细胞培养的实验步骤
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细胞培养的实验步骤
细胞培养的实验步骤如下:
1、细胞复苏:
细胞培养条件
2、复苏流程:
(1)确认水浴锅的水清洁可用,方可提前打开37度预热。
(2)确认好复苏细胞的液氮罐中具体位置,并做好复苏登记。
(3)提前做好复苏准备,预热培养基。
(4)悬浮和贴壁细胞复苏参数:
(5)将细胞快速放入37度水浴锅中迅速溶解,1.8ml时间大概1分30秒,1ml大概1min左右,需计时,其间不要老是拿起来观察,需要快速复溶,避免细胞受到损伤。
(6)贴壁细胞需离心,1000rpm,5min。悬浮细胞直接加入预热的培养基中然后放入培养箱中
(7)贴壁细胞离心后去除上清,用预热的培养基重悬细胞后加入T25方瓶,蕞后放入培养箱中培养。
(8)取小样计数观察,细胞活力在70%以上算正常。低于70%活力可能细胞状态不太好,需要培养和恢复。
3、细胞传代培养
1.悬浮细胞传代流程: (1)先将装有细胞的摇瓶从培养箱拿出,用酒精喷洒瓶身后将摇瓶拿进超净台。
(2)打开摇瓶瓶盖,用200ul移液器取100~200ul细胞放入1.5mlEP管中,瓶盖过火,拧紧,将培养瓶放回摇床。
(3)将200ul细胞混匀,取10ul细胞加入10ul台盼蓝,显微镜下计数。根据细胞数决定下游实验。
(4)细胞需计数两次求平均值。
(5)悬浮细胞生长参数
(6)根据不同细胞的生长曲线在合适的时间和密度给细胞接种传代。
以sf9细胞为例:
细胞接种密度0.4x10^6个/ml,24h密度1x10^6个/ml,48h密度2.4x10^6个/ml,72h密度6x10^6个/ml,此时需要传代细胞。要求留样100ml0.4x10^6个/ml具体操作如下:
计算:需要母细胞体积=100*0.4/6=6.6ml
需要培养基体积=100-6.6=93.4ml
将上面体积的细胞和培养基加入摇瓶中,放回27度培养箱培养即可
2.贴壁细胞传代流程:
(1)显微镜下观察细胞状态和密度,80%汇合率以上需要传代。
(2)T25方瓶中加入0.5ml~1ml0.25%胰酶溶液(需37度预热),使瓶底细胞都浸入溶液中。放入37度培养箱进行消化。 (3)不同细胞消化时间不一样,初次培养贴壁细胞消化时间可以定在1min,显微镜下观察消化结果,消化不完全可以再适度加长消化时间。
(4)对于有经验的细胞消化可以定个准确的时间,消化结束后将培养皿放入显微镜下观察细胞,随着时间变长,原先贴壁细胞逐渐变圆,慢慢脱落,在还未飘起时弃掉胰酶,加入含有10%FBS的新鲜培养基终止消化。
(5)用1ml移液器轻轻吹打细胞,将细胞全部吹下后,可进行传代,一般是1:3传代。
(6)贴壁不牢的细胞可以用0.1%的凝胶包被4℃30min,用PBS清洗5次。
4、细胞冻存
1、细胞冻存参数
2、贴壁细胞冻存流程:
(1)将胰酶、培养基提前37度预热。冻存液提前配好放到4度冰箱预冷。
(2)先将装有细胞的方瓶从培养箱拿出,用酒精喷洒瓶身后将摇瓶拿进超净台。
(3)打开方瓶瓶盖,将方瓶中的培养基倒干净。
(4)根据细胞消化难易程度添加适量的胰酶。T25方瓶加1ml胰酶,T75方瓶加2ml胰酶。
(5)根据细胞消化难易程度放入37度培养箱消化1—5min,知道看见大片的细胞开始脱落,要及时终止消化。
(6)终止培养基需要含有至少10%血清,通常终止比例为1:10(1ml胰酶需要加入10ml终止培养基),对胰酶比较敏感的细胞需要终止后离心后换新鲜的培养基。
(7)终止后将细胞轻轻吹打混匀,避免结团,细胞收集到15ml或者50ml离心管中,将离心管配平,放入离心机中1000rmp5分钟。
(8)将离心管从离心机中取出,用酒精喷洒后拿进超净台。
(9)弃掉离心管中上清,加入预冷的冻存液,吹打混匀。
(10)将混匀的细胞加入冻存管中。
(11)将冻存管放入冻存盒中,蕞后放入-80°冰箱。
(12)第二天把细胞转移至液氮。