实验6-不同因素对家兔动脉血压的影响
实验6 不同因素对家兔动脉血压的影响
xxx
（浙江中医药大学20xx级xxxxxxxxxxx，
20xxxxxxx）
摘要：目的掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法，以及验证家兔动脉血压的体
液调节（去甲肾上腺素、乙酰胆碱）与神
经调节（迷走神经及主动脉神经）的存在。
方法运用动脉插管的方法，分别静脉注
射NE和Ach、改变颈动脉窦血流量、电刺
激迷走神经和主动脉神经的中枢端及外
周端，并用生物信号采集处理系统
RM6240记录家兔动脉血压的变化情况。
结果静脉注射Ach、突然松开右颈总动
脉、刺激完整主动脉神经及其中枢端、刺
激完整迷走神经及其外周端均能降低血
压。静脉注射NE、突然夹闭右颈总动脉
均能使升高血压。刺激主动脉神经外周端
及迷走神经中枢端，血压变化不明显。结
论动脉血压由神经和体液共同调节。心
血管反射中，主动脉神经是传入神经，迷
走神经是传出神经。在压力感受器反射
中，颈动脉窦通过感受其机械牵张力起调
节血压的作用。NE和Ach通过和胞膜受
体结合分别升高和降低血压。
关键词动脉血压；动脉插管；Ach；NE；颈动脉窦；迷走神经；主动脉神经
1.材料和方法[1]
1.1实验材料：家兔；
1.2实验仪器：RM6240生物信号采集系统，
铁架台，血压换能器，电刺激
连线；兔手术台，体重秤，照
明灯；手术剪，眼科剪，止血
钳，镊子，注射器及针头，血
管插管，动脉夹，输液装置，
丝线，纱布；
1.3实验药品和试剂：20%氨基甲酸乙酯，1000
U/mL肝素，0.1g/L去甲
肾上腺素，0.01g/L乙酰
胆碱，生理盐水；
1.4实验装置与连接：
1.4.1将压力换能器固定于铁支架上，使换
能器的位置尽量与实验动物的心脏
在同一水平面上。然后将换能器输入
至RM6240生物信号采集系统一通
道。
1.4.2压力换能器的另一端与三通管相连。
三通管的一个接头将与动脉插管相
连。在将动脉插管插入左颈总动脉
前，先用盛有肝素的注射器与三通管
另一接头相连，旋动三通管上的开
关，使动脉插管与注射器相通，推动
注射器，排空动脉插管中的气体，使
动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭
三通管。
1.5手术准备：
1.5.1麻醉固定：家兔称重后，按5ml/kg
体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲
酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧放置
于兔台上，先后固定四肢及兔头。
1.5.2用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开
颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌
肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用
玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经
和迷走神经，穿细线备用，用玻璃分
针分离两侧颈总动脉，各穿一线备
用。
1.5.3 动脉插管：在左颈总动脉中枢端结
扎，外周端用动脉夹夹住，并在动脉
下端预先穿以细线备用。用眼科剪在
靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型
切口，将动脉插管向心方向插入颈总
动脉内，扎紧固定。打开动脉夹。1.6实验观察：
1.6.1记录正常血压曲线。
1.6.2静脉注射去甲肾上腺素：家兔耳缘静
脉注射0.3ml去甲肾上腺素，观察血
压变化，待血压曲线显示正常后再进
行下一个实验。
1.6.3静脉注射乙酰胆碱：家兔按0.1ml/mg
体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰
胆碱，观察血压变化，待血压曲线显
示正常后再进行下一个实验。
1.6.4用血管夹突然夹闭右侧颈总动脉20s，
观察血压变化，待血压曲线显示正常
后再进行下一个实验。
1.6.5突然松开右侧颈总动脉的血管夹，观
察血压变化，待血压曲线显示正常后
再进行下一个实验。
1.6.6 在定时模式下，用3V、5Hz、10s持
续时间电刺激右侧主动脉神经，观察
血压变化，待血压曲线显示正常后再
进行下一个实验。
1.6.7用细线结扎右侧主动脉神经并剪断，
分别刺激其外周端及中枢端，观察血
压变化，待血压曲线显示正常后再进
行下一个实验。
1.6.8在定时模式下，用3V、5Hz、10s持
