载体与表达系统
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0002--pECFP-C1--BD Co--真核表达--yshu3507
0003--pShuttle--/--/--victoh
0004--pSBR322--/--/--chujun_hust
0005--pcDNA3.1(+)/CAT--invitrogen--真核表达--wangjun2002274 0006--pQEx--Qiagen--原核表达--wangjun2002274
0007--pIVEX2.3--Roche--体外转录翻译--wangjun2002274
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0019--pET20b--Novagen--原核表达--Gmail
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0021--pEGFP/U6 --/--siRNA--songbinn
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0035--pOK12--构建--T-A克隆--intron
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0058--pSFV1--invitrogen--真核表达--syfnet
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0073--pGEMEX-1--Promega--体外转录--palmyard
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0090--PGEX-3x--BD Co--融合型蛋白原核表达载体--kingtsh
0091--PEGFPc2—Clontech--真核GFP
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0096--pSilencer? neo—Ambion--RNAi载体
0097--pSilencer? hygro—Ambion--RNAi载体
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0100--pSUPER.p53—OligoEngine--RNAi载体
0101--palter-ex1--promega
0102--pACYCDuet-1--NOV AGEN
0103--pEX lox(+) Vector—NOV AGEN--原核表达
0104--质粒名称：pBACgus-8 Transfer Plasmid—NOV AGEN--CHUANSUO
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tet-responsive promoter
0109--质粒名称：pbgal-Control—Clontech--mammalian reporter vector 0110-- pGEX-5X-1--原核表达
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0133—pM—Clontech--pM is used to generate a fusion of the GAL4 DNA-BD
0134--pPKCa-EGFP—Clontech
0135--pPKCb-EGFP—Clontec
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0137--pSIREN-DNR-DsRed-Express Vector—Clontech--RNAi
0138--pSIREN-RetroQ—Clontech--RNAi
0139--pIRES-EYFP—Clontech--RNAi
0140--pSRE-Luc—Clontech--RNAi
0141--pTK-neo—novagen--原核表达
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0143--pTandem-1—novagen--原核表达
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0146--pZsGreen1-DR Vector—Clontech--真核表达
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0149--pZsYellow Vector—Clontech --真核表达0150—pTimer—Clontech --真核表达
0151--pTA-Luc—Clontech --真核表达
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0154--pTAL-SEAP—Clontech --真核表达
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0157--pTet-ATF—Clontech --真核表达
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0160--PGEX-1λT--BD Co--融合型蛋白表达载体原核
0161--pBACsurf-1—novagen--原核表达
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0163--pFX-E24.2-15--不详--该载体可用于构建植物突变体库0164--pACYCDuet-1—Novagene--表达载体
0165--pETDuet-1—Novagen--表达载体
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0172--pIRES-hrGFP-2a—Stratagene--真核表达载体0173—pSos—Stratagene--双杂交
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0175-- pSos MAFB--Stratagene--双杂交
0176--pBD_GAL4_Cam—Stratagene--酵母双杂交
0177--SuperCOSI--stragtagene--可以克隆更大的片段
0178--pMD18-T Vector—TaKaRa--T/A cloning
0179--pCAMBIA 1301—CAMBIA--Agrobacterium-mediated and direct transformation
0180--pCAMBIA 1200 –CAMBIA--真核表达
0181--pCAMBIA 1300--CAMBIA--Agrobacterium-mediated and direct transformation
0182--pCAMBIA 1305--CAMBIA--Agrobacterium-mediated and direct transformation
0183-pMCG161 --chromdb--binary vector for producing dominant negative RNAi mutants
0184--pFGC1008--chromdb--binary vector for producing dominant negative RNAi mutants
0185--pLEGFP-C1--逆转录病毒表达载体
0186--pd2EGFP-N1--BD--增强绿色荧光蛋白真核表达载体
0187--p3XFLAG-CMV-10—SIGMA--真核表达
0188--p3XFLAG-CMV-14--SIGMA--真核表达
