Westernblot所需溶液的配制
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一、所需试剂的配制1、丙烯酰胺贮存液(30%Acr/Bic)丙烯酰胺(Acr)29.2gN,N-甲叉双丙烯酰胺(Bic)0.8g超纯水至100ml37度溶解,4度避光保存一个月,使用时恢复至室温且无沉淀。
2、分离胶缓冲液(4×)(1.5mol/L Tris-HCl,pH8.8):Tris(MW121.14)18.15g超纯水90ml用HCl调pH值至8.8,最后用超纯水定容至100ml,4度保存。
3、浓缩胶缓冲液(4×)(1.0mol/L Tris-HCl,pH6.8):Tris(MW121.14)12.1g超纯水90ml用HCl调pH值至6.8,最后用超纯水定容至100ml,4度保存。
4、10%十二烷基硫酸钠(SDS)SDS 10g蒸馏水至100ml50度水浴溶解,室温保存。
如在长期保存中出现沉淀,水浴溶解后仍可使用。
5、10%过硫酸铵(Aps)Aps 0.1g超纯水1ml溶解后4度避光保存,保存时间为一周,现用现配,也可-20度保存6、N,N,N,N-四甲基乙二胺(TEMED):避光保存。
7、2×上样缓冲液(2×Loading Buffer):1.0mol/L Tris-HCl(pH6.8)0.8ml10%SDS(电泳级)2ml溴酚蓝0.5mg甘油0.8ml2-巯基乙醇0.2ml蒸馏水 1.2ml总量为5ml,可在4度存放数周,-20存放数月。
(其中2-巯基乙醇可保护二硫键,并使蛋白下沉用利于电泳的进行。
)8、电泳缓冲液(pH8.3)Tris 3.03g甘氨酸(Gly)14.4gSDS 1g或10%SDS 10ml蒸馏水至1L无需调pH值(8.2~8.3),可在4度存放数周,次溶液可重复使用3~5次。
9、转移缓冲液:Tris 3.03g甘氨酸(Gly)14.4g甲醇200ml蒸馏水至1L先用蒸馏水溶解甘氨酸和Tris,然后再加入甲醇,最后补足液体。
无需调pH值(8.1~8.4),可在4度存放数周。
WesternBlot相关试剂配方及详细实验步骤Western Blot详细实验步骤及试剂配方1. 溶液配置1.1 5×SDS-PAGE上样缓冲液(Loading buffer)药品用量1 M Tris-HCl (PH=6.8) 1.25 mLSDS 0.5 gBPB(溴酚蓝,有毒)25 mg甘油 2.5 mL去离子水up to 5 mL分装至1.5 mL离心管中,每管500 μL,室温保存,使用前每管加入25 μL的β-巯基乙醇。
1.2 10×SDS-PAGE电泳缓冲液(Running buffer 母液)药品用量Tris 30.3 gGlycine (甘氨酸) 144.2 gSDS 10 gddH2O up to 1 L室温保存即可,使用时稀释为1×的工作液,可回收反复使用4~5次。
1.3 Tris-HCl缓冲液(1)1.5 M Tris-HCl (PH=8.8)→制分离胶Tris (MW: 121.14) 45.43 gH2O up to 250 mL浓盐酸调PH 8.8(2)1.0 M Tris-HCl (PH=6.8)→制浓缩胶Tris (MW: 121.14) 30.29 gH2O up to 250 mL浓盐酸调PH 6.8二者高压灭菌后,置于室温保存即可。
1.4 10% SDS (十二烷基硫酸钠)SDS 10 gddH2O up to 100 mL室温保存即可。
1.5 10% AP (过硫酸铵)→1.5 mL 离心管配制过硫酸铵(刺激性,腐蚀性) 0.1 g超纯水up to 1 mL混匀后,锡箔纸包住,避光处理,置于-20℃保存。
1.6 30% 丙烯酰胺溶液丙烯酰胺 150 g甲叉双丙烯酰胺 4 gMilli-Q水 30 mL滤纸过滤,Milli-Q水定容至500 mL,装入棕色瓶子中,4℃保存。
