微生物学标本采集与处理程序

微生物检验标本的正确采集及注意事项

正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。

一、 血液标本的采集

1、 采集方法

（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项

（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。

（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。

（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。

（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。

（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。

二、骨髓的采集

1、采集方法

临床微⽣物标本的采集,储存和转运

临床微⽣物标本的采集，储存和转运

微⽣物检验的基本原则1.及时采集微⽣物标本作病原学检查

2.在抗菌药物使⽤前采集标本

3.采样时严格执⾏⽆菌操作

4.采样后⽴即送检

5.标本容器须灭菌处理，但不得使⽤消毒剂

6.送检标本应注明来源和检验⽬的

标本采集1.尽早采集

2.⽆菌操作

3. 合适部位

4.适量标本

5. 适当⽅法

6. 安全采集

1-尽早采集标本“采集重在时效性”

1.1最好是病程早期、急性期

1.2尽量在抗⽣素使⽤之前采集

1.3对已⽤抗⽣素⼜不能停药者，可在下次⽤药前采集

2-合适部位“背景⼲扰”

2.1⽆菌标本:注意局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作

与外界相通的腔道:避开腔道⼝区标本，以免⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊。2.2正常菌群寄⽣部位:采集时应特别⼩⼼;应明确检查的⽬的菌在进⾏分离培养时，采⽤特殊选择性培养基

2.3⾎标本采集:应避免输液的影响。

3-⽆菌操作

采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近⽪肤或粘膜常居菌群污染和防⽌外源性细菌污染标本。3.1.在采集⾎液、脑脊液、胸腔积液、关节液等⽆菌标本时，应注意对局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作;

3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，⽽⾮从窦道⼝取标本，以免受⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于⽆菌容器内送检。盛装标本的容器须先经⾼压灭菌、煮沸、⼲热等物理⽅法灭菌，或使⽤⼀次性⽆菌容器，不能⽤消毒剂或酸类处理。标本中也不得添加防腐剂，⼀⾯降低病原菌的分离率。4-适量标本

4.1标本采集应⾜量。标本量过少，可能会导致假阴性结果。

4.1.1⾎液标本:通常成⼈采⾎量每瓶8-10ml,⼉童每瓶1-5ml;脑脊液、⾻髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:≥1ml尿液标本: >3ml4.1.3粪标本: 1-3g或1-3ml

4.2结核标本采集量要求特殊:

制作微生物标本的步骤

制作微生物标本是一个非常重要的过程，它可以帮助科研人员对微生物进行观察和研究。以下是制作微生物标本的一般步骤：

1. 样品采集，首先，需要准备好要观察的微生物样品。这可能涉及到从环境中采集样品，或者从培养基中得到纯培养的微生物。

2. 固定，接下来，需要将微生物固定在载玻片或其他适当的基材上。这通常涉及使用化学物质（如甲醛或乙醇）来固定微生物的结构，以便在后续的染色和观察过程中保持其形态完整。

3. 染色，染色是制作微生物标本中的关键步骤。常用的染色方法包括革兰氏染色、吉姆萨染色和折射率染色等。这些染色方法可以帮助突出微生物的特定结构或细胞器，并使其在显微镜下更易于观察。

4. 封片，一旦微生物标本制备完成，需要使用透明的封片液将载玻片封好，以保护标本并避免其干燥或受到外界污染。

5. 观察，最后，制作好的微生物标本可以通过光学显微镜或电子显微镜进行观察。科研人员可以通过观察微生物的形态、结构和特征来进行进一步的研究和分析。

总的来说，制作微生物标本是一个需要细致操作和谨慎处理的过程。每一个步骤都需要严格控制，以确保最终的标本能够真实地反映微生物的形态和结构特征，为后续的研究工作提供可靠的数据支持。

临床微生物标本采集与运送

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临床微生物标本采集与运送

一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程

一、血培养指征

患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。

二、采血时机

一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。

三、采血流程

(一)消毒

1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。

2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。

(二)静脉穿刺和培养瓶接种

成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。

(三)注意事项

1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。

2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。

3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。