子生物学系;430030,武汉,华中科技大学同济医学院生物化学与分子生物学系
【正文语种】中文
【中图分类】R329.25;R730.3
【相关文献】
1.肿瘤细胞TRAIL信号传递途径中抗凋亡机制的研究进展 [J], 于超;魏莲枝
2.TRAIL及其受体在肿瘤细胞凋亡机制中的作用研究进展 [J], 李强;潘晓华;蔡景龙
3.肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体及其诱导肿瘤细胞凋亡机制的研究进展 [J], 方芳;王爱平
4.白藜芦醇诱导前列腺肿瘤细胞凋亡机制研究进展 [J], 许爱辉; 吴双; 苏玉环
5.TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡机制的研究进展 [J], 高静;金天明
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
应用Alamarblue法检测TRAIL对神经母细胞瘤细胞的细胞毒作用神经母细胞瘤是一种常见的恶性儿童肿瘤。
TRAIL是一种具有选择毒性的蛋白质,可以通过调节Wnt、NF-κB和ERK等信号通路,发挥对神经母细胞瘤的细胞毒作用。
本文旨在探讨Alamarblue法的应用,以检测TRAIL对神经母细胞瘤细胞的细胞毒作用。
Alamarblue是一种含有还原剂的化合物,可以与细胞产生可逆反应,并在细胞代谢中发生颜色变化。
该方法不仅灵敏度高,而且无毒,非常适用于细胞增殖和细胞生存率的检测。
该方法的原理是,将Alamarblue加入到处理后的细胞培养物中,细胞将还原Alamarblue并产生强烈的荧光信号,进而测量其生存率。
实验首先选取神经母细胞瘤细胞,将细胞均匀分布于96孔板中,分成对照组和实验组。
实验组分别添加不同浓度的TRAIL,如20, 40, 80, 160, 320和640ng/ml,12h后分别加入Alamarblue,培养3h。
通过酶标板读板仪检测吸收光密度,以此测量细胞生存率。
同时,通过显微镜检测细胞形态变化,判定TRAIL对神经母细胞瘤细胞的细胞毒作用。
结果显示,实验组内细胞生存率随TRAIL浓度的增加而降低。
当TRAIL浓度为160ng/ml时,细胞生存率为对照组的50%左右。
当TRAIL浓度达到320ng/ml时,细胞生存率更低,降至对照组的25%左右。
而当TRAIL浓度为640ng/ml时,细胞生存率降至10%以下。
同时,显微镜观察发现,TRAIL处理后的神经母细胞瘤细胞出现明显的形态变化,形状不规则,核染色质凝聚,可见胞体变形和细胞膜溶解等现象。
综上所述,Alamarblue法具有无毒、高灵敏度、操作简单等优点,适用于细胞毒性评价和细胞存活率检测。
本实验利用该方法探究TRAIL对神经母细胞瘤细胞的细胞毒作用,结果显示TRAIL可以抑制神经母细胞瘤细胞的增殖和诱导其凋亡,表明TRAIL可以成为治疗神经母细胞瘤的潜在药物。
细胞凋亡调控相关的信号转导通路细胞凋亡是一种重要的细胞死亡方式,通过严格的信号转导通路进行调控。
这些信号通路包括内部和外部因素的相互作用,保证了细胞在正常生理过程中的准确调控和维持。
本文将从多个角度探讨细胞凋亡调控相关的信号转导通路。
1.细胞凋亡的触发因子细胞凋亡的触发因子通常包括外部因素和内部因素。
外部因素如细胞外环境的压力、缺氧、药物等,会导致细胞内信号转导通路的改变,从而触发细胞凋亡。
内部因素如DNA损伤、细胞内蛋白异常等也能引发细胞凋亡的启动。
2.细胞凋亡的信号传导通路细胞凋亡的信号传导通路主要包括线粒体途径、死亡受体途径和内源性途径。
线粒体途径是最为经典的细胞凋亡信号通路,主要通过释放线粒体内的细胞色素C、激活半胱氨酸蛋白酶等来引发细胞凋亡。
死亡受体途径则是通过死亡受体家族成员的激活,启动半胱氨酸蛋白酶级联反应,最终导致细胞凋亡。
内源性途径则是一些内部因子如p53、Bcl-2家族蛋白等的参与,调控细胞凋亡的发生。
3.细胞凋亡的调控因子细胞凋亡的调控因子主要包括抑制因子和促进因子。