0189--pET-32a--novagen--原核表达
0189--pET-32a --novagen--—原核表达
0190--pET-39b--novagen--expression of DsbA fusion proteins.
0192--pPIC9K—invitrogen--酵母中表达筛选。
0193--pEGFP-C1--clontech--调控转录,细胞定位
0194--pFastBac HTA--Invitrogen--杆状病毒——昆虫细胞真核表达系统
0195--pFastBac HT CAT--Invitrogen--杆状病毒——昆虫细胞真核表达0196--pSP-luc+ NF Fusion Vector –Promega--遗传报告基因
0197 --pmdlg/prre--tronolab--慢病毒包装
0198--pSG-CMV--Sino-Gene Co.,Ltd--腺病毒重组质粒，基因治疗0199--pSG-TP--Sino-Gene Co.,Ltd--腺病毒重组质粒，基因治疗
0200--pSGCMV-HO(携带血红素加氧酶基因)--Sino-Gene Co.,Ltd--基因治疗
0201--pCMV-Script--Stratagene--真核表达
0202--pLXSN Retroviral Vector逆转录病毒载体--CLONTECH Laboratories, Inc.--逆转录病毒重组质粒，基因治疗
0203--pBind－ID –Promega--Renilla luciferase 报告基因
0204--pACT－MyOD control—Promega--Renilla luciferase 报告基因对照
0205--pBR322--宝生物--克隆
0206--pQE-TriSystem Vector--QiaGen--可以同时在真核和原核表达的载体。
0207--pmal-p2x--朋友赠送--原核表达
0208---pcaggsp7--本室保存--真核表达
0209--PlentiLox 3.7--friend--RNA i
0210--pMSCV pur--friend--真核表达
0211--pci-neo--friend--真核表达建立高表达外源蛋白细胞株
0212--pGEM-T--Promega--PCR产物克隆
0213--pMXB10--NEB--原核表达、真核表达
0214--pTrcHis B—invitrogen--原核表达
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0217--pZsYellow1-N1 Vector—Clontech--真核表达
0218--pCDM8—invitrogen--穿梭载体--ygsha
0219--PAA V-MCS--Stratagene--哈雷鲁呀
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0223--PAA V-IRES-hrGFP--Stratagene--哈雷鲁呀
0224--PAA V-RC--Stratagene--哈雷鲁呀
0225--PHelper--Stratagene--哈雷鲁呀
0226--pET32-Xa/LIC--novagen--kenshin
0227--pREP4/CAT-- INVITROGEN--spike0000
0228--PRSET--invitrogen--txstbbm
0229--pET-21a(+)--Novagen--quee
0230--pREV-TRE--CLONTECH--qchrcici
0231--PGAPZ--invitrogen--txstbbm
0232--pGEMRz123--INVITROGEN--donaihwa
0233--pBKS-SKII--invitrogen--lisirdxy
0234--pDONR201--invitrogen--pathogen
0235--pECFP-Men-clontech--luoxiaomin78
0236--pBI121--luoxiaomin78
0237--pBSK质粒--xupumc
0238--pIRES2-EGFP--Cat. # 6029-1--xupumc
0239--pUC57--小小小鱼
0240--pcDNA3.1 myc/his B、C--invitrogen--ygsha 0241--pTriEx-2、3、4 Vector--novagen--zhuda
0242--pTriEx?-2 vector1 --novagen--zhuda
0243--pSEC Neo Vector--Ambion--天外飞仙
0244--pBV220--yuou601
0245--pBlueScript II KS(+)--wingedfish
0246--pSK-T vector--gene tech(shang hai)--ghoststories 0247--charon BS(-)--ATCC--maxlu
0248--M2371--maxlu
0249--M2660--bioprducts--maxlu
0250--M3499--bioprducts--maxlu
0251--P414 CYC1--bioprducts--maxlu
0252--P414 GALS--bioprducts--maxlu
0253--pET-23a-d(+)--novagen--antheism
0254--改造的带有C末端6histag的PPIC9K载体--Invitrogen--Pichia 酵母表达系统
0255--p416 GALS --ATCC--frogwang
0256--p424 GPD --ATCC--frogwang
0257--pSilencer 4.1-CMV-neo--Ambin--bioblue
0258--pVP22/myc-His or pVP22/myc-His2 or pVP22/myc-His or pVP22/myc-His-TOPO等系列--Invitrogen--vetchj
0259--pCRT7/VP22-1 or 2 or TOPO or NES-1/2 or NES-1/2-TOPO等系列--Invitrogen
--keneng
0260--pFLD--Invitrogen--vetchj
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0262--pTRE-2hgy-HBx--Clontech--stupidguan
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0265--pZero T--北京宝赛--xuhua
0266--pSUPERIOR.puro --oligoengine--wingedfish
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0281--pRR48--UTAH大学Parkinson教授惠赠--dxyrwx
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0284--pGL-3 Enhancer Luciferase Reporter Vector--Promega--wangqing1980
0285--PET 11 a－d--stratagene--tigerlion
0286--pBabe--逆转录病毒--tigerlion
0287--Xa1-3--promega--含Xa标签的表达载体--tigerlion
0288--pGreenII--pGreen--植物双元转化载体--denis0707
0289--pYLTAC7--印度阿三
0290--pCAMBIA3301--CAMBIA--植物双元转化载体--judy1993 guangping1993@https://www.doczj.com/doc/c217269574.html,
