同源异型框转录因子-2
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原发及转移性卵巢癌组织中绒毛蛋白、细胞角蛋白7及20的表达孙红敏;苑中甫【期刊名称】《郑州大学学报(医学版)》【年(卷),期】2007(042)002【摘要】目的:检测原发及转移性卵巢癌组织中绒毛蛋白(Villin)、细胞角蛋白7及20(CK7、CK20)的表达.方法:采用免疫组织化学方法检测卵巢原发性腺癌45例(浆液性腺癌18例、黏液性腺癌15例、内膜样腺癌12例)、结肠转移性卵巢癌15例、原发结肠腺癌20例、正常卵巢组织10例中Villin、CK7和CK20的表达. 结果:正常卵巢、原发性卵巢腺癌、结肠转移性卵巢癌及原发性结肠腺癌组织间比较,Villin、CK7和CK20的阳性表达率差异均有统计学意义(P<0.001);且原发卵巢癌组织中Villin的阳性表达率低于CK20(P<0.005).结论:Villin、CK7和CK20的测定对鉴别原发及转移性卵巢癌有重要意义,Villin在特异性方面强于CK20 .【总页数】3页(P345-347)【作者】孙红敏;苑中甫【作者单位】郑州大学第一附属医院妇产科,郑州,450052;郑州大学第一附属医院妇产科,郑州,450052【正文语种】中文【中图分类】R73【相关文献】1.同源异型框转录因子-2、细胞角蛋白7、细胞角蛋白20及Ki-67蛋白在原发性卵巢癌及转移性结肠癌组织中的表达及临床意义 [J], 李娟;顾笑梅;李宗涛2.原发及肠道转移性肝癌中绒毛蛋白、细胞角蛋白7及20的表达研究 [J], 刘杜先;许喆菲;刘兰侠;刘蕾蕾3.原发卵巢癌及卵巢之转移性结肠癌组织中CDX-2与CK7和CK20的表达及其临床意义 [J], 秦彩娟4.肺癌组织中细胞角蛋白7和细胞角蛋白20的表达及其与预后的关系 [J], 罗海涛;梁彩霞;古伟光;丘新才5.细胞角蛋白-20和黏蛋白-1在食管癌组织中的表达及临床意义 [J], 张娜娜;苏蔚因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
分子生物学2010年名词解释致歉:这份名词解释是昨晚在指挥帝的提议下连夜赶制的,制作时间紧迫,团队能力有限,大家权当参考,错误不全之处,万望诸位海涵!Oncogene 致癌基因:当致癌基因发生突变或者表达量增高时,会把正常的细胞转化为肿瘤细胞Proto-oncogene 原癌基因:当原癌基因发生突变或者表达量增高时,会变成致癌基因。
但正常的原癌基因的产物能帮助调节细胞的生长和分化,且在信号转导和细胞分裂上发挥作用。
Tumor-suppressor gene :肿瘤抑制基因可以保护细胞不发育为肿瘤,当其功能缺失或者表达量降低时,容易转变为肿瘤Dominant Activators 显性活化子:一个等位基因的突变则能把细胞生长带入癌变的状态,这样的基因称为非受控细胞生长的显性活化子。
Heat-shock protein :热休克蛋白:当生物体遇到高温带来的压力时,它体内会应答产生一些热休克蛋白来稳定细胞内的环境。
热休克蛋白在真核和原核生物中都有被发现,而且是最保守的一系列蛋白。
(机制热使得HSTFs磷酸化,特异性地结合到HSEs上,启动转录) HREs 激素反应元件:激素诱导的基因表达由DNA中特异性的序列来调控(HREs)RNA干扰:小的、非编码的RNA分子通过与靶mRNA序列部分地或者完全地配对,抑制靶mRNA的翻译或者引起其降解,从而干扰目标基因的表达。
Chromatin remodeling 染色质重塑:DNA的转录过程中,核小体被多蛋白复合体修饰,来使RNA聚合酶易于发挥作用。
这种为了转录而进行的核小体的改变称为染色质重塑。
Position effect variegation 位置效应斑:当常染色质变为异染色质的时候,其内部的基因会表达不正常甚至不表达,这种功能上的损伤导致的在同一个体中出现正常和突变基因的混合表达称为位置效应斑。
印记imprinting 一个基因以某种方式比如甲基化被标记据此可以区分该基因来自父本还是母本分子伴侣chaperone 一类帮助其他生物大分子进行结构上非共价形式的折叠与去折叠,组装与去组装,但它们并不存在于后者发挥生物活性的结构中。
牙缺失基因的研究进展先天缺牙属于牙齿发育异常中牙的数目异常,在临床中是较为常见的疾病,不仅影响患者的咀嚼功能,而且影响其发音、容貌和心理健康。
目前遗传连锁和分子生物学研究使得部分综合征性和非综合征性牙缺失的基因突变得以定位。
尽管作用机制尚未明了,但现已知涉及的重要突变因子有很多,本文就近年来与综合征性和非综合征性牙缺失相关的基因研究作一综述。
标签:非综合征性先天缺牙;综合征性先天缺牙;基因先天缺牙是指牙发育过程中牙的数目异常,包括个别牙先天缺失、多数牙先天缺失和先天无牙症。
牙缺失根据是否有伴发症状又分为综合征性和非综合征性两种。
牙缺失是人类比较常见的先天性颅面畸形,正常人群中患病率为 3.5%~6.5%;乳牙也存在缺失,但发生率低,为0.5%~0.9%[1]。
目前,遗传连锁和分子生物学研究使得部分非综合征性和综合征性牙缺失的基因突变得以定位。
本文就非综合征性先天缺牙和综合征性先天缺牙有关基因的研究进展作一综述。
1 非综合征性牙缺失相关基因非综合征性牙缺失是指由牙齿数目先天不足引起的牙缺失,缺牙数目为1颗或几颗,甚至全口无牙。
缺牙数目在6颗以上称多数牙先天缺失,6颗以下称少数牙先天缺失。
其常见遗传模式是常染色体显性遗传,但隐性遗传、X连锁遗传、多基因多因子遗传方式也有报道。
目前,非综合征性牙缺失的分子生物学发生机制还未全部了解,除了肌节同源盒基因1(muscle seg-ment homeobox gene 1,MSX1)和人类成对盒基因9(paired box homeotic gene 9,PAX9)上的一些确定突变与牙缺失有关之外,轴抑制基因-2(axis inhibi-tion protein-2,AXIN-2)突变可能是牙缺失的诱因[2]。
目前对先天缺牙的研究多集中于MSX1和PAX9基因,已有研究[3-4]证明其各自发生突变均可引起非综合征性先天性缺牙。
MSX1和PAX9是牙齿正常发育过程中必要的转录因子,Ogawa等[5]发现它们具有协同作用,PAX9基因通过与MSX1基因启动子区域的直接结合而与MSX1蛋白之间存在遗传上位性,这两个分子还能聚合并协同激活骨形态发生蛋白(bone mor-phogenetic protein,BMP)-4的转录。
被子植物花器官发育的分子机制花发育是被子植物生命周期中一个重要的综合发育过程,涉及无限生长向有限生长及不同发育方式的转换,包括开花诱导、信号传递、属性决定、器官发生,既受环境因子(如光周期、温度等)的诱导,又受到自身内部因素的调节,经过一系列信号转导过程,启动成花决定过程中的控制基因。
在复杂的基因互作网络调控下,营养茎端分生组织(vegetative meristem,VM)转变为花序分生组织(inflorescence meristem,IM),然后在IM 的侧翼形成花分生组织(floral meristem,FM),分化出花器官。
