狗的解剖实验报告
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篇一:解剖母鸡实验报告
实验报告--母鸡的解剖
试验时间:20年12月7日
一、解剖程序
把鸡处死,方法:在鸡的颈部靠近头处开口放血致死,然后进行解剖观察
二、 观察内容
(一)消化系统
1.
口腔:无软腭,无唇齿,有上下喙,舌形态与喙相似。
2.嗉囊:食管的膨大部,位于叉骨之前,直接在皮下,偏右
2.
腺胃:纺锤形,粘膜层有胃腺
3.
肌胃:紧接腺胃,近圆形,呈暗红色,粘膜面被覆的角质膜又称鸡内金
4.
十二指肠:位于腹腔右侧,前端与肌胃相接,灰白色,管状
5.
空肠:前接十二指肠,后接回肠,灰白色,管状
6.
回肠:前接空肠,后接结直肠,夹在两条盲肠之间,灰白色,管状
7.
直肠:管腔较大,自回盲口直达泄殖腔
8.盲肠:一对相对很长的盲肠,壁内有丰富的淋巴组织,基部处集成盲肠扁桃体 第 2 页 共 17 页 9.泄殖腔:是消化泌尿生殖系统后端共同通道,由前向后分为粪道泄殖道肛道
10.胰腺:夹在十二指肠肠袢之间,淡黄色,长条形
11.
肝:位于腹腔前下部,暗褐色,分左右两叶,右叶内侧有一绿色胆囊
(二)呼吸系统
1.气管:较长而粗,半透明管状,位于皮下,偏右,进入胸腔在心基上方分为两个支气管
2.
鸣管:位于气管与支气管交叉处,分鸣骨和内外鸣膜,是发声器官
3.
肺:鲜红色,位于胸腔背侧,有很深的肋压迹。
4.气囊:肺内支气管粘膜突出形成,外被浆膜。
(三)心血管系统
心脏:位于胸腔前下方,心基朝向前方,椎体形
(四)生殖系统
1.
卵巢:位于左侧前半部的腹侧,上有大小不一的卵泡。
2.
输卵管:分为:漏斗部,壶腹部,峡部,子宫,阴道五部分
壶腹部:受精部位
壶腹部:卵白分泌部位
峡部:形成卵壳膜
子宫部:形成卵壳
阴道部:在蛋壳外面形成一层角质薄膜
(五)淋巴系统
1.腔上囊(法氏囊):位于鸡的泄殖腔的背侧,是泄殖腔的一个盲囊
2.脾:位于腺胃和肌胃交界处背侧,深红色 第 3 页 共 17 页 (六)泌尿系统
1.肾:位于腰荐骨两侧的凹窝内,酱红色,形状狭长,分为前中后三叶
2.输尿管:一对细管,从肾前叶与中叶之间的内侧缘开口,到泄殖道的背侧。
篇二:动物实验报告
实验一大、小鼠的基本实验操作
一、实验目的:通过实际操作,掌握大、小鼠的一般操作方法,包括大、小鼠的抓取和固
定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物:昆明小鼠4只(2雌2雄)、大鼠4只(2雌2雄)、灌胃器2个、注射器
4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤
1、抓取和固定
1.1抓取:左手抓小鼠的尾根部
1.2固定:左手抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇
指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
2、 性别鉴定:
2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性:距离长,毛发密(和其 他部
位一样);雌性:距离短,毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法,重复鉴别大鼠。
3.
给药 第 4 页 共 17 页 3.1 灌胃法
3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。
3.1.2固定后,右手持持接灌胃针的注射器吸取药液(或事先将药液 吸好),将针头从口角插入口腔内,然后用灌胃针头压其头部,使口腔与食管成一直线,
再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入,转动针头刺激动物吞咽,然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压,
此时可将药液灌入。
3.2 注射给药
3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤,
3.2.1.2右手持注射器,使针头水平刺入皮下,针头能自由拨动无牵阻,推送药液时注
射部位隆起。拨针时,以手指捏住针刺部位
3.2.2.1以左手固定小鼠,使腹部向上,
3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿 45 角
斜向穿过腹肌进入腹腔,此时有落空感,回抽无回血或尿液,即可注入药液。
3.2.3.1先将动物固定在暴露尾部的固定器内,
3.2.3.2用 75%酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张, 第 5 页 共 17 页 3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指从下面托起鼠,右手持注射器,使针头尽量采取与尾部平行的角度进针,从尾末端处刺入。
3.2.3.4注入药液,无阻力,表示针头已进入静脉,注射后把尾部向注射侧弯曲,或拔
针后随即以干棉球按住注射部位以止血。
4取血
4.1内眦取血:
4.1.1左手固定小鼠,食指和拇指轻轻压迫颈部两侧,使眶后动静脉充血。
4.1.2右手持毛细采血管,以 45 度从内眼刺入,并向下旋转,感觉刺入血管后,再向
外边退边吸,使血液顺承血管自由流入小管中,
4.1.3当得到0.5ml血量后,放松加于颈部的压力,并拔出采血器,以防穿刺孔出血
五、实验讨论
1、小鼠抓取的感受:小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。大鼠抓取方法基本同小鼠,抓大
鼠时若操作者不熟练,或者大鼠特别凶猛,操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。