0291--pCAMBIA3300--CAMBIA--植物双元转化载体--judy1993 0292--pCAMBIA3300L--CAMBIA--植物双元转化载体--judy1993 0293--pCAMBIA3301L--CAMBIA--植物双元转化载体--judy1993 0294--pUCm-T--原核克隆载体--wukun0204
0295--pV AX200-DEST--nvitrogen--wukun0204
0296--pV AX200-GW/lacZ--nvitrogen--wukun0204
0297--pGL3--promega--报告基因--corals
0298--pRNAT-U6.3/Hygro--Genscript corporation--xingzhe822
0299--pEM7/Zeo--invitrogen--穿梭质粒--party_shen
0300--pTEF1/Zeo--invitrogen--穿梭质粒--party_shen
0301--pHelix--测序--wxj2901
0302--pGEX－4T－1--原核表达--wxj2901
0303--pV A838--大肠杆菌/链球菌穿梭质粒--jiang820814
0304--pSMB104--SIGA馈赠--jiang820814
0305--pbluescript ks+--stratagene--lympin
0306--pBS-T--bio_study
0307--pRmHa-3--果蝇系统表达--tutujh1
0308--pT7TS--Paul A. Krieg教授赠送--awingdandelion 0309--pVIVO2--Invivogen--基因治疗--freeshipnol
pCambia 1391Xb 编号 载体名称 北京华越洋生物VECT0020 pCambia 1391Xb pCambia 1391Xb载体基本信息 出品公司: Cambia 载体名称: pCambia1391Xb, p Cambia 1391Xb 质粒类型: 植物表达载体 高拷贝/低拷贝: 低拷贝 启动子: -- 克隆方法: 多克隆位点，限制性内切酶 载体大小: 10647 b p 5' 测序引物及序列: -- 3' 测序引物及序列: -- 载体标签: GusA 载体抗性: 卡那和潮霉素 筛选标记: HPTII 备注: -- 产品目录号: 1391Xb 稳定性: 稳定表达 组成型: 非组成型 病毒/非病毒: 非病毒
pCambia 1391Xb载体质粒图谱和多克隆位点信息 其他植物载体质粒： pBI101 pDF15 pBI121 pEarleyGate 100 pBI221 pEarleyGate 101 pBI221--‐GFP pEarleyGate 102 pBin19 pEarleyGate 103 pBINPLUS pEarleyGate 104 pCambia0105.1R pEarleyGate 201 pCambia0305.1 pEarleyGate 202 pCambia0305.2 pEarleyGate 203 pCambia0380 pEarleyGate 204 pCambia0390 pEarleyGate 205 pCambia1105.1 pEarleyGate 301 pCambia1105.1R pEarleyGate 302 pCambia1200 pEarleyGate 303 pCambia1201 pEarleyGate 304 pCambia1281Z pFGC5941 pCambia1291Z pGA643 pCambia1300 pGreen pCambia1300GFP pGreen 0029
真核细胞常见表达载体 真核细胞, 表达载体 1、pCMVp-NEO-BAN载体 特点:该真核细胞表达载体分子量为6600碱基对，主要由CMVp启动子、兔β-球蛋白基因内含子、聚腺嘌呤、氨青霉素抗性基因和抗neo基因以及pBR322骨架构成，在大多数真核细胞内都能高水平稳定地表达外源目的基因。更重要的是，由于该真核细胞表达载体中抗neo 基因存在，转染细胞后，用G418筛选，可建立稳定的、高表达目的基因的细胞株。 插入外源基因的克隆位点包括Sal1、BamH1和EcoR1位点。注意在此载体中有二个EcoR1位点存在。 2、pEGFP, 增强型绦色荧光蛋白表达载体(Enhanced Fluorecent Protein Vector) 特点: pEGFP表达载体中含有绿色荧光蛋白，在PCMV启动子驱动下，在真核细胞中高水平表达。载体骨架中的SV40origin使该载体在任何表达SV40 T抗原的真核细胞内进行复制。Neo抗性盒由SV40早期启动子、Tn5的neomycin/kanamycin抗性基因以及HSV-TK基因的聚腺嘌呤信号组成，能应用G418筛选稳定转染的真核细胞株。此外，载体中的pUC origin 能保证该载体在大肠杆菌中的复制，而位于此表达盒上游的细菌启动子能驱动kanamycin抗性基因在大肠杆菌中的表达。 用途: 该表达载体EGFP上游有Nde1、Eco47111和Age1克隆位点，将外源基因扦入这些位点，将合成外源基因和EGFP的融合基因。借此可确定外源基因在细胞内的表达和/或组织中的定位。 亦可用于检测克隆的启动子活性(取代CMV启动子,Acet1-Nhe1)。 3、pEGFT-Actin, 增强型绿色荧光蛋白/人肌动蛋白表达载体 特点:pEGFP-Actin表达载体中含有绿色荧光蛋白和人胞浆β-肌动蛋白基因，在PCMV启动子驱动下，在真核细胞中高水平表达。载体骨架中的SV40origin使该载体在任何表达SV40 T 抗原的真核细胞内进行复制。Neo抗性盒由SV40早期启动子、Tn5的neomycin/kanamycin 抗性基因以及HSV-TK基因的聚腺嘌呤信号组成，能应用G418筛选稳定转染的真核细胞株。此外，载体中的pUC origin 能保证该载体在大肠杆菌中的复制，而位于此表达盒上游的细菌启动子能驱动kanamycin抗性基因在大肠杆菌中的表达。 用途: pEGFP-Actin载体在真核细胞表达EGFP-Actin融合蛋白，该蛋白能整合到胞内正在生的肌动蛋白，因而在活细胞和固定细胞中观察到细胞内含肌动蛋白的亚细胞结构。 4、pSV2表达载体 特点：该表达质粒是以病责SV40启动子驱动在真核细胞目的基因进行表达的，克隆位点为Hind111。SV40启动子具有组织/细胞的选择特异性。此载体不含neo基因，故不能用来筛选、建立稳定的表达细胞株。 5、CMV4 表达载体 特点:该真核细胞表达载体由CMV启动子驱动，多克隆区域酶切位点选择性较多。含有氨苄青霉素抗性基因和生长基因片段以及SV40复制原点和fl单链复制原点。但值得注意的是，该表达载体不含有neo基因，转染細胞后不能用G418筛选稳定的表达细胞株。 其他常用克隆Vector： pBluscript II KS DNA 15 ug pUC18 DNA 25 ug pUC19 DNA 25 ug 说明: pBluescript II kS、pUC18 &Puc19载体适合于DNA片段的克隆、DNA测序和对外源基因进行表达等。这些载体由于在lacZ基因中含有多克隆位点，当外源DNA片段扦入，转化lacZ基因缺乏细胞，并在含有IPTG和X-gal的培养基上培养时，含有外源DNA载体的细胞将