续时间电刺激右侧迷走神经，观察血
压变化，待血压曲线显示正常后再进
行下一个实验。
1.6.9用细线结扎右侧迷走神经并剪断，分
别刺激其外周端及中枢端，观察血压
变化。
2.实验结果
静脉注射Ach、突然松开右颈总动脉、刺激
完整主动脉神经及其中枢端、刺激完整迷走神经及其外周端均能降低血压。静脉注射NE、突然夹闭右颈总动脉均能使升高血压。
刺激主动脉神经外周端及迷走神经中枢端，血压变化不明显。
3.讨论与分析
3.1 实验结果图中，出现了一级波及二级波。
一级波又称为心搏波，是由心室舒缩活动
所引起的血压波动，心缩时上升，心舒时
下降，其频率与心率一致。二级波又称为
呼吸波，是由呼吸运动所引起的血压波
动，吸气时血压先下降，继而上升；呼气
时血压先上升，继而下降，其频率与呼吸
频率一致。
3.2 去甲肾上腺素能升高动脉血压。注射NE：
①NE与血管平滑肌上的α受体结合，使
血管强烈收缩，循环系统外周阻力增加；
②NE与心肌细胞上的β受体结合，使心
率加快，心缩力加强，心输出量增加。外
周阻力和心输出量增加共同造成动脉血
压升高。但由于存在压力感受器，故有压
力感受性反射使心率减慢，心缩力降低，
从而血压回归正常。
3.3 乙酰胆碱能降低动脉血压。静脉注射Ach：
①Ach与心肌细胞上的M受体结合，导
致发生M样效应，心率减慢，心输出量
减少；②Ach兴奋血管内皮细胞上的M
受体，血管扩张，外周阻力减小。心输出
量和外周阻力减小共同造成动脉血压降
低。3.1与3.2共同证明了动脉血压体液
调节的存在。
3.4 颈动脉窦血流量突然减少能升高动脉血
压。当突然夹闭右颈总动脉后，通过颈动
脉窦压力感受器的血流量突然减少，其机
械牵张力降低，颈动脉窦血压下降，颈动
脉窦兴奋性受抑制，窦神经传入冲动减
少。延髓孤束核通过延髓内和延髓外中枢
机制，使缩血管区加强，心抑制区减弱，
从而使交感缩血管紧张增强，心交感紧张
增强，心迷走紧张减弱，引起血管收缩、
外周阻力增加、心脏活动增强、心率加快
及心输出量增多，最终导致动脉血压升
高。
3.5 颈动脉窦血流量突然增多能降低动脉血
压。当突然松开右颈总动脉后，通过颈动
脉窦压力感受器的血流量突然增多，其机
械牵张力升高，颈动脉窦血压升高，颈动
脉窦兴奋性增高，窦神经传入冲动增多。
延髓孤束核通过延髓内和延髓外中枢机
制，使缩血管区减弱，心抑制区增强，从
而使交感缩血管紧张减弱，心交感紧张减
弱，心迷走紧张加强，引起血管舒张、外
周阻力降低、心脏活动减弱、心率减慢及
心输出量减少，最终导致动脉血压降低。
3.3与3.4共同证明了动脉血压神经调节
（心血管反射）的存在。
3.6 主动脉神经是传入神经。实验结果显示，
剪断主动脉神经后刺激其外周端，动脉血
压无明显改变；而刺激其中枢端，动脉血
压出现了大幅度下降。原因是：主动脉神
经是传入神经，其兴奋首先传入延髓孤束
核，经延髓心血管中枢（心迷走中枢、心
交感中枢及缩血管中枢）调节，继而兴奋
下传于心迷走神经、心交感神经及交感缩
血管纤维，从而使效应器（心脏及血管）
作出相应反应，最终影响动脉血压[2]。在
剪断主动脉神经的实验条件下，刺激其外
周端，兴奋无以传至中枢，故机体反应不
明显，因此动脉血压变化不明显。；而刺
激其中枢端，心血管中枢收到主动脉神经
兴奋增加的信号，经调节使缩血管区减
弱，心抑制区增强，从而使交感缩血管紧
张减弱，心交感紧张减弱，心迷走紧张增
强，动脉血压下降。
3.7 迷走神经是传出神经。实验结果显示，剪
断右侧迷走神经后刺激其中枢端，动脉血
压无明显改变；而刺激其外周端，动脉血
压出现了大幅度下降。原因是：迷走神经
是传出神经，在实验条件下，刺激其中枢
端，由于传出路径受阻，故动脉血压变化
不明显；而刺激其外周端，相当于迷走神
经传出冲动增多，其纤维末梢释放的乙酰
胆碱增多。乙酰胆碱作用于心肌细胞上的
M受体，通过cGMP作用使细胞膜对K+
的通透性增加，K+外流增多；对Ca2+的
通透性减小，Ca2+内流抑制，从而抑制心
脏活动（负性肌力效应），引起心率减慢、
房室传导速度减慢及心房肌收缩减弱，导
致心输出量减少[3]，故动脉血压降低。4.结论
动脉血压由神经和体液共同调节。心血管反射中，主动脉神经是传入神经，迷走神经是传出神经。在压力感受器反射中，颈动脉窦通过感受机械牵张力起调节血压的作用。NE 和Ach通过和胞膜受体结合分别升高和降低血压。
5.参考文献
[1]陆源林国华杨午鸣主编。机能学实验教程，第二版，北京科教出版社，2010。128 [2]朱大年主编。生理学，第七版。人民卫生出版社，2009.79
[3]朱大年主编。生理学，第七版。人民卫生出版社，2009.77
