当前位置:文档之家› 家兔动脉血压的测定以及神经体液调节

家兔动脉血压的测定以及神经体液调节

家兔动脉血压的测定以及神经体液调节
家兔动脉血压的测定以及神经体液调节

家兔动脉血压的测定以及神经体液调节

一:实验目的

1、学习直接测定家兔动脉血压的急性试验方法

2、观察神经、体液因素对心血管活动的调节

二:实验原理

1、动脉血压是动脉内的血液对动脉管壁的侧压力,动脉血压的形成,决定于心输出量和外周阻力两方面的因素。在每一心动周期中,心脏收缩时,动脉血压升高,所达到的最高值称为收缩压,心脏舒张时,动脉血压下降,所达到的最低值称为舒张压。影响动脉血压的因素有:每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉和大动脉的弹性、循环血量与血管系统容量的比例。

2、在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的,这种相对稳定是通过神经和体液因素对心血管活动的调节实现的。

机体对心血管活动的神经调节是通过各种心血管反射实现的。心脏接受心交感神经和心迷走神经的双重支配,前者使心脏好活动增强,后者使心脏活动受到抑制。能引起血管平滑肌收缩和舒张的神经纤维,分别称为缩血管神经纤维和舒血管神经纤维。交感缩血管神经纤维的节后纤维末梢释放去甲肾上腺素(NE),作用于血管平滑肌的α肾上腺素能受体和β肾上腺素能受体,分别引起血管平滑肌的收缩和舒张,但NE与α受体的结合能力比与β受体的结合能力强,因此交感缩血管神经纤维兴奋是,主要引起缩血管效应,提高外周阻力而升高血压。舒血管神经纤维主要有交感舒血管神经纤维、副交感舒血管神经纤维、脊髓背根舒血管神经纤维以及血管活性肠肽神经元。

在各种心血管反射中,颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射通常被认为是最重要的一种反射,属于负反馈机制,在心输出量、外周压力、血量发生突然变化时,对动脉血压的快速调节起重要作用,使血压不致发生剧烈波动,从而维持血压的相对稳定。压力感受器位于颈动脉窦和主动脉弓血管外膜下的感觉神经末梢,能感受动脉血压对血管壁的牵张刺激,家兔的主动脉弓传入神经在颈部自成一束称为主动脉神经或降压神经。当动脉血压升高时,感受器受到牵张刺激发放频率增多,经过中枢联系机制,使得迷走神经活动增强,交感神经活动减弱,导致心率减慢、心输出量减少、外周阻力降低,故而动脉血压下降。

颈动脉体和主动脉体化学感受性反射:颈动脉体和主动脉体化学感受器可感受动脉血中氧分压下降、CO2分压上升和H+浓度过高等化学成分的变化。化学感受性反射可通过引起呼吸加深加快,反射性的引起心率加快,以及通过增加肾上腺素髓质分泌儿茶酚胺引起血管收缩,增加外周阻力而使血压升高。

心血管活动的体液调节是指血液和组织液中的某些化学物质,对心血管活动所产生的调节作用。肾素—血管紧张素系统是调节动脉血压和细胞外液量稳态的一个重要调节系统,在大量失血的情况下由于血压显著下降,肾血流减少,其活动加强,从而防止血压过度下降。肾上腺素主要表现为对心脏的兴奋性作用,临床上常用作强心药;去甲肾上腺素在临床上主要用做升压药。另外,血管内皮细胞释放的某些活性物质,如NO、内皮素等,以及心房肌细胞合成释放的心房钠尿肽等等都对心血管活动产生重要作用。

三:实验器材

1、材料及器械:家兔、兔手术台、常用手术器械、止血钳(4~6把)、眼科剪、三通插管、动脉插管、动脉夹、注射器信号采集系统,刺激系统、棉花、棉线等

2、试剂:20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、肝素

四:实验步骤及结果

1、实验仪器的准备打开计算机采集系统,接通压力传感器,从“实验项目”

中选择“循环实验”的“家兔血压的调节”,使图线显示为压力读数。连接好血压测定的液导系统,根据水银测压计对信号采集系统进行校正。

2、实验动物的准备按照上一次实验“家兔大脑皮层运动区的刺激效应及去大脑僵直的观察”中的处理方法,对家兔进行麻醉,进行颈部手术、插入器官插管、分离颈总动脉和迷走神经、主动脉神经和交感神经并穿线备用。