谈企业文化的几种载体选择 最近和很多企业主的一次座谈中，说起企业文化，众多管理者、决策者的一致反映是企业文化是虚无缥缈的东西，根本不是一个企业的重心。可是当我们谈到可口可乐与音乐、百事可乐和足球（体育）、力帆和足球、肯德基（麦当劳）和儿童玩具……时，很多企业主立刻产生了兴趣，也表示要建立自己的企业文化体系。那企业文化应该如何和市场接轨，如何变抽象为具体，如何选择最合适的文化载体呢？ 旅游（文化） 把企业经营和旅游结合，并且使旅游文化成为一个企业的特色，这并不是旅游公司的专利。实际上，目前企业的很多销售行为，都会自觉不自觉的和旅游靠拢，特别是购买产品中旅游大奖现象十分普遍。一般来说，销售到最终产生大奖的周期较长——这样做的好处一是对实际销售的直接刺激，又迎合了新世纪的旅游热，另外组团旅游的方式企业付出的实际成本并不高，还有就是企业实力和品牌的无形宣传。 如果把旅游作为企业文化的支撑，首先要建立全球的旅游关系网络，使组团旅游的成本降到冰点。然后在销售和服务过程中始终和旅游紧密结合，甚至旅游也是一个再次销售的过程——比如保健品行业的科普体验式营销，家电行业的工业园参观等，都是一种无形的销售方式。旅游文化的建立还有一个重要因素就是针对不同产品、不同人群的线路确立，确保旅游旺季对顾客的全心服务，使顾客在最好的季节看到最美丽的风景。 旅游文化还可以推出“故地重游”、“新婚游”、“生产基地参观”、“焦点追踪”（和重大事件结合——比如世界杯或者飞黄等事件）等项目，使企业真正成为旅游产业的代言人，长期的旅游行动对企业的宣传作用也是不言而喻的，关键是把服务做到无微不至，增强企业的知名度和美誉度。 知青（文化） 知青可以说是中国特色，也是可以借用的一股重要力量。 当年的知青如今年龄一般在50岁——60岁左右，大部分回城以后已经退休，是保健品行业、超市消费的准顾客。如何把知青文化加以发掘，是很多企业应该思考的问题。 青岛，南山百盛超市，一个面积不到3000米的小超市，按规模按位置都不占优势，竟然使沃尔玛、家乐福等企业感到无可奈何，其主要原因就是对文化的挖掘——特别是创立了堪称中国第一个“知青节”，给广大的知青一个交流的舞台，聚会的场所，许多失去音讯多年的知青在超市前抱头痛哭，同时把百倍的感谢回报给了企业，创造了中国超市的许多奇迹（包括单位面积盈利全国第一等），这就是文化的力量，策划的力量！ 中国有近千万知青，他们有知识、有阅历、有涵养，属于能够自主消费的群体，也是不可忽视的重要社会组织。如果哪个企业把知青文化做到深处，调动中国最优势的消费主题——特别是保健品医药行业，企业的发达是必然的。
表达载体的构建方法及步骤 令狐采学 一、载体的选择及如何阅读质粒图谱 目前，载体主要有病毒和非病毒两大类,其中质粒DNA 是一种新的非病毒转基因载体。 一个合格质粒的组成要素： （1）复制起始位点Ori 即控制复制起始的位点。原核生物DNA 分子中只有一个复制起始点。而 真核生物DNA 分子有多个复制起始位点。 （2）抗生素抗性基因可以便于加以检测，如Amp+ ,Kan+ （3）多克隆位点MCS 克隆携带外源基因片段 （4）P/E 启动子/增强子 （5）Terms 终止信号 （6）加poly（A）信号可以起到稳定mRNA 作用 选择载体主要依据构建的目的，同时要考虑载体中应有合适的限制酶切位点。如果构建的目 的是要表达一个特定的基因，则要选择合适的表达载体。 载体选择主要考虑下述3点： 【1】构建DNA 重组体的目的，克隆扩增/基因表达，选择合适的克隆载体/表达载体。 【2】.载体的类型：
（1）克隆载体的克隆能力－据克隆片段大小（大选大，小选小）。如<10kb 选质粒。 （2）表达载体据受体细胞类型－原核/真核/穿梭，E.coli/哺乳类细胞表达载体。 （3）对原核表达载体应该注意：选择合适的启动子及相应的受体菌，用于表达真核蛋白质时注意克服4个困难和阅读框错位；表达天然蛋白质或融合蛋白作为相应载体的参考。 【3】载体MCS 中的酶切位点数与组成方向因载体不同而异，适应目的基因与载体易于链接，不能产生阅读框架错位。 综上所述，选用质粒（最常用）做载体的5点要求： （1）选分子量小的质粒，即小载体（1－1.5kb）→不易损坏，在细菌里面拷贝数也多（也有大载 体）； （2）一般使用松弛型质粒在细菌里扩增不受约束，一般10个以上的拷贝，而严谨型质粒<10个。 （3）必需具备一个以上的酶切位点，有选择的余地； （4）必需有易检测的标记，多是抗生素的抗性基因，不特指多位Ampr（试一试）。 （5）满足自己的实验需求，是否需要包装病毒，是否需要加入荧光标记，是否需要加入标签蛋白，是否需要真核抗性（如Puro、G418）等等。 无论选用哪种载体，首先都要获得载体分子，然后采用适当的限制酶将载体DNA 进行切割，获得线性载体分子，以便于与
1、pCMVp-NEO-BAN载体 特点: 该真核细胞表达载体分子量为6600碱基对，主要由CMVp启动子、兔β-球蛋白基因内含子、聚腺嘌呤、氨青霉素抗性基因和抗neo基因以及pBR322骨架构成，在大多数真核细胞内都能高水平稳定地表达外源目的基因。更重要的是，由于该真核细胞表达载体中抗neo基因存在，转染细胞后，用G418筛选，可建立稳定的、高表达目的基因的细胞株。 插入外源基因的克隆位点包括Sal1、BamH1和EcoR1位点。注意在此载体中有二个EcoR1位点存在。 2、pEGFP, 增强型绦色荧光蛋白表达载体(Enhanced Fluorecent Protein Vector) 特点: pEGFP表达载体中含有绿色荧光蛋白，在PCMV启动子驱动下，在真核细胞中高水平表达。载体骨架中的SV40 origin使该载体在任何表达SV40 T 抗原的真核细胞内进行复制。Neo抗性盒由SV40早期启动子、Tn5的neomycin/kanamycin抗性基因以及HSV-TK基因的聚腺嘌呤信号组成，能应用G418筛选稳定转染的真核细胞株。此外，载体中的pUC origin 能保证该载体在大肠杆菌中的复制，而位于此表达盒上游的细菌启动子能驱动kanamycin抗性基因在大肠杆菌中的表达。 用途: 该表达载体EGFP上游有Nde1、Eco47111和Age1克隆位点，将外源基因扦入这些位点，将合成外源基因和EGFP的融合基因。借此可确定外源基因在细胞内的表达和/或组织中的定位。 亦可用于检测克隆的启动子活性(取代CMV启动子,Acet1-Nhe1)。 3、pEGFT-Actin, 增强型绿色荧光蛋白/人肌动蛋白表达载体 特点: pEGFP-Actin表达载体中含有绿色荧光蛋白和人胞浆β-肌动蛋白基因，在PCMV启动子驱动下，在真核细胞中高水平表达。载体骨架中的SV40 origin使该载体在任何表达SV40 T 抗原的真核细胞内进行复制。Neo抗性盒由SV40早期启动子、Tn5的neomycin/kanamycin抗性基因以及HSV-TK基因的聚腺嘌呤信号组成，能应用G418筛选稳定转染的真核细胞株。此外，载体中的pUC origin 能保证该载体在大肠杆菌中的复制，而位于此表达盒上游的细菌启动子能驱动kanamycin抗性基因在大肠杆菌中的表达。 用途: pEGFP-Actin载体在真核细胞表达EGFP-Actin融合蛋白，该蛋白能整合到胞内正在生的肌动蛋白，因而在活细胞和固定细胞中观察到细胞内含肌动蛋白的亚细胞结构。 4、pSV2表达载体 特点：该表达质粒是以病责SV40启动子驱动在真核细胞目的基因进行表达的，克隆位点为Hind111。SV40启动子具有组织/细胞的选择特异性。此载体不含neo基因，故不能用来筛选、建立稳定的表达细胞株。 5、CMV4 表达载体 特点:该真核细胞表达载体由CMV启动子驱动，多克隆区域酶切位点选择性较多。含有氨苄青霉素抗性基因和生长基因片段以及SV40复制原点和fl单链复制原点。但值得注意的是，该表达载体不含有neo基因，转染細胞后不能用G418筛选稳定的表达细胞株。 其他常用克隆Vector： pBluscript II KS DNA 15 ug pUC18 DNA 25 ug pUC19 DNA 25 ug 说明: pBluescript II kS、pUC18 & Puc19载体适合于DNA片段的克隆、DNA测序和对外源基因进行表达等。这些载体由于在lacZ基因中含有多克隆位点，当外源DNA片段扦入，转化lacZ基因缺乏细胞，并在含有IPTG和X-gal的培养基上培养时，含有外源DNA载体的细胞将为白色菌落，而无外源DNA片段载体的细胞则为兰色菌落，由此易于筛选有无外源DNA片段的载体。此外，这些载体中有便于测序的M13、T7和T3的通用引物进行DNA测序。 保存液: TE Buffer TE Buffer组成: 10mM Tris.HCL(Ph 8.0) 1mM EDTA 用途: 克隆外源DNA片断. 进行基因表达. 使用M13、T7和T3引物进行测序.