一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克（一） 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔（新西兰大白兔），2.5公斤，雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套，计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置，带三通针头的细塑料管2个，注射器若干，20%乌拉坦，0.3%肝素，去甲肾上腺素针剂，0.02g/L 肾上腺素，0.03g/L去甲肾上腺素，0.01g/L异丙肾上腺素，5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台，颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉，沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口，分离气管，再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经，穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明：给药体积均为0.2ml/kg；每次给药后可住生理盐水，将死腔内的药液注入静脉； 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 （1）夹闭一侧颈总动脉 （2）刺激一侧减压神经，双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端
（3）结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素
4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素
在同一水平面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。 1.4.2压力换能器的另一端与三通管相连。 三通管的一个接头将与动脉插管相 连。在将动脉插管插入左颈总动脉 前，先用盛有肝素的注射器与三通管 另一接头相连，旋动三通管上的开 关，使动脉插管与注射器相通，推动 注射器，排空动脉插管中的气体，使 动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭 三通管。 1.5手术准备： 1.5.1麻醉固定：家兔称重后，按5ml/kg 体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲 酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧放置 于兔台上，先后固定四肢及兔头。 1.5.2用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开 颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌 肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用 玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经 和迷走神经，穿细线备用，用玻璃分 针分离两侧颈总动脉，各穿一线备
用。 1.5.3 动脉插管：在左颈总动脉中枢端结 扎，外周端用动脉夹夹住，并在动脉 下端预先穿以细线备用。用眼科剪在 靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型 切口，将动脉插管向心方向插入颈总 动脉内，扎紧固定。打开动脉夹。1.6实验观察： 1.6.1记录正常血压曲线。 1.6.2静脉注射去甲肾上腺素：家兔耳缘静 脉注射0.3ml去甲肾上腺素，观察血 压变化，待血压曲线显示正常后再进 行下一个实验。 1.6.3静脉注射乙酰胆碱：家兔按0.1ml/mg 体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰 胆碱，观察血压变化，待血压曲线显 示正常后再进行下一个实验。 1.6.4用血管夹突然夹闭右侧颈总动脉20s， 观察血压变化，待血压曲线显示正常 后再进行下一个实验。 1.6.5突然松开右侧颈总动脉的血管夹，观 察血压变化，待血压曲线显示正常后