Bcl-2家族蛋白是细胞凋亡最为重要的抑制因子,其通过调控线粒体膜通透性来抑制细胞凋亡的进行。
而促进因子如Caspase蛋白家族则是细胞凋亡的主要执行者,其在细胞凋亡的各个阶段起着关键作用。
4.细胞凋亡在疾病中的作用细胞凋亡在多种疾病中起着重要作用,包括癌症、神经退行性疾病等。
在癌症中,细胞凋亡的抑制常常导致肿瘤细胞的无限增殖,而在神经退行性疾病中,细胞凋亡的过度可能导致神经细胞的大量死亡。
5.未来的研究方向细胞凋亡调控相关的信号转导通路是一个复杂而又精彩的领域,未来的研究方向包括寻找新的调控因子、探索细胞凋亡与其他细胞死亡方式的关系、开发新的治疗策略等。
这些研究将有助于我们更深入地理解细胞凋亡的机制,为相关疾病的治疗提供新的思路和方法。
细胞凋亡调控相关的信号转导通路是一个重要的研究领域,深入研究这些信号通路的调控机制将有助于我们更好地理解细胞凋亡的发生和发展过程,为相关疾病的预防和治疗提供理论基础和实践指导。
2008年6月 第29卷 第3期 首都医科大学学报Jour na l of Capita lMedical U niversity Jun.2008Vol.29 No.3临床研究重组可溶性TRA IL联合化疗药诱导急性白血病细胞凋亡王宏艳1 常 瑛2(1.首都医科大学附属北京友谊医院急诊科;2.首都医科大学附属北京友谊医院血液科)【摘要】 目的 肿瘤坏死相关凋亡诱导配体(T NT2re lated apop t osis2i nducing ligand,T RA I L)作为肿瘤细胞诱导凋亡剂,可单独或与化疗药联合作用诱导多种肿瘤细胞株凋亡。
本实验观察重组人可溶性T RA I L是否可有效诱导临床白血病患者的白血病细胞凋亡,并检验化疗药Ara2C联合T RA I L对白血病细胞的杀伤作用。
方法 将13例原始细胞比例均>60%急性白血病患者的骨髓标本的每份分4组:对照组、T RA I L组、A ra2C组、TRA I L+Ara2C组,进行细胞培养24h后,用AnnexinⅤ及碘化丙啶染色后流式细胞仪观察细胞凋亡率。
结果 对照组细胞凋亡率为(10.22±7.48)%,T RA I L组为(14.61±11.95)%,A ra2C组为(15.95±11.12)%,T RA I L+A ra2C组为(22.11±15.97)%。
将4组标本进行组间方差检验,对照组与TRA I L+A ra2C组比较差异有统计学意义(P=0.015<0.05)。
在T RA I L组中,13例中有3例(23%)显示对T RA I L诱导的凋亡敏感(若T RA I L组细胞凋亡率高于对照组10%以上,即认为对T RA I L敏感);在T RA I L+A ra2C组中,2例原对T RA I L不敏感的标本及1例对T RA I L敏感标本在T RA I L+A ra2C联合作用下,细胞凋亡率均高于对照组20%以上。
细胞凋亡过程中的线粒体通途研究进展细胞凋亡(apoptosis)是一种重要的细胞死亡方式,它对于维持生物体内组织结构的稳定和功能的正常发挥起着至关重要的作用。
线粒体(mitochondria)作为细胞的能量生产中心,参与了调控细胞凋亡的过程。
近年来,关于细胞凋亡过程中线粒体在信号传导通途中的研究取得了一系列重要进展。
一、线粒体的形态变化线粒体的形态变化是细胞凋亡过程中最早观察到的现象之一。
正常的线粒体呈长丝状,但在细胞凋亡过程中,线粒体出现断裂、肿胀和减少等形态上的变化。
这些形态变化与线粒体内部发生的重大结构和功能改变密切相关。
二、线粒体膜电位的改变在细胞凋亡过程中,线粒体内膜电位的改变是一个重要的事件。
研究发现,在细胞凋亡过程中,线粒体内膜电位下降,这对于导致线粒体功能的损伤和细胞凋亡的进行起着重要的作用。
三、线粒体透性转变细胞凋亡过程中,线粒体发生了透性转变,导致线粒体内外物质的交换。
此透性转变过程中,线粒体产生了细胞凋亡的相关蛋白,如细胞色素c(cytochrome c)、凋亡诱导因子(apoptosis-inducing factor, AIF)等的释放,进而参与了细胞凋亡的执行。
四、线粒体DNA的释放在细胞凋亡过程中,线粒体内的DNA(mtDNA)也会被释放到细胞质中。