3、动脉插管先用注射器吸1~2ml生理盐水,再吸1.5ml左右的肝素进行混匀,从耳缘静脉注射以防止凝血,再在一侧进行插管手术以记录血压。具体方法如下:将动脉头端(远心端)的备用线尽可能靠近头端扎紧,然后在近心端用动脉夹夹闭(动脉夹必须缠以胶带)。用眼科剪在靠近结扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁,一手持弯头眼科镊将其一个弯头从剪口处插进动脉少许,轻轻撑开血管壁少许,将插管由开口处插入动脉管内。用备用线将动脉连同进入的插管扎紧并将余线系在插管的固定侧支上以免滑脱。取下近心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合。

4、实验观察

(1)观察正常血压曲线:调节扫描速度与增益,可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。有时可以观察到血压曲线随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。然后将扫描速度调慢,观察正常血压曲线。如下图2所示:

图2:正常血压曲线

此时观察到的血压波动的收缩压为100左右,舒张压为80左右,因为插管处有漏血,因此认为可能会影响到血压的值,若不漏血,观察到的血压总体应该更高。

(2)刺激主动脉神经(减压神经):使刺激输出端连接保护电极,轻轻提起主动脉神经上的备用线,小心地将神经置于保护电极之上。记录对照血压曲线后,再用中等强度的连续电脉冲信号通过保护电极刺激神经10-20s。血压出现明显下降后即可停止刺激,并待血压恢复。如果血压并不下降,可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。任何刺激都无效时,则表示此神经可能并非主动脉神经,或主动脉神经已经已经受损,失去其生理活性。

(3)分别刺激主动脉神经的中枢端和外周端:双结扎主动脉神经后(务必扎紧),从两线结扎中间剪断神经。记录对照血压后,同法分别刺激神经的中枢端和外周

端,观察并记录血压变化。

刺激颈部主动脉神经没有引起任何反应,进一步分离神经上的肌肉以及结缔组织等其他影响神经活性的物质后刺激神经,仍然没有明显的变化,血压一直稳定。

理论上,兔子的减压神经是传入神经,其作用是将主动脉弓压力感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢,反射性地引起血压降低,当用中等强度的电流连续刺激减压神经中枢端时,传入中枢的冲动增加,导致血压明显下降。本实验刺激没有引起反应的原因可能是:减压神经非常细,在分离的时候受到了损伤,生理活性受损,神经冲动的传导受到阻断。

(4)刺激迷走神经:记录对照血压后,用同样的方法刺激迷走神经,观察血压曲线如何变化(如果血压下降很快,很低,应立即停止刺激)。

图3:刺激迷走神经的反应

如上图3所示,刺激迷走神经后,血压迅速下降,且频率变慢,说明迷走神经具有减压以及降低心脏活动的作用。迷走神经中含从延髓下行的传出纤维,通向心脏。节前纤维末端和节后纤维末端都释放Ach,节后纤维末梢释放的Ach能与心肌细胞膜上的M型胆碱能受体结合,使心肌细胞膜对K+的通透性升高,促进K+外流,抑制Ca2+内流结果使心肌细胞的兴奋性降低,心率减慢,心房收缩力减弱,传导性减弱,从而使心输出量变小,平均动脉压降低。停止刺激后,血压渐渐恢复到初始值。

(5)分别刺激迷走神经中枢端和外周端:结扎并剪断迷走神经,方法同(3),分别刺激其外周端和中枢端,并观察并记录血压变化有何不同。如下图4,5所

示:

图4:刺激迷走神经中枢端对血压的影响

图5:刺激迷走神经外周端对血压的影响

刺激迷走神经的外周端能够引起减压反射,原因同上。

刺激迷走神经的中枢端也能产生减压反射,但是血压下降的幅度小于刺激外周端血压下降的幅度。查阅资料得知:主动脉体化学感受器的上行传入神经纤维在迷走神经中并行,化学感受器受到刺激后的效应是使血压升高。当剪断迷走神经后,刺激迷走神经的中枢端,化学感受器的传入神经将兴奋传入延髓孤束核,会引起血压升高,这能够在一定程度上减少刺激迷走神经引起的血压下降。(6)同样地,刺激交感神经,以及交感神经的中枢端和外周端,记录血压的变化。刺激没有引起动脉血压明显变化,原因可能是:交感神经节后神经元末梢释放的递质为去甲肾上腺素,它与心肌细胞膜上相应的肾上腺素能受体(β1受体)结合,从而激活腺苷酸活化酶,使细胞内的cAMP浓度升高,继而激活蛋白激酶和细胞内蛋白质的磷酸化过程,使心肌膜上的钙通道激活,结果是使心率加快,心肌收缩力增强。然而从神经递质的释放到细胞内一系列酶的激活,再到引起心脏活动的变化需要的时间相对较长,所以在电刺激交感神经后一小段时间内,并不能观察到动脉血压的变化。