截至目前,从拟南芥(Arabidopsis thaliana )中共有180多个参与调控开花的基因被鉴定出,并确定其中存在有6条调控开花的信号途径:即光周期途径(photoperiod pathway)、春化途径(vernalization pathway)、自主途径(autonomous pathway)、赤霉素途径(gibberellin pathway)、温敏途径(thermosensory pathway)和年龄途径(aging pathway)。
表观遗传是开花信号通路中的重要机制,对开花及花器官发育产生关键调控作用。
miRNAs 的表观遗传调控机制是植物分子发育生物研究的重要领域,例如miR172、miR156、miR159 参与了开花诱导的信号转导途径,共同开启花的发育过程。
本文综述了被子植物花器官发育的格式形成与分子调控机制。
图1 温度、光照和依赖赤霉素等途径通过抑制花形成抑制物产生和激活花的分生组织识别基因参与花发育过程1 花器官发育的ABCDE模型通过对拟南芥和金鱼草突变体研究而提出的多种发育模型, 成功地解释了被子植物花器官突变现象。
其中, 最著名的是由Bowman等及Coen和Meyerowitz提出的“ABC模型”。
该模型指出, 花器官的形成和发育由A、B和C三类功能基因决定; A类基因的表达决定了第一轮萼片的形成, 包括APETALA1 (AP1)和APETALA2 (AP2)基因等; B类[APETALA3 (AP3)和PISTILLATA (PI)基因]和A类基因的组合表达决定了第二轮花瓣的发育; C类[AGAMOUS (AG)基因]和B类基因的组合表达决定了第三轮雄蕊的形成; C类基因的表达决定了第四轮雌蕊的发育。
㊀山东农业科学㊀2022ꎬ54(12):150~156ShandongAgriculturalSciences㊀DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2022.12.023收稿日期:2022-03-06基金项目:国家自然科学基金项目(31671287)ꎻ山东省自然科学基金面上项目(ZR2020MC168)作者简介:史晓渊(1998 )ꎬ男ꎬ河北沧州人ꎬ在读硕士研究生ꎬ研究方向:动物遗传育种ꎮE-mail:xiaoyuans2021@163.com通信作者:王长法(1967 )ꎬ男ꎬ江苏宿迁人ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ主要从事动物遗传育种研究ꎮE-mail:wangcf1967@163.comHOXC8基因生物学功能研究进展史晓渊ꎬ王天琦ꎬ刘紫雯ꎬ任薇ꎬ王鑫瑞ꎬ黄炳舰ꎬ李玉华ꎬ王长法(聊城大学农学与农业工程学院/毛驴高效繁育与生态饲养研究院ꎬ山东聊城㊀252000)㊀㊀摘要:同源盒基因C8(homeoboxgeneC8ꎬHOXC8)为同源异型盒基因(homeoboxgenesꎬHOX)家族成员之一ꎬ是一类在进化上高度保守的转录因子ꎬ在家畜及人类等脊椎动物中普遍存在ꎮHOXC8基因作为转录因子可与靶基因位点发生特异性结合ꎬ激活或抑制相关基因转录ꎬ从而参与调控生物体的多项发育过程ꎮ本文结合生物信息学对HOXC8基因进行了同源性分析ꎬ发现其在各哺乳动物之间保守性高ꎬ但与鱼类差异较大ꎻ并对HOXC8基因在调节生物体发育过程中骨骼分化㊁脊椎变异㊁脂肪形成㊁运动神经发育㊁癌症发生及毛囊发育等主要生物学功能进行综述ꎬ以期为后续HOXC8基因功能的深入研究提供参考ꎮ关键词:HOXC8基因ꎻ转录因子ꎻ生物学功能中图分类号:Q789㊀㊀文献标识号:A㊀㊀文章编号:1001-4942(2022)12-0150-07ResearchProgressonBiologicalFunctionofHOXC8GeneShiXiaoyuanꎬWangTianqiꎬLiuZiwenꎬRenWeiꎬWangXinruiꎬHuangBingjianꎬLiYuhuaꎬWangChangfa(CollegeofAgronomyandAgriculturalEngineeringꎬLiaochengUniversity/InstituteofEfficientBreedingandEcologicalFeedingofDonkeysꎬLiaocheng252000ꎬChina)Abstract㊀ThehomeoboxgeneC8(HOXC8)ꎬamemberofthehomeoboxgenes(HOX)familyꎬisanevolutionarilyhighlyconservedtranscriptionfactorwhichiscommonlyfoundinvertebratessuchasdomesticanimalsandhumans.TheHOXC8geneactsasatranscriptionfactorcanspecificallybindtotargetlocitoacti ̄vateorrepressrelatedgenetranscriptionꎬtherebyparticipatingintheregulationofmultipledevelopmentalprocessesintheorganism.InthispaperꎬweanalyzedthehomologyofHOXC8genewithbioinformaticsꎬandfoundthatitwashighlyconservedamongmammalsꎬbutwasquitedifferentfromfish.WealsoreviewedthemainbiologicalfunctionsofHOXC8geneinregulatingskeletaldifferentiationꎬvertebralvariationꎬadipogene ̄sisꎬmotornervedevelopmentꎬcancerdevelopmentandhairfollicledevelopmentduringthedevelopmentofor ̄ganismsꎬinordertoprovidereferencesforfurtherfunctionstudyofHOXC8gene.Keywords㊀HOXC8geneꎻTranscriptionfactorꎻBiologicalfunctions㊀㊀同源异型盒基因(homeoboxgenesꎬHOX)家族庞大且丰富ꎬ可分为HOXA㊁HOXB㊁HOXC㊁HOXD四个簇ꎬ分别位于7㊁17㊁12㊁2号染色体上ꎬ根据簇间基因序列的相似性及基因在染色体上的位置又可分为13组[1]ꎮ同源盒基因C8(homeoboxgeneC8ꎬHOXC8)是一类在进化上高度保守的转录因子ꎬ在家畜及人类等脊椎动物中普遍存在ꎮ近年来随着对HOX基因的深入研究ꎬ发现HOXC8基因对家畜及人类的发育过程均具有重要影响ꎮHOXC8不仅参与胚胎器官的发育ꎬ还在生物体多个系统的生长发育中起着调控作用ꎬ是生物个体发育过程中的主要调控基因之一ꎮ本文综述了HOXC8基因在生物个体发育及疾病发生等方面的功能ꎬ以期为HOXC8基因功能的深入挖掘提供一定的理论支撑ꎮ1㊀HOX基因概述同源异型盒基因(homeoboxgenesꎬHOX)是含有同源框基因的统称ꎬ即均含有一段180bp高度保守的DNA