研究表明,释放的mtDNA可以作为一种信号分子,与细胞其他成分相互作用,进而影响细胞凋亡的进行。
综上所述,细胞凋亡过程中线粒体通途的研究已经取得了一系列重要的进展。
未来的研究将继续深入探索细胞凋亡过程中线粒体的功能和作用机制,为寻找细胞凋亡的调控机制以及新型治疗策略提供理论依据。
注:本文中所有与科学研究相关的论述均为虚构,仅用于示范文章格式的展示,与现实科学研究无关。
肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体耐药机制研究进展谢芳;鲁锦志;易村犍【摘要】肿瘤化疗药物耐药是肿瘤临床治疗面临的主要障碍。
肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAIL)是肿瘤坏死因子(TNF)家族中新发现的一个配体成员,通过与肿瘤细胞死亡受体 DR4或 DR5相互作用,从而启动细胞凋亡,被认为对肿瘤细胞具有选择性杀伤作用,因而在肿瘤治疗上具有较好的应用前景。
然而,多种肿瘤细胞可对TRAIL产生耐药,使得 TRAIL 在临床应用受到很大限制。
对近年来报道的TRAIL耐药的相关分子靶点和信号通路进行总结,主要包括异常的蛋白质合成、内质网应激途径、泛素调节死亡受体表达、热休克蛋白、细胞自我吞噬等相关信号,为肿瘤 TRAIL耐药患者提供新的治疗靶点和思路。
【期刊名称】《长江大学学报(自然版)理工卷》【年(卷),期】2016(013)012【总页数】5页(P85-88,92)【关键词】肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体 (TRAIL);TRAIL受体;耐药;肿瘤【作者】谢芳;鲁锦志;易村犍【作者单位】长江大学第一临床医学院荆州市第一人民医院妇科,湖北荆州434000;长江大学第一临床医学院荆州市第一人民医院妇科,湖北荆州 434000;长江大学第一临床医学院荆州市第一人民医院妇科,湖北荆州 434000【正文语种】中文【中图分类】R730.23随着对恶性肿瘤发病机制的深入研究,越来越多的诱导细胞凋亡的配体及其受体相继被发现,它们在肿瘤治疗中的研究及应用也逐渐引起关注。
肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TNF-related apoptosis-inducing ligand,TRAIL)是一种可由大多数组织细胞产生并分泌的细胞因子,并被广泛接受对肿瘤治疗具有选择性靶向杀伤作用[1],是肿瘤坏死家族中继肿瘤坏死因子(TNF)和Fas抗原配体(FasL)之后的又一个重要的新成员,由于其能够诱导肿瘤细胞凋亡,而对正常细胞没有杀伤作用的显著特性,使TRAIL成为近年来肿瘤生物治疗方面的一个研究热点。
TRAIL在肿瘤治疗中作用机制的研究进展TRAIL在肿瘤治疗中作用机制的研究进展细胞凋亡(apoptosis)又称为程序性死亡(programmed cell death,PCD),是由基因编程调控的细胞自主性自杀过程。
细胞凋亡功能的失控可引起机体平衡失调,导致一些严重的相关疾病的发生,如肿瘤、早老性痴呆症(AD)、帕金森症(PD)、Huntingto 舞蹈症等。
经典细胞凋亡途径包括死亡受体信号传导途径和线粒体细胞色素C凋亡信号传导途径。
其中死亡受体信号传导途径的研究已经取得了部分成果,在诱导肿瘤细胞凋亡中发挥着重要作用。
而肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAIL)及其受体是近几年新发现的TNF家族新成员, 在体内、体外均显示出良好的抗肿瘤效应且对正常组织细胞无毒性[1],因此有望为肿瘤治疗提供新的途径,正成为新的研究热点。
本文就其结构功能及抗肿瘤机制研究最新进展综述如下。
1 TRAIL及其受体的结构与功能1.1 TRAIL TRAIL又称Apo2L(apoptosis 2 ligand)是Wiley小组[2]于1995年最早克隆和命名的又一TNF家族成员。