1.7 10×转膜缓冲液(Trans buffer 母液)Tris (MW: 121.14) 30.3 gGlycine (甘氨酸) 144 g去离子水 up to 1 L室温保存即可,其1×的工作液配制为:100 mL母液+200 mL甲醇(有毒)+700 mL水。
Westernblot试剂配制及操作流程试剂配制:1.电泳缓冲液:a. 准备1×蛋氨酸-甘氨酸缓冲液(Tris-Glycine缓冲液):每一升缓冲液中加入30.3g Tris base、288g glycine,并调节pH至8.3±0.1b. 准备3×SDS-凝胶缓冲液:每一升缓冲液中加入30g Tris base、144g glycine、10g SDS,并调节pH至8.3±0.12.蛋白提取缓冲液:a. 准备RIPA缓冲液:每一升缓冲液中加入5g Tris base、15g NaCl、5g sodium deoxycholate、1g NP-40,并将pH调节至7.4b.按需添加蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂。
操作流程:1.样品制备:a. 收集细胞或组织样品,加入适量的蛋白提取缓冲液,并使用超声波细胞破碎仪或玻璃Dounce破碎器破碎细胞,释放蛋白。
b.在4℃下离心细胞提取物,收集上清液,并在离心后尽快使用或存储在-80℃的冰箱中。
2.SDS-凝胶制备:a. 准备15%缩胆凝胶:加入7.5mL 30%丙烯酰胺、10mL 10×SDS-凝胶缓冲液、7.5mL去离子水和20uL 10%Tetramethylethylenediamine (TEMED),混合均匀。
b.将混合液倒入立方形凝胶模具中,插入两根不锈钢导电丝作为电极,并进一步注入10%胶解剂。
c.待凝胶定形后,用1×蛋氨酸-甘氨酸缓冲液冲洗凝胶表面。
3.蛋白电泳:a.加载样品:将样品加入离心管中,加入1×电泳缓冲液以使样品浓度均匀。
b. 加载样品:将样品加入凝胶孔中,通常每孔加入20-30ug样品。
c.进行电泳:将装有凝胶的电泳槽放入电泳缓冲液中,将蛋白电泳至凝胶顶部。
d.转移凝胶:根据需求选择湿式或半湿式转印方式,将蛋白转移到PVDF或NC膜上。
4.免疫印迹:a.封闭膜:将转印膜放入封闭溶液中(如5%脱脂奶粉或3%BSA)封闭非特异性结合位点。
Western Blot试剂的准备1. 30%储备胶溶液:丙烯酰胺(Acr) 29.0g亚甲双丙烯酰胺(Bis) 1.0g混匀后ddH2O,37℃溶解,定容至100ml,棕色瓶存于室温。
2. 4×分离胶缓冲液(1mol/L Tris-HCl PH 8.8)Tris 18.17g加ddH2O溶解,浓盐酸调PH 8.8,定容至100ml。
3. 4×浓缩胶缓冲液(0.5mol/L Tris-HCl PH 6. 8) Tris 12.1g加ddH2O溶解,浓盐酸调PH 6. 8,定容至100ml。
4. 10%SDS:电泳级SDS 10.0g加ddH2O,68℃助溶,浓盐酸调PH 7.2,定容至100ml。
5. 5×电泳缓冲液(PH 8.3):Tris 15.2g甘氨酸 94gddH2O 定容到1000mlSDS 5g 先在974ml蒸馏水中加入Tris碱,待溶解完全后,再加甘氨酸,最后加SDS。
6. 10%过硫酸铵(AP):0.1g AP加ddH2O至1.0ml,4℃保存,要在一周内使用,最好新鲜配制。
7. 2×加样缓冲液:2×SDS加样缓冲液0.5mol/L Tris-HCl (PH 6.8) 2ml10%SDS 4 mlβ-巯基乙醇1ml甘油 2ml1%溴芬蓝1ml置4℃避光保存8. TEMED:注意室温较低时TEMED量可加倍,最后灌胶之前再用9. 转膜缓冲液(Towbin transfer Buffer):即1×SDS-PAGE10. 0.0 1mol/L PBS (PH 7.4) :NaCl 8.5g(12H2O)Na2HPO4 2.9011g(2H2O)NH2PO4 0.24g加ddH2O定容至 1000ml11. 封闭液: 1×PBS中加入 30ml5%(V/V)脱脂奶粉 1.5g0.02%叠氮钠 0.006g0.05%Tween-20 0.015g12. 漂洗液(PBST):含0.05% Tween-20的PBS溶液每1000 ml PBS溶液中加0.5 ml Tween-2013. 水饱和正丁醇:正丁醇 50 mlddH2O 5 ml 加入瓶中震荡,使结合,存于室温。
