[目的与要求]
1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法
2观察神经,体液因素对心血管活动的影响
[基本原理]
在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来
[动物与器材]
家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000)
【方法与步骤】
1、实验仪器的准备
打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。
2、连通液导系统并制压
将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有
气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg 时既可关闭三通管。观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。
3、动物的准备
(1)按照实验4-9方法,麻醉家兔并进行颈部手术,插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过,轻轻张开止血钳,分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁,外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线,分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管侧压,另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同,个体之间也有差异,常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认,蓄意对血压的影响为准。
(2)动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素(200U?kg体重)以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下:
将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧,以防渗血),然后在另一备用线的向心侧(尽可能近心端),用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线,用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁(注意:不可只剪开血管外膜,也切勿剪断整个动脉,剪口大小约为管径的一半)。一手持弯头眼科镊,将其一个弯头从剪口处插进动脉少许,轻轻挑起剪开的动脉上壁,另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅,可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁,另一手拿住动脉插管,顺势轻轻推进至6~8mm左右(如果手感滞涩,说明插管并未进入动脉,必须退出插管,重新剪口再插),用备用线将动脉连同进入的插管扎紧(插管不可因扎线松动而滑出,亦不可漏液),并将余线系在插管的固定侧支上,以免滑脱。注意:插管应与动脉血管的方向一致,以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳,此时显示器上出现血压的波动曲线。
4、实验观察
(1)观察正常血压曲线调节扫描速度与增益,可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。有时可以观察到血压曲线
随呼吸变化,心搏为一级波,呼吸波为二级波。然后将扫描速度调慢,观察正常血压曲线。
(2)轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线,用动脉夹夹闭30s(于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线),观察并记录血压变化。出现变化后即取下动脉夹,记录血压的恢复过程。
(3)记录对照血压曲线后,用手指按压颈动脉窦(下颌下方内侧),观察并记录血压变化。当血压明显下降时,则停止按压,待血压恢复(如果血压反而升高,说明按压的是血管,需重新寻找按压位置)。
(4)刺激主动脉神经使刺激输出端连接保护电极,轻轻提起主动脉神经上的备用线,小心地将神经置于保护电极之上。记录对照血压曲线后,再用中等强度的连续电脉冲信号,通过保护电极,刺激神经10~20s。血压出现明显下降后即可停止刺激,并待血压恢复。如果血压并不下降,可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。任何刺激都无效时,则表示此神经并非主动脉神经。需要重新辨认神经后再行实验。
(5)分别刺激主动脉神经中枢端和外周端双结扎主动脉神经后(务必结扎),从两扎线结之间剪断神经。记录对照血压后,同法分别刺激神经的中枢端和外周端,观察并记录血压变化。
(6)刺激迷走神经记录对照血压后,用同样的方法刺激迷走神经,观察血压下降曲线与(4)有何不同(如果血压下降很快、很低,应立即停止刺激)。
(7)结扎并剪断迷走神经同时结扎双侧迷走神经后剪断,观察血压有何变化。
(8)刺激迷走神经外周端分别刺激两侧迷走神经外周端,观察并记录血压变化有何不同。
(9)肾上腺素对血压的影响记录对照血压曲线后,用1ml注射器,从耳缘静脉注入0.1~0.3ml肾上腺素溶液,观察并记录血压变化及恢复曲线。
(10)乙酰胆碱对血压的影响同法注入0.1~0.2ml乙酰胆碱溶液,观察并记
录注射前后血压变化。
(11)失血对血压的影响从另一侧动脉插管后慢慢放血,观察放血量对血压的影响。
5、整理实验结果,并将实验结果填入下表
家兔血压实验记录表
【思考题】
1、讨论各项实验结果,说明血压正常及发生变化的机理。
2、如何证明主动脉神经是传入神经?
3、如何证明迷走神经外周端对心脏有调节作用?