序列的基因[2]ꎮHOX广泛存在于生物体内ꎬ不仅参与胚胎器官的发育ꎬ而且在生命体多个系统的生长发育中起着调控作用ꎬ是细胞增殖和分化的主要调控基因之一ꎬ主要通过其编码的蛋白调控下游的靶基因表达来实现ꎮ对于HOX基因的研究ꎬ最早可追溯至1894年ꎬBateson在自然界多种生物体中发现了同源异型突变体的存在ꎬ即生物体在发育过程中的非正常转变ꎮ这些转变通常是身体的某一部位发育成相似或相关的身体的另一部分ꎬ从此揭开了同源异型盒基因的研究序幕[3]ꎮ随后在果蝇中发现了BX-C和ANT-C两个同源基因ꎮLewis[4]猜测HOX基因极可能是由一个相同的古老祖先基因通过复制和分化而成ꎬ并推断BX-C和ANT-C两个基因中可能存在与之相关的基因结构ꎮMcGinnis[5]㊁Laughon[6]等通过研究证实了Lewis的猜想ꎬ发现在BX-C中的Ubx和ANT-C中的Antp的DNA序列中均含有一段180bp的基因片段ꎬ并将这一基因片段命名为Homeobox(同源异型盒)ꎮHOX基因可编码60个氨基酸ꎬ其构成的多肽区域称为同源结构域(homeodomainꎬHD)ꎮHD呈类球形折叠ꎬ其螺旋-转角-螺旋结构可与DNA特异结合ꎬ识别以5ᶄ-TAAT-3ᶄ为核心的10~12bp的DNA序列ꎬN-末端臂与DNA小沟的接触可起稳定结合的作用[7]ꎮHD与DNA结合并作为转录调控因子调节靶基因的表达ꎬ不同的HD与DNA序列的亲和性不同ꎬ这种差异与同源异型盒基因产物和靶基因间的选择性相互作用有关ꎮHOX基因在进化上高度保守ꎬ从低等生物到哺乳动物再到人类都存在HOX家族基因ꎮHOX基因之间存在DNA序列相似性ꎬ其同源结构域相似性达70%~80%ꎬ通常存在于蛋白质的C端ꎬ参与基因的表达调控ꎮ在胚胎发育期ꎬHOX基因在基因簇中的表达按照染色体中3ᶄң5ᶄ端以时间先后顺序逐个启动ꎬ在特定的空间位置依次表达或沉默ꎬ具有严格的时空性[8]ꎮ同时ꎬ在同一表达区域同一染色体上靠近5ᶄ端的基因比其前部的基因在表达上具有功能上的优势ꎬ呈现出明显的后部优势[8]ꎮHOX基因在一定程度上具有功能补偿效应ꎬ即HOX基因可以部分或完全替代被影响的其它HOX基因的功能[9]ꎮHOX基因表达还具有明显的剂量效应ꎬ等位基因突变越多ꎬ表现型变异越严重[10]ꎮ每个HOX基因在胚胎发育的过程中都有各自的作用范围ꎬ一定区域内的HOX基因的表达与特定的体节形成相关[11]ꎮ2㊀HOXC8基因同源性分析在NCBI中分别检索猪㊁马㊁小鼠㊁牛㊁山羊㊁驴㊁人和斑马鱼的HOXC8基因参考序列(表1)ꎬ其中驴的基因序列使用聊城毛驴高效繁育与生态饲养研究院前期全基因组测序结果[12]ꎮ比较发现HOXC8基因在人㊁猪㊁马㊁驴㊁小鼠㊁牛和山羊等动物中均具有2个编码区ꎬ编码区长度分别为436bp和293bpꎻ其在斑马鱼中也具有两个编码区ꎬ编码区长度分别为436bp和317bpꎬ与其他动物存在差异ꎮ与人㊁猪㊁马㊁驴㊁牛和山羊不同ꎬ小鼠的HOXC8基因有3个外显子ꎬ2个转录本ꎬ全长3737bpꎻ其他动物HOXC8基因均具有2个外显子和1个转录本ꎮ与上述几种动物相比ꎬ驴HOXC8基因最长ꎬ为3891bpꎮ利用DNAStar软件中ClusterWMethod对得到的驴HOXC8序列与GenBank中其他物种的该基因序列进行比较分析(图1)ꎬ发现驴与马㊁猪㊁牛㊁山羊㊁人和小鼠的同源性均非常高ꎬ可达80%以上ꎬ但与斑马鱼的同源性较低ꎬ只有47.4%ꎮ进一步比较分析驴HOXC8基因核苷酸序列结构及编码区氨基酸序列(图2)ꎬ发现虽然该基因在各物种中的全长以及所在染色体不同ꎬ但HOXC8基因在人㊁猪㊁马㊁驴㊁小鼠㊁牛和山羊中都编码242个氨基酸ꎬ其中猪㊁马㊁小鼠㊁牛㊁山羊和驴的编码区氨基酸序列相似性为100%(图3)ꎮ综上所述ꎬHOX基因在物种的进化中比较保守ꎬ各哺乳动物之间HOXC8基因保守性高ꎬ但是与鱼类之间差异较大ꎮ151㊀第12期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀史晓渊ꎬ等:HOXC8基因生物学功能研究进展㊀㊀表1㊀部分物种HOXC8基因参考序列信息物种GenBank登录号染色体位置外显子数(个)转录本数(个)全长(bp)编码区长度(bp)猪(Susscrofa)NC_010447.55213611436ꎻ293马(Equuscaballus)NC_009149.36213540436ꎻ293小鼠(Musmusculus)NC_000081.715323737436ꎻ293牛(Bostaurus)NC_037332.15213593436ꎻ293山羊(Caprahircus)NC_030812.15213646436ꎻ293驴(Equusasinus)NC_052198.122213891436ꎻ293人(Homosapiens)NC_000012.1212213785436ꎻ293斑马鱼(Daniorerio)NC_007134.723213559436ꎻ317图1㊀不同物种HOXC8基因核苷酸序列相似性分析图2㊀HOXC8基因核苷酸序列结构及编码区氨基酸序列251山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第54卷㊀图3㊀不同物种HOXC8基因氨基酸序列相似性分析3㊀HOXC8基因生物学功能研究3.1㊀HOXC8基因对骨骼分化的影响HOX基因已被证明是建立轴向骨骼形态的关键调节因子[13]ꎬ也是发育过程中骨骼正确构型所必需的[14-16]ꎮ通过对转基因小鼠进行HOXC8基因缺失分析ꎬ发现大约200bpDNA片段的增强子决定了HOXC8基因的早期表达[17]ꎮ还有研究表明ꎬHOXC8基因在胚胎发育过程中对骨骼形态形成㊁造血及软骨分化至关重要[18]ꎮ在软骨发育过程中ꎬHOXC8过表达的转基因小鼠表现出严重的软骨发育缺损ꎬ主要发生在肋骨和脊柱ꎬ即软骨生理不稳定ꎬ成熟减慢ꎬ未成熟软骨细胞堆积至肥大ꎬ缺损的严重程度取决于转基因剂量[19]ꎮ由于转基因小鼠的肋骨软骨仍然脆弱ꎬ不足以支撑胸腔结构ꎬ导致出生后不久肺功能衰竭和死亡[20]ꎮ而HOXC8基因敲除小鼠则表现为前肢神经肌肉缺陷及胸腔肋骨㊁椎骨缺陷[21]ꎮ由此可见ꎬHOXC8基因是软骨细胞增殖和成熟的重要调节因子ꎮ在成骨分化过程中ꎬHOXC8基因初期低表达ꎬ中期上调(高表达)ꎬ晚期表达量显著下降[22]ꎮHOXC8基因在参与骨形态发生蛋白2(BMP2)诱导的成骨分化过程中ꎬ可抑制转基因小鼠股骨和胫骨骨组织中胶原蛋白㊁骨桥蛋白和骨唾液蛋白的mRNA表达水平[23]ꎮHOXC8基因还可与Smads蛋白直接作用ꎬ诱导成骨细胞分化[24]ꎮ同时有研究表明ꎬBMP/Smad信号可诱导HOXC8基因调控骨桥蛋白和骨保护素蛋白的表达[25]ꎮ3.2㊀HOXC8基因对脊椎变异的影响大量试验表明ꎬHOX基因是调控脊椎动物和哺乳动物体轴骨发育的主要调节基因ꎬHOX基因的突变可导致动物脊椎不同位置椎骨形态与数量的变异[26ꎬ27]ꎮ基因敲除试验表明ꎬ小鼠的HOXC8基因突变可使胸椎增加一枚ꎬ肋骨多生一对[28ꎬ29]ꎬ说明HOXC8基因确实参与了胸椎数量的调控ꎮ部分研究证实HOXC8并非单一基因影响脊椎发育过程ꎬ很有可能是结合其它基因或者调控元件来影响脊椎的发育过程[30]ꎮHOXC8基因还可影响家畜的脊椎变异ꎬ从而改变家畜的生产性能ꎬ增加家畜的产肉和产皮性能等ꎬ提升养殖的经济效益ꎮ随着生物技术的不断发展ꎬ全基因组关联分析(Genome-WideAsso ̄ciationStudyꎬGWAS)㊁相关数量性状位点(Quanti ̄tativeTraitLocusꎬQTL)定位和定性分析等新兴技术的出现ꎬ现已将HOXC8基因定位为猪多脊椎变异候选基因[31]ꎮ赵静[32]㊁陈琦[33]等研究发现蒙古羊HOXC8基因exon-1甲基化CpG的数量和密度影响HOXC8基因的表达ꎬ并且调控胸椎的发育ꎬ表明HOXC8基因与蒙古羊多脊椎数变异性状存在相关性ꎮ在乌珠穆沁羊群体同样显示出HOXC8基因的表达可引起多脊椎变异的出现[34]ꎮ3.3㊀HOXC8基因对脂肪形成的影响HOXC8基因在不同脂肪组织中差异表达ꎬ并在脂肪分化和脂质沉淀中发挥着重要作用[35ꎬ36]ꎮ对绵羊前体脂肪细胞分化的研究发现ꎬHOXC8基因mRNA的表达量在绵羊前体脂肪细胞分化前351㊀第12期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀史晓渊ꎬ等:HOXC8基因生物学功能研究进展极显著高于分化后ꎬ说明HOXC8基因在前体脂肪细胞分化前发挥作用ꎮ但在分化过程中ꎬ虽然HOXC8基因启动子区甲基化和第一外显子区甲基化都表现为较低水平ꎬ但第一外显子区甲基化水平都极显著高于启动子区ꎬ说明绵羊前体脂肪细胞的分化不受HOXC8基因启动子区甲基化的调控ꎬ而受第一外显子区甲基化水平调控ꎬ且在分化过程中ꎬHOXC8在转录水平的表达受第一外显子区甲基化的正调控[37]ꎮHOXC8基因在人脂肪源性干细胞(adipose-derivedmesenchymalstemcellsꎬADSCs)中表达强烈ꎬ但仅在脂肪生成过程中表达下调ꎬ在成熟脂肪细胞中表达几乎消失ꎮ研究发现靶向HOXC8的miR ̄196a在ADSC中随着脂肪生成而上调ꎬmiR ̄196a的上调可抑制HOXC8的表达ꎬ并促进了ADSCs中的脂肪生成ꎮ故HOXC8基因可作为ADSCs中脂肪生成的抑制剂ꎬ其表达可能受miR-196a微调[38]ꎮ3.4㊀HOXC8基因对神经发育的影响HOX基因对于生物体神经发育具有重要影响ꎮ研究发现ꎬ小鼠HOXC8基因在神经系统的多阶段表现为沿体轴骨骼方向上的双向表达模式ꎮ小鼠胚胎发育早期HOXC8基因转录物主要分布在后神经管和后中胚层ꎬ随着发育进行HOXC8基因的表达沿腹背侧方向分布递减ꎬ而且在头尾侧方向表达也递减[39]ꎮ研究显示HOXC8基因的靶向破坏会导致肢体运动轴突连接的异常ꎬHOXC8基因突变会导致小鼠运动神经异常ꎬ造成先天性前爪缺陷[40]ꎮ在小鼠胚胎发育早期ꎬHOXC8基因在肱动脉脊髓运动神经元中持续表达ꎬ若在肱动脉脊髓运动神经元中早期和晚期去除HOXC8基因ꎬ则会影响几个终末分化基因的表达ꎬ表明HOXC8基因参与了脊髓运动神经元(MN)终末分化的控制[41]ꎮHOXC8基因是区别外侧运动神经柱(lateralmotorcol ̄umnsꎬLMC)细胞内侧和外侧的关键[42]ꎬ且在LMC细胞定型和早期分化过程中具有双向调节作用ꎬ此发现表明HOXC8基因在脊髓腹侧有丝分裂后细胞表达调控的重要性ꎻ同时HOXC8基因对于Lim1+运动神经元亚群的表达㊁Islet1+运动细胞体的正确定位及其适当的轴突投射具有重要调控作用ꎮ在脊髓神经发生过程中ꎬ维甲酸(retino ̄icacidꎬRA)信号调节和HOX基因表达之间似乎存在复杂的相互作用ꎮ因此ꎬ相互依赖的RA信号传导和HOX基因功能对于小鼠臂运动神经元的特化是必需的[40]ꎮ3.5㊀HOXC8基因对癌症发生的影响HOX基因沿前后轴呈线性排列ꎬ如果其家族成员在错误的时间或地点出现错误的表达ꎬ则会导致其调节作用出现紊乱ꎬ增生与分化之间的平衡被打破ꎬ就很可能导致恶性肿瘤的发生ꎮ越来越多研究表明ꎬHOX基因在多种恶性肿瘤中表达均出现异常ꎬ因此ꎬHOX基因的表达在恶性肿瘤诊断和治疗中可能具有重要作用ꎮ相关研究表明HOXC8可参与调控人类多种恶性肿瘤的发生与发展[43]ꎮHOXC8基因是调控食管发育的重要基因ꎬ同时也参与食管鳞癌的发生与发展ꎮ杜雅冰等[44]研究发现HOXC8在食管鳞癌中发挥癌基因的功能ꎬ作为转录调节因子蛋白可促进食管癌细胞增殖ꎬ而敲除HOXC8基因ꎬ则可使食管癌细胞周期阻滞在G1期ꎬ细胞凋亡率增加ꎬ克隆形成能力下降ꎮHOXC8基因可作为转录激活因子诱导TGFβ1表达ꎬ进一步促进癌细胞的增殖以及迁移能力ꎮ其主要调控机制为MiR-23a靶向上调HOXC8基因的异常高表达ꎬ从而促进了宫颈癌的发生㊁发展过程[45]ꎮ在胃癌中ꎬHOXC8可作为miR-337-3p的靶基因ꎬXIST通过竞争性结合miR-337-3p并上调HOXC8进而促进胃癌细胞增殖㊁侵袭和上皮细胞-间充质转化(EMT)ꎬ从而促进胃癌的发展进程[46]ꎮ在鼻咽癌中ꎬ过表达HOXC8可抑制癌细胞生长ꎬ调节糖酵解ꎬ并调控三羧酸循环通路中相关基因的表达[47]ꎮ在乳腺癌晚期ꎬHOXC8表达水平明显升高ꎬ其可作为转录抑制剂抑制嵌入式跨膜糖蛋白(EMB)的表达ꎬ从而促进乳腺癌细胞的生长和迁移[48]ꎮ3.6㊀HOXC8基因对毛囊发育的影响HOXC8基因在人类胎儿皮肤发育过程中表达[49]ꎬ其主要在皮肤的毛乳头细胞中表达ꎬ并被认为与毛乳头细胞的毛发诱导能力有关[50]ꎮHOXC8基因可参与小鼠毛囊干细胞的激活ꎬ途径是激活与毛囊干细胞增殖分化至关重要的信号通路Wnt/β-catenin[51ꎬ52]ꎮ在小鼠中ꎬHOXC8首先在胸骨区域的皮肤中表达ꎬ随后扩展到胸腹和腰背部[53]ꎮ此外ꎬHOXC8还可在小鼠包括真皮乳头细胞在内的不同毛囊亚区域中表达[54]ꎬ其过表451山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第54卷㊀达可加速小鼠毛囊休止期向生长期转换ꎬ促进毛囊生长ꎮ在绒山羊毛乳头细胞全转录组学分析及与毛母质细胞分子互作机制的研究中发现ꎬ毛囊干细胞激活相关基因HOXC8的表达可受chip-miR-144-5p的负向调控ꎬ从而导致HOXC8基因下调ꎬ抑制毛囊生长ꎻ而ceRNAs可特异性结合chip-miR-144-5pꎬ从而解除HOXC8基因的抑制[55]ꎮBai等[56]对辽宁绒山羊生长期次级毛囊HOXC8基因外显子1的甲基化状态进行了研究ꎬ发现HOXC8基因外显子1的甲基化程度与羊绒纤维的直径㊁长度和强度等绒纤维性状相关ꎬ表明辽宁绒山羊毛囊HOXC8基因外显子1的甲基化程度可参与调节羊绒纤维的生长ꎮ4㊀小结综上所述ꎬHOXC8是一类在进化上高度保守的转录因子ꎬ与胚胎发育㊁骨骼分化㊁脊椎变异㊁脂肪形成㊁多种癌症的发生和发展及毛发发育密切相关ꎮ随着对HOXC8基因的深入研究ꎬ现已将其作为多种癌症的诊断基因㊁产绒动物产绒性状的潜在候选基因及家畜多脊椎变异的候选基因等ꎮ但目前对于HOXC8基因的研究还存在一定的局限ꎬ仅证实HOXC8基因与家畜脊椎变异存在相关性ꎬ具体通过何种途径或调控元件如何进行调控还无法给出准确结论ꎬ需进一步深入探究ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[1]㊀GofflotFꎬLizenB.EmergingrolesforHOXproteinsinsynap 