实验日期：2015年12月16日 带教教师：米鍇 小组成员：彭佳杏（201402534）钟佳冀（201401197），陈靖珊（201401328），周丹婷（201401370），郭碧润（201401385） 专业班级：2014级临床十三大班，临床法语班 家兔动脉血压的调节 一、实验目的 1.掌握心血管活动调节的神经、体液机制 2.进一步熟悉家兔颈部解剖结构、学习直接测定家兔动脉血压的急 性实验的方法。 3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 二、实验原理 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种
相对稳定性是通过神经调节，体液调节和自身调节来实现的。神经调节主要通过颈动脉窦主动脉弓压力感受性反射来实现。原理如下图。 体液调节包括肾素血管紧张素系统，肾上腺素和去甲肾上腺素（主要），血管升压素。 心血管活动的变化可以通过血压的变化间接加以判断。血压的变化可通过血压换能器和Mdelab 系统记录并处理，得出结果。 二、 实验仪器设备 生物信号采集系统，兔手术台，兔手术器械、塑料动脉插管及三通开关、动脉夹、注射器、双凹夹、铁支架、保护电极、丝线、 1 mg/Kg 的肝素钠注射液、乌拉坦溶液、去甲肾上腺素、眼科剪
四、实验方法与步骤 1、称重、麻醉、固定、剪毛 2、颈部手术 1)气管插管 2)分离右侧减压神经（穿2根线备用）、交感神经、迷走神经（穿1 根线备用）、颈总动脉（穿1根线备用） 注意：减压神经、交感神经、迷走神经、颈总动脉位于气管两旁深层肌肉内的血管神经鞘内。 按先神经后血管，先细后粗的顺序分离 按减压神经、交感神经、迷走神经的顺序分离神经，穿线，末端打结备用。 3)分离左侧颈总动脉（穿2根线打结备用），1mg/Kg 的肝素钠注射 液全身抗凝，做颈总动脉插管，连接血压换能器 颈总动脉插管： 血管游离2以上（注意避开分支），穿2根线备用 远心端（头端结扎） 近心端用动脉夹夹闭动脉（留出一定的操作空间）靠近结扎点（头端）于血管前壁做V型切口 插入动脉插管固定 轻轻松开动脉夹（先不要拿开），观察是否渗血，结扎是否紧 换能器用胶布粘在桌子上，专人照看 五、实验结果
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）
实验六传出神经系统药对家兔血压的影响 【目的】1.观察传出神经系统药物对兔血压的影响，联系其临床应用。 2.探讨传出神经系统药影响血压的作用机制及应用时注意事项。 【材料】 器材兔手术台、手术灯、20ml注射器、5ml注射器、8号针头、6号针头、5号针头、气管套管（Y形玻璃或T玻璃管）、动脉套管、静脉套管（或细塑料管）、动脉夹、手术刀、眼科剪、普通剪、手术剪、止血钳、眼科镊、烧杯、血压描记装置、压力换能器、电动记纹双鼓（或二导生理记录仪、计算机）、手术线、纱布、棉纱绳、磅砰。 药品0.5%肝素、生理盐水、3%异戊巴比妥钠、10%葡萄糖、10-5乙酰胆碱、1%阿托品、10-5肾上腺素、10-4去甲肾上腺素、1%酚妥拉明、10-3普萘洛尔。 动物家兔。 【方法】 1．取家兔一只，称重，以3%异戊巴比妥钠1ml/kg耳缘静脉注射，麻醉后将家兔仰位固定手术台上。 2．压力换能器连于pclab生物信号采集处理系统上。 记录方式：连续记录；存盘方式：连续存盘；输入：DC；放大倍数：100～200；采样率：1ms。 3．剪去颈部毛，在颈部正中纵行切开长约10cm的皮肤，分离出气管并将其切开，插入气管套管，用粗线绳结扎固定。于气管分离出左侧颈总动脉，结扎其远心端，并在相距3～5cm的近心端处，用动脉夹夹住动脉阻断血流。然后在靠近结扎线处用眼科剪刀剪一小口，将连于压力换能器充满20～25ml肝素生理盐水的动脉插管朝向心方向插入颈动脉内，用线结扎固定。（将水银检压计的压力调整到100～120mmHg，用记纹鼓记录。如果用二道仪或计算机，动脉套管与压力换能器相连，插管前，充好肝素溶液）。 4．剪去耳缘静脉处毛，以备给药用。 5．分别在家兔的四肢皮下组织插入针头，接好心电图机电极（右前肢-红色，左前肢-黄色，左后肢-绿或蓝色，右后肢-黑色），记录标准Ⅱ导联的心电图，以
实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心脏收缩力减弱， 传导速度减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时血管收缩，外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动，改变心输出量和外周阻力，从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体，对β受体作用很小，因而使外周阻力 增加，动脉血压增加，其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血 