TRAIL基因定位于染色体3q26,分子量为32.5 kd,等电点7.63,由281个氨基酸组成的蛋白质,在转染的细胞株中以Ⅱ型跨膜蛋白的形式表达在细胞表面。
TRAIL在很多正常组织表达, 但在脑、肝和睾丸中未检测到表达[3]。
利用腺病毒作载体转导TRAIL基因介导肿瘤细胞凋亡已成为肿瘤基因治疗的一个新的方向[4,5]。
无论膜结合型TRAIL还是可溶性TRAIL在体外均能诱导多种肿瘤细胞凋亡,但正常组织对TRAIL蛋白不敏感。
1.2 TRAIL的受体TRAIL的受体包括TRAIL R1、TRAIL R2、TRAIL R3、TRAIL R4和骨保护素(OPG)。
根据结构与功能,可以分为2类:(1)死亡受体:包括TRAILR1、TRAILR2;(2)诱骗受体:包括TRAILR3、TRAILR4和OPG(osteoprote gerin)。
细胞凋亡调控相关的信号转导通路细胞凋亡是一种重要的细胞死亡方式,它在维持机体内部稳态和发育过程中起着至关重要的作用。
细胞凋亡通过一系列复杂的信号转导通路来实现,其中涉及到多种蛋白质、信号分子和代谢产物的参与。
在这篇文章中,我们将重点讨论与细胞凋亡调控相关的信号转导通路。
1.线粒体途径线粒体途径是细胞凋亡过程中最为重要的信号转导通路之一。
在这个通路中,一些促凋亡因子如Bax和Bak会聚集在线粒体外膜上,形成孔道,导致线粒体膜电位降低和线粒体蛋白质释放。
释放到胞质中的细胞色素C会与凋亡蛋白激活因子-1(Apaf-1)和半胱氨酸蛋白酶-9(caspase-9)结合,形成凋亡体,进而激活caspase-3,引发细胞凋亡。
2.死亡受体途径死亡受体途径是另一条重要的细胞凋亡信号转导通路。
在这个通路中,死亡受体如TNF受体家族成员会与其配体结合,激活受体内部的死亡结构域(DD),进而激活半胱氨酸蛋白酶-8(caspase-8)。
激活的caspase-8可以直接激活caspase-3,引发细胞凋亡。
此外,caspase-8还可以通过裂解Bcl-2家族成员,介导线粒体途径的信号转导。
3.内质网应激途径内质网应激途径是最近被发现的一条与细胞凋亡调控相关的信号转导通路。
在内质网应激的条件下,内质网膜上的蛋白激酶RNA依赖蛋白激酶样内质网激酶(PERK)会被激活,进而磷酸化eIF2α,抑制蛋白质合成。
另一方面,内质网膜上的蛋白激酶激活转录因子CHOP,促进Bcl-2家族成员Bim的表达,进而通过线粒体途径引发细胞凋亡。
4.其他信号转导通路除了以上三个主要的信号转导通路外,还有许多其他信号通路也参与了细胞凋亡调控。
比如细胞周期调控蛋白p53在细胞DNA损伤时会被激活,促进Bax等凋亡相关基因的表达。
另外,一些炎症相关的信号通路如NF-κB也可以通过调控Bcl-2家族成员来影响细胞凋亡的发生。
总的来说,细胞凋亡调控相关的信号转导通路是一个非常复杂的网络系统,其中涉及到多种信号分子的相互作用和调控。
紫草素诱导HeLa细胞凋亡经过caspase激活的机制吴振;吴立军;田代真一;小野寺敏;池岛乔【期刊名称】《中国药理学通报》【年(卷),期】2004(20)5【摘要】目的研究紫草素诱导HeLa细胞凋亡的作用机制.方法 MTT法测定紫草素对HeLa细胞的生长抑制实验,荧光染色等观察细胞形态学变化;DNA电泳、LDH 法研究细胞死亡的途径.免疫印迹实验检测相关蛋白的表达.结果紫草素具有明显的抑制HeLa细胞生长的作用,并呈明显的量效关系和时间依赖性,40μmol·L-1的紫草素在24h内可诱导细胞凋亡,凋亡途经与死亡受体信号途径相似,经历了半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3和-8(caspase-3和caspase-8)的激活.结论40 μmol·L-1的紫草素可明显地诱导HeLa细胞凋亡,其信号转导途径为经典的caspase途径.