4、试分析主动脉神经放电与血压变化的关系。
5、根据实验结果,说明神经、药物对心率与呼吸的影响。
三、参数设置:
(一)RM6240系统:
点击“实验”菜单,选择“循环”或“自定义实验项目”菜单中的“兔动脉血压调节”。系统进入该实验信号记录状态。仪器参数:4通道时间常数为直流,滤波频率100Hz,灵敏度12Kpa,采样频率800Hz,扫描速度 500ms/div。连续单刺激方式,刺激强度5~10V,刺激波宽2ms,刺激频率30 Hz。
(二)实验内容
1.正常血压曲线。
2.夹闭右侧颈总动脉。
3.刺激减压神经:(1)刺激完整减压神经(2)刺激减压神经中枢端(3)刺激减压神经外周端。
4.刺激迷走神经外周端。
5.静脉注射NE 0.5ml。
(三)注意事项:
1.分离减压神经注意:减压神经要从向心端开始往头端分离,避免损伤神经,分离时不使神经上带有结缔组织膜,分离后滴加生理盐水以防干燥,穿2根线备用。
2.连接仪器:注意避免动脉插管滑出。
3.夹闭颈总动脉时勿牵拉动脉(夹闭,血压增高;牵拉,血压下降)。
4.刺激减压神经,如神经损伤,向头端移动(与减压神经放电移动方向相反)。
5.刺激右侧迷走神经末梢端,血压.心率变化更为明显。
三、实验报告要求:(10分)
1.实验结果:各种影响因素引起动脉血压变化曲线图。(不要求观察定量变化)
2.实验讨论:(各1分)
1)夹闭颈总动脉,血压升高:
夹闭颈总动脉→颈动脉窦血压下降→颈动脉窦压力感受器受到刺激减弱→窦神经传入冲动
↗心迷走中枢(抑制)→迷走神经传出冲动减少→心跳加快.加强→心输出量增多↘
↑↑
减少→心交感中枢(兴
奋)↘↗小静脉收缩→回心血量增多→ 血压升高
交感神经传出冲动增
多
↘交感缩血管中枢(兴奋)↗↘小动脉收缩→外周阻力增大↗
2)刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降,而刺激该神经外周端基本不变:兔减压神经是传入神经,其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢,反
射性引起血压降低。因此,刺激完整的减压神经或其中枢端,使传入中枢的冲动增加,致血压
明显下降,而刺激其外周端虽又冲动传向外周,但不会引起血压变化
3)刺激迷走神经末梢外周端,引起血压下降
在实验中,多用刺激右迷走神经外周端,其中的副交感神经纤维兴奋,释放乙酰胆碱,乙酰胆碱与
心肌细胞膜上的M受体结合,产生负性变时,变力,变传导作用,出现心率减慢,心输出量下降,血压下
降。
4)静脉注射去甲肾上腺素后血压升高:
[实验结果]各种影响因素引起动脉血压变化曲线图
[结果分析]
1.夹闭一侧颈总动脉15s后,观察到兔动脉血压升高的现象:
这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。
2.刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降,而刺激该神经外周端基本不变:
兔减压神经是传入神经,其作用是将主动脉弓感受器发出的冲动传入延髓心血管中枢,反
射性引起血压降低。因此,刺激完整的减压神经或其中枢端,使传入中枢的冲动增加,致血压
明显下降,而刺激其外周端虽又冲动传向外周,但不会引起血压变化。
3.刺激迷走神经后观察到,刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应,而刺激迷走中枢端则没有减压反应,只是稍有轻微抬升变化:
迷走神经中含从延髓下行的传出纤维,通向心脏。节前纤维末端释放Ach,节后纤维末端释放Ach,属于副交感神经纤维,能使cAMP浓度降低,心率减慢,心房收缩力减弱,传导性减弱。从而使心输出量变小,平均动脉压降低。此外,还有主动脉体化学感受器的上行纤维在迷走神经中并行,化学感受器受刺激的效应是血压升高。所以,刺激迷走中枢不能引起减压反应,却可以使血压轻微抬高。此外,若切断两侧迷走神经,迷走紧张消失,迷走吸气兴奋反射通路也断了,动物的吸气变深,周期变长,二级曲线周期性变得不明显。
4.加入0.2ml0.01%去甲肾上腺素后,观察到平均动脉压抬高。
这是由于去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2甲肾上腺素能受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大。只是缩血管效应更明显。
5.加入0.2ml0.01%乙酰胆碱后,观察到一级曲线周期变慢,平均动脉压下降。
Ach能使cAMP浓度降低,心率减慢,心房收缩力减弱,传导性减弱。心率变慢则流向外周的血量变多,舒张压更低。心房收缩力减弱则收缩压也有下降。平均动脉压降低。但是因为血回心时间变长,因此,回心血量较多,脉压增加。而大多数血管没有Ach受体,Ach 对外周阻力影响不大。
兔动脉血压调节(ZT)
2008-07-29 17:53:27
兔动脉血压调节
【实验目的】
观察神经和体液因素对血压和心率的影响;学习哺乳动物动脉血压(blood pressure)的直接描记方法。
【实验原理】
心血管活动主要受神经、体液和自身调节。神经调节一般是通过反射(reflex)的形式实现的,包括压力感受性反射 (baroreceptor reflex)、心肺容量感受性( cardiopulmonary receptor) 反射、化学感受性 (chemoreceptor) 反射等,通过改变交感及副交感传出神经的紧张性活动,调节心血管机能;体液调节则涉及肾素-血管紧张素系统(RAS)、肾上腺素和去甲肾上腺素、加压素、内皮缩血管因子(EDCF)、内皮舒血管因子(EDRF)、激肽、前列腺素(PGs)等多个方面。本实验将通过观察血压和心率来反映心血管活动的变化。血液充盈、心脏射血和外周阻力是形成血压的基本因素,上述调节机制可通过作用于上述3
个方面,调节动脉血压。
【实验动物】
家兔
【实验器材和药品】
BL-420E生物机能实验系统,血压换能器,兔手术台,哺乳动物手术器械1套,注射器数支,小烧杯1个,丝线(黑色、白色粗线)若干。3%戊巴比妥钠,生理盐水,0.3%肝素,1:10,000去甲肾上腺素, 5:100,000肾上腺素, 1:100,000乙酰胆碱。
【实验方法和步骤】
1.动物称重、耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1ml/kg麻醉,固定。
2.手术:
(1)分离右侧减压神经、迷走神经和颈总动脉作颈部正中切口6~7cm,分离皮下组织及肌肉,将颈部气管旁软组织外翻,可见与气管平行的一侧血管神经丛, 即为颈总动脉鞘,包括了颈总动脉和伴行的三条神经——最粗的迷走神经、最细的减压神经、交感神经。用玻璃分针分离出右侧减压神经、迷走神经和颈总动脉,各穿两根不同颜色的丝线备用。
(2)左侧颈总动脉分离、插管:在气管左侧用玻璃分针分离出一段至少长3~4cm的颈总动脉,穿两根线备用。结扎远心端,在近心端夹上动脉夹(二者距2~3cm)。在近远心端稍下方用眼科剪剪一“V”字形小口,插入预先灌满肝素的动脉插管,用丝线固定。
3.仪器连接:将连接动脉插管的血压换能器及刺激电极通过相应插孔连接在BL-420E系统的前面板上。打开BL-420E系统,选择项目“循环实验-兔动脉血压调节”,记录血压。
4.观察项目
(1)正常血压曲线描计:常见的正常血压波型有:一级波,为心搏波,伴随心脏收缩、舒张出现的血压波动,频率与心率一致;二级波,为呼吸波,伴随呼吸运动的血压波动,频率与呼吸频率一致。另外,偶尔还可见到三级波,为一种低频、缓慢波动,可能与血管运动中枢周期性的紧张性变化有关。