压升高，启动减压反射，可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器，刺激 电极，照明灯，万能支台，双凹夹，烧瓶夹，试管夹，气管插管，动脉夹，三通开关，动脉 导管，注射器(1ml、5ml、20ml)，有色丝线，纱布，棉花，1.5％戊巴比妥钠，1000U/ml 肝 素生理盐水，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 去甲肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液， 生理盐水。 【实验步骤】 1．连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2．手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5％戊巴比妥钠以 2.0ml／kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛，沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉， 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方 2～3cm处作“⊥”形切口，插入 气管插管，以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉，并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U／kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动
家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 (一)实验项目:家兔动脉血压的神经体液调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理: 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、
0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品 1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α 1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。
药物对家兔血压的影响 一．实验目的 掌握去甲肾上腺素和乙酰胆碱对家兔血压的影响 二．实验原理 血压的形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素有关，通过神经—体液调节机制维持正常血压，传出神经药是一大类药物，或拟似神经递质，或拮抗神经递质，通过激动或阻断分布于心血管的肾上腺素受体和乙酰胆碱受体，影响心肌收缩性，血管的舒张与收缩程度，从而使血压升高或降低。 三．实验材料 家兔、兔手术台、哺乳类动物手术器械一套、动脉夹、动脉插管、血压换能器、双凹夹、铁支架、玻璃分针、细线、注射器（5ml）、小烧杯、台氏液、20%氨基甲酸乙酯、肝素（1000u/ml）、0.0001%乙酰胆碱、生物信号采集系统 四．实验方法 1.手术准备 （1）家兔称重，氨基甲酸乙酯按3-4ml/kg体重的剂量于耳缘静脉注射麻醉。麻醉剂不能过量，注射速度不能过快。 （2）动物仰卧与手术台上，用棉线拴住门牙，将绳子拉紧固定于固定台的铁圈上，固定四肢。 （3）暴露颈总动脉、颈静脉。分离，分别穿线备用。 （4）静脉注射肝素，剂量为1000u/kg体重。 （5）1分钟后（肝素在体内血液中均匀混合），左颈总动脉插插管，并在动脉下方穿一根线备用，用眼科剪在靠近结扎处剪一V形口，将动脉套管沿近心端插入颈总动脉，结扎。 2.装置仪器连接 （1）颈总动脉血压测量记录装置。将血压换能器固定于铁支架上，其位置应与心脏在同一平面 （2）生物采集系统的连接 3.观察项目 （1）观察正常血压波动曲线 （2）静脉注射0.001%的去甲肾上腺素0.5ml，观察血压变化并记录。 （3）静脉注射0.0001%的乙酰胆碱0.1ml/kg，观察血压变化并记录。 五．注意事项 1.采取保温措施，避免动物麻醉后体温下降 2.分离时，一定要小心，避免弄破血管。
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适
应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线