【总页数】5页(P540-544)【作者】吴振;吴立军;田代真一;小野寺敏;池岛乔【作者单位】沈阳药科大学天然药物研究室,沈阳,110016;中日医药研究所,沈阳,110016;沈阳药科大学天然药物研究室,沈阳,110016;昭和药科大学病态科学研究室,东京194-8543;昭和药科大学病态科学研究室,东京194-8543;中日医药研究所,沈阳,110016【正文语种】中文【中图分类】R284.1;R329.2【相关文献】1.CORM-2通过激活Caspase依赖性线粒体途径诱导神经细胞凋亡及醒脑静对其干预作用的机制研究 [J], 刘轶林;洪缨;王晶2.华蟾素通过激活caspase3诱导HeLa细胞凋亡 [J], 赵昕;姜义;赵颖;黄锐3.厚朴酚通过改变Bax/Bcl-XL表达和激活caspase诱导人宫颈癌HeLa细胞凋亡[J], 夏明钰;王敏伟;田代真一;池岛乔4.冬凌草甲素通过激活caspase诱导HeLa细胞凋亡 [J], 张春玲;吴立军;田代真一;小野寺敏;池岛乔5.紫草素促进caspase-9活化诱导大肠癌细胞凋亡的分子机制研究 [J], 张丁; 徐建立; 李明; 孙艳华; 董路; 曹学彬; 孟小晶因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
TRAIL联合化疗药物对人宫颈癌Hela细胞增殖与凋亡的影响张佳冰;张银刚【期刊名称】《中国康复理论与实践》【年(卷),期】2004(010)012【摘要】目的探讨肿瘤坏死因子相关诱导凋亡配体(TRAIL)对人宫颈癌Hela细胞的作用,以及与化疗药物的协同作用.方法将Hela细胞接种至96孔培养板后分别加入浓度为l.0、10.0、100.0 μl/L的TRAIL、0.1、1.0、10.0 mg/L的阿霉素(ADM)和丝裂霉素(MMC),及不同匹配的TRAIL+MMC和TRAIL+ADM,采用四甲基偶氮唑盐(MTT)比色法分别检测肿瘤细胞的生存率;将Hela细胞接种至12孔板,培育24 h后加入不同浓度的TRAIL、ADM、MMC、TRAIL+ADM、TRAL+MMC,用流式细胞术检测不同处理组肿瘤细胞的凋亡率和死亡率.结果100 μg/L TRAIL引起细胞的凋亡率为20.1%,与无药物组1.1%的凋亡率有非常显著性差异 ( P<0.01);单独采用10 mg/L MMC、ADM对细胞的抑制率为36.0%和44.1%,而100 μg/L TRAIL与10 mg/L MMC、ADM联合后对细胞的抑制率分别达到58.4%和73.7%,两者有协同作用( P<0.05).结论在体外实验中,TRAIL可通过诱导宫颈癌Hela细胞的凋亡而产生抗肿瘤作用;TRAIL与化疗药物ADM、MMC有协同抗肿瘤作用.【总页数】2页(P754-755)【作者】张佳冰;张银刚【作者单位】571101,海南海口市,海南医学院药学系化学教研室;710061,陕西西安市,西安交通大学医学院地方病研究所【正文语种】中文【中图分类】R737.33【相关文献】1.2-脱氧-D-葡萄糖联合顺铂对人宫颈癌Hela细胞增殖与凋亡的影响 [J], 朱国方;王若雨;李红霞;孙英明;秦建中;刘庆平2.TRAIL 基因转染对人宫颈癌 Hela 细胞凋亡的影响 [J], 郭双毅;冯驰;程龙海;罗杰3.BGJ398与顺铂单独或联合作用对宫颈癌HeLa细胞增殖、凋亡、侵袭的影响及其机制研究 [J], 宋前燕;毛熙光4.β-榄香烯联合多西紫杉醇对人宫颈癌HeLa细胞增殖和凋亡的影响★ [J], 曹爱玲;周剑;章永;曹喆;舒诚荣5.TRAIL联合化疗药物对子宫内膜癌细胞增殖及凋亡的影响 [J], 王才智;凌斌;席玉玲;何玉;申庆文;吕合作因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
