书山有路勤为径，学海无涯苦作舟
微生物粪便标本的采集和处理
粪便标本的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、肠道菌群、真菌涂片、结核菌涂片。下面是yjbys 小编为大家带来的微生物粪便标本的采集和处理知识，欢迎阅读。
一、检验项目
粪便标本的细菌培养、真菌培养、结核菌培养、肠道菌群、真菌涂片、结核菌涂片。
二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。
【标本送检指征】
1.急性腹泻：大便次数明显增多，腹痛，里急后重，往往伴有发热，大便性状为粘液便或脓血便。
2.慢性腹泻：大便次数多，多为稀便，伴有全身乏力等症状。
3.无痛性大量水样便或米泔样稀便。
4.先吐后泻：恶心、呕吐、腹痛、腹泻。有集体发病史，多为细菌性食物中毒所致。
5.抗生素治疗后腹泻：常发生于长期抗生素治疗后，糊状便，排便次数增加。
6.高热惊厥：通常为中毒性痢疾，多见于婴幼儿和小儿。
【标本的采集容器】
一次性无菌便盒。
【标本的采集方法】
1.自然排便采集法：自然排便后，调取有脓血粘液部位的粪便
临床检验室 粪便标本采集与处理程序版本：第一版 页号/总页数：1/4 粪便标本采集与处理程序 1 目的 有效地指导粪便标本的采集、接收及保存，使标本中的待测成分不受影响，保证检查结果准确可靠。 2 标本适用的检验范围 适用于粪便常规检查(包括人体寄生虫形态学检查)、粪便潜血和粪便中幽门螺杆菌免疫学检测标本的采集、接收及处理。 3 职责 3.1 粪便标本由患者亲自或临床医护人员帮助采集。临床医护人员必须明确通告粪便标本的采集要求及注意事项；检验人员有义务向患者解释标本采集中的各种问题和为临床提供检验项目标本采集的类型，标本量，保存条件，注意事项，生物参考范围及临床意义等。 3.2 粪便标本的运送应由患者亲自或临床卫生员运送。 3.3 检验后粪便标本由检验人员或检验科卫生员按相关程序进行处理。 4.工作程序 4.1 患者准备 粪便标本一般由患者亲自或由护理人员帮助按照医嘱留取。为了正确收集粪便标本，医护人员应该根据粪便检验项目的目的，口头和书面指导患者如何正确收集粪便标本及注意事项。 4.1.1 避免污染：应避免月经血、尿液、消毒剂及污水等各种物质污染粪便标本。 4.1.2 明确标记：患者的姓名、性别、年龄、科别、床号、留便时间、标本种类等，应明确标记在容器上。 4.2 申请者的指导 4.2.1 申请者必须对患者讲清楚尿液标本检验的目的，留取粪便标本的量及注意事项。 4.2.2申请者应向患者讲清楚收集粪便标本前禁止服用的食物、药物(潜血检测化学法禁服铁剂及限定素食三天后留取标本)。 4.3 申请单的填写 检验项目申请时，必须注意：①临床医生：应完整填写申请单各项内容，字迹必需清楚，包括患者姓名、性别、科别、床号、住院号、申请序号、标本类型、临床诊断或主要症状、采集标本日期和时间、申请检查的实验项目、标本收到日期和时间及特殊说明如应用的药物等。②临床医护人员：必须根据检验申请单所需检验项目，做好患者准备和标本采集。③检验人员：必须收到临床医生书面检验
常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入
粪便常规检查标本采集指南 1.采集粪便标本的方法因检查目的的不同而有差别，一般检验留取新鲜的自然排出的粪便3～5g，必要时可肛拭子采取，放入干燥、清洁、无吸水性的有盖容器内，贴好标识送检。细菌检查的粪便标本应收集于灭菌封口的容器内，勿混入消毒剂及其他化学药品。 2.盛粪便标本的容器必须有盖，有明显标记。要选取粪便的脓、血、粘液等异常成分进行检查。表面无异常时应从粪便表面、深处及粪端多处取材；采取标本后及时送检，否则可因PH 及消化酶影响，而使粪便中细胞成分破坏分解。 3.不应留取尿壶或便盆中的粪便标本。若标本中混入尿液，可导致某些项目检测结果出现错误。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等异物，易混淆实验结果。不应该从卫生纸或衣裤、纸尿裤等物品上留取标本，不能用棉签有棉絮端挑取标本。 4.做大便隐血试验时，应嘱咐患者于检查前3d内禁食肉食、含动物血的食物、某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对试验有干扰作用的药物。选取外表及内层粪便收集于合格容器内及时送检，长时间放置可使检验的敏感度降低。 5.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围褶皱处拭取标本，并立即送检。 6.检查血吸虫卵时应取黏液、脓、血部分，如须孵化毛蚴应留取不少于30g的粪便，并尽快送检。必要时留取整份粪便送
检。
7.检查痢疾阿米巴滋养体时，应床边留取新排出的粪便，从脓血和稀软部分取材，并立即保温送实验室，并且实验室接受标本后应立即进行检查。 8.细菌检验用标本应全部用无菌操作收集于灭菌封口的容器内。特殊检验项目留取标本时请预先联系。 （注：专业文档是经验性极强的领域，无法思考和涵盖全面，素材和资料部分来自网络，供参考。可复制、编制，期待你的好评与关注）
微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤
寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查
微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
微生物粪便标本采集与处理 （一）目的 有效地指导粪便细菌及真菌培养标本的采集、接收及保存，使粪便培养结果尽量不受干扰因素的影响，保证检测结果准确可靠。 （二）适用范围 适用于粪便细菌及真菌培养的标本的采集、接收及处理。 （三）工作程序 1.患者准备及原始标本识别 （1）腹泻患者应在急性期、抗菌药物治疗前及时采集粪便。 （2）粪便标本采集前，护士应遵照医嘱准备好标本采集所用的容器。首先确认患者姓名，并将患者一般信息的条码标识写在（贴于）无菌容器上。 （3）标本留取前应向患者做适当解释，以利于明确检测目的，获得更好的配合。 （4）原始标本以"电子申请单的条码号"为唯一标识。 2.粪便培养标本采集的方法、容器、类型和量 （1）粪便标本采集方法：一般细菌培养，采用自然排便法，自然排便后，挑取有脓血、黏液部位的粪便5克，液状粪便取絮状物盛于无菌的防漏大便盒内送检。无法获取粪便时，可采取直肠拭子采集，将拭子自肛门括约肌谨慎地插入约2.5厘米，轻轻转动拭子刮取标本，取出后插入灭菌试管内送检。如做大便的厌氧菌培养应尽量避免与空