1.Western Blotting 相关溶液及抗体1)转膜缓冲液(running buffer)(10×)(1L)Tris 30.3g甘氨酸144g不调pH转膜工作液(1×)(1L)(现配现用)(10×)转膜缓冲液(running buffer)100ml无水乙醇100ml水800ml2)TBS 缓冲液(5×)(1L)Tris-HCl 12.15gNaCl 146.4g用36-37%浓盐酸调节pH值至约7.4(约5ml浓盐酸,pH试纸检测即可)TBST:TBS+Tween-20 0.1%(1ml for 1L)3) 封闭液TBST 缓冲液中加入5%脱脂奶粉或者(3% Gelatine)4)Western Blotting 第一抗体适合于自己蛋白的抗体5)Western Blotting 第二抗体辣根过氧化物酶-羊抗兔IgG/(羊抗鼠IgG)4.实验步骤(1)SDS-PAGE 电泳分离蛋白质:(浓缩胶70V,30-40min;分离胶120V,1h)5×loading buffer: 4mlddH2O 1.76ml 1M Tris-HCl pH 6.8 0.24ml甘油1ml 10%(w/v)SDS 0.8mlß-巯基乙醇0.2ml(2)将4 张滤纸剪成与海棉大小一致的方形(3)配(1×)转膜工作液(10×)转膜缓冲液(running buffer)80ml无水乙醇80ml水640ml800ml(4)将胶泡在(1×)转膜工作液中(防止胶干掉,最好不要用水,水泡胶会涨)(5)用尺子量胶大小,裁PDVF膜(不要用手蹭膜,手上有蛋白)(6)PDVF膜先在无水乙醇中泡约1min,然后泡到(1×)转膜工作液中。
(PDVF膜为疏水性的,先在乙醇中泡会使其亲水性好)(7)将海绵和滤纸在水中浸湿,然后按照一下顺序(整个操作过程中保证膜不能干):白板—海绵—两层滤纸--PDVF膜(靠正极)--胶(靠负极)(用小试管排气泡)--两层滤纸—海绵(用小试管排气泡)--夹住—放入胶槽中(白板靠红,黑板靠黑,保证电极方向不要错)--在胶槽中加入转子—倒入(1×)转膜工作液—在胶槽中放入冰袋—80V~100V 恒压,60min(该条件可以转移25kD~90kD的蛋白)(8)封闭:在封闭液中室温,摇1h或者4℃静置过夜。
Western blot常用试剂配方1. 丙烯酰胺-双丙烯酰胺储存液:30% AB(100ml)丙烯酰胺29 g双丙烯酰胺1g加蒸馏水至100ml,过滤,棕色瓶保存。
2. 10% SDS:(10ml)电泳级SDS 1 g蒸馏水9 ml初始PH约为7.85,用针尖蘸少许浓盐酸调PH 至7.2,定容至10ml。
3.TEMED(四甲基乙二胺)(成品)4. Lower-buffer (1.5M Tris-Cl PH 8.8):50mlTris-base 9.085 g蒸馏水45 ml加浓盐酸(约0.4ml)调PH至8.8后定容至50ml,4℃保存。
5. upper buffer(1.0M Tris-Cl,PH6.8):50mlTris-base 6.055 g蒸馏水44 ml加3.5ml浓盐酸调PH至6.8后定容至50ml,4℃保存。
6. 10%过硫酸铵(10% AP):0.5ml 新鲜配制称取0.05g AP于1.5ml EP管中,储存于-20℃,用时溶于0.5ml蒸馏水7. 5 × loading buffer:(1ml)50mlupper buffer 0.312 ml 15.6ml甘油(丙三醇)0.5 ml 25mlSDS 0.1 g 5gDTT 0.0385 g溴酚蓝0.005g 0.25g加蒸馏水溶解后定容至1ml。
取0.2ml加0.8ml蒸馏水配成工作液。