(2)神经体液因素对血压、心率的影响①牵拉颈总动脉:手持左侧颈总动脉远心端结扎线,向心脏方向以2~5次/秒有节奏的往复牵拉,持续5~10秒,观察血压、心率变化。②夹闭颈总动脉:用动脉夹夹闭右侧颈总动脉5~10秒,观察血压、心率变化。③刺激减压神经:用双极保护电极刺激右侧减压神经,观察血压、心率的变化。再用双线结扎减压神经,在结扎线中间剪断神经,以相同刺激参数分别刺激其中枢端和外周端,观察血压、心率的变化。
④刺激迷走神经:结扎并剪断右侧的迷走神经,分别刺激其外周端和中枢端,观察血压、心率变化。⑤去甲肾上腺素由耳缘静脉注射1∶10,000去甲肾上腺素0.2~0.3ml,观察血压、心率变化。⑥肾上腺素由耳缘静脉注射5∶100,000肾上腺素0.2~0.4ml,观察血压、心率变化。⑦乙酰胆碱由耳缘静脉注射1∶100,000去甲肾上腺素0.2~0.3ml,观察血压、心率变化。
【结果与分析】
1.正常血压
一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克(一) 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔(新西兰大白兔),2.5公斤,雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套,计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置,带三通针头的细塑料管2个,注射器若干,20%乌拉坦,0.3%肝素,去甲肾上腺素针剂,0.02g/L 肾上腺素,0.03g/L去甲肾上腺素,0.01g/L异丙肾上腺素,5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台,颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉,沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口,分离气管,再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经,穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明:给药体积均为0.2ml/kg;每次给药后可住生理盐水,将死腔内的药液注入静脉; 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 (1)夹闭一侧颈总动脉 (2)刺激一侧减压神经,双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端
(3)结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素
4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素
家兔缺氧实验报告 篇一:家兔解剖实验 一、实验目的 1. 通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察,掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2. 掌握哺乳纲动物的主要特征,理解其进步性特征 3. 熟练解剖动物的方法 二、实验原理 将家兔处死是利用静脉注射空气致死:向静脉注射空气后,进入血液形成空气栓,空气栓随血流回流至右心室,然后被送到肺动脉,造成肺栓塞,大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换,发生严重的缺氧和二氧化碳储留,导致猝死。 三、实验器材 活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等 四、实验步骤 1、外形观察,处死 家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短,躯干较长,背部有明显的腰弯曲。前肢短小,有5指,后肢较长,具4趾。尾短小,位于躯干末端,腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门,肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区,提
起此处皮肤,开口,打开皮肤。 取10ml注射器,抽入10ml空气,三个人按住兔子,用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿,注射空气,到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤 润湿腹部中间的毛,小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口,向上剪至颈部,用手术刀使皮肤和肌肉分离,将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔:原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察,肾脏冠切 从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处,暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到:胰腺:分散附着于(十二指肠)弯曲处的肠系膜上,为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃:囊状,横卧于膈肌后面,入口称喷门,出口称幽门。 小肠:肠管长而细,分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“ U ”形,空肠和回肠界限不易区分。 大肠:分为盲肠、结肠和直肠三段。盲肠为大肠的起始段,肠管最粗大,相当于一个发酵罐,其末端有蚓突,结肠表面有横褶,直肠细长。 膈肌:呈粉色,上面血多有放射状红色细丝 肾脏:移开胃后,可在其下观察到两肾,分布于两侧,
实验报告 专业班级:康复治疗技术2班实验小组:第四组姓名:卢锦锟实验日期:2015年11月10日 (一)实验项目:家兔动脉血压调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 (三)基本原理:(要求对写出关键点) 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定,动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化,间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL 、1mL )等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高,心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢,是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端,颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后,远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降,传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱,心交感和心缩血管紧张加强,作用于心脏,使心率加快,心输出量增加,血管收缩,血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大,交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统,是静脉收缩,促进血液回心,使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合,使血管收缩,管径变小,外周阻力增加,从而使平均动脉压升高。