pCambia2301--‐101 编号 载体名称 北京华越洋生物VECT0470 pCambia2301--‐101 pCambia2301--‐101载体基本信息： 出品公司: --‐--‐ 载体名称: pcambia2301--‐101 质粒类型: 植物双元表达载体 高拷贝/低拷贝: --‐--‐ 启动子: --‐--‐ 克隆方法: 多克隆位点，限制性内切酶 载体大小: --‐--‐ 5' 测序引物及序列: --‐--‐ 3' 测序引物及序列: --‐--‐ 载体标签: --‐--‐ 载体抗性: --‐--‐ 筛选标记: --‐--‐ 备注: --‐--‐ 产品目录号: --‐--‐ 稳定性: --‐--‐ 组成型: --‐--‐ 病毒/非病毒: --‐--‐ 其他植物载体质粒： pBI101 pDF15 pBI121 pEarleyGate 100 pBI221 pEarleyGate 101 pBI221--‐GFP pEarleyGate 102 pBin19 pEarleyGate 103 pBINPLUS pEarleyGate 104 pCambia0105.1R pEarleyGate 201 pCambia0305.1 pEarleyGate 202 pCambia0305.2 pEarleyGate 203 pCambia0380 pEarleyGate 204 pCambia0390 pEarleyGate 205 pCambia1105.1 pEarleyGate 301 pCambia1105.1R pEarleyGate 302 pCambia1200 pEarleyGate 303 pCambia1201 pEarleyGate 304 pCambia1281Z pFGC5941 pCambia1291Z pGA643 pCambia1300 pGreen
表达载体 一、原核细胞表达载体 1. pBAD载体: 特点; 该表达质粒含有araBAD(arabinose)操纵子的P BAD启动子和编码该启动子的正负调控子基因araC，具有紧密调控功能和高水平表达外源蛋白质的原核细胞表达载体。 请注意: 1. 当要扦入其他信号肽片段，改建此载体时，请不要利用该载体上的Nde1 EcoR1 BamH1 Kpn1和 Pst1位点，以免造成重组困难，因为前述内切酶在此载体上均有二个位点，最好使用只有一个酶切位点的Sac1和Hind111位点。同时记住，如在不含任何信号肽的P BAD表达质粒扦入信号肽，其非编码N- 末端要包含核糖体结合位点(RBS)核苷酸序列。 2在使用含Omp A分泌信号肽的P BAD表达质粒时，请应用Omp A分泌信号肽上的Sac1以及载体Hind111酶切位点，这些在载体序列上都是单个酶切位点。 本公司目前有含Omp A分泌信号肽和不含任何信号肽的二种P BAD表达质粒，其多克隆位点区域图谱如下: (a)、含Omp A分泌信号肽的P BAD表达质粒多克隆区域 SD P BAD….TACCCGTTTTTTT CC….GCTAGCAGGAGGAAACG ATG AAA AAG ACA GCT ATC GCG ATT GCA GTG GCA CTG GCT GGT A M A E L TTC GCT ACC GTA GCC ATG GCC GAG CTC GGTACCCGGGGATCCTCTAGAGTCGCCTGCAGGCATCCAAGCTT Nco1 Sac1 Kpn1 Smal1 BamH1 (b)、不含分泌信号肽的P BAD表达质粒多克隆区域 Pst1 P BAD GCTAGCGAATTCGAGCTCGGTACCCGGGGATCCTCTAGAGTCGCCTGCAGGCATCCAAGCTT Nde1 Sac1 Smal 1 Hind111 下图显示本公司应用pBAD表达载体完成的实验结果: pBAD载体驱动大分子蛋白质在原核细胞 Origami(DE3)内高效表达 2. pCAl-n & pCAl-pelB载体 特点: 该原核细胞表达载体是来源于以T7 RNA聚合酶为基础的pET载体， 含有T7/LacO启动子、编码钙调素结合多肽标鉴和凝血酶切点的核苷酸序列。 因此，该表达载体在E.coli BL21(DE3)或BL21(DE3)pLysS宿主菌中能高水 平表达外源蛋白质、且这种表达的外源蛋白质因带有钙调素结合多肽和凝血 酶切点，故该蛋白产物易于纯化和产业化。 此外，本公司利用分泌信号肽PelB，构建成新型的的原核细胞表达载体Pcal-PelB。此载体表达的蛋白产物能在分泌肽PelB的指引下进入细胞周质。
过表达慢病毒载体构建和包装手册 Version1.0 吉凯基因 二零一一年五月
目录 简介 (3) 第一部分过表达慢病毒载体的制备 实验流程 (4) 实验材料 (5) 过表达克隆制备 (6) 第二部分慢病毒包装与滴度检测 实验流程 (17) 实验材料 (18) L e n t i v i r u s病毒包装 (21) 病毒的收获及浓缩 (22) L e n t i v i r u s滴度测定 (24) 参考文献 (33)
简介 慢病毒（Lentivirus）载体是以人类免疫缺陷型病毒（HIV）为基础发展起来的基因治疗载体，它对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力，并可以在体内较长期的表达且安全性高。吉凯基因提供的慢病毒为“自杀”性病毒，即病毒感染目的细胞后不会再感染其他细胞，也不会利用宿主细胞产生新的病毒颗粒。慢病毒中的毒性基因已经被剔除并被外源性目的基因所取代，属于假型病毒。但该病毒仍然具有可能的潜在的生物学危险，吉凯基因建议不要使用编码已知或可能会致癌的基因的假型病毒，除非已经完全公认某个基因肯定没有致癌性，否则均不建议采用假型病毒进行生物学实验。 吉凯基因慢病毒载体系统由GV慢病毒载体系列、pHelper 1.0载体和pHelper 2.0载体三质粒组成。GV慢载体中含有HIV的基本元件5’LTR和3’LTR以及其他辅助元件，例如WRE (woodchuck hepatitis virus posttranscriptional regulatory element)。通常根据不同的实验目的针对GV载体改造以进行基因功能研究。pHelper 1.0载体中含有HIV病毒的gag基因，编码病毒主要的结构蛋白；pol基因，编码病毒特异性的酶；rev基因，编码调节gag和pol基因表达的调节因子。pHelper 2.0载体中含有单纯疱疹病毒来源的VSV-G基因，提供病毒包装所需要的包膜蛋白。 吉凯基因过表达慢病毒产品可通过对GV慢病毒载体的改造和病毒包装，获得带有特定基因序列的慢病毒颗粒，以满足不同的实验需求。 本手册为吉凯基因RNAi慢病毒载体的构建和病毒包装的通用操作流程，目的是为了方便大家交流使用，部分细节内容未能做到一一详述，敬请谅解。同时希望大家能够针对手册中的错误和问题，提出宝贵的意见。