(7)按压颈动脉窦:记录对照血压曲线后,用手指按压颈动脉窦(下颌下方内侧),观察并记录血压变化。当血压明显下降时,则停止按压,待血压恢复(如

果血压反而升高,说明按压的是血管,需要重新寻找按压位置)。

按压颈动脉窦后,颈动脉窦压力感受器感受到压力的上升,并引起减压反射,致使血压降低,如下图6所示:

图6:按压颈动脉窦后血压的变化

血压由正常值(80,100)降到舒张压60以下,收缩压80以下,说明在外界压力刺激颈动脉窦压力感受器的情况下,产生了减压反射。不再按压后血压逐渐恢复正常值,即收缩压约100,舒张压为80左右的情况。

理论依据:压力感受器位于颈动脉窦和主动脉弓血管外膜下的感觉神经末梢,能感受动脉血压对血管壁的牵张刺激。当按压颈动脉窦时,感受器受到牵张刺激,发放频率增多,经过中枢联系机制,使得迷走神经活动增强,交感神经活动减弱,导致心率减慢、心输出量减少、外周阻力降低,故而动脉血压下降。

(8)夹闭对侧颈总动脉:轻轻提起完好颈总动脉上的备用线,用动脉夹夹闭(于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线),观察并记录血压变化,出现变化后即取下动脉夹,记录血压的恢复过程。

刺激后血压升高,变化如下图7所示。血压渐渐升高到收缩压120,舒张压100左右。机制:扎住一侧颈总动脉后,血流外周阻力增大,颈动脉窦中的血流量减少,其压力感受器受到的刺激明显较少,引起增压反射,迷走紧张减弱,对心脏的抑制作用减小,交感紧张加强,心跳加快加强,心输出量增多;同时,缩血管交感神经纤维传出冲动增多,引起小动脉收缩,外周阻力增大,导致家兔的血压升高。由于扎住颈总动脉后,并没有松开,因此血压恢复稳定后,仍然高于最初血压一定程度,在接下来的实验中,初压一定程度受到这一影响。

图7:扎住颈总动脉后血压的变化

(9)O2含量的减少:将三通插管通气口封住一段时间,观察并记录血压变化。当血压明显上升时,则打开通气口,并记录血压的恢复过程。如下图8所示:阻塞呼吸后,血压有所增高,并且出现了血压周期性的变化,分析原因是在抑制了家兔的呼吸后(堵住三通管),动脉血中氧分压下降,二氧化碳分压上升,刺

激颈动脉体和主动脉体中的化学感受器,化学感受器反射性的引起心率加快,以及通过增加肾上腺素髓质分泌儿茶酚胺引起血管收缩,增加外周阻力而使血压升高。由于三通管被堵住,兔子加大了对鼻腔呼吸的利用,由于呼吸困难,呼吸的节律性加强,兔子呼吸时胸腔的扩大与缩小引起血压呈现与呼吸节律一致的周期性的变化。

含量的减少时血压的变化

图8:O

2

(10)耳缘静脉向家兔注入20ml左右的生理盐水,观察血压的变化过程。如图9所示:

图9:注射生理盐水后血压的变化

注射生理盐水后血压有一定程度的升高,过一段时间后血压下降。注射生理盐水后,血管内液体体积增加,因此血压有一定程度的上升,通过压力感受器引起减压反射,最终使血压恢复到平衡水平。

五:注意事项

1、注意保持分离出来的神经的活性,不要暴露在空气中干燥太久或浸于血液中,

要及时滴加生理盐水,保持其活性。

2、进行每一刺激项目后,须待血压恢复正常或者平稳后方可进行下一项的观察。

3、在整个实验过程中要保持动脉插管与动脉方向一致,以防止刺破血管或引起

压力传导障碍而影响血压的记录。

4、实验中要保持导管通畅并为兔子保温。

机能综合实验报告——动脉血压调节

一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克(一) 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔(新西兰大白兔),2.5公斤,雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套,计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置,带三通针头的细塑料管2个,注射器若干,20%乌拉坦,0.3%肝素,去甲肾上腺素针剂,0.02g/L 肾上腺素,0.03g/L去甲肾上腺素,0.01g/L异丙肾上腺素,5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台,颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉,沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口,分离气管,再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经,穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明:给药体积均为0.2ml/kg;每次给药后可住生理盐水,将死腔内的药液注入静脉; 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 (1)夹闭一侧颈总动脉 (2)刺激一侧减压神经,双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端

