官厅水库生物固氮作用对水体富营养化的响应
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第41卷 第4期2011年07月吉林大学学报(地球科学版)Jour nal of Jilin U niver sity(Ea rth Science Editio n)Vo l.41 No.4July 2011官厅水库生物固氮作用对水体富营养化的响应孙寓姣,陈 程,丁爱中,程莉蓉北京师范大学水科学研究院,北京 100875摘要:以官厅水库富营养化水体为研究对象,利用乙炔还原法测量水体生物固氮能力,结合变性梯度凝胶电泳(DGG E)技术对固氮生物nifH 基因进行分析。
实验结果表明,官厅水库水体存在生物固氮现象,固氮速率为0.172~9.35nmol/(m 3 d),与水体氨氮、总氮、总磷呈显著相关性(P =0.998,r =0.000;P =0.986,r =0.000;P =0.968,r =0.002)。
DGG E 图谱显示:各点固氮细菌丰度差异较大,Shannon Weaver 指数为0.80~ 2.45,固氮细菌丰度和总氮、总磷存在较强相关性(P =0.737,r =0.094;P =0.787,r =0.063)。
随着水体富营养水平的上升,固氮微生物多样性急剧增加,水体固氮能力也随之上升。
自然固氮可能对原本富营养化的水体产生更大危害。
关键词:官厅水库;生物固氮;富营养化;聚合酶链式反应 变性梯度凝胶电泳中图分类号: 文献标志码:A 文章编号:1671 5888(2011)04 1179 07收稿日期:2010 09 08基金项目:国家自然科学基金项目(50708008)作者简介:孙寓姣(1975 ),女,黑龙江哈尔滨人,副教授,主要从事环境生物技术和污染环境微生物学方面的研究,Email:sunyujiao @通信作者:丁爱中(1969 ),男,安徽怀宁人,教授,博士生导师,主要从事水污染控制、水生态与环境修复研究,E mail:ading@ 。
Response of Biological Nitrogen Fixation to EutrophicWater in Guanting ReservoirSU N Yu jiao,CH EN Cheng,DING Ai zhong,CH EN G Li rongColleg e of W ater S cie nces ,B eij ing N or mal Univ e rsity ,Beij ing 100875,ChinaAbstract:In Guanting reservo ir,bio log ical nitro gen fix ation rate (NFR )w as measured w ith acety lene reduction method,the diver sity o f nitrog en fixation bacteria (NFB)w as rev ealed w ith nifH gene PCR DGGE fingerprint.The results show ed that biolo gical nitrog en fix ation ex ists in Guanting reservoir,the rates of nitro gen fix ation rang ed from 0.172to 9.35nmol/(m 3d).There w as a po sitiv e cor relation betw een N FR and NH +4-N (P =0.998,r =0.000),T N (P =0.986,r =0.000),T P (P =0.968,r =0.002)concentratio ns,r espectively.DGGE fingerprint indicated the (NFB)abundance differed between six sites and positive correlatio ns w er e found betw een NFB abundance and T N (P =0.737,r =0.094),TP (P =0.787,r =0.063).Shannon Weaver index varied in a rang e of 0.80 2.45.During the pr ocess o f eutrophication in reserv io r,nitrog en fixation bacteria div ersity incr eased w ith the nutrient status and ther eby NFR enhanced.In addition,bio logical nitrog en fix atio n could agg ravate eutrophication in Guanting reserv oir.Key words:Guanting reservo ir;biolog ical nitrogen fixation;eutro phication;PCR DGGE0 引言官厅水库位于北京市西北部,曾是北京市主要饮用水源地之一。