一、一个合格质粒的组成要素 复制起始位点Ori 即控制复制起始的位点。原核生物DNA分子中只有一个复制起始点。而真核生物DNA分子有多个复制起始位点。 抗生素抗性基因可以便于加以检测，如Amp+ ,Kan+ 多克隆位点MCS 克隆携带外源基因片段 P/E 启动子/增强子 Terms 终止信号 加poly（A）信号可以起到稳定mRNA作用 二、如何阅读质粒图谱 第一步：首先看Ori的位置，了解质粒的类型（原核/真核/穿梭质粒） 第二步：再看筛选标记，如抗性，决定使用什么筛选标记。 （1）Ampr 水解β－内酰胺环，解除氨苄的毒性。 （2）tetr 可以阻止四环素进入细胞。 （3）camr 生成氯霉素羟乙酰基衍生物，使之失去毒性。 （4）neor（kanr）氨基糖苷磷酸转移酶使G418（长那霉素衍生物）失活 （5）hygr 使潮霉素β失活。 第三步：看多克隆位点（MCS）。它具有多个限制酶的单一切点。便于外源基因的插入。如果在这些位点外有外源基因的插入，会导致某种标志基因的失活，而便于筛选。决定能不能放目的基因以及如何放置目的基因。 第四步：再看外源DNA插入片段大小。质粒一般只能容纳小于10Kb的外源DNA片段。一般来说，外源DNA片段越长，越难插入，越不稳定，转化效率越低。 第五步：是否含有表达系统元件，即启动子－核糖体结合位点－克隆位点－转录终止信号。这是用来区别克隆载体与表达载体。克隆载体中加入一些与表达调控有关的元件即成为表达载体。选用那种载体，还是要以实验目的为准绳。 启动子－核糖体结合位点－克隆位点－转录终止信号 启动子－促进DNA转录的DNA顺序，这个DNA区域常在基因或操纵子编码顺序的上游，是DNA分子上可以与RNApol特异性结合并使之开始转录的部位，但启动子本身不被转录。增强子/沉默子－为真核基因组（包括真核病毒基因组）中的一种具有增强邻近基因转录过程的调控顺序。其作用与增强子所在的位置或方向无关。即在所调控基因上游或下游均可发挥作用。/沉默子－负增强子，负调控序列。 核糖体结合位点/起始密码/SD序列（Rbs/AGU/SDs）：mRNA有核糖体的两个结合位点，对于原核而言是AUG（起始密码）和SD序列。 转录终止顺序（终止子）/翻译终止密码子：结构基因的最后一个外显子中有一个AA TAAA 的保守序列，此位点down－stream有一段GT或T富丰区，这2部分共同构成poly（A）加尾信号。结构基因的最后一个外显子中有一个AA TAAA的保守序列，此位点down－stream 有一段GT或T富丰区，这2部分共同构成poly（A）加尾信号。 回答有人之前提出的一个问题：为什么质粒图谱上有的箭头顺时针有的箭头逆时针，那其实是代表两条DNA链，即质粒是环状双链DNA，它的启动子等在其中一条链上，而它的抗性基因在另一条链上. 三、介绍一下关于载体的知识（虽然课本上都有写） 1. 什么是载体
过表达质粒的构建及转染 质粒及菌液说明过表达质粒为高纯度的DNA 粉末制品，经过真空冷冻干燥的质粒是呈薄膜状或粉末状附在离心管中，请适当离心(10000r/min 10~15s)后小心开启，以免飞扬丢失。请根据实验需要的质粒浓度和质粒的总量加入适量的ddH2O (通常建议储存液浓度500ng~1μg/μL），合上管盖充分震荡使其溶解后可用于细胞转染及其他分子生物学实验。粉末制品的DNA 可长期保存（建议最好不要超过6个月），质粒溶解后建议在-20℃的环境中存贮，避免多次冻融处理。 2、甘油菌液为含有重组质粒的菌液的过夜培养物与甘油的混合物，甘油的终浓度为20% 。客户收到甘油菌液建议即刻活化（例如取50~100μL到5mL 含有相应抗性(根据载体种类可以选择25~50μg/mL 卡那霉素或50~100μg/mL 氨苄霉素）的LB 培养基过夜活化（12~16h），活化后的菌液与适量甘油混匀后于-80℃保存。） 3、重组质粒测序峰值图文件结果请参见附件报告中的.abl 文件。测序序列文件参见与峰值图文件同名的.seq 文件。 基因过表达实验设计在使用载体法针对某一基因进行过表达研究过程中，通常会遇到如下几个问题：实验对照组的确立、细胞转染条件的确定、基因表达效率的检测。 1. 实验对照组的确立在一个完善的基因过表达实验设计中，必须考虑设立正确合理的实验对照组。通常，这些对照组包括阴性对照、转染试剂对照。阴性对照通常是用基因过表达选择的载体对应的空载体来作为对照。 2. 细胞转染条件的确定使用DNA 载体转染细胞时，为了选择合适的转染方法和确定转染效率，通
常采用报告基因来检测DNA 的导入情况。最常用的报告基因是绿色荧光蛋白。 3. 基因表达效率的检测通常用两大类方法来检测过表达质粒中目的基因表达的效率，一类方法是直接检测目的基因在不同水平如mRNA 和蛋白水平的变化，具体的方法如qPCR 和Western blot 等；另一类方法是通过检测目的基因的生物学效应和细胞效应来间接的反映目的基因的表达变化，这一类方法很多，不同的基因有不同的检测方法。通常多选用qPCR 和Western blot 等方法直接检测目的基因的变化情况。由于细胞种类和蛋白表达翻译及抗体因素，吉玛构建表达载体通常可保证qRCR 检测转染工程细胞293T，目的基因mRNA 表达水平有2倍上调。基因过表达实验操作由于在基因过表达实验中有多种条件选择，如试剂和细胞株等，在本实验操作中仅以pEX-1 空载体为阴性对照，Lipofectamin2000 为转染试剂，293T 细胞为实验细胞株，按照上述条件分步阐述过表达质粒转染实验的操作过程。如果用户使用不同的细胞株和转染试剂，可根据不同的目的基因和实验条件进行相应的调整。 1、293T 细胞在6cm dish 中培养至80-90%融合时，倾去培养液，用3mL PBS 洗涤细胞两次。 2、加1mL Trypsin-EDTA solution, 混匀后，小心吸去胰酶溶液，37℃ 放置3 分钟。 3、再加入2 mL 含10% FBS 的DMEM 培养液，吹打使细胞形成单细胞悬 液。 4、血球计数板计数，将细胞稀释至3×105 细胞/mL。 5、按5×103细胞/孔的浓度接种96 孔板，混匀后于37℃ 5% CO2培养24h。 6、转染试剂Lipofectamin2000 用于转染过表达质粒，剂量如下，每个剂量
双元表达载体 与共整合载体(cointegrating vector) 相对，binary vector 指转化由两个载体来完成，相容。vir基因在实现T-DNA转移过程中，没有与T-DNA在同一质粒上。 小Ti质粒含T-DNA区，而缺少vir区的质粒，比如，pBIN19, pBI121 带vir区的质粒主要功能是利用vir基因的作用，激活T-DNA 的转移。比如常用农杆菌菌株LBA4404，其中带有这种T-DNA缺失而保留vir的质粒pAL4404. 也就是说，在转化时农杆菌中是有两个质粒了？ 另，野生型的Ti质粒是不是vir 和T－DNA都有了？ -------------------------------------------------------------------------------- 双元表达载体系统主要包括两个部分 一部分为卸甲Ti质粒，这类Ti质粒由于缺失了T－DNA 区域，完全丧失了致瘤作用，主要是提供Vir基因功能，激活处于反式位置上的T－DNA的转移。 另一部份是微型Ti质粒(Mini-Ti plasmid)，它在T－DNA左右边界序列之间提供植株选择标记如NPTII基因以及Lac Z基因等。 双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的Vir基因可以反式激活T－DNA 的转移。与共整合载体所不同的是，它不依赖两个质粒之间的同源序列，不需要共整合过程就能在农杆菌内独立复制。 -------------------------------------------------------------------------------- 双元载体系统又叫二元载体系统，是指农杆菌中用于把Ｔ－ＤＮＡ区域转入受体细胞的双质粒系统。其中一个质粒带有毒性基因，另一质粒带有改造过的Ｔ－ＤＮＡ区域，用于携带外源基因。 我们一般构建的载体通常都是在一类实验材料中进行，当试验需要不同的实验材料时就需要双元载体来介导了，本人表述欠缺给你举个例子吧：做转基因植物是用到binary vector非常正常的，首先要拿到目的片段，这一系列的操作肯定也是在载体中进行的，这里的载体因为都是在细菌中进行的，所以只用一元载体就可以了，当我们把目的片段往植物中导入时，就需要用到双元载体了，现将载体在菌体中扩增，数量达到以后再介导到植物中，常用的就是农杆菌介导（构建的载体质粒在农杆菌中可以随菌体一起扩增），然后进入到植物体内后再通过双元载体中的转导序列将目的片段融合到植物基因组中，所以双元载体有两套不同的筛选因子，在菌体中用一种，在植物中用一种！