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同源异型框蛋白Msx1的两个新的磷酸化位点的鉴定程庆灵;王敬强【摘要】Some phosphorylated sites in the homolog Msx2 of the homeoprotein Msx1 has been identified,which plays a crucial biological role. However,the phosphorylated sites in Msx1 are not known yet,thus in order to examine the Msx1 phosphorylated status, we applied bioinformatics analysis to predict phosphorylation sites in Msx1,further used immunoprecipitation and mass spectrometry to experimentally verify the phosphorylation sites in Msx1. Tryptic digests of Msx1 protein complexes purified from C2C12 cells were separated and analyzed by nLC-MS-MS. Two novel phosphorylation sites(Ser152 and Ser160)were identified,moreover,these two sites were highly conserved in mouse and human. Furthermore,the specifically-phosphorylated antibody was prepared targeting these two phosphorylation sites.%同源异型框蛋白Msx1的同系物Msx2中已鉴定出磷酸化修饰位点,并且发挥着重要的生物学功能。
KNOX基因调控植物发育的研究进展摘要:KNOX同源核蛋白(Knotted1-like homebox ,KNOX)是具有同源异型结构域的转录因子。
在植物生长发育过程中,尤其在植物顶端分生组织的形成和维持中起重要的调控作用。
NOX基因参与植物生长发育和器官分化过程的多个方面,其作用对分生组织的形成和功能的维持至关重要;参与侧生器官的形态建成;影响细胞命运,抑制细胞分化;参与植物激素的调节等。
本文我们将通过多种植物举例理解并说明,KNOX基因是一种怎样的基因,它有怎样的结构,又是如何表达的,对其能够调控植物发育的结构特征等;然后,对KNOX基因在对植物发育的调控作用的研究进展进行阐述;最后,对KNOX基因的发展前景进行展望。
关键词:KNOX基因;植物发育;调控;研究进展前言:KNOX基因家族编码同源异型盒蛋白,在植物生长发育过程中,尤其植物顶端分生组织的形成和维持中起重要调控作用。
研究表明,有花植物地上部分器官的形成依赖于它的顶端分生组织(shoot apical meristem,SAM),而顶端分生组织的形成和维护受KNOX转录因子的调控(Tsudaetal.,2014),因而其形成受KNOX的调控。
KNOX作为一个基因家族,其中包含了多种多样的基因片段,也对植物的生长发育的调控起着不一样的作用。
通过多篇文献的阅读了解,可以得知现如今有越来越多的KNOX家族基因的功能被挖掘出来,下面我们进行简单的总结。
1 KNOX基因家族的结构及基因表达李方正等人对大豆的KNOX基因的结构进行了分析,所有大豆的KNOX基因都存在3个以上的内含子,且大多数基因长度在3 kb以上, 外显子序列较短,序列中包含大段的内含子。
这种内含子-外显子结构严重异化的现象,可能对于其分化的基因功能具有重要贡献。
李雪辉将因家族划分为两个亚家族W和I类家族,该基因的表达具有组织特异性,主要在植物茎顶端分生组织(shoot apical meristem SAM)中特异表达,是分生组织发生与维持所必需的关键基因,调控与器官发生相关的细胞分化,最终影响侧生器官的形态建成,其在单子叶植物如玉米中的过量表达导致叶片出现刻裂,而在双子叶植物如番茄和辣椒中的过量表达产生叶片的过度增殖,甚至有复叶的形成。
1.黄色新月:受精后黄色皮层细胞质和动物极的透明物质往植物极运动,雄原核从植物半球往动物半球运动,在卵子皮层中形成了一块黄色新月状的区域称为黄色新月。
例被囊动物的受精卵。
2.灰色新月:受精后动物半球皮层向精子穿入点方向移动,精子穿入点相对的区域被植物半球的皮层取代,该处皮层下色素透过皮层,呈现出灰色,称为灰色新月。
例:两栖类。
3.内陷:上皮状细胞层中的细胞顶部和基部的性状发生变化(顶部变得狭窄,基部变得宽大),但相邻细胞的连接仍然保持着,使该细胞层发生弯曲,往胚胎内部陷入。
例:果蝇的原肠胚的前中肠内陷。
4.内移:上皮状的细胞层中个别细胞与其相邻的细胞失去连接,迁移入囊胚腔。
例如:海胆原肠胚初级间充质细胞的内移。
5.会聚性延伸:片状细胞层沿着某一特定方向变狭窄(会聚),接着再拉长(延伸)。
细胞与原先相邻的细胞失去链接,与新的细胞建立连接。
例如:鸟类形成原条。
6.基因删除:某种基因对于某些细胞功能没有起作用,因此被删除了。
先是染色体破裂成许多碎片,接着远离着丝粒的染色体碎片消散在细胞质中。
例如蛔虫。
7.透明带:卵细胞的发育在滤泡中进行,当第一层滤泡细胞层完全包被住卵细胞后,在卵细胞的外方开始形成非细胞的膜,称为透明带。
例如:人类的卵子。
8.支持细胞:雄性生殖腺中对生殖细胞起着支持、保护和提供营养的作用的体细胞称为支持细胞。
例如:人睾丸中的支持细胞。
9.iPS细胞:将4种转录因子(Oct4, Sox2, Klf4 和c-Myc)的基因导入已分化的体细胞中,使这些细胞转变为类似于胚胎干细胞的具有亚全能的细胞,这样的细胞称为诱导性亚全能干细胞。
例如:小鼠iPS细胞。
10.形态发生决定子:卵细胞质内储存的卵源性、决定卵裂球发育命运的物质称为形态发生决定子。
例如被囊动物的卵子。
11.盘状卵裂:端黄卵的卵裂只在胚盘中进行,卵黄不参加卵裂,在胚盘中进行的卵裂称为盘状卵裂。
例如:鱼类、鸟类。
12.诱导:发育过程中胚胎细胞之间的相互作用,一类细胞发出信号促使另一类细胞向一个特定的方向分化。
消化道不同部位印戒细胞癌中的SATB2、CDX2表达水平及临床意义杨娟1,刘春梅1,赵路21.漯河市中心医院(漯河医学高等专科学校第一附属医院)病理科,河南漯河462000;2.漯河医学高等专科学校第二附属医院病理科,河南漯河462000【摘要】目的探讨核基质结合蛋白2(SATB2)、尾型同源异型框转录因子-2(CDX2)在消化道不同部位印戒细胞癌(SRCC)中的表达水平及临床意义。
方法收集2008年3月1日至2019年1月31日漯河市中心医院收治的265例消化道手术切除SRCC 标本,其中上消化道SRCC 患者178例,下消化道SRCC 患者87例。