此外,去甲肾上腺素还可以使心率增加,心收缩力变大,因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合,骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用,因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强,因此心率加快,传导加速,心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体,使动腹腔内脏血管收缩,血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明:α受体阻断剂,α受体的作用:α受体为传出神经系统的受体,根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管,以及部分内脏血管,激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌,激动时瞳孔开大肌收缩,瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上,受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少,对其产生负反馈调节作用。 (四)实验主要设备和仪器、药品和用品(要求分类、简洁、清晰表述)
实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法,观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强,传导加速,从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经,兴奋时心率减慢,心脏收缩力减弱, 传导速度减慢,从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经,兴奋时血管收缩,外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩,促进静脉回流,心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动,改变心输出量和外周阻力,从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外,还受体液因素的调节,其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性,又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用,使心跳加快,收缩力加强,传导加快,心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体,对β受体作用很小,因而使外周阻力 增加,动脉血压增加,其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时,血 压升高,启动减压反射,可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械,兔手术台,BL-410 生物信号采集处理系统,压力换能器,刺激 电极,照明灯,万能支台,双凹夹,烧瓶夹,试管夹,气管插管,动脉夹,三通开关,动脉 导管,注射器(1ml、5ml、20ml),有色丝线,纱布,棉花,1.5%戊巴比妥钠,1000U/ml 肝 素生理盐水,1:10000 肾上腺素溶液,1:10000 去甲肾上腺素溶液,1:10000 乙酰胆碱溶液, 生理盐水。 【实验步骤】 1.连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2.手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5%戊巴比妥钠以 2.0ml/kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后,仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛,沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉, 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线,于甲状软骨下方 2~3cm处作“⊥”形切口,插入 气管插管,以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中,迷走神经最粗,交感神经次之,减压神经最细,常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉,并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U/kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动
金山学院课程实习报告报告题目《家兔活体解剖课程实习》课程名称《家畜解剖学》 实习地点动物医学家畜解剖实验室实习时间2014年12月14日 专业动物医学 年级 2014级 学生姓名陈意 学号 0146726093
(一).实验日期2014年12月14号(8:00~11:30) (二).家畜品种:家兔 性别:母 年龄:未知 放血后重:6.98斤 体长:75cm (三).解剖程序和观察内容 1.活体观察 ?毛色:浅棕色前后关节:健全 ?观察巩膜为白色,瞳孔为椭圆形,眼结膜粉红色、正常 ?健康状况:良好鼻镜:湿润眼神:呆滞 2.处死 ?磨刀,绑定。 ?用手术刀切开颈动脉。进行放血。 ?放血后,用手触摸睫毛,判断是否死亡。 ?放血后称重。 3.剥皮 ?在四肢系部环切,再沿内侧正中线纵切至腹正中线。从下颌至肛门沿腹正中线做纵切 切开皮肤。
?在正中线处向外顺序剥开皮肤,剥皮时其他人员将皮拉紧,沿皮下组织层切割。先剥 四肢后剥躯干。 4.观察肌肉 ?冈上肌、冈下肌、肱三头肌斜方肌、背阔肌 臀浅肌、阔筋膜张肌、臀股二头肌
5.胸、腹部解剖观察 ?沿着腹底正中心线切开,并剪断胸壁所有肋骨的下端和隔肌的附着线,便可把整个胸 腔、腹腔暴露在外 ?肺、气管、食管(在腔静脉的背侧有气管,气管的背侧偏左有食管) ?心脏(观察心的外形,分清进出心腔的主动脉,前、腔静脉,肺动脉,肺静脉。分清 心房心室的部位,以及心耳部位 ?小肠,大肠
小肠分为十二指肠、空肠、回肠。大肠分为盲肠、结肠、直肠 测量肠管的长度:在胃的幽门后、降结肠入骨盆腔处及总肠系膜根部双结扎。把整个肠管摘除。把各段肠管的系膜分离。拉直肠管测量各段长度。 ?肝、胆囊、脾、胃 ?胰散在于十二指肠间的肠系膜中,形如脂肪 ?肾红褐色,卵圆形,位于最后肋骨和前两个腰椎横突的腹侧面。光滑单乳头肾。