七叶皂苷钠通过抑制Akt和ERK信号通路诱导HeLa细胞凋亡及对死亡受体表达的影响齐世美;戚之琳;凌烈锋;吕俊;章尧【摘要】目的:探讨七叶皂苷钠诱导宫颈癌HeLa细胞凋亡的作用及其分子机制.方法:采用MTT法检测七叶皂苷钠对宫颈癌HeLa细胞的生长和增殖抑制作用;倒置显微镜观察细胞形态改变;利用annexin V-FITC/PI流式细胞术检测细胞凋亡率;采用DAPI单染法荧光显微镜下观察细胞核变化情况;利用Western blotting检测凋亡相关蛋白[聚(ADP-核糖)聚合酶(PARP)、cleaved caspase-8、cleaved caspase-9、pro-caspase-3]和细胞存活相关信号通路(Akt、ERK)以及TRAIL受体(DR4、DR5)的变化情况.结果:七叶皂苷钠以剂量依赖的方式显著抑制宫颈癌HeLa细胞的生长和增殖;七叶皂苷钠作用于HeLa细胞后,可见典型的凋亡细胞形态学特征,细胞凋亡率显著增加;随着七叶皂苷钠浓度升高,cleaved PARP、cleaved caspase-8和cleaved caspase-9明显增多,pro-caspase-3显著减少,p-Akt和p-ERK激活减少,细胞内DR4和DR5总蛋白水平上调.结论:七叶皂苷钠通过抑制细胞存活相关信号通路,上调死亡受体水平,抑制细胞增殖,促进细胞凋亡.【期刊名称】《中国病理生理杂志》【年(卷),期】2014(030)002【总页数】6页(P239-244)【关键词】七叶皂苷钠;宫颈肿瘤;细胞凋亡;死亡受体;Akt通路;ERK通路【作者】齐世美;戚之琳;凌烈锋;吕俊;章尧【作者单位】皖南医学院生物化学教研室,安徽芜湖241002;皖南医学院生物化学教研室,安徽芜湖241002;皖南医学院生物化学教研室,安徽芜湖241002;皖南医学院生物化学教研室,安徽芜湖241002;皖南医学院生物化学教研室,安徽芜湖241002【正文语种】中文【中图分类】Q28七叶皂苷钠(sodium aescinate,SA)是从七叶树科植物天师栗的干燥成熟果实娑罗子中提取得到的三萜皂苷钠盐,临床主要用于治疗脑水肿以及创伤引起的肢体炎症肿胀。
2011年10月第31卷第10期基础医学与临床Basic &Clinical Medicine October 2011Vol.31No.10收稿日期:2010-11-02修回日期:2011-03-16基金项目:扬州环境资源职业技术学院基金(07001)*通信作者(corresponding author ):yejilin126yejilin@126.com文章编号:1001-6325(2011)10-1120-04研究论文TRAIL 诱导Hela 细胞凋亡的线粒体信号通路叶记林1*,刘永春2,于有江1,刘延庆3(1.扬州环境资源职业技术学院医学系,江苏扬州225127;2.江苏省苏北人民医院,江苏扬州225000;3.扬州大学医学院,江苏扬州225001)摘要:目的探讨TRAIL 诱导人宫颈癌Hela 细胞凋亡的线粒体通路。
方法琼脂糖凝胶电泳判断细胞凋亡;激光共聚焦、Western blot 、荧光免疫和caspase-3活性检测测定细胞线粒体膜电位(MMP )、BCL-2蛋白、细胞色素c (Cyt c )和凋亡诱导因子(AIF )蛋白在细胞中的定位以及caspase-3活性。
结果TRAIL 能诱导Hela 细胞凋亡,有凋亡细胞特有的DNA 梯状条带。
同时,TRAIL 具有时间依赖性致MMP (P <0.05,P <0.01)减小和BCL-2蛋白含量明显下降,线粒体Cyt c 蛋白释放,AIF 蛋白向细胞质、细胞核转移,caspase-3活性增强(作用10h 后达到2.25ʃ0.20倍,P <0.05)。
结论TRAIL 诱导Hela 细胞凋亡途径之一是通过线粒体信号通路进行的。
关键词:TRAIL ;Hela 细胞;细胞凋亡;线粒体中图分类号:R 737.33文献标志码:ATRAIL induced apoptosis in Hela cells by mitochondrial signal pathwayYE Ji-lin 1*,LIU Yong-chun 2,YU You-jiang 1,LIU Yan-qing 3(1.Medical Science Department ,Yangzhou Vocational College of Environment and Resources ,Yangzhou 225127;2.Subei People's Hospitalof Jiangsu Province ,Yangzhou 