真核细胞表达系统的类型与常用真核细胞表达载体 标签：真核细胞酵母表达系统细胞表达载体真核表达系统昆虫表达系统动物表达系统 摘要: 原核表达系统是常被用来研究基因功能的成熟系统，由于原核表达系统具有包涵体蛋白不易纯化、蛋白修饰不完整等缺陷，人们也开始利用真核细胞表达系统来研究基因。 原核表达系统是常被用来研究基因功能的成熟系统，由于原核表达系统具有包涵体蛋白不易纯化、蛋白修饰不完整等缺陷，人们也开始利用真核细胞表达系统来研究基因。 自上世纪70年代基因工程技术诞生以来，基因表达技术已渗透到生命科学研究的各个领域。并随着人类基因组计划实施的进行，在技术方法上得到了很大发展，时至今日已取得令人瞩目的成就。随着人类基因组计划的完成，越来越多的基因被发现，其中多数基因功能不明。利用表达系统在哺乳动物细胞内表达目的基因是研究基因功能及其相互作用的重要手段。 在各种表达系统中，最早被采用进行研究的是原核表达系统，这也是目前掌握最为成熟的表达系统。该项技术的主要方法是将已克隆入目的基因DNA段的载体(一般为质粒)转化细菌(通常选用的是大肠杆菌)，通过iptg诱导并最终纯化获得所需的目的蛋白。其优点在于能够在较短时间内获得基因表达产物，而且所需的成本相对比较低廉。但与此同时原核表达系统还存在许多难以克服的缺点：如通常使用的表达系统无法对表达时间及表达水平进行调控，有些基因的持续表达可能会对宿主细胞产生毒害作用，过量表达可能导致非生理反应，目的蛋白常以包涵体形式表达，导致产物纯化困难;而且原核表达系统翻译后加工修饰体系不完善，表达产物的生物活性较低。 为克服上述不足，许多学者将原核基因调控系统引入真核基因调控领域，其优点是： ①根据原核生物蛋白与靶DNA间作用的高度特异性设计，而靶DNA与真核基因调控序列基本无同源性，故不存在基因的非特异性激活或抑制; ②能诱导基因高效表达，可达105倍，为其他系统所不及; ③能严格调控基因表达，即不仅可控制基因表达的“开关”，还可人为地调控基因表达量。 因此，利用真核表达系统来表达目的蛋白越来越受到重视。目前，基因工程研究中常用的真核表达系统有酵母表达系统、昆虫细胞表达系统和哺乳动物细胞表达系统。 1.酵母表达系统 最早应用于基因工程的酵母是酿酒酵母，后来人们又相继开发了裂殖酵母、克鲁维酸酵母、甲醇酵母等，其中，甲醇酵母表达系统是目前应用最广泛的酵母表达系统。目前甲醇酵母主要有H Polymorpha，Candida Bodini，Pichia Pastris3种。以Pichia Pastoris应用最多。
pCambia35s--‐ECFP 编号 载体名称 北京华越洋生物VECT1010 pCambia35s--‐ECFP pCambia35s--‐ECFP载体基本信息 出品公司: --‐--‐ 载体名称: pcambia35s--‐ECFP 质粒类型: 植物双元表达载体 高拷贝/低拷贝: --‐--‐ 启动子: --‐--‐ 克隆方法: 多克隆位点，限制性内切酶 载体大小: --‐--‐ 5' 测序引物及序列: --‐--‐ 3' 测序引物及序列: --‐--‐ 载体标签: ECFP 载体抗性: --‐--‐ 筛选标记: --‐--‐ 备注: --‐--‐ 产品目录号: --‐--‐ 稳定性: --‐--‐ 组成型: --‐--‐ 病毒/非病毒: --‐--‐ 其他植物载体质粒： pBI101 pDF15 pBI121 pEarleyGate 100 pBI221 pEarleyGate 101 pBI221--‐GFP pEarleyGate 102 pBin19 pEarleyGate 103 pBINPLUS pEarleyGate 104 pCambia0105.1R pEarleyGate 201 pCambia0305.1 pEarleyGate 202 pCambia0305.2 pEarleyGate 203 pCambia0380 pEarleyGate 204 pCambia0390 pEarleyGate 205 pCambia1105.1 pEarleyGate 301 pCambia1105.1R pEarleyGate 302 pCambia1200 pEarleyGate 303 pCambia1201 pEarleyGate 304 pCambia1281Z pFGC5941 pCambia1291Z pGA643 pCambia1300 pGreen
表达载体的构建方法及步骤 一、载体的选择及如何阅读质粒图谱 目前，载体主要有病毒和非病毒两大类,其中质粒DNA 是一种新的非病毒转基因载体。 一个合格质粒的组成要素： （1）复制起始位点Ori 即控制复制起始的位点。原核生物DNA 分子中只有一个复制起始点。而 真核生物DNA 分子有多个复制起始位点。 （2）抗生素抗性基因可以便于加以检测，如Amp+ ,Kan+ （3）多克隆位点MCS 克隆携带外源基因片段 （4）P/E 启动子/增强子 （5）Terms 终止信号 （6）加poly（A）信号可以起到稳定mRNA 作用 选择载体主要依据构建的目的，同时要考虑载体中应有合适的限制酶切位点。如果构建的目 的是要表达一个特定的基因，则要选择合适的表达载体。 载体选择主要考虑下述3点： 【1】构建DNA 重组体的目的，克隆扩增/基因表达，选择合适的克隆载体/表达载体。 【2】.载体的类型： （1）克隆载体的克隆能力－据克隆片段大小（大选大，小选小）。如<10kb 选
质粒。 （2）表达载体据受体细胞类型－原核/真核/穿梭，E.coli/哺乳类细胞表达载体。（3）对原核表达载体应该注意：选择合适的启动子及相应的受体菌，用于表达真核蛋白质时注意克服4个困难和阅读框错位；表达天然蛋白质或融合蛋白作为相应载体的参考。 【3】载体MCS 中的酶切位点数与组成方向因载体不同而异，适应目的基因与载体易于链接，不能产生阅读框架错位。 综上所述，选用质粒（最常用）做载体的5点要求： （1）选分子量小的质粒，即小载体（1－1.5kb）→不易损坏，在细菌里面拷贝数也多（也有大载 体）； （2）一般使用松弛型质粒在细菌里扩增不受约束，一般10个以上的拷贝，而严谨型质粒<10个。 （3）必需具备一个以上的酶切位点，有选择的余地； （4）必需有易检测的标记，多是抗生素的抗性基因，不特指多位Ampr（试一试）。 （5）满足自己的实验需求，是否需要包装病毒，是否需要加入荧光标记，是否需要加入标签蛋白，是否需要真核抗性（如Puro、G418）等等。 无论选用哪种载体，首先都要获得载体分子，然后采用适当的限制酶将载体DNA 进行切割，获得线性载体分子，以便于与目的基因片段进行连接。 如何阅读质粒图谱 第一步：首先看Ori 的位置，了解质粒的类型（原核/真核/穿梭质粒）