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材:手术台,止血钳,眼科剪,BL420E+生物机能分析系统,气管插管,动脉套管,动脉夹,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器 试剂:生理盐水,肝素,乌来糖(麻醉剂),肾上腺素,乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 (1)麻醉取家兔一只,称重,耳缘静脉注射麻醉剂(1g/kg)进行麻醉。麻醉过程要缓慢,当动物角膜反应迟钝,掐其大腿无反应,即可停止注射,避免过度麻醉致死。 (2)将动物背位交叉固定,将颈部喉结下部毛剪掉。 (3)仅靠喉结下缘,沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口,将皮下结缔组织钝性分离,至露出气管,穿线,用手术刀在气管上做一横切口,插入气管插管,结扎。 (4)分离颈部神经血管:分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织,在接近气管外侧,有一条较细,壁厚的血管,即为主动脉血管(可看出里面血流规律性搏动)。与主动脉伴行的有两条较粗的神经,最粗的为迷走神经,其次为交感神经,两者之间有一条很细的神经,减压神经。但减压神经的位置不固定,两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经,可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后,分离出减压神经,迷走神经,主动脉血管,分别穿线备用。 (5)动脉套管插入:动脉套管插入前,需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管,至将其中所有空气由插孔处排出,用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后,用动脉夹夹住近心端,远心端动脉结扎,在两者之间剪一小口,迅速插入动脉套管(动作迅速,否则动脉管腔急剧收缩,难以插入套管),用线将动脉插管固定于动脉内,并挂在套管(缠一圈胶布)上,以免滑脱。 (6)松开动脉夹,即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验,记录曲线。 2.曲线描记 (1)描记一段正常曲线,识别一级波(心波),二级波(呼吸波)。 (2)提起另一侧颈总动脉的备用线,动脉夹夹闭5-10s,观察记录血压变化,分析原因。(3)中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经,观察血压变化。双结扎后切断,再刺激减压神经神经的中枢端和外周端,观察记录血压变化。 (4)对另一侧迷走神经进行同样处理,分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。(5)耳缘静脉注射肾上腺素,观察血压变化。 (6)耳缘静脉注射乙酰胆碱,观察血压变化。
°实验五:小鼠解剖实验 吴雪薇121140059 一、实验目的 1、通过实验学习给小鼠注射、灌胃等技术操作 2、了解戊巴比妥对哺乳动物的影响 3、复习解剖的基本操作 4、通过实验了解小鼠唾液腺的结构 5、通过实验了解小鼠体内器官、系统构造 二、实验原理 1、小鼠唾液腺 唾液腺由颌下腺、腮腺、舌下腺组成,颌下腺最明显,颌下腺两边弥散的是腮腺,舌下腺连于颌下腺上,容易与颌下腺上连的淋巴结搞混。 2、会厌软骨 会厌软骨即构成会厌的软骨,形状扁平,像树叶,下部附着在喉结的内壁上。会厌是喉头上前部的树叶状结构,由会厌软骨和黏膜构成。呼吸或说话时,会厌向上,使喉腔开放;咽东西时,会厌向下,盖住气管,使东西不至进入气管内。 3、小鼠体内结构 (1)胸腔:胸腔内的结构主要有食道、心、肺。 (2)腹腔:主要有胃、肝、胆、胰、脾、肠、肾(包括肾上腺)、输尿管、膀胱和生殖器官:卵巢、输卵管、子宫(雌),睾丸、附睾、精囊腺、输精管(雄)。 (3)胸腔与腹腔由膈膜隔开。 三、实验器材 注射器、烧杯、灌胃针、解剖盘、解剖剪刀、镊子、解剖针、钉子 四、实验材料 小鼠1只、戊巴比妥溶液 五、实验操作 1、抓取一只小鼠,拎住尾巴根部,使其前肢抓在抹布上,后肢提起,用注射器 向其腹腔注射0.5ml戊巴比妥溶液。 2、将小鼠放在烧杯中,观察它的反应。 3、待小鼠不再动时,用注射器向其腹腔再注射0.5ml戊巴比妥溶液,使其死亡。 4、将小鼠放在解剖盘上,用大头针将四肢固定在解剖盘上。 5、用解剖剪刀,从靠近肛门处剪开表皮直至口腔,观察唾液腺。 6、剪开口腔,观察会厌软骨。 7、剪开腹腔和胸腔,观察小鼠体内结构。 8、处理小鼠,清洗、整理实验器材。 六、实验结果 1、观察注射戊巴比妥溶液后的小鼠 本次实验第一次注射,注射了0.4ml的戊巴比妥溶液,第二次注射了0.6ml。
生理兔子实验报告 主题:血压测量、呼吸运动调节 实验班级:151541 实验小组:第三组 实验日期:2016年5月31日 具体分工:主刀:李睿哲 副手:朱梦洁、周紫星 麻醉:陈海芹、谢明思 器械管理:李部 实验数据记录整理:毕长鹏 一、实验目的: 通过对兔子的观察、研究和分析,更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程,更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理: 正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要,动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物,观察动脉血压的变化情况,可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行,并与机体代谢水平相适
应,主要是由于体内外各种刺激,可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢,反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材: 实验动物:一只健康兔子( 实验试剂:20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备:兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统,通道1接通压力换能器,通道2接通呼吸流量换能器,从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的(学生)实验”,使显示器显示压力和呼吸的读数,并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水,使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注,同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化,如果压力下降,则需要检查液导系统的漏液原因,并重新制压。