优质《家兔动脉血压的神经体液调节》实验报告实验目的：探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。 实验方法：采用液压传递系统直接测量和记录动脉血压的急性实验方法。结果夹闭右颈总动脉，血压升高（P<0.01），电刺激减压神经，血压降低（P>0.05），电刺激迷走神经，血压降低（P<0.05），注射去甲肾上腺素，血压升高（P<0.01）。结论夹闭右颈总动脉和静脉注射去甲肾上腺素使血压升高，刺激减压神经和迷走神经使血压下降。 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常情况下，人和高等动物的动脉血压在神经和体液因素的调节下保持相对稳定，因此可以通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反应各种因素对心血管功能活动的调节及影响。本实验即是探讨神经和体液因素对动脉血压的调节作用。 1、实验材料： 家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号采集处理系统，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，去甲肾上腺素，乙酰胆碱 2、实验方法： 2.1 实验数据连接及参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms，刺激频率30Hz。 2.2 手术准备 2.2.1 家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。 2.2.2 减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧减压神经、右侧迷走神经和右侧颈总动脉，穿线备用，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。 2.2.3 颈外静脉插管先用血管夹夹住右侧颈外静脉近心端，再在远心端用线
一、急性实验动物的基本操作技术 1、切口和止血 （1）切口 兔、狗等动物的皮肤切口前，必须先剪毛。剪毛用弯头剪或粗剪刀，不可用组织剪或眼科剪。剪毛范围应大于切口长度。剪毛时可一手将皮肤绷平，另一只手持剪刀平贴于皮肤逆着毛的朝向剪毛。剪下的毛应及时放入盛水的杯中浸湿，以免到处飞扬。切口的大小根据实验要求而定。切皮时，手术者一手的拇指和食指绷紧皮肤，另一只手持手术刀，以适当力度一次切开皮肤和皮下组织，直至肌层。用止血钳夹住皮肤切口边缘暴露手术野，以便于进一步分离、结扎等操作。 （2）止血 在手术过程中应注意避免损伤血管，如有出血要及时止血。止血方法有： ①组织渗血，可用纱布压迫等方法止血。 ②较大血管出血，应用止血钳夹住出血点及周围少许组织，结扎止血。 ③肌肉组织出血时，由于肌肉的血管丰富，要将肌肉组织及出血点一同结扎。 为避免肌肉组织出血，在分离肌肉时，如果肌纤维走向与切口一致，应钝性分离。 2、神经和血管的分离 神经和血管都是易损伤的组织，在分离过程中切不可用有齿镊子剥离，也不可用止血钳或镊子夹持。分离时，掌握先神经后血管，先细后粗原则。分离完毕后，在神经或血管的下方穿一浸透生理盐水的丝线，供提起或结扎之用。 二、传出神经药物对家兔血压的影响 [实验目的] 学习麻醉动物急性血压实验的方法；观察传出神经药物对动物血压的影响，加深对这些药物相互作用关系的理解，并根据受体学说初步分析其作用机制。 [实验材料] 动物：家兔 器材：手术刀、手术剪、民用剪、止血钳、气管插管、动脉插管、动脉夹、头皮静脉注射针头、压力换能器、电脑及记录装置、注射器、铁支架、螺旋夹、棉线、药棉、纱布药品： 6%枸橼酸钠溶液（或肝素溶液）、生理盐水、3%戊巴比妥钠溶液、0.002%盐酸肾上腺素溶液、0.001%盐酸异丙肾上腺素溶液、0.5%酚妥拉明溶液。 [实验方法] 1、取家兔一只，称重，腹腔注射戊巴比妥钠30mg/kg（即3%戊巴比妥钠溶液1ml/kg），麻醉后，将动物背位固定于手术台上。 2、找到耳缘静脉，插入与注射器相连的头皮静脉注射针头，缓慢连续不间断地推注生理盐水。 3、剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤，分离气管。在气管下穿一线，轻提气管，作一倒“T”形切口，插入气管插管，结扎固定。 4、在气管一侧的颈动脉鞘内分离颈总动脉（注意有迷走神经伴行，应将其与颈总动脉分离），在颈总动脉下方近、远心端各穿一根线，远心端结扎；然后用动脉夹夹住近心端，在靠近结扎处用眼科剪剪一”V”形小口，向心方向插入装有枸橼酸钠溶液或肝素溶液的动脉插管，结扎并固定于动脉插管上。动脉插管与压力换能器相连并连接在生物信号采集系统上；慢慢松开颈总动脉夹，描记正常血压曲线。 5、打开电脑，点击桌面上的BL-410图标，进入血压实验系统。先描记一段正常血压曲线，然后依次由耳缘静脉注射下列药物。观察给药后所引起的血压变化。待血压恢复原水平或平稳后，再给下一药物。每次给药后再立即推入生理盐水2ml,以将余药冲入静脉内。