(3)结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素

4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素

家兔血压调节实验报告解读

实验报告 专业班级:康复治疗技术2班实验小组:第四组姓名:卢锦锟实验日期:2015年11月10日 (一)实验项目:家兔动脉血压调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理:(要求对写出关键点) 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定,动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化,间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL 、1mL )等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品

1、夹闭颈总动脉血压升高,心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大,因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合,骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用,因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强,因此心率加快,传导加速,心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体,使动腹腔内脏血管收缩,血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明:α受体阻断剂,α受体的作用:α受体为传出神经系统的受体,根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管,以及部分内脏血管,激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌,激动时瞳孔开大肌收缩,瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上,受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少,对其产生负反馈调节作用。 (四)实验主要设备和仪器、药品和用品(要求分类、简洁、清晰表述)

生理学实验 家兔动脉血压的调节

实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法,观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强,传导加速,从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经,兴奋时心率减慢,心脏收缩力减弱, 传导速度减慢,从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经,兴奋时血管收缩,外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩,促进静脉回流,心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动,改变心输出量和外周阻力,从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外,还受体液因素的调节,其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性,又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用,使心跳加快,收缩力加强,传导加快,心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体,对β受体作用很小,因而使外周阻力 增加,动脉血压增加,其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时,血 压升高,启动减压反射,可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械,兔手术台,BL-410 生物信号采集处理系统,压力换能器,刺激 电极,照明灯,万能支台,双凹夹,烧瓶夹,试管夹,气管插管,动脉夹,三通开关,动脉 导管,注射器(1ml、5ml、20ml),有色丝线,纱布,棉花,1.5%戊巴比妥钠,1000U/ml 肝 素生理盐水,1:10000 肾上腺素溶液,1:10000 去甲肾上腺素溶液,1:10000 乙酰胆碱溶液, 生理盐水。 【实验步骤】 1.连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2.手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5%戊巴比妥钠以 2.0ml/kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后,仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛,沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉, 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线,于甲状软骨下方 2~3cm处作“⊥”形切口,插入 气管插管,以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中,迷走神经最粗,交感神经次之,减压神经最细,常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉,并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U/kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 (一)实验项目:家兔动脉血压的神经体液调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理: 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定,动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化,间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、

0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品 1、夹闭颈总动脉血压升高,心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大,因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合,骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用,因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强,因此心率加快,传导加速,心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α 1受体,使动腹腔内脏血管收缩,血压升高。

家兔动脉血压

实验十家兔动脉血压的神经与体液调节 一、实验目的 1.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2.观察神经,体液因素对心血管活动的影响 二、基本原理 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用。 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来。 三、动物与器材 1.实验动物:家兔 2.实验器材:兔体手术台、手术器械、止血钳、玻璃分针、棉线、棉签、塑料绳、动脉夹、动脉插管、Y型气管插管、液导系统、压力传感器、PowerLab信号采集系统、保护刺激电极、注射器。 3.实验试剂:生理盐水、2%戊巴比妥钠、4%柠檬酸钠溶液、肝素溶液(200U/Kg) 、肾上腺素(1:5000)、尼可刹米。 四、实验方法与步骤 1.家兔麻醉: 称重→麻醉:2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射→固定:仰卧位固定。 2.气管插管术: 剪毛、中线剪开颈部皮肤(6~7cm)→钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管→气管穿线、软骨环上做T形切口→棉签去气管中的血块→插气管插管,结扎。 3.分离血管、神经 a.分离主动神经(减压神经),穿2条线备用 b.分离迷走神经,穿2条线备用 c.分离同侧的颈总动脉,穿1线备用 d.分离对侧颈总动脉,穿2线备用 4.动脉插管 全身抗凝:静脉注射肝素,注射剂量:300单位/kg(1ml/kg)

家兔动脉血压的神经体液调节(动静脉)