8. 5 × running buffer:(1000ml)Tris-base 15.1 g甘氨酸(Glycine)94 gSDS 5 g加蒸馏水溶解后定容至1000ml。
用时加4000 ml蒸馏水。
9. 考马斯亮蓝染液:100ml(可重复利用)甲醇30 ml冰乙酸10 ml蒸馏水60 ml考马斯亮-250 0.05 g10. 考马斯亮蓝脱色液500ml:现用现配乙酸(10%)50ml甲醇(30%)150ml加蒸馏水定容至500ml。
WB所需溶液的配制1Tris-甘氨酸电泳缓冲液(Running buffer) 5×Tris base 15.14gGlycine(甘氨酸) 72.0gSDS 5.0g蒸馏水溶解至1000ml5×Tris-甘氨酸电泳缓冲液:15.1g Tris碱和72g甘氨酸,5g电泳级的SDS,双蒸水定容至1L,pH值为8.3。
使用前,将5×稀释到1×:取200ml 5×,定容到1000ml。
2转膜缓冲液(Sending buffer)(现用现配)1000 ml 1500 mlGlycine(甘氨酸) 14.413 g 21.6 g1.0 M Tris.HCl (pH8.3) 25 ml 37.5ml10% SDS 1 ml 1.5 ml甲醇(methanol) 200 ml 300 ml蒸馏水溶解至1000 ml 溶解至1500 ml必须新鲜配置,因为甘氨酸溶于水后易分解。
小片段可不加SDS。
310% SDS配置电泳级十二烷基硫酸钠也叫SDS(Sodium Dodecyl Sulfate,SDS,C12H25O4NaS)溶液: 10g SDS,100ml去离子水配制,50-68度搅拌溶解,浓盐酸调pH到7.2,室温保存。
4Tris.HCl的配置1.0M Tris.HCl (pH8.8) Tris 30.28 g 加入到250ml水中浓盐酸调pH到8.81.5 M Tris.HCl (pH8.8) Tris 45.43 g 加入到250ml水中浓盐酸调pH到8.81.0 M Tris.HCl (pH6.8) Tris 30.28 g 加入到250ml水中浓盐酸调pH到6.81.0 M Tris.HCl (pH8.3) Tris 30.28 g 加入到250ml水中浓盐酸调pH到8.3,需要大约8毫升。
注:Tris的分子量是121.4. 4度储存。
5 10% APS (Ammonium persulfate ; 过硫酸铵)的配置称取1g过硫酸铵,加超纯水溶解并定容至10ml,分装到1.5ml微量离心管中,负30度冻存。
Western-Blot操作流程试剂配制10mM Tris (,)1%NP40%TritonX-100% 兑氧胆酸钠2 mM EDTA1 mM PMSF20%T 油调pH直至。
混匀后4C保存,长期保存于-20 C。
使用时,加入蛋白酶抑制剂cooktail制胶用(1-6):1. L Tris • HCl ()Tris 12.114g蒸储水100ml溶解后,(用浓盐酸调pHS),室温下保存。
2. L Tris • HCl ()Tris 18.671g蒸储水100ml溶解后,(用浓盐酸调pHS),室温下保存。
3. 10% SDSSDS 10g蒸储水至100ml如溶解困难,可在50C水浴下溶解,室温保存。
如在长期保存中出现沉淀,水浴溶化后,仍可使用。
4. 10%过硫酸胺(AP)过硫酸胺(现用现配,可先将过硫酸胺干粉称好分量后放在管中,一次性多装几管,使用时加入蒸储水水即可,溶解后,4C保存,保存时间为1周)5. 四甲基乙二胺原液(TEMED 4C保存。
6. 30灿稀酰胺:4?C保存。
10"层胶,即分离胶(两块胶,15ml):胶的浓度根据自己所做蛋白的大小确定依次加入去离子水30炳烯酰胺5ml1.5M Tris-HCl ()10%SDS150 卬l10%AP150 卬lTEMED 6 (1 l每加一种成分随即摇匀,为了加快凝胶,可以将过硫酸胺和TEMED;加大,根据实验当时的温度适当调整,加入TEME混匀后应即刻灌胶。