家兔动脉血压调节实 验
一、家兔动脉血压调节 （一）实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 （二）实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心房收缩力减弱，房室传导减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经，绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时使血管收缩，外周阻力增加。同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用，调节心血管的活动，改变心输出量和外用阻力，从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α，对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血压升高，可反射性地引起心动过缓。 （三）实验材料 1.实验对象：兔。
2.器材：四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器（lml、5ml、 20ml），有色丝线、纱布、棉花、1％戊巴比妥钠、1：1000肝素、1：10000去甲肾上腺素、12．5U/ml肝素生理盐水，生理盐水。 （四）实验方法 1.实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连（图6－18）。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标，校正选择开关拨至 13.3kPa（100mmHg），灵敏度置于50，记录描笔上移2cm。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，并预先加压至 13.3kPa，检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档，计时置 10s，走纸速度 0.5～lmm／s。 2.手术 动物的麻醉与固定：用l％戊巴比妥钠以30～35mg／kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后，背位固定于手术台上。 气管插管：剪去颈部的毛，沿颈正中线作5～7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉，暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方2～3cm处作”“⊥”形切口，插入气管，以丝线结扎固定。
JIANGSU
UNIVERSITY
药 理 学 实 验 报 告
学院 班级 姓名 学号 时间 2012.05.08
江
苏
实 验
大
报
学
告
班级 学号 时间
学院 药学院 姓名 天气 多 云 实验时间 2012.04.25 13：00——17：00
4h
实验五
一、实验目的
药物对兔血压的作用实验
观察肾上腺素(adrenaline)、去甲肾上腺素(noradrenaline)、异丙肾上腺素和乙 酰胆碱(isoprenaline)和乙酰胆碱(acetylcholine)等药物对兔血压的作用，并以阻断 药为工具分析各药对受体的作用。
二、实验原理
血压形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素相关，通过神经-体液调 节机制维持正常血压。传出神经是一大类药物，或拟似神经递质，或拮抗神经递质，通 过激动或阻断分布于心血管上的肾上腺素受体或胆碱受体， 影响心肌收缩性、 血管舒张 度，从而升高或降低血压。
三、实验材料