家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材:手术台,止血钳,眼科剪,BL420E+生物机能分析系统,气管插管,动脉套管,动脉夹,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器 试剂:生理盐水,肝素,乌来糖(麻醉剂),肾上腺素,乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 (1)麻醉取家兔一只,称重,耳缘静脉注射麻醉剂(1g/kg)进行麻醉。麻醉过程要缓慢,当动物角膜反应迟钝,掐其大腿无反应,即可停止注射,避免过度麻醉致死。 (2)将动物背位交叉固定,将颈部喉结下部毛剪掉。 (3)仅靠喉结下缘,沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口,将皮下结缔组织钝性分离,至露出气管,穿线,用手术刀在气管上做一横切口,插入气管插管,结扎。 (4)分离颈部神经血管:分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织,在接近气管外侧,有一条较细,壁厚的血管,即为主动脉血管(可看出里面血流规律性搏动)。与主动脉伴行的有两条较粗的神经,最粗的为迷走神经,其次为交感神经,两者之间有一条很细的神经,减压神经。但减压神经的位置不固定,两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经,可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后,分离出减压神经,迷走神经,主动脉血管,分别穿线备用。 (5)动脉套管插入:动脉套管插入前,需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管,至将其中所有空气由插孔处排出,用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后,用动脉夹夹住近心端,远心端动脉结扎,在两者之间剪一小口,迅速插入动脉套管(动作迅速,否则动脉管腔急剧收缩,难以插入套管),用线将动脉插管固定于动脉内,并挂在套管(缠一圈胶布)上,以免滑脱。 (6)松开动脉夹,即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验,记录曲线。 2.曲线描记 (1)描记一段正常曲线,识别一级波(心波),二级波(呼吸波)。 (2)提起另一侧颈总动脉的备用线,动脉夹夹闭5-10s,观察记录血压变化,分析原因。(3)中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经,观察血压变化。双结扎后切断,再刺激减压神经神经的中枢端和外周端,观察记录血压变化。 (4)对另一侧迷走神经进行同样处理,分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。(5)耳缘静脉注射肾上腺素,观察血压变化。 (6)耳缘静脉注射乙酰胆碱,观察血压变化。

兔子实验报告

生理兔子实验报告 主题:血压测量、呼吸运动调节 实验班级:151541 实验小组:第三组 实验日期:2016年5月31日 具体分工:主刀:李睿哲 副手:朱梦洁、周紫星 麻醉:陈海芹、谢明思 器械管理:李部 实验数据记录整理:毕长鹏 一、实验目的: 通过对兔子的观察、研究和分析,更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程,更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理: 正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要,动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化情况,可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行,并与机体代谢水平相适

应,主要是由于体内外各种刺激,可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢,反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材: 实验动物:一只健康兔子( 实验试剂:20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备:兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统,通道1接通压力换能器,通道2接通呼吸流量换能器,从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的(学生)实验”,使显示器显示压力和呼吸的读数,并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水,使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备

家兔动脉血压的神经体液调节实验报告

家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管

内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 (1)按照实验4-9方法,麻醉家兔并进行颈部手术,插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过,轻轻张开止血钳,分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁,外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线,分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管侧压,另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同,个体之间也有差异,常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认,蓄意对血压的影响为准。 (2)动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素(200U?kg体重)以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下:将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧,以防渗血),然后在另一备用线的向心侧(尽可能近心端),用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线,用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁(注意:不可只剪开血管外膜,也切勿剪断整个动脉,剪口大小约为管径的一半)。一手持弯头眼科镊,将其一个弯头从剪口处插进动脉少许,轻轻挑起剪开的动脉上壁,另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅,可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁,另一手拿住动脉插管,顺势轻轻推进至6~8mm左右(如果手感滞涩,说明插管并未进入动脉,必须退出插管,重新剪口再插),用备用线将动脉连同进入的插管扎紧(插管不可因扎线松动而滑出,亦不可漏液),并将余线系在插管的固定侧支上,以免滑脱。注意:插管应与动脉血管的方向一致,以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳,此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察

家兔血压实验报告-家兔血压实验报告结论

家兔血压实验报告 篇一:4.兔血压实验报告 实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号:2012021320 一、实验原理: 1. 传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应,导致血压变化。 2. 本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤: 1. 麻醉:取家兔,称重,用25%乌

拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素/kg, 10min

去甲肾上腺素/kg, 10min 异丙肾上腺素/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明/kg, 5min 肾上腺素/kg, 5min 去甲肾上腺素/kg, 5min 异丙肾上腺素/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药 普萘洛尔/kg, 5min 肾上腺素/kg, 5min 去甲肾上腺素/kg, 5min 异丙肾上腺素/kg, 10min 四、实验结果: 1. 正常心率和血压:260次/分,115mmHg。 2. 拟肾上腺素药对血压和心率的影响(第七步给药后) 对血压的影响:(上图) 对心率的影响: 肾上腺素:加快 去甲肾上腺素:减慢 异丙肾上腺素:加快(比肾上腺素