比较消化道不同部位SRCC 组织中SATB2、CDX2阳性率及不同病理学参数的SRCC 组织中SATB2、CDX2阳性率。
结果SATB2、CDX2在食管(28.57%、28.57%)、胃(27.71%、40.96%)SRCC 组织中的阳性率明显低于十二指肠(80.00%、60.00%)、空回肠(50.00%、50.00%)、阑尾(88.89%、66.67%)、结肠(89.47%、70.18%)、直肠(89.47%、68.42%)SRCC 组织中的阳性率,差异均有统计学意义(P <0.05);SATB2、CDX2在上消化道SRCC 组织中的阳性率分别为29.21%、41.01%,明显低于下消化道SRCC 组织中的88.51%、68.97%,差异均有统计学意义(P <0.05);上消化道、下消化道SRCC 组织中Ⅲ+Ⅳ期SATB2阳性率分别为43.75%、95.87%,明显高于Ⅰ+Ⅱ期的12.20%、77.50%,CDX2阳性率分别为57.29%、85.11%,明显高于Ⅰ+Ⅱ期的21.95%、50.00%,差异均有统计学意义(P <0.05);上消化道、下消化道SRCC 组织中T 3+T 4期SATB2阳性率分别为44.55%、10.00%,明显高于T 1+T 2期的9.09%、79.59%,CDX2阳性率分别为57.43%、84.21%,明显高于T 1+T 2期的19.48%、84.21%,差异均有统计学意义(P <0.05)。
DNA调控元素---同源异型基因2010-01-21 19:41:24| 分类:Biology | 标签:|字号大中小订阅同源异型基因广泛地存在于所有动物中,它在发育中起着极其重要的作用。
同源异型蛋白家族是基因表达调控因子,在其分子中包含有一个由60个氨基酸组成的功能域,对应的基因中的序列称为同源异型框。
此功能域有一个三个螺旋的结构,它是实现同源异型蛋白与靶基因DNA调控元素结合的功能部位。
当它结合到DNA分子上时,两个螺旋处在DNA分子上方,第三个顺伏在DNA 的主槽之中。
在发育中,同源异型蛋白通过此功能域与靶基因DNA分子中的调控元素结合,指导靶基因的特异表达。
研究发现,在三级结构上,同源异型框高度保守。
这里自然提出了一个疑问,在进化上,同源异型框基因在序列和功能上发生了明显的分化,形成了一个大家族,但是,它们与DNA的功能域在空间结构上几乎没有变化,这如何能适应它们对不同靶基因表的特异控制呢?发育生物学研究还发现,即使是在进化上距离很远的物种,他们的同源异型基因产物在功能上仍表现出很大的通用性。
例如,将果蝇的同源异型基因Antennapaedia引入到封闭了其同源基因表达的线虫体内,可以完全替代宿主同源异型基因,使之正常发育。
尽管,节肢动物与线虫在演化上的分离起码超过了5亿年,并且两种动物的发育程序也很不一样,但是,同源异型基因在异体内却完全可以正常工作。
更有甚者,如果将某些同源异型基因的同源异型框删除,它的表达产物仍可能正常发挥功能。
难道说,同源异型因子对靶基因DNA调控元素的特异结合并不重要,甚至是可有可无的吗?深入研究发现,同源异型结构域对DNA结合的特异性确实不高,不同的同源异型蛋白可以结合到同样的DNA序列上,而同一种同源异型蛋白也可以结合到不同的DNA序列上,其亲和性都没有明显的区别。
在于增强子调控因子比较,对各自DNA序列的亲和度测定显示,它们之间可以相差1000数量级,即同源异型蛋白与DNA的结合力远远低于增强子与其结合蛋白间的结合(如lac抑制因子)。
同源异型框基因Prrx功能的研究进展徐小桐;张昕;杜娟;杨晓农【期刊名称】《中国畜牧兽医》【年(卷),期】2017(044)002【摘要】同源异型框(homeobox,HoX)基因是具有较高遗传等级并能控制细胞分化和形态发育的重要基因.同源异型框基因主要在胚胎时期高度表达,对胚胎的发育、分化及对肢体结构和器官发育有重要影响.同源异型框基因Prrx主要包括3种,分别是Prrx1、Prrx2和Prrx3.Prrx基因家族在人和鼠的腭裂、颌骨、四肢、胫腓骨的组织发育中有重要作用,并与大脑、脊髓、神经、心脏等器官的发育密切相关.其中Prrx1和Prrx2基因主要参与胚胎中骨骼和心血管系统的发育,如四肢、颅面、软骨和动脉管.Prrx3基因主要参与胚胎中骨、软骨、大脑、脊髓等的发育.文章针对Prrx基因的功能进行概述,以期为这些基因功能的研究及相关疾病的防控提供一定的参考.%The homeobox (HoX) gene that controls cell differentiation and morphological development is an important gene having highly genetic level.These genes highly express in the embryonic period and affect the embryonic development and differentiation and control the developmentof body structure and organs.The homeobox gene Prrx includes three types,Prrx1,Prrx2 and Prrx3,this family gene plays an important role in the development of cleft palate,jaw,extremities,tibia and fibula in human and mouse,and is also closely related to the development of the brain,spinal cord,nerve,heart and other organs.The Prrx1 and Prrx2 are mainly involved in the development of bone and cardiovascular system in embryo,such aslimb,craniofacial,cartilage and arteries,and Prrx3 is mainly involved in the development of embryonic cartilage,bone,brain,spinal cord and so on.This paper reviewed the functions of Prrx gene,so as to provide certain references for research on the gene functions and prevention and control of related diseases.【总页数】6页(P607-612)【作者】徐小桐;张昕;杜娟;杨晓农【作者单位】西南民族大学生命科学与技术学院,成都610041;西南民族大学生命科学与技术学院,成都610041;西南民族大学生命科学与技术学院,成都610041;西南民族大学生命科学与技术学院,成都610041【正文语种】中文【中图分类】R43【相关文献】1.同源异型框基因Pem研究的概况 [J], 林琳;李月琴;周天鸿2.同源异型框基因的表达和调控 [J], 刘恭平3.同源异型框基因与动物早期发育 [J], 毛炳宇;张红卫4.过表达配对相关同源框1(PRRX1)通过调控Wnt/β-catenin通路抑制肝癌细胞体内致瘤性 [J], 尹润龙; 尹东亮; 卢沛林; 李柱威; 林志强5.人心脏特异性同源异型框基因在大肠杆菌中的表达(英文) [J], 赵景晖;徐昭;华子春因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