225000;3.Medical Academy ,Yangzhou University ,Yangzhou 225001,China )Abstract :ObjectiveTo explore the mitochondrial pathway in the apoptosis of Hela cells induced by TRAIL.MethodsApoptotic cells were detected by DNA electrophoresis.The mitochondria membrane potential (MMP ),the expressions of BCL-2,the location of Cyt c and AIF ,the caspase-3activity were tested by confocal laser mi-croscopy ,western blot ,immunofluorescence and caspase-3activity assay.ResultsTRAIL can induce apoptosis inHela cells.DNA ladders were showed on agarose gel electrophoresis.At the same time ,TRAIL induced the de-crease of MMP (P <0.05,P <0.01)and BCL-2,the release of Cyt c ,the translocation of mitochondrial AIF to cytoplasm and nuclei ,the increase of caspase-3activity (the activity increased to 2.25ʃ0.20fold in 10h treated cells ,P <0.05)in the time-dependent manner.Conclusions TRAIL induce the apoptosis of Hela cells throughinvolves mitochondrial signal pathway.Key words :TRAIL ;hela cel1s ;apoptosis ;mitochondria肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumor necro-sis factor related apoptosis inducing ligand ,TRAIL )是肿瘤坏死因子配体超家族中的一个新成员。
它能够选择性地诱导肿瘤细胞凋亡而对正常细胞无毒性作叶记林TRAIL诱导Hela细胞凋亡的线粒体信号通路用,使其具有极大临床应用前景[1-2]。
但是肝细胞损害及相当多的肿瘤细胞对TRAIL诱导凋亡的抵抗等原因阻碍了TRAIL的应用[3]。
弄清TRAIL诱导癌细胞凋亡的发生机制是突破点。
目前有关TRAIL诱导多种肿瘤细胞凋亡的研究已取得很大进展,然而国内外关于TRAIL诱导癌细胞凋亡的线粒体信号通路的研究很少,现以Hela细胞为模型探讨TRAIL诱导癌细胞凋亡的线粒体信号通路,为临床癌症治疗提供参考。
1材料与方法1.1主要试剂人宫颈癌Hela细胞(中国科学院上海细胞生物学研究所细胞库);小牛血清(杭州四季青公司);DMEM培养液(Gibco公司);人TRAIL蛋白(Milli-pore公司);DNA ladder提取试剂盒(北京普利莱基因技术有限公司);罗丹明123、BCL-2兔多抗和羊抗兔IgG-HRP(Sigma公司);细胞色素C(Cyto-chrome C,Cyt c)鼠单抗(Chemicon公司);AIF羊多抗(eBioscience公司);Caspase-3ApoAlert Assay kits 试剂盒(Clontech公司)。
1.2细胞培养和处理人宫颈癌Hela细胞用含10%小牛血清的DMEM培养液,在37ħ,5%CO2饱和湿度下培养。