家兔动脉血压的调节(新)教学内容

实验日期:2015年12月16日 带教教师:米鍇 小组成员:彭佳杏(201402534)钟佳冀(201401197),陈靖珊(201401328),周丹婷(201401370),郭碧润(201401385) 专业班级:2014级临床十三大班,临床法语班 家兔动脉血压的调节 一、实验目的 1.掌握心血管活动调节的神经、体液机制 2.进一步熟悉家兔颈部解剖结构、学习直接测定家兔动脉血压的急 性实验的方法。 3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 二、实验原理 在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种

相对稳定性是通过神经调节,体液调节和自身调节来实现的。神经调节主要通过颈动脉窦主动脉弓压力感受性反射来实现。原理如下图。 体液调节包括肾素血管紧张素系统,肾上腺素和去甲肾上腺素(主要),血管升压素。 心血管活动的变化可以通过血压的变化间接加以判断。血压的变化可通过血压换能器和Mdelab 系统记录并处理,得出结果。 二、 实验仪器设备 生物信号采集系统,兔手术台,兔手术器械、塑料动脉插管及三通开关、动脉夹、注射器、双凹夹、铁支架、保护电极、丝线、 1 mg/Kg 的肝素钠注射液、乌拉坦溶液、去甲肾上腺素、眼科剪

四、实验方法与步骤 1、称重、麻醉、固定、剪毛 2、颈部手术 1)气管插管 2)分离右侧减压神经(穿2根线备用)、交感神经、迷走神经(穿1 根线备用)、颈总动脉(穿1根线备用) 注意:减压神经、交感神经、迷走神经、颈总动脉位于气管两旁深层肌肉内的血管神经鞘内。 按先神经后血管,先细后粗的顺序分离 按减压神经、交感神经、迷走神经的顺序分离神经,穿线,末端打结备用。 3)分离左侧颈总动脉(穿2根线打结备用),1mg/Kg 的肝素钠注射 液全身抗凝,做颈总动脉插管,连接血压换能器 颈总动脉插管: 血管游离2以上(注意避开分支),穿2根线备用 远心端(头端结扎) 近心端用动脉夹夹闭动脉(留出一定的操作空间)靠近结扎点(头端)于血管前壁做V型切口 插入动脉插管固定 轻轻松开动脉夹(先不要拿开),观察是否渗血,结扎是否紧 换能器用胶布粘在桌子上,专人照看 五、实验结果

4.兔血压实验报告

实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号:2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应, 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心 端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验 系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果: 1.正常心率和血压:260次/分,115mmHg。

家兔呼吸运动神经的调节(实验报告)

家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作,掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit),雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统,呼吸换能器(pressure-gradient transducer) 1.3 药品试剂20%乌来糖(urethane),12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate),5%碳酸氢钠(Sodium bicarbonate),N2,CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重,按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔,家兔麻醉后将其仰卧,固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5~7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用,用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管,结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。

5观察记录(observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液,注射速度5-6 ml/min,观察家兔呼吸运动的变化。10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量,按4 ml/min速度静脉注射,观察呼吸变化。10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线

家兔血压实验报告

家兔血压实验报告文件排版存档编号:[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]

家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器

家兔动脉血压调节实验讲课教案

家兔动脉血压调节实 验

一、家兔动脉血压调节 (一)实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 (二)实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经,兴奋时心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,兴奋时使血管收缩,外周阻力增加。同时由于容量血管收缩,促进静脉回流,心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用,调节心血管的活动,改变心输出量和外用阻力,从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外,还受体液因素的调节,其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性,又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用,使心跳加快,收缩力加强,传导加快,心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α,对β受体作用很小,因而使外周阻力增加,动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时,血压升高,可反射性地引起心动过缓。 (三)实验材料 1.实验对象:兔。

2.器材:四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器(lml、5ml、 20ml),有色丝线、纱布、棉花、1%戊巴比妥钠、1:1000肝素、1:10000去甲肾上腺素、12.5U/ml肝素生理盐水,生理盐水。 (四)实验方法 1.实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连(图6-18)。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标,校正选择开关拨至 13.3kPa(100mmHg),灵敏度置于50,记录描笔上移2cm。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,并预先加压至 13.3kPa,检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档,计时置 10s,走纸速度 0.5~lmm/s。 2.手术 动物的麻醉与固定:用l%戊巴比妥钠以30~35mg/kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后,背位固定于手术台上。 气管插管:剪去颈部的毛,沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉,暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线,于甲状软骨下方2~3cm处作”“⊥”形切口,插入气管,以丝线结扎固定。

