呼吸兔子调节实验报告

第1篇

一、实验目的

1. 了解兔子的呼吸系统结构及其功能。

2. 观察兔子在不同状态下的呼吸情况。

3. 掌握呼吸实验的基本操作方法。

二、实验原理

兔子的呼吸系统主要由鼻腔、气管、支气管和肺组成。兔子为哺乳动物，采用双重呼吸方式，即吸气时氧气进入肺泡，二氧化碳排出；呼气时，氧气从肺泡排出，二氧化碳进入肺泡。本实验通过观察兔子的呼吸情况，了解其呼吸系统的结构和功能。

三、实验材料

1. 实验动物：健康成年兔子1只。

2. 实验仪器：解剖显微镜、解剖刀、剪刀、镊子、酒精灯、注射器、记录纸、记录笔等。

3. 实验试剂：生理盐水、碘酊、酒精等。

四、实验步骤

1. 准备实验动物：将兔子放入安静、通风的环境中，观察其呼吸情况。

2. 解剖准备：将兔子固定在解剖台上，用酒精棉球消毒实验部位，用碘酊消毒兔子的鼻腔、气管、支气管和肺。

3. 观察鼻腔：用解剖显微镜观察兔子的鼻腔结构，注意鼻腔黏膜、鼻道和鼻甲骨等。

4. 观察气管：用解剖刀切开气管，观察气管壁的厚度、黏膜和软骨环等。

5. 观察支气管：用解剖刀切开支气管，观察支气管壁的厚度、黏膜和软骨环等。

6. 观察肺：用解剖刀切开肺，观察肺泡、肺小叶和肺血管等。

7. 观察呼吸情况：在实验过程中，观察兔子的呼吸频率、深度和节律等。 8. 记录实验数据：将观察到的呼吸情况、肺泡、肺小叶和肺血管等结构特点记录在记录纸上。

五、实验结果与分析

1. 兔子的呼吸频率：实验过程中，兔子的呼吸频率约为每分钟30-40次。

2. 兔子的呼吸深度：兔子的呼吸深度适中，表现为胸廓的起伏。

3. 兔子的呼吸节律：兔子的呼吸节律较为规律，无明显异常。

4. 兔子呼吸系统结构特点：

（1）鼻腔：兔子的鼻腔较宽，黏膜湿润，有利于气体交换。

（2）气管：气管壁较厚，软骨环明显，起到支撑和保护作用。

（3）支气管：支气管壁较薄，黏膜较光滑，有利于气体通过。

（4）肺：肺泡结构清晰，肺小叶明显，肺血管分布均匀。

一， 正常呼吸曲线记录：

图表 1

分析：如图表 1所示，吸气时肺扩张，剑突软骨上升，拉着剑突软骨的细线

放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线紧绷。因此曲线上升阶段为吸气，

下降阶段为呼气。

二， 增加无效腔：

图表 2

分析：如图表 2所示，增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气

体更新率下降，引起血中PCO2、PO2-下降，刺激中枢和外周化学感受器引起呼

吸运动会加深加快；另外，气道加长使呼吸气道阻力增大，减少了肺泡通气

量，反射性呼吸加深加快;增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频

率加快。

三， 增加阻力：

图表 3

分析：如图表 3所示，增大气道阻力，减少了肺泡通气量，导致呼吸系统中

PCO2上升、PO2下降，反射性呼吸加深加快。

四， 肺牵张注射：

图表 4

分析：如图表 4所示，在家兔呼气时，用针筒注射20ml空气，会导致呼气

相陡然下降。这是由于在呼气过程中收到外界的阻力，使得呼气变难，家兔

更用力的呼气，呼气的动作加重所导致的。

五， 肺牵张抽气：

图表 5

分析：如图表 5所示，在家兔吸气时，用针筒抽出20ml

空气，会导致吸气相陡然上升。这是由于空气的减少，使得家兔更用力的吸气，吸气的动作加

深所导致的

六， 注入CO2：

图表 6

分析：如图表 6所示，CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对

呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。

每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右

达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障

使脑脊液中CO2浓度增多，CO2+H2O→H2CO3 →HCO3-+ H+ CO2通过它产生的H+刺

激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸肌的作用使呼吸运动加

强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，

反射性地使呼吸加深加快。

七， 阻断迷走神经（双侧）：

一、实验目的

1. 观察和记录兔子的呼吸运动，了解呼吸频率、节律和幅度的变化。

2. 探讨血液中化学因素（PCO2、PO2和[H]）对呼吸运动的影响。

3. 分析迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。

4. 掌握气管插管术和神经血管分离术。

二、实验原理

呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。

三、实验材料与器材

1. 实验动物：健康家兔一只（体重约2.5kg）

2. 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素

3. 实验器材：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针

四、实验步骤

1. 实验前准备

- 打开计算机采集系统，接通压力换能器和呼吸流量换能器。

- 将家兔称重，并用20%的乌拉坦进行麻醉。

2. 气管插管术

- 剪去颈部和剑突腹部的被毛，切开颈部皮肤。

- 分离双侧迷走神经并穿线备用。

- 分离出气管，在2～3气管环处，作一“T”型切开，插入气管套管。 3. 呼吸运动观察

- 连接压力换能器和呼吸流量换能器，记录呼吸频率、节律和幅度。

- 改变血液中PCO2、PO2和[H]浓度，观察呼吸运动的变化。

4. 迷走神经切断实验

- 切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。

- 切断另一侧迷走神经，再次观察呼吸运动的变化。

5. 实验结束

- 解除麻醉，观察家兔恢复情况。

- 清理实验器材，填写实验报告。

五、实验结果与分析

1. 血液中PCO2、PO2和[H]浓度变化对呼吸运动的影响

实验十一 家兔呼吸运动的调节

一、实验目的

1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。

2. 观察多种因素对呼吸运动的影响。

二、实验原理

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、有节律地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器、反射地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

三、动物与器材

1.实验动物：家兔

2.实验器材：兔体手术台、 手术器械、 张力传感器、 PowerLab信号采集系统、Y型气管插管、 20ml与1ml注射器、 橡皮管(长1.5m,内径1cm)。

3.实验试剂：生理盐水、2%戊巴比妥钠、尼可刹米、1%乳酸。

四、实验方法与步骤

1.家兔麻醉

称重—麻醉（2%戊巴比妥钠，2ml/kg，耳缘静脉注射）—固定（仰卧位固定）

2.手术分离颈部气管和神经

颈部皮肤切口6-7cm——钝性分离颈部肌肉层——做“T”形切口插入气管插管——分离双侧迷走神经

3.分离剑突软骨

切开皮肤，分离表面组织使剑突软骨和骨柄暴露，金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨与胸骨完全分离，但保留下方的膈肌片。

4.打开Powerlab信息采集系统，用金属钩钩住游离的剑突软骨，连接各装置。

（1）记录正常的呼吸曲线，并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。

（2）增加无效腔对呼吸的影响：插管一侧加上1.5米橡皮管，另一侧用止血钳夹闭。

（3）增加气道阻力对呼吸的影响：记录一段正常呼吸曲线后，同时夹闭气管插管两侧管。

（4）肺牵张反射对呼吸的影响：插管上连接20ml注射器，在吸气末打气，呼气末抽气。

（5） 结扎双侧迷走神经，重复第4步。

（6）双节扎一侧迷走神经，剪断双侧迷走神经，分别刺激中枢端和外周端。

（7）静脉注射尼可刹米，0.5ml/只兔子。

（8）静脉注射1%乳酸，0.5~1ml/只兔子。

（9）气胸对呼吸的影响：剪断右侧肋骨，使兔子气胸。 五、实验结果