如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时,可采用与小鼠相同的手法
2、小鼠尾静脉注射感受:
2.1尾静脉注射时,可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭, 可使血管扩张,同时也可软化表皮角质。
2.2如反复注入,应尽可能从尾末端开始,以后向尾根部方向移动注射先远后尽,不要
一开始就从尾根部,失败了无法选取注射部位;再次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易 第 6 页 共 17 页 刺穿血管的。
2.3尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近
心端让充血,就很容易看到了。
3.1针头插入食道过程中,若动物挣扎厉害,应退出后灌胃针,待动物安静后重新插入。
切不可强行插入,以免损伤食道或误入气管导致动物死亡。
3.2当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内,向外抽动注射器活塞,感觉有负压说
明灌胃针未插入气管,此时可将药液灌入。篇二:动物实验报告动物实验(小鼠)的一般操作技术 实习日期:207—11—13
一 目的和要求:
通过实际操作,使学生掌握实验的一般操作方法,包括动物的抓去和固定、编号被毛的
去除 给药途径 麻醉 采血和处死等方法。
二 实习内容:
1 实验动物的抓取
2 实验动物性别的鉴定3 实验动物编号的标记方法4实验动物被毛的去除
5 实验动物的给药途径和方法6 实验动物的麻醉
7实验动物的采血
8 实验动物的处死方法9 解剖
三 实验的方法
1 小鼠的抓取:抓取时先用手将鼠尾提起,放在实验台上,轻轻拉尾,用左手拇指和食
指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤,将鼠置于左手中心,用左手无名指和小指按住尾巴和后肢,
即可做其他实验操作作用。 第 7 页 共 17 页 2 小鼠性别的鉴定:抓取小鼠后,观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性,
距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法:用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸(黄色),一般左前肢为1,
左侧腹部为2,左后肢为3,头颈部为4,背部为5,尾根部为6,右前肢为7,右腹部为8,
右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除:有剪毛法,拔毛法,剃毛法,用硫化钠脱毛法。5 给药途径和方法:给药途径有经口灌胃法,经呼吸道吸入,经皮肤吸入和注射给药法。
用一支特制的灌胃针进行灌胃,小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体,然后抓取小鼠,
针头延侧角通过食管进入胃内,然后将液体注入。6 小鼠的麻醉:麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉,注射给药。
小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml/kg,根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小
鼠后,使针头和腹部成30度的角,刺入腹腔,回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻
药5分钟后,小鼠失去知觉。7 小鼠的采血的方法:有静脉采血法,尾部采血法,眼眶静脉采血法和心脏采血法。将
小鼠装入固定盒中,露出尾部,用二甲苯图擦,使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静
脉即可用毛细管采血,也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法:用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。9 解剖:从腹部开始,查看腹部脏器,以肝脏 胃 脾 肾 输尿管 姨 小肠 大肠 膀胱 前
列腺 性腺顺序。然后再看胸部,看到肺脏 心脏 胸腺等器官,并在直视的情况下进行了心脏
的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。
四 讨论和结论: 第 8 页 共 17 页 通过此次实验,我们学到了实验动物的一般操作技术,如抓取和固定、编号被毛的去除 给
药途径 麻醉 采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。试验报告(三)
一、试验目的:1。掌握豚鼠、兔、狗的一般操作方法,包括豚鼠的抓取和固定、编号、
性别鉴定、给药、麻醉、采血、处死的方法。
2.兔子的抓取和固定、被毛的去除、性别的鉴定、给药、采血和处死的方法。
3.犬的抓取和固定、采血的方法。
二、试验对象:豚鼠,兔,犬。
三、试验步骤:(一):豚鼠:
1. 抓取和固定:先用手掌抓住背部,将手张开,用拇指和食指握住颈部,
再拿起来。
2. 编号:同大鼠。
3. 性别鉴定:雄性生殖孔呈圆形,雌性生殖孔呈椭圆形。
4. 给药、麻醉、采血(无尾静脉采血)、处死同大鼠。
(二):兔:
1.抓取和固定:当兔子安静下来时,用右手抓住颈部的被毛与皮肤,提起兔,然后用左
手托住其臀部,兔身的重量大部分落在手上。
2.被毛的去除:多采用剪毛法。剪毛部位事先用纱布蘸生理盐水予以湿润,用弯头手术
剪紧贴其皮肤依次将所需部位的被毛剪去。
3.性别的鉴定:将生殖器附近的皮肤拔开,雄性可见一圆形孔,里面露出阴茎;雌性此
处为一条朝向尾巴的长缝,呈椭圆形间隙,下端有阴道开口处。