调节血压显示器的灵敏度,使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 (1)按照实验4-9方法,麻醉家兔并进行颈部手术,插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过,轻轻张开止血钳,分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁,外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线,分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管侧压,另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同,个体之间也有差异,常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认,蓄意对血压的影响为准。 (2)动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素(200U?kg体重)以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下:将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧,以防渗血),然后在另一备用线的向心侧(尽可能近心端),用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线,用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方,沿向心方向斜向剪开动脉上壁(注意:不可只剪开血管外膜,也切勿剪断整个动脉,剪口大小约为管径的一半)。一手持弯头眼科镊,将其一个弯头从剪口处插进动脉少许,轻轻挑起剪开的动脉上壁,另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅,可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁,另一手拿住动脉插管,顺势轻轻推进至6~8mm左右(如果手感滞涩,说明插管并未进入动脉,必须退出插管,重新剪口再插),用备用线将动脉连同进入的插管扎紧(插管不可因扎线松动而滑出,亦不可漏液),并将余线系在插管的固定侧支上,以免滑脱。注意:插管应与动脉血管的方向一致,以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹,可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳,此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
狗的解剖实验报告 篇一:解剖母鸡实验报告 实验报告--母鸡的解剖 试验时间:XX年12月7日 一、解剖程序 把鸡处死,方法:在鸡的颈部靠近头处开口放血致死,然后进行解剖观察 二、观察内容 (一)消化系统 1. 口腔:无软腭,无唇齿,有上下喙,舌形态与喙相似。 2.嗉囊:食管的膨大部,位于叉骨之前,直接在皮下,偏右 2. 腺胃:纺锤形,粘膜层有胃腺 3. 肌胃:紧接腺胃,近圆形,呈暗红色,粘膜面被覆的角质膜又称鸡内金 4. 十二指肠:位于腹腔右侧,前端与肌胃相接,灰白色,管状
5. 空肠:前接十二指肠,后接回肠,灰白色,管状 6. 回肠:前接空肠,后接结直肠,夹在两条盲肠之间,灰白色,管状 7. 直肠:管腔较大,自回盲口直达泄殖腔 8.盲肠:一对相对很长的盲肠,壁内有丰富的淋巴组织,基部处集成盲肠扁桃体 9.泄殖腔:是消化泌尿生殖系统后端共同通道,由前向后分为粪道泄殖道肛道 10.胰腺:夹在十二指肠肠袢之间,淡黄色,长条形 11. 肝:位于腹腔前下部,暗褐色,分左右两叶,右叶内侧有一绿色胆囊 (二)呼吸系统 1.气管:较长而粗,半透明管状,位于皮下,偏右,进入胸腔在心基上方分为两个支气管 2. 鸣管:位于气管与支气管交叉处,分鸣骨和内外鸣膜,是发声器官 3. 肺:鲜红色,位于胸腔背侧,有很深的肋压迹。 4.气囊:肺内支气管粘膜突出形成,外被浆膜。
(三)心血管系统 心脏:位于胸腔前下方,心基朝向前方,椎体形 (四)生殖系统 1. 卵巢:位于左侧前半部的腹侧,上有大小不一的卵泡。 2. 输卵管:分为:漏斗部,壶腹部,峡部,子宫,阴道五部分 壶腹部:受精部位 壶腹部:卵白分泌部位 峡部:形成卵壳膜 子宫部:形成卵壳 阴道部:在蛋壳外面形成一层角质薄膜 (五)淋巴系统 1.腔上囊(法氏囊):位于鸡的泄殖腔的背侧,是泄殖腔的一个盲囊 2.脾:位于腺胃和肌胃交界处背侧,深红色 (六)泌尿系统
家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作,掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit),雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统,呼吸换能器(pressure-gradient transducer) 1.3 药品试剂20%乌来糖(urethane),12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate),5%碳酸氢钠(Sodium bicarbonate),N2,CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重,按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔,家兔麻醉后将其仰卧,固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5~7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用,用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管,结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录(observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液,注射速度5-6 ml/min,观察家兔呼吸运动的变化。10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量,按4 ml/min速度静脉注射,观察呼吸变化。10 min后,颈总动脉采血0.5 ml,作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线
实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号:2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应, 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心 端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验 系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果: 1.正常心率和血压:260次/分,115mmHg。