灌胶后加异丙醇(1ml)消泡5毗层胶(两块胶,6ml):依次加入去离子水30%M烯酰胺1ml1M Tris-HCl ()10%SDS60 卬l10%AP60 卬lTEMED 6 (1 l每加一种成分随即摇匀,为了加快凝胶,可以将过硫酸胺和TEMED;加大,根据实验当时的温度适当调整,加入TEME混匀后应即刻灌胶。
7. 5X电泳液缓冲液Tris ()15.1g甘氨酸0 94gSDS 5.00g蒸储水至1000ml溶解后室温保存,用时稀释5倍,通常取160ml配制成800ml即可。
一、试剂配置:1、分离胶缓冲液:1.5mmol/LTris-HCL(pH8.8):18.15gTris+48ml 1mol/L HCL混合,加水稀释到100ml终体积。
过滤后4℃保存。
2、浓缩胶缓冲液:0.5mmol/LTris-HCL(pH6.8):6.05gTris溶于40ml水中,用约48ml 1mol/L HCL调至pH6.8加水稀释到100ml终体积。
过滤后4℃保存。
这两种缓冲液必须使用Tris碱制备,再用HCL调节PH值,而不用Tris.CL。
3、胶配置:加入TEMED后,立即混匀即可灌胶。
4、封闭液:(含5%脱脂奶粉的TBST 缓冲液)脱脂奶粉(国产,安怡牌)5g+TBST 100ml溶解后4℃保存。
使用时,恢复室温,用量以盖过膜面即可,一次性使用。
5、抗体:用TBST 稀释至一定浓度使用,每张膜需0.5ml。
二、SDS-PAGE 电泳(1)清洗玻璃板:一只手扣紧玻璃板,另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲,再用蒸馏水冲洗干净后立在筐里晾干。
(2)灌胶与上样1、玻璃板对齐后放入夹中卡紧。
然后垂直卡在架子上准备灌胶。
(操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。
)2、按前面方法配10%分离胶,加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。
灌胶时,可用10ml 枪吸取5ml 胶沿玻璃放出,待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。
(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。
操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。
加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。
)3、当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了。
再等3min 使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
4、按前面方法配4%的浓缩胶,加入TEMED 后立即摇匀即可灌胶。
将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。
灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。
插梳子时要使梳子保持水平。
由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。
WB所需溶液的配制1Tris-甘氨酸电泳缓冲液(Running buffer) 5×5×Tris-甘氨酸电泳缓冲液:15.1g Tris碱和72g甘氨酸,5g电泳级的SDS,双蒸水定容至1L,pH值为8.3。
使用前,将5×稀释到1×:取200ml 5×,定容到1000ml。
2转膜缓冲液(Sending buffer)(现用现配)必须新鲜配置,因为甘氨酸溶于水后易分解。
小片段可不加SDS。