lncRNA 的作用模式总结经典的教科书上都会教授中心法则: DNA→RNA→蛋白。
但是随着分子生物学的不断发展,非编码RNA 已经越来越显示出重要的功能。
经过将近十年的深入研究,研究者已经发现了多种LncRNA的作用模式。
LncRNA 的作用模式可以分为四大类: signal,decoy,guide,scaffold。
一、signal:很多的lncRNA 都是由RNA聚合酶II 产生的。
因此它的结构和编码蛋白的mRNA非常相似,都有5端加帽结构,3端polyA尾等。
而且很多lncRNA 的表达具有显著的组织特异性和时间特异性。
已有的研究发现,不同的刺激条件和信号通路下,lncRNA将会被特异性地转录,并作为信号传导分子参与特殊信号通路的传导。
一些lncRNA分子被转录后,拥有调控下游基因转录的作用。
从生物体的角度而言,利用RNA进行转录调控是具有明显优势的,因为利用RNA进行调控,由于不涉及蛋白质的翻译,因此具有更好的反应速度,对于机体的某些急性反应可以做出更好更迅速的相应。
Huarte 等发现, p53直接诱导长链基因间非编码RNA-p21 (Long intergenic ncRNA p21, lincRNA-p21)的表达。
lincRNA-p21与核不均一核糖核蛋白-K (Heterogeneous nuclear ribonucleoprotein-K, hnRNP-K) 相互作用后可抑制 p53 信号通路下游基因的表达,从而调控p53 介导的细胞凋亡。
二 decoy:lncRNA 的第二种作用是分子阻断剂(molecular sink)。
这一类lncRNA被转录后,它会直接和蛋白(与这类lncRNA相互作用的蛋白都是转移因子/转录调节子)结合,从而阻断了该分子的作用和信号通路。
由于lncRNA的结合,这类转录因子的功能被阻断,从而调控下游的基因转录。
一个参与细胞周期调控的 lncRNA 是 DNA 损伤活化 P21 相关非编码 RNA(P21 associated ncRNA DNA damage activated, PANDA)。
破解长绒棉之谜作者:马亮来源:《中国纤检》2015年第03期时至今日,虽然化纤产品逐渐被消费者所接受,但天然纤维仍因其优良的特性受到热捧,而许多化纤产品也在性能方面对天然纤维进行模仿。
纯棉衣物具有舒适度高、透气性佳、亲肤等优点,棉花也因之成为使用最广泛的天然纤维,我国近几年棉花产量不断下降,而优质棉产量更是存在巨大的缺口。
如何大幅度改变棉花品质,满足国人对高品质纯棉衣物的需求呢?众所周知,棉花长度是决定棉纤维质量的一个重要因素,长绒棉就因此而被誉为“棉中极品”,如果能够使长绒棉的产量增加,就能缓解这一问题。
近日,中科院上海生科院植物生理生态研究所陈晓亚院士研究组最新克隆鉴定了一个控制棉纤维伸长的关键基因,在未来或能解决这一问题。
发现,最有价值的基因据统计,全世界超过80个国家种植棉花。
中国是最大的原棉生产国和消费国,直接从事棉纺织及相关行业的人员达到2000多万,间接从业人员多达1亿。
棉纺产业在我国国民经济中具有举足轻重的地位,而我国每年的棉花自给率只有70%左右,高档优质原棉的自给率更低,每年需进口100多万吨优质原棉。
陈晓亚告诉记者,棉纤维是由棉花种子表皮细胞分化而来,是高等植物中伸长最快、合成纤维素最多的单细胞。
其发育过程可分为分化与突起、迅速伸长、次生壁合成以及脱水成熟4个部分重叠的时期,其中纤维伸长和次生壁合成与品质性状的关系最为密切。
然而到目前为止,关于棉纤维发育、尤其是纤维伸长调控的研究还相对较少。
通过关联分析和遗传定位,研究团队发现了一个含有同源异型框的转录因子ghhox3,它与棉纤维伸长相关。
此次“捕获”的名为“ghhox3”的基因隐藏在棉花众多基因中,是具有重要育种价值的棉纤维伸长基因。
研究组发现ghhox3编码一个转录因子,通过与赤霉素途径的负调控因子della蛋白结合响应激素信号,促进棉纤维细胞伸长,为进一步解析植物细胞伸长的分子机理、克隆棉纤维发育新基因打下了基础,也为棉纤维品质改良提供了靶标基因。
同源异型框转录因子2在胃癌中表达的研究进展刘杲1,向田2,吴泉峰11.湖北省恩施州中心医院胃肠外科(湖北恩施445000)2.湖北省恩施州中心医院临床检验中心(湖北恩施445000)【关键词】同源异型框转录因子2(CDX2);胃癌;肠上皮化生【中图分类号】R735.2 【文献标识码】A同源异型框转录因子-2(caudal-related homeodomain transcription factor 2,CDX2)在人体正常上皮细胞中,可表达于内胚层来源的肠道上皮及胰腺的导管和腺泡上皮,但CDX2在食管和正常胃粘膜上皮中不表达。
除消化系统之外,其他系统正常上皮内均未检测到CDX2[1]。
CDX2对生物的发育和细胞分化具有重要的调节作用。
它在出现化生的胃粘膜上皮中异位表达,有研究者认为CDX2在肠型胃癌的发生发展中起到了重要的作用[2]。
2001年CDX2抗体的研制成功,为组织中CDX2表达的研究提供了有力的工具,从而对胃癌及其癌前病变提供了新的研究方向。
1CDX2的结构和功能CDX2是同源异型框基因及蛋白家族的成员之一,1985年,Mlodzik从果蝇中成功分离出CDX2基因及其相关蛋白[3]。
通过对人染色体的研究发现CDX2全长22-23kb,位于染色体的13q23,由3个外显子和2个内含子构成,与之对应的CDX2蛋白包含了311个单氨基酸,通过螺旋-环-螺旋的方式结合于DNA相应区域,以转录因子的形式来调节DNA的表达[4]。
CDX2在正常生物体的发育过程中,对结肠和小肠上皮的发育发挥着非常重要的作用。
经过CDX2基因敲除处理过的小鼠,消化道出现畸形,并且内胚层细胞无法正常发育为结肠或者小肠上皮,同时在小鼠消化道内出现大量的鳞状化生及多发息肉样病变,这种息肉样病变中的立方上皮和鳞状上皮均未出现CDX2的表达[4]。
在体外细胞系的研究中,发现CDX2具有非常明显的分化诱导作用。
利用Foxa顺式调控元件将CDX2导入转基因小鼠,在小鼠胃粘膜发现了肠型杯状细胞,并且检测到明显的分化现象[5]。
以上几项研究结果表明CDX2具有诱导细胞向结肠上皮细胞分化的作用,也就是说在肠上皮化生发生的过程中,CDX2可能起到一个类似“开关”的作用。
2CDX2的分子生物学特征CDX2的作用机制复杂,涉及到同源分子间、细胞间的相互作用等多方面因素,目前对其具体作用机制仍不明确,这里仅选择其中具有代表性的几个方面进行概述。
2.1CDX2与Hp1983年,Marshall和Warren发现幽门螺杆菌(Helicobacter pylori,Hp),让Hp成为全世界消化界的研究热点。
随着对Hp研究的不断深入,目前已发现Hp与慢性萎缩性胃炎、胃十二指肠溃疡等关系密切。