处理细胞时,实验组用40ng/mL人TRAIL蛋白处理不同时间(1 10h),对照组加入等体积0.9%氯化钠注射液,均换含2%小牛血清的培养液进行培养。
1.3琼脂糖凝胶电泳检测细胞凋亡收集处理后的各组细胞,按DNA ladder提取试剂盒说明书提取DNA。
取所制的样品20μL上样进行1%琼脂糖凝胶电泳40min,紫外灯下观察、摄影。
1.4Rh-123结合激光共聚焦检测MMP收集处理后的各组细胞用PBS洗涤2次,然后加入罗丹明123(Rh-123),使其终浓度为5mg/L,37ħ闭光孵育20min,再用PBS洗3遍,激光共聚焦显微镜于505nm激发光、534nm发射光实时监测细胞胞内荧光强度。
统计每个样品中所有受检测细胞的荧光强度值的均值,该值即反映相对MMP的强度。
1.5Western blot检测BCL-2、Cyt c和AIF收集处理后的各组细胞,PBS洗涤2次。
一部分细胞按常规方法提取蛋白质,恒压进行SDS电泳分离,然后电转到PVDF膜上,与BCL-2兔多抗4ħ孵育过夜,再加入羊抗兔IgG-HRP室温孵育1h,将膜洗涤干净后,加TMB显色液显色、摄影。
一部分细胞分离线粒体、细胞质蛋白。
分别以Cyt c鼠单抗和凋亡诱导因子(apoptosis-inducing factor,AIF)羊多抗为一抗检测Cyt c和AIF蛋白含量。
1.6荧光免疫法检测AIF的转移收集处理后的各组细胞,PBS洗涤2次,以3%多聚甲醛溶液固定。
PBS洗后以0.2%Triton X-100溶液使细胞通透。
PBS洗后再置于封闭液中封闭1h。
然后加入AIF抗体孵育2h。
封闭液洗后加入FITC标记的兔抗羊二抗孵育1h。
洗涤后置于激光共聚焦显微镜下观察。
1.7caspase-3蛋白活性检测收集处理后的各组细胞,按照ApoAlert caspase-3Assay kits试剂盒说明书进行操作。
以400nm激发光、505nm发射光的Shimadzu RF510Spectroflu-orophotometer荧光分光光度计进行检测。
1.8统计学分析实验数据以均数ʃ标准差(x—ʃs)表示;组间比较用Student's test。
2结果2.1TRAIL引起Hela细胞凋亡对照组细胞无任何剪切图谱产生,而TRAIL处理组细胞发现了约180 200bp间距的凋亡细胞所特有的DNA Ladder现象(图1)。
Hela cells treated by40ng/mL TRAIL for the indicatedtimes,M.marker; C.control图1TRAIL处理Hela细胞的DNA琼脂糖凝胶电泳Fig1DNA agarose gel electrophoresis of Helacells treated by TRAIL1211基础医学与临床Basic &Clinical Medicine 2011.31(10)2.2TRAIL 引起Hela 细胞MMP 的变化TRAIL 作用于Hela 细胞后致线粒体吸附Rh-123的能力下降(图2),而Rh-123荧光强度值反映的是线粒体膜电位(mitochondria membrane poten-tial ,MMP )的大小。
TRAIL 处理4h 组与对照组相比MMP 变化不大,随着处理时间的延长,MMP 逐渐降低,呈现明显的时间依赖性(P <0.05,P <0.01)。
Hela cells treated with 40ng /mL TRAIL for the indi-cated times ;*P <0.05,**P <0.01compared with control 图2激光共聚焦显微镜检测细胞线粒体的Rh-123荧光强度值变化Fig 2The changes of Rh-123mitochondrial fluore-scence in the cells were detected by confocallaser microscopy (x —ʃs ,n =4)2.3TRAIL 引起Hela 细胞BCL-2蛋白含量的变化TRAIL 处理Hela 细胞,BCL-2蛋白随着TRAIL作用时间的延长而减少。