家兔血压实验报告文件排版存档编号:[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器
家兔动脉血压调节实 验
一、家兔动脉血压调节 (一)实验目的 本实验通过动脉血压的变化来反映心血管活动的变化。目的在于间接地观察心血管活动的神经体液性调节和学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法。 (二)实验原理 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强,传导加速,从而使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经,兴奋时心率减慢,心房收缩力减弱,房室传导减慢,从而使心输出量减少。 支配血管的植物性神经,绝大多数属于交感缩血管神经,兴奋时使血管收缩,外周阻力增加。同时由于容量血管收缩,促进静脉回流,心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用,调节心血管的活动,改变心输出量和外用阻力,从而调节动脉血压。 心血管活动除受神经调节外,还受体液因素的调节,其中最重要的为肾上腺素和去甲肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性,又有特殊性。肾上腺素对α与β受体均有激活作用,使心跳加快,收缩力加强,传导加快,心输出量增加。它对血管的作用取决于两种受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活受体α,对β受体作用很小,因而使外周阻力增加,动脉血压增加。其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时,血压升高,可反射性地引起心动过缓。 (三)实验材料 1.实验对象:兔。
2.器材:四道生理记录仪、血压换能器、电刺激器、保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、照明灯、铁支架、双凹夹、烧瓶夹、试管夹、气管插管、动脉夹、三通管、塑料动脉插管、放血插管、注射器(lml、5ml、 20ml),有色丝线、纱布、棉花、1%戊巴比妥钠、1:1000肝素、1:10000去甲肾上腺素、12.5U/ml肝素生理盐水,生理盐水。 (四)实验方法 1.实验记录装置 将血压换能器固定在铁支架上,换能器的位置大致与心脏在同一水平。将换能器电缆与二道生理记录仪的血压放大器输人插座相连(图6-18)。按照前述二道记录仪的使用方法调整记录仪。对血压放大器定标,校正选择开关拨至 13.3kPa(100mmHg),灵敏度置于50,记录描笔上移2cm。通过三通管向换器压力小室及动脉插管内注满肝素生理盐水,排尽气泡,并预先加压至 13.3kPa,检查有无漏液。 四道生理记录仪——血压换能器装置 记录仪灵敏度一般置于 50或 100档,计时置 10s,走纸速度 0.5~lmm/s。 2.手术 动物的麻醉与固定:用l%戊巴比妥钠以30~35mg/kg体重的剂量由耳缘静脉缓慢注入。动物麻醉后,背位固定于手术台上。 气管插管:剪去颈部的毛,沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉,暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线,于甲状软骨下方2~3cm处作”“⊥”形切口,插入气管,以丝线结扎固定。
实验题目:传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级:12级临七3班姓名:廖梦宇学号: 2012021320 一、实验原理: 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应,导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化,分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的: 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤: 1.麻醉:取家兔,称重,用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射; 2. 备皮:麻醉后,将家兔仰位固定于手术台上,剪去颈部的毛,
正中切开颈部皮肤; 3. 气管插管:分离气管,在气管上作一倒“T”型切口,插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管:自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm,动脉下穿两根丝线。结扎远心端,近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后,插入颈总动脉,并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压:将压力传感器连接于主机前面板的1通道,打开BL-410生物机能实验系统,将1通道设置成血压和心电,点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min,记录正常血压和心率。 7. 给药:按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药:按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药:按下列顺序静脉给药
实验六:家兔动脉血压的神经体液调节 影响尿生成的因素 【实验目的】 1. 间接观察心血管活动的神经体液性调节 2. 学习哺乳动物动脉血压的直接测定方法 3. 学习用膀胱插管法记录尿量的方法 4. 观察与分析几种因素对尿生成的影响 【实验原理】 在正常生理情况下,人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经体液因素的调节而实现的。参与支配心血管活动的神经主要有心交感神经和副交感神经。体液因素主要为肾上腺素和去甲肾上腺素。他们的作用主要是通过对心脏收缩力、心率、房室传导速度、心输出量、外周阻力等的调节来实现的。 尿的生成过程包括三个相互联系的环节: 肾小球的滤过:血浆中除了红细胞和绝大部分血浆蛋白以外的成分,都从肾小球滤过而到达肾小囊的囊腔,形成原尿。 肾小管与集合管的重吸收:原尿进入肾小管,经过肾小管、集合管的重吸收处理,约99%的水分及Na+、K+和葡萄糖等成分被重洗手回血液中。 肾小管和集合管的分泌:在重吸收的同时,肾小管与集合管还能通过分泌活动,使某些血浆成分清除到管腔中,最后从尿中流出。 凡能影响这三个过程的神经体液等因素,都可影响尿的生成,引起尿量的变化。 【实验材料和器材】 仪器:兔手术台,生理记录仪,压力传感器,保护电极。 器材:哺乳动物手术器械,铁支架,双凹夹,气管插管,动脉夹,动脉插管,止血钳,注射器,棉线,纱布,棉花。 材料:家兔。 试剂:25%乌拉坦,1:10000肾上腺素,12.5U/ml肝素生理盐水,生理盐水(台式液)【实验步骤】 1. 连通液导系统 将压力传感器的一侧支管,通过输液管连接动脉插管。用装有20mL12.5U/ml肝素的注射器向另一侧支管内推注,使整个液导系统充满液体后,用止血钳夹住推注肝素端的侧管。 注意:液导系统内不可有气泡。 2. 动物的麻醉与固定 取一只动物,称重,2.3kg。用25%乌拉坦以4 mL/kg体重的剂量,由耳缘静脉远端缓慢注入,共注入约8ml的药量。动物麻醉后背位固定于兔手术台上。