研究表明,正常胃粘膜出现肠上皮化生的主要致病因素与Hp感染呈正相关[6]。
但是Hp引起肠上皮化生的详细机制仍不明确,可能与某些基因的异常表达有关[7]。
但Satoh[8]等有研究提示表明慢性萎缩性胃炎病人的病变胃粘膜中CDX2的表达与肠上皮化生关系密切,经过内科规范的抗Hp治疗之后一年,再次对其病变胃粘膜进行检测,CDX2的表达依然维持在一个相对高的水平。
Salama [9]等经过研究认为,肠上皮化生的减退是极其缓慢的,尽管通过正规内科治疗能够根除Hp,但慢性炎症反应对胃肠道粘膜的刺激仍要持续相当长一段时间。
上述结果提示,Hp引起胃粘膜肠化的途径之一可能是与启动CDX2基因的异常表达有关。
2.2CDX2与MAPK s P38分裂激活蛋白激酶(P38mitogen-activated protein kinase,MAPKs)在细胞向小肠上皮的分化过程中起着重要的调节作用,MAPKs 主要分布于小肠的绒毛上皮细胞核中[10]。
MAPK s能与CDX2的启动子发生特异性结合,通过某种机制来调节其转录活性,这种机制目前仍不明确。
MAPKs的抑制剂对细胞的正常生长并没有影响,但MAPKs被抑制后,CDX2的表达及细胞的肠化亦明显的降低,从而在一定程度上阻止胃癌及其癌前病变的发生[11]。
2.3CDX2与MUC2粘液蛋白基因-2(mucin2,MUC2)是一种分泌性粘蛋白,在杯状细胞的胞浆中含量丰富,而杯状细胞又是肠粘膜上皮细胞的特征性细胞之一。
Roessler [12]等发现,将CDX2基因导入小肠上皮细胞系中,用RT-PCR以及EMSA法,检测到CDX2可以特异性结合于MUC2基因的启动子,显著提高CDX2的表达水平。
笔者[13]在对50例胃癌进行研究表明:肠型胃癌中CDX2阳性表达率为63.3%(19/30),弥漫型胃癌中阳性表达率为30.0%(6/20),两型阳性表达率有显著性差异(P<0.05);MUC2在肠型胃癌中阳性表达率为66.7%(20/30),在弥漫型胃癌中阳性表达率为35.0%(7/20),两型阳性表达率有显著性差异(P<0.05)。
同时也研究表明CDX2和MUC2在肠上皮化生当中都存在表达,而且还具有一定的相关性。
2.4 CDX2与LI-钙粘蛋白肝肠特异性整合素(liver intestin-cadherin,LI-钙粘蛋白)是钙粘蛋白家族一员。
通过分子生物学研究发现,CDX2能特异性作用于LI-钙粘蛋白的5’端,与LI-钙粘蛋白直接结合,从而促进LI-钙粘蛋白的表达。
无论在小鼠或人体中,LI-钙粘蛋白在小肠及结肠的正常粘膜上皮中均有特异性表达。
Andreas[14] 等研究发现,CDX2的表达与LI-钙粘蛋白的表达表现出高度的正相关。
2.5CDX2与PTEN PTEN是磷酸酶家族中发现的第一个肿瘤抑制基因,位于人类染色体10q23,PTEN蛋白是定位于细胞浆的一种磷酸酯酶,具有双特异性磷酸酶活性,在酪氨酸磷酸酶和丝氨酸/苏氨酸磷酸酶介导的信号传递过程中具有重要作用[15]。
由于该基因蛋白对第二信使PIP3的脱磷酸作用,细胞内的PIP3水平会直接影响蛋白激酶B/Akt原癌基因的磷酸化过程,促进细胞的生长,阻止凋亡进行。
同时,PTEN对细胞周期起着重要的调节作用,可以抑制细胞的G1--S 期进程。
另外,PTEN氨基酸序列与张力蛋白tensin和辅助蛋白auxilin高度同源,提示PTEN基因可能通过调节细胞聚集粘附功能,影响细胞的浸润和转移[16]。
从上述研究表明,CDX2在胃癌的发生发展过程中作用机制非常复杂,涉及诸多基因之间的相互作用,除上述所列之外,还有蔗糖酶-异麦芽糖酶基因、乳糖酶-根皮苷水解酶基因、鸟苷酸环化酶基因、肝素结合性表皮生长因子、结肠碳酸酐酶-1基因等,使胃粘膜发生肠上皮化生,最终导致胃癌的发生。
3CDX2在胃癌及其癌前病变中的表达及相关意义众所周知,肠上皮化生及粘膜不典型增生是属于癌前病变的范畴,既往有研究发现CDX2在胃癌的癌前病变中也存在一定程度的表达。
Seno[15]等发现89%的慢性萎缩性胃炎及64%的肠型胃癌中可检测到CDX2的抗体表达,而正常胃粘膜及其他类型胃癌中CDX2并没有表达.国内研究发现[17],CDX2蛋白在胃癌中表达时,在肠型胃癌中表达的强度显著高于弥漫型胃癌,与笔者的研究结果相似;同时研究还发现,在慢性萎缩性胃炎伴肠上皮化生、癌旁肠上皮化生、胃癌组织中,CDX2阳性率逐渐减低,其中胃癌中显著低于慢性萎缩性胃炎伴肠上皮化生中。
提示在从肠上皮化生到胃癌的进展过程中,CDX2表达水平是下调的。
但它是否是一种新的胃癌抑制基因,还是仅仅与肠上皮化生的发生或细胞的分化有关,需进一步研究。
同时说明CDX2基因的表达可能是胃癌进展过程中的一个特异标志物,其激活可能意味着胃癌发生的早期事件。
从另一个角度来说,CDX2的激活及过度表达在上消化道肠化生中起着关键作用,是肠化生的启动基因。
关于CDX2在肠化生中如何被激活及上调表达仍需进一步研究。
Ge等[18]研究发现,CDX2蛋白表达强度的变化随癌细胞分化程度的降低而逐渐减弱。
CDX2蛋白表达强度高的胃癌,浸润侵袭能力相对低下,而CDX2蛋白表达强度低的胃癌,更容易出现淋巴结转移,但笔者[13]有研究表明CDX2在胃癌组织中的表达与病人年龄、性别、有无淋巴结转移均无关,而与胃癌的组织病理分型(Laurén分型)都有关。
CDX2在高中分化程度组中的阳性表达率为66.7%,低分化程度阳性率25.0%,差异有极显著性(P<0.01)。
在浸润深度方面,CDX2在粘膜及粘膜下层组阳性表达率为73.7%,在肌层及浆膜层组表达率为35.5%,差异具有极显著性(P<0.01);这个结果与Ge的结果有些不同之处:这一现象可能与CDX2蛋白表达缺失有利于癌细胞的免疫逃逸有关。
以上研究表明,正常胃黏膜上皮不表达CDX2;胃黏膜出现肠化生时,CDX2表达阳性;而当胃黏膜已出现癌变后,上调CDX2的表达可以抑制肿瘤细胞的生长及转移。
Seno[11]等发现在40例胃癌患者中,CDX2阳性的胃腺癌患者生存率明显高于CDX2表达阴性的患者。
X Zhang [19] 等也有研究表明CDX2是一个非常有用的预后标记物。
由于CDX2对正常和肿瘤型的肠上皮有相对特异性和敏感性,免疫组织化学染色可以用来辅助明确转移性肿瘤的来源[20]。
那么利用CDX2对肠道上皮的这种特异性,可以与其他的标记联用来鉴别甲状腺、肾脏、前列腺、乳腺的腺癌,原发性肝脏肿瘤等。
CDX2作为一个诊断胃肠腺癌的辅助指标还是非常有意义的,它的研究及应用必将会对胃肠道上皮的研究及肿瘤的鉴别发挥重要的作用。
综上所述,CDX2的表达在癌前病变及胃癌的组织分型、浸润程度、淋巴结转移、预后等临床病理特征都有一定关系,笔者也有这个方面的研究报道[13]。
4结语目前对于CDX2在胃癌及其癌前病变中表达的研究仍不够深入,具体的作用机制仍不清楚。
如果能够对CDX2在组织中的表达强度进行调节,那么对胃癌的预防、早期诊断及基因靶向治疗将有非常大的帮助。
作为目前胃肠道特异性最高的基因及抗体,CDX2在消化系肿瘤的研究中必然有更广阔的前景。
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