兔血压实验报告

实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号: 2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应,导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,

正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药

【实验报告】家兔动脉血压的神经体液调节-影响尿生成的因素

实验六:家兔动脉血压的神经体液调节 影响尿生成的因素 【实验目的】 1. 间接观察心血管活动的神经体液性调节 2. 学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法 3. 学习用膀胱插管法记录尿量的方法 4. 观察与分析几种因素对尿生成的影响 【实验原理】 在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经体液因素的调节而实现的。参与支配心血管活动的神经主要有心交感神经和副交感神经。体液因素主要为肾上腺素和去甲肾上腺素。他们的作用主要是通过对心脏收缩力、心率、房室传导速度、心输出量、外周阻力等的调节来实现的。 尿的生成过程包括三个相互联系的环节: 肾小球的滤过:血浆中除了红细胞和绝大部分血浆蛋白以外的成分,都从肾小球滤过而到达肾小囊的囊腔,形成原尿。 肾小管与集合管的重吸收:原尿进入肾小管,经过肾小管、集合管的重吸收处理,约99%的水分及Na+、K+和葡萄糖等成分被重洗手回血液中。 肾小管和集合管的分泌:在重吸收的同时,肾小管与集合管还能通过分泌活动,使某些血浆成分清除到管腔中,最后从尿中流出。 凡能影响这三个过程的神经体液等因素,都可影响尿的生成,引起尿量的变化。 【实验材料和器材】 仪器:兔手术台,生理记录仪,压力传感器,保护电极。 器材:哺乳动物手术器械,铁支架,双凹夹,气管插管,动脉夹,动脉插管,止血钳,注射器,棉线,纱布,棉花。 材料:家兔。 试剂:25%乌拉坦,1:10000肾上腺素,12.5U/ml肝素生理盐水,生理盐水(台式液)【实验步骤】 1. 连通液导系统 将压力传感器的一侧支管,通过输液管连接动脉插管。用装有20mL12.5U/ml肝素的注射器向另一侧支管内推注,使整个液导系统充满液体后,用止血钳夹住推注肝素端的侧管。 注意:液导系统内不可有气泡。 2. 动物的麻醉与固定 取一只动物,称重,2.3kg。用25%乌拉坦以4 mL/kg体重的剂量,由耳缘静脉远端缓慢注入,共注入约8ml的药量。动物麻醉后背位固定于兔手术台上。

家兔动脉血压调节

不同因素对家兔动脉血压的影响 摘要:目的掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法,以及家兔动脉血压的体液因素(去甲肾上腺素、乙酰胆碱)与神经因素(迷走神经及主动脉神经)对心血管活动的影响。方法运用动脉插管的方法,分别静脉注射NE和Ach、改变血容量、电刺激迷走神经和主动脉神经的中枢端及外周端,并用生物信号采集处理系统RM6240记录家兔动脉血压的变化情况。结果加入NE后,平均动脉压升高,心率减慢;加入Ach后,心率变慢,平均动脉压下降;突然夹闭一侧颈总动脉后,观察到兔动脉血压升高,突然松开后,血压下降,回复到正常水平;刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降,而刺激该神经外周端基本不变;刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应,而刺激迷走中枢端则没有减压反应,只是血压稍有抬升变化。结论体液因素与神经因素最终都通过产生与α受体β受体以及Μ受体的作用产生对心血管活动的影响,NE能使血压上升;Ach,刺激迷走和减压神经能使血压下降;同时证明减压神经是传入神经,迷走神经是传出神经。 关键词家兔;动脉血压;动脉插管;NE;Ach;迷走神经;主动脉神经 1.材料与方法 1.1.实验对象:家兔; 1.2.实验仪器:RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,眼科剪1把,止血钳,镊子,电 刺激连线,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,铁架台,婴儿秤,输液装置,照明灯,有色丝线,纱布; 1.3.实验药品和试剂:20%氨基甲酸乙酯,1000 U/mL肝素,0.1g/L去甲肾上腺素,0.01g/L 乙酰胆碱,生理盐水; 1.4.实验方法 1.4.1.动物准备: 1.4.1.1.麻醉固定:家兔称重后,按5ml/kg体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯。待 兔麻醉后,将其仰卧放置于兔台上,先后固定四肢及兔头。 1.4.1. 2.手术:用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开颈部皮肤5~7cm,钝性分离颈部肌肉暴露 颈部气管和血管神经鞘,用玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经和迷走神经,穿细线 备用,用玻璃分针分离两侧颈总动脉,各穿一线备用。 1.4.1.3.动脉插管:在左颈总动脉中枢端结扎,外周端用动脉夹夹住,并在动脉下端预先穿 以细线备用。用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型切口,将动脉插管向 心方向插入颈总动脉内,扎紧固定。打开动脉夹。 1.4. 2.实验装置与连接: 1.4. 2.1.将压力换能器固定于铁支架上,使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平 面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。压力换能器的另一 端与三通管相连。三通管的一个接头与动脉插管相连。在将动脉插管插入左颈总动 脉前,先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连,旋动三通管上的开关,使动 脉插管与注射器相通,推动注射器,排空动脉插管中的气体,使动脉插管内充满肝 素溶液,然后关闭三通管。 1.5.实验观察: 1.5.1.记录正常血压曲线。 1.5.1.1.静脉注射去甲肾上腺素:家兔耳缘静脉注射0.3ml去甲肾上腺素,记录观察血压变 化,待血压曲线显示正常后再进行下一个实验。 1.5.1. 2.静脉注射乙酰胆碱:家兔按0.1ml/mg体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰胆碱,