1、实验动物：健康兔子一只 2、 实验试剂： 200g/l 的氨基甲酸乙酯(urethane)， 1000U/ml 肝素钠(sodium heparin)， 0.02g/L 盐酸肾上腺素(adrenaline hydrochloride)，0.02g/L 重酒石酸去甲肾上腺 素（noradrenaline bitartrate),0.02g/L 硫酸异丙肾上腺素(isoprenaline sulfate)，10g/L 酚妥拉明(phentolamine)，2.5g/L 盐酸普萘洛尔（propranolol hydrochloride）0.01g/L 氯化乙酰胆碱（acetylcholine chloride）,1g/L 硫酸阿托品 （atropine sulfate）10g/L 阿托品（atropine） ，生理盐水 3、实验设备：兔箱，兔台，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，静脉夹， 眼科剪，压力换能器，动脉夹，传感器，记录电极
实验六：家兔动脉血压的神经体液调节 影响尿生成的因素 【实验目的】 1. 间接观察心血管活动的神经体液性调节 2. 学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法 3. 学习用膀胱插管法记录尿量的方法 4. 观察与分析几种因素对尿生成的影响 【实验原理】 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经体液因素的调节而实现的。参与支配心血管活动的神经主要有心交感神经和副交感神经。体液因素主要为肾上腺素和去甲肾上腺素。他们的作用主要是通过对心脏收缩力、心率、房室传导速度、心输出量、外周阻力等的调节来实现的。 尿的生成过程包括三个相互联系的环节： 肾小球的滤过：血浆中除了红细胞和绝大部分血浆蛋白以外的成分，都从肾小球滤过而到达肾小囊的囊腔，形成原尿。 肾小管与集合管的重吸收：原尿进入肾小管，经过肾小管、集合管的重吸收处理，约99％的水分及Na+、K+和葡萄糖等成分被重洗手回血液中。 肾小管和集合管的分泌：在重吸收的同时，肾小管与集合管还能通过分泌活动，使某些血浆成分清除到管腔中，最后从尿中流出。 凡能影响这三个过程的神经体液等因素，都可影响尿的生成，引起尿量的变化。 【实验材料和器材】 仪器：兔手术台，生理记录仪，压力传感器，保护电极。 器材：哺乳动物手术器械，铁支架，双凹夹，气管插管，动脉夹，动脉插管，止血钳，注射器，棉线，纱布，棉花。 材料：家兔。 试剂：25％乌拉坦，1：10000肾上腺素，12.5U/ml肝素生理盐水，生理盐水（台式液）【实验步骤】 1. 连通液导系统 将压力传感器的一侧支管，通过输液管连接动脉插管。用装有20mL12.5U/ml肝素的注射器向另一侧支管内推注，使整个液导系统充满液体后，用止血钳夹住推注肝素端的侧管。 注意：液导系统内不可有气泡。 2. 动物的麻醉与固定 取一只动物，称重，2.3kg。用25％乌拉坦以4 mL/kg体重的剂量，由耳缘静脉远端缓慢注入，共注入约8ml的药量。动物麻醉后背位固定于兔手术台上。
麻醉药物对家兔动脉血压的影响 【实验目的】 本实验采用直接测量和记录动脉血压的急性实验方法，观察麻醉药物对家兔动脉血压影响。 【实验原理】 在生理情况下，人和其它哺乳动物的血压处于相对稳定状态，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦－主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可在血压升高时降压，又可在血压降低时升压，反射的传入神经为主动脉神经与窦神经。家兔的主动脉神经为独立的一条神经，也称减压神经，易于分离和观察其作用。在人、犬等动物，主动脉神经与迷走神经混为一条，不能分离。 本实验应用液压传递系统直接测定动脉血压。即由动脉插管、测压管道及压力换能器相互连通，其内充满抗凝液体，构成液压传递系统。将动脉套管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过密闭的液压传递系统传递压力，通过压力换能器将压力变化转换为电信号，用微机生物信号采集处理系统记录动脉血压变化曲线。 【实验对象】 家兔 【实验器材和药品】 哺乳动物手术器械一套，刺激器，动脉插管，压力换能器，生物机能实验系统，25%氨基甲酸乙酯，普鲁卡因，1000U/ml的肝素。 【实验步骤】 1．手术 （1）家兔称重后，氨基甲酸乙酯按1ml/kg体重的剂量于耳缘静脉注射麻醉。注意麻醉剂不能过量，注射速度不宜过快。 （2）动物仰卧固定缚于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳钩住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。 （3）暴露颈部气管、颈总动脉和减压神经。用玻璃分针仔细分离右侧减压神经，穿细线。分离两侧颈总动脉，穿线备用。 （4）给动物静脉注射肝素，剂量为1000U/kg体重。等1分钟后再进行下一步骤，以使肝素在体内血液中混合均匀。