pET 载体中，目标基因克隆到 T7 噬菌体强转录和翻译信号控制之下，并通过在宿主细胞提供 T7 RNA 聚合酶来诱导表达。 Novagen 的 pET 系统不断扩大，提供了用于表达的新技术和选择，目前共包括 36 种载体类型、 15 种不同宿主菌和设计用于有效检测和纯化目标蛋白的许多其它相关产品。 优点 · 是原核蛋白表达引用最多的系统 · 在任何大肠杆菌表达系统中，基础表达水平最低 · 真正的调节表达水平的“变阻器”控制 · 提供各种不同融合标签和表达系统配置 · 可溶性蛋白生产、二硫键形成、蛋白外运和多肽生产等专用载体和宿主菌 · 许多载体以 LIC 载体试剂盒提供，用于迅速定向克隆 PCR 产物 · 许多宿主菌株以感受态细胞形式提供，可立即用于转化 阳性 pFORCE TM 克隆系统具有高效克隆 PCR 产物、阳性选择重组体和高水平表达目标蛋白等特点。 pET 系统概述 pET 系统是在大肠杆菌中克隆和表达重组蛋白的最强大系统。根据最初由 Studier 等开发的 T7 启动子驱动系统， Novagen 的 pET 系统已用于表达成千上万种不同蛋白。 控制基础表达水平 pET 系统提供 6 种载体 - 宿主菌组合，能够调节基础表达水平以优化目标基因的表达。没有单一策略或条件适用于所有目标蛋白，所以进行优化选择是必要的。 宿主菌株 质粒在非表达宿主菌中构建完成后，通常转化到一个带有 T7 RNA 聚合酶基因的宿主菌（λDE3 溶原菌）中表达目标蛋白。在λ DE3 溶原菌中， T7 RNA 聚合酶基因由 lacUV5 启动子控制。未诱导时便有一定程度转录，因此适合于表达其产物对宿主细胞生长无毒害作用的一些基因。而宿主菌带有 pLysS 和 pLyE 时调控会更严紧。 pLys 质粒编码 T7 溶菌酶，它是 T7 RNA 聚合酶的天然抑制物，因此可降低其在未诱导细胞中转录目标基因的能力。 pLysS 宿主菌产生低量 T7 溶菌酶，而 pLysE 宿主菌产生更多酶，因此是最严紧控制的λ DE3 溶原菌。 有 11 种不同DE3 溶原化宿主菌。使用最广泛的为 BL21 及其衍生菌株，它的优点在于缺失 lon 和 ompT
基金项目：北京市重要农作物转基因技术创新研究(No.KJCX201102003)收稿日期：2013-11-01接受日期：2013-12-23 Online system:https://www.doczj.com/doc/c217269574.html, 农业生物技术学报 Journal of Agricultural Biotechnology 2014,22(3):389~396 DOI:10.3969/j.issn.1674-7968.2014.03.015 植物表达载体pCAMBIA2301-del -ros 的构建及其在草莓上的验证 金万梅*王华 北京市农林科学院林业果树研究所，北京100093*通讯作者，jwm0809@https://www.doczj.com/doc/c217269574.html, 摘要为了研究多基因互作，减少多次转化的不确定性，本研究在花青素合成调节基因del (delila )和ros (rosea1)的上下游分别引入CaMV 35S 启动子和nos 终止子，以pBI121-del 和pCAMBIA1301-ros 做中间载体，并利用Bam H Ⅰ和Bgl Ⅱ产生相同4碱基末端的片段，在连接酶的作用下将CaMV 35S 启动子分别驱动的del 和ros 基因构建在同一个植物表达载体pCAMBIA2301上，利用所构建的载体pCAMBIA2301-del -ros 通过根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens )LBA4404介导的方法转化草莓(Fragaria ananassa Duch.)，并进行PCR 检测，获得转基因草莓。通过组织观察发现，转基因草莓的根和叶的颜色变成红紫色；实时RT-PCR 分析表明，在转基因草莓中花青素合成的结构基因花色素合成酶(anthocyanidinsynthase,ANS )、查尔酮异构酶(chalcone-flavanone isomerase,CHI )、查尔酮合酶(chalcone synthase,CHS )、二羟黄酮醇-4-还原酶(dihydroflavonol-4-reductase,DFR )、黄烷酮-3-羟化酶(flavanone 3-hydroxylase,F3H )和类黄酮-3-O-葡糖基转移酶(UDP glucose-flavonoid 3-O-glcosyl-transferase,UFGT )在转基因株系中的表达均上调，这也进一步证实通过该方法构建的植物表达载体pCAMBIA2301-del -ros 可以用来转化植物。本研究结果表明，植物表达载体pCAMBIA2301-del -ros 成功构建，为多基因植物表达载体的构建提供了一种思路，也为在植物体内同时研究多个基因的互作提供借鉴。关键词植物表达载体，构建，草莓，转基因 Construction of Plant Expression Vector pCAMBIA2301-del -ros and Genetic Transformation in Strawberry(Fragaria ananassa Duch.) JIN Wan-Mei *WANG Hua Institute of Forestry and Pomology,Beijing Academy of Agriculture and Forestry Science,Beijing 100093,China *Corresponding author,jwm0809@https://www.doczj.com/doc/c217269574.html, Abstract In order to study multi-gene interaction and reduce the blindness of many transformation,CaMV 35S promoter and nos terminator were added into gene del and ros upstream and downstream,respectively.del and ros genes can regulate anthocyanin synthesis.Intermediate vector pBI121-del and pCAMBIA1301-ros were constructed.Bam H Ⅰand BglⅡproduced the same end tetra-nucleotide segments.The CaMV 35S promoter separately driven del and ros genes were constructed in plant expression vector pCAMBIA2301under ligase.Strawberries(Fragaria ananassa Duch.)were treated by the constructed vector pCAMBIA2301-del -ros via Agrobacterium tumefaciens LBA4404mediated transformation method.Transgenic strawberry lines were screened by PCR analysis.Observed by organizations,the roots and leaves of transgenic strawberry lines became reddish purple. The expression of anthocyanin biosynthetic genes anthocyanidinsynthase(ANS ), chalcone-flavanone isomerase(CHI ), flavanone 3-hydroxylase(F3H ),