家兔动脉血压的神经体液调节

华南师范大学实验报告 学生姓名学号 专业生物科学年级、班级11科二 课程名称生理学实验实验时间2014年 5 月 13 日 实验项目家兔动脉血压的神经、体液调节 实验指导老师实验评分 家兔动脉血压的神经、体液调节 室温:22℃左右 实验时间:2014年4月21日 作者:吴婉虹 合作者:陈普俊、陆雪丽、梁伟琪、吴晓丹、许佩珩 一、实验对象和材料 实验对象:家兔 实验试剂:麻醉剂(2%戊巴比妥钠2ml/Kg )、4%柠檬酸钠溶液、肝素溶液 (200U/Kg) 、肾上腺素(1:5000)、生理盐水 实验器具:常规手术器械、止血钳5-7把、剪毛剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针、棉花、滴管、纱布、棉线8条、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳6 条、棉签、注射器、照明灯、保护刺激电极、支架、PowerLab生理 实验系统、动脉插管、动脉夹2个、压力传器感、液导系统 二、实验方法 (一)动物手术过程 1.称重,麻醉(耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠2ml/Kg )、固定(仰式)、剪毛、剪颈部皮 肤6~7cm 2.钝性分离颈部肌肉等组织 3.暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口,事先准备好的棉签将气管中的血块弄出, 插好气管插管并结扎。 4.先分离主动神经(减压神经) 5.然后分离迷走神经,穿2条线备用。 6.分离同侧的右颈总动脉,穿1线备用 7.分离另一侧左颈总动脉,穿2线备用 8.动脉插管连胶管的液导系统检查有无气泡,有则排出,在插管尖端可加肝素。准备好眼 科剪和眼科镊,2个动脉夹、棉线1条 9.动脉插管法:

● 动脉夹夹住左侧颈总动脉靠心端 ● 结扎左侧颈总动脉靠头端,检查分支 ● 在结扎线下方2mm 剪向心1/2切口 ● 用眼科镊插进动脉切口,确定在动脉内,然后挑起动脉上壁,将动脉插管由眼科镊下方 开口处插入动脉内,用备用线扎死动脉和套管并挂住套管上,用另一动脉夹固定结扎部位。 (二)实验观察项目 确认实验装置有无气泡,排除气泡后松开动脉夹,调节通道ch2的放大参数:量程5mV,低通10Hz 1. 记录正常血压曲线,调节“走纸”速度400 2. 夹闭另一侧颈总动脉 3. 按压颈动脉窦位置 4. 刺激主动脉神经:100个脉冲、40Hz 、 2V ,10~20s 5. 双结扎分别刺激主动脉神经中枢端和外周端 6. 刺激迷走神经(注意不可过久):50个脉冲、40Hz 、 2V ,10~20s 7. 双结扎分别刺激迷走神经中枢端和外周端 8. 注射肾上腺素 9. 注射乙酰胆碱 三、实验结果 图1 :家兔正常动脉血压曲线 图1为家兔的正常动脉血压曲线,所观察到的血压波形有一级波和二级波,一级波反应每个心动周期血压的变化,二级波则反映呼吸对血压的影响,每个二级波包含多个一级波。 图2:夹闭一侧颈总动脉对家兔动脉血压的影响文件1 通道2 (m V )-0.5 0.0 0.5 1.0 1 50551:001:051:101:15342002-01-01 5:39:35.078

相关主题
文本预览
相关文档 最新文档