310% SDS配置电泳级十二烷基硫酸钠也叫SDS(Sodium Dodecyl Sulfate ,SDS,C12H25O4NaS)溶液: 10g SDS,100ml去离子水配制,50-68度搅拌溶解,浓盐酸调pH到7.2,室温保存。
4Tris.HCl的配置注:Tris的分子量是121.4. 4度储存。
5 10% APS (Ammonium persulfate ; 过硫酸铵)的配置称取1g过硫酸铵,加超纯水溶解并定容至10ml,分装到1.5ml微量离心管中,负30度冻存。
使用时尽量现配现用,短期内实验频繁可多配。
4度存则两周内用完,最多不能超过一个月。
负20度可存两个月,但一旦解冻后尽快用完。
6 10×TBS (Tris-buffered saline)的配置加HCl调pH到7.6,室温储存。
7TBST (Tris-buffered saline with Tween20) 的配置8 上样缓冲液(loading buffer)的配置SDS-PAGE加样缓冲液:pH6.8 0.5mol/L Tris缓冲液8ml,甘油6.4ml,10%SDS 12.8ml,巯基乙醇3.2ml,0.05%溴酚蓝1.6ml,H2O 32ml混匀备用。
按1:1或1:2比例与蛋白质样品混合,在沸水终煮3min混匀后再上样,一般为20-25ul,总蛋白量100μg。
9 stacking gel buffer (4×)调pH到6.8,加双蒸水到10毫升。
WB 所需溶液的配制
1 Tris-甘氨酸电泳缓冲液
Running buffer) 55X Tris-甘氨酸电泳缓冲液:15.1g Tris 碱和72g 甘氨酸,5g 电泳级的SDS ,双 蒸水定容至1L ,pH 值为8.3。
使用前,将5X 稀释到I X :取200ml 5X ,定容到 1000ml 。
必须新鲜配置,因为甘氨酸溶于水后易分解。
小片段可不加 SDS 。
3 10% SDS 配置
电泳级 十二烷基硫酸钠也叫 SDS ( Sodium Dodecyl Sulfate ,SDS,C i2H 25O 4NaS )
溶液:10g SDS, 100ml 去离子水配制,50-68度搅拌溶解,浓盐酸调pH 到7.2, 室
温保存。
4 Tris.HCI 的配置 注:Tris 的分子量是121.4. 4度储存。
5 10% APS (Ammonium persulfate ;过硫酸铵)的配置
称取1g过硫酸铵,加超纯水溶解并定容至10ml,分装到1.5ml微量离心管中,负30度冻存。
使用时尽量现配现用,短期内实验频繁可多配。
4度存则两周内
用完,最多不能超过一个月。
负20度可存两个月,但一旦解冻后尽快用完。
加HCI调pH到7.6,室温储存
SDS-PAGE 加样缓冲液:pH6.8 0.5mol/L Tris 缓冲液8ml,甘油6.4ml,10%SDS 12.8ml,巯基乙醇3.2ml, 0.05%溴酚蓝1.6ml,H2O 32ml混匀备用。
按1:1或1:2 比例与蛋白质样品混合,在沸水终煮3min混匀后再上样,一般为20-25ul,总蛋白量100 ^g
调pH到6.8,加双蒸水到10毫升
11圭寸闭液的配置Blocking solution要用TBST配制牛奶
5% (w/v) nonfat dried milk 或者1%BSA
0.01% an tifoam A (Sigma)
0.01%(v/v) sodium azide
12丽春红溶液:
100微升冰醋酸,加入0.05克丽春红,用水稀释至10毫升。
1) 4%多聚甲醛(PFA)的配制 (1000毫升)
40克多聚甲醛,加入800毫升水,60度搅拌溶解,加入300微升氢氧化钠,全部溶解后冷却到4度,再加入100毫升的10X PBS,加水定容到1000毫升。
调pH到727.4。
通风橱过滤,4度保存。
13组织裂解液
步骤:
首先加10-20毫升的水溶解EDTA,再加入0.2%NaOH使溶解,再调pH至7.4; 然后分别加入其他成分,溶解一个再加另外一个;去氧胆酸钠开盖后会飞出,应戴口罩。
14. PBS 的配制(1000 毫升) (PH 7.2~7.4)。