自20世纪80年代以来,官厅水库水体严重富营养化,并且在夏季会发生严重的铜绿微囊藻水华[1],因而官厅水库于1997年退出北京市饮用水体系[2 3]。
于勇勇[4]利用主成分分析法对官厅水库1990 1999年10个监测断面的水质数据进行了分析,结果显示,氨氮(NH +4-N )、总氮(TN)、总磷(TP)是官厅水库富营养化的主要贡献因子。
近年来,由于北京市饮用水需求量的增加,饮用水短缺问题日益严重,官厅水库的水体修复成为亟待解决的问题之一。
水体氮营养元素的来源主要有人为源及天然源,目前针对官厅水库氮素人为来源的研究很多[5 6],但是对其天然来源的研究则很少。
已有研究表明:生物固氮作用在氮素的自然循环中扮演着重要角色,它甚至是很多氮限制水体(例如海洋和贫营养湖泊)中氮素的重要来源[7 14]。
在一些富营养湖泊中,固氮蓝藻也会成为优势种[7,15]。
对水体固氮细菌群落结构的研究,是弄清微生物固氮作用过程的基础。
利用传统分离培养方法,仅能获取环境中不到1%的细菌类群[16],不利于了解环境微生物的真实存在状况。
利用分子生物学手段进行微生物生态学研究,大大提高了对实际环境中微生物多样性的全面认识,聚合酶链式反应(po lymerase chain r eaction,简称PCR)和变性梯度凝胶电泳(denaturing g radient gel electro phor esis,简称DGGE)技术的联合使用,使得环境微生物分子生态学研究向前迈进了一大步。
1993年M uzyer 等[17]首次将PCR DGGE 技术应用于微生物生态学研究,并证实了这种技术在研究自然界微生物群落遗传多样性和种群差异方面具有明显的优越性。
笔者应用乙炔还原法测量官厅水库水体的生物固氮能力,同时利用PCR DGGE 技术对官厅水库不同区域水体固氮细菌群落结构变化进行了研究,以期发现官厅水库水体固氮微生物固氮能力及其群落结构对富营养化水平的响应。
1 材料与方法1.1 水样采集水样于2009年7月20日采自官厅水库,采样时水库库区发生严重水华。
共设6个采样点(S1S6),其中,S1,S2,S3位于官厅水库上游妫水河,S4,S5,S6位于水库库区。
采样中使用GPS 系统对每个采样点进行精确定位,采样点位置见图1。
图1 官厅水库采样点图Fig.1 Location of sampling sites in Guanting reservoir用有机玻璃采样器采集水深0.5m 左右处水样。
用于测定固氮速率的水样注入经盐酸浸泡洗净、水样反复润洗的玻璃瓶中,低温条件下避光带回实验室;用于基因组DNA 提取的水样,注入洗净灭菌后的玻璃瓶中低温带回实验室;其它水样用预先洗净的聚乙烯采样瓶采集,低温带回实验室检测。
1.2 水样分析1.2.1 水体固氮速率测定水样经过浓缩后,采用乙炔还原法测定水体固氮速率[18 21]。
具体过程如下:取150m L 水样经定性滤纸过滤除去悬浮颗粒物,再用0.22 m 孔径纤维滤膜过滤去除藻类及微生物待用;另取1500mL 水样在8500 g 力、4 条件下离心20m in 以沉降藻类及微生物细胞;弃上清液,用150m L 经过滤处理的水样重悬浮,即将水样浓缩10倍;取浓缩后的水样50m L,注于65mL 磨口三角瓶中,用注射器抽取顶端15%的空气,并注入等量乙炔气体;水样在27 C 培养箱中水浴培养72h,加入0.1m L 50%三氯乙酸(TCA)[22]后终止反应;取100 L 顶端气体,用SP 2100型气相色谱检测乙炔含量,换算成氮含量表示固氮速率。
每个采样点均设置3组平行样,同时用无菌水设置3组对照实验。
1.2.2 总DNA 提取及固氮nifH 基因扩增水样在无菌条件下经0.22 m 孔径醋酸纤维素滤膜过滤,生物样品浓缩于滤膜上,滤膜置于-20 条件下保存。
使用Omeg a Water DNA Kit1180吉林大学学报(地球科学版) 第41卷试剂盒按其操作说明提取水体微生物的总DNA 。
利用1.2%的琼脂糖凝胶电泳检测结果。
本研究使用巢式PCR 对固氮nifH 基因进行扩增,所用的外引物为FGPH 19和PolR,内引物为GC PolF 和AQER [23]。
PCR 反应液含有:1 L 已提取的DN A 样品, 5.0 L 10 PCR 缓冲液(Takara 公司),4.0 L 2.5mm ol/L dNT P 混合液(Takara 公司),20mm ol/L 上下游引物各1 L,0.25 L(0.5U / L)T aq 聚合酶(T akara 公司),添加无菌水将反应液补齐至50 L 。
PCR 扩增条件为:94 预变性5min;94 变性60s,54 退火60s,72 延伸2m in,共进行30个循环;最后72 延伸7min 。
使用无菌水替代DNA 作为阴性对照。
第一轮PCR 反应结束后取1 L 产物为模板,使用内引物进行第二轮扩增。
第二轮PCR 反应的反应液与第一轮组成基本一致,只是将第一轮反应体系中5.0 L 的10 PCR 缓冲液换成25 L 的2 GCPCR 缓冲液,添加无菌水将反应液补齐至总体系50 L 。
第二轮PCR 扩增条件为:94 预变性5m in;94 变性60s,56 退火60s,72 延伸2min,共进行30个循环;最后72 延伸7min 。
使用无菌水替代第一轮PCR 产物作为阴性对照。