竭诚为您提供优质文档/双击可除 家兔缺氧实验报告 篇一:家兔缺氧实验 家兔低张性缺氧(hypotonichypoxiaofRabbit) [实验目的]:缺氧指组织供氧不足或用氧障碍,从而引起细胞代谢,功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。缺氧分为低张性缺氧,血液性缺氧,循环性缺氧,组织性缺氧四种类型。本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。 [实验动物]:家兔 [实验药品及器材]: bL-410生物机能实验系统,动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。 [实验步骤]: 1.称重,全麻(3%戊巴比妥钠,1ml/kg),固定,剪毛。 2.气管插管,颈总动脉插管,剑突连拉力换能器描记呼吸。
3.描记正常血压,呼吸(频率/节律),心率,口唇颜色。 4.将气管插管与缺氧瓶连接,记录缺氧开始后上述指标变化。 〔实验结果〕 血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色 正常 缺氧5min 缺氧10min 缺氧20min 〔讨论〕: 1.缺氧早期,呼吸加深加快,心率加快,粘膜及血液颜色变化不大。机制如下: 本实验中,家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通,呼出的co2被钠石灰吸收,吸入气体的氧分压不断下降,最终导致pao2下降,当pao2<60mmhg的时候,便可以引起如下变化:由于上述机体代偿性改变,pao2有所恢复,脱氧血红蛋白仍小于5g/dl,故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。 2.缺氧晚期:pao2越来越低,过低的pao2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。使机体处于失代偿状态,出现呼吸减慢或不规则,血压↓,心率↓此时pao2↓↓,cao2↓↓。脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀(cyanosis)。
不同因素对家兔动脉血压的影响 摘要:目的掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法,以及家兔动脉血压的体液因素(去甲肾上腺素、乙酰胆碱)与神经因素(迷走神经及主动脉神经)对心血管活动的影响。方法运用动脉插管的方法,分别静脉注射NE和Ach、改变血容量、电刺激迷走神经和主动脉神经的中枢端及外周端,并用生物信号采集处理系统RM6240记录家兔动脉血压的变化情况。结果加入NE后,平均动脉压升高,心率减慢;加入Ach后,心率变慢,平均动脉压下降;突然夹闭一侧颈总动脉后,观察到兔动脉血压升高,突然松开后,血压下降,回复到正常水平;刺激完整减压神经及其中枢端均可引起血压下降,而刺激该神经外周端基本不变;刺激迷走神经和迷走神经外周端都能引起明显的减压反应,而刺激迷走中枢端则没有减压反应,只是血压稍有抬升变化。结论体液因素与神经因素最终都通过产生与α受体β受体以及Μ受体的作用产生对心血管活动的影响,NE能使血压上升;Ach,刺激迷走和减压神经能使血压下降;同时证明减压神经是传入神经,迷走神经是传出神经。 关键词家兔;动脉血压;动脉插管;NE;Ach;迷走神经;主动脉神经 1.材料与方法 1.1.实验对象:家兔; 1.2.实验仪器:RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,眼科剪1把,止血钳,镊子,电 刺激连线,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,铁架台,婴儿秤,输液装置,照明灯,有色丝线,纱布; 1.3.实验药品和试剂:20%氨基甲酸乙酯,1000 U/mL肝素,0.1g/L去甲肾上腺素,0.01g/L 乙酰胆碱,生理盐水; 1.4.实验方法 1.4.1.动物准备: 1.4.1.1.麻醉固定:家兔称重后,按5ml/kg体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯。待 兔麻醉后,将其仰卧放置于兔台上,先后固定四肢及兔头。 1.4.1. 2.手术:用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开颈部皮肤5~7cm,钝性分离颈部肌肉暴露 颈部气管和血管神经鞘,用玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经和迷走神经,穿细线 备用,用玻璃分针分离两侧颈总动脉,各穿一线备用。 1.4.1.3.动脉插管:在左颈总动脉中枢端结扎,外周端用动脉夹夹住,并在动脉下端预先穿 以细线备用。用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型切口,将动脉插管向 心方向插入颈总动脉内,扎紧固定。打开动脉夹。 1.4. 2.实验装置与连接: 1.4. 2.1.将压力换能器固定于铁支架上,使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平 面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。压力换能器的另一 端与三通管相连。三通管的一个接头与动脉插管相连。在将动脉插管插入左颈总动 脉前,先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连,旋动三通管上的开关,使动 脉插管与注射器相通,推动注射器,排空动脉插管中的气体,使动脉插管内充满肝 素溶液,然后关闭三通管。 1.5.实验观察: 1.5.1.记录正常血压曲线。 1.5.1.1.静脉注射去甲肾上腺素:家兔耳缘静脉注射0.3ml去甲肾上腺素,记录观察血压变 化,待血压曲线显示正常后再进行下一个实验。 1.5.1. 2.静脉注射乙酰胆碱:家兔按0.1ml/mg体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰胆碱,
[目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统,接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条,使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管,通过输液管连接三通管,再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器,通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注,使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后,再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注,直至充满压力传感器的上方支管,并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有