气接触。 （2）采集容器：无菌、防漏、带匙的密封大便盒，或装有直肠拭子的试管。 （3）采集量：常规培养仅需5克左右（指头大小）新鲜粪便。 （4）注意事项：进行细菌培养的标本应留取新鲜粪便的异常成分，如黏液、血液（红色或黑色部分）;若无异常成分，可各个部位取材，不得被其他异物污染，不能从尿布上取粪便标本，不得从尿壶或便盆中取标本。 3.粪便标本的运送 （1）门诊患者的粪便标本由患者本人或家属运送及物流传输装置自动传送;住院患者的粪便标本由护士、临床专职外送卫生员运送。 （2）送检地点：按规定。 （3）粪便常规培养标本及直肠拭子采集后立即送检，延迟不得超过1小时到实验室。保存4℃少于24小时。 （4）粪便标本的运送必须保证运送过程中的安全，防止溢出。标本溢出后，应按相关规定处理。 4.粪便标本的接收与拒收标准 （1）实验室接收合格粪便标本 检验申请单应为电子格式，内容必须齐全，粪便标本容器标识应符合程序要求，标本标识应与检验申请单的相应内容一致。 粪便标本采集后应立即送检，不能及时送检的标本应采取保存措施，参照有关程序。
粪便标本采集法 【目的】 1、常规粪标本检查粪便的颜色、形状及有无脓血。 2、隐血粪标本检查粪便内肉眼不能看见的微量血液。 3、寄生虫及虫卵粪标本检查寄生虫成虫、幼虫及虫卵并计数， 进行浓缩集卵、日本血吸虫毛蚴孵化等。 4、培养粪标本检查粪便中的致病菌。 【操作前准备】 1、患者评估 （1）了解患者的临床诊断及合作能力。 （2）了解需做的检查项目，以明确收集粪便标本的种类及注意事项。 2、患者准备使患者了解留取粪标本的目的、意义和方法，能够 配合， 3、用物准备干净便盆，常规检查应备集便盒（内附棉签2支）， 粪便培养应备培养皿，寄生虫检查应备寄生虫检便盆。 【操作步骤】 1、核对医嘱，贴检验单副联于集便盒上。 2、核对患者姓名，做好解释。 3、告知患者正确的留取方法。 （1）常规粪标本采集：用棉签取较中央的粪便或脓血黏液部分少许于集便盒内。
（2）培养粪标本采集：解大便之前用消毒液冲洗肛门，用无菌棉签取粪便中央处置于培养皿中，盖好盖子。如患者无便意时可用 无菌棉签蘸取等渗盐水，由肛门插入6-7cm，轻轻转动棉签取 出粪便少许，插入培养试管中送检。 （3）寄生虫及虫卵标本采集：如查阿米巴原虫，便盆需要先加温，因阿米巴原虫在低温下失去活力难以找到，便后连同便盆立即 送检；查绦虫有时需多次收集粪便，查找绦虫头；查虫卵则需 取大便的黏液脓血部分；查蛲虫虫卵，需在患者清晨起床前用 特制的肛门拭子轻擦肛周皱褶处，放入置有温盐水的试管中立 即送检。 4、标本及时送检，做好记录，追踪记录检验结果。 【注意事项】 1、采集培养标本应取未接触便盆的大便，注意无菌操作，以免因 污染而影响培养效果。 2、若留取的标本时做隐血试验，则嘱患者在检查前三天禁食肉、 肝、肉类食物、含大量叶绿素的食物和含铁剂的药物。 3、如留取寄生虫或虫卵粪标本时，当服用驱虫剂或做血吸虫孵化 检查，需留取全部粪便送检。 【患者教育】向患者解释留取粪标本的目的、操作过程及注意事项。【评价】 1、标本采取方法是否正确，是否及时送检。 2、标本是否符合要求，有无污染。
临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 （1）采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，根据检验的不同要求，采血的时间也不同： 1）空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。 2）餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3）急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK ）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4）血清淀粉酶起病后6～12小时开始升高，12～24小时达到高峰，一般持续3～5天后下降，超过500U （Somogy 法）即有确诊价值。 5）留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 （2）采血部位 1）动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2）静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。 3）毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。 （3）采血器材：a, 注射器， B ，真空采血器： （4）标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 1）全血：用抗凝剂。 2）血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。 3）血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。 （5）操作重点 1）止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。 2）当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。 3）注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4）操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5）有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法： （1）导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法：是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1：1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20毫升于无菌容器内，立即加盖送检。 尿标本采集注意事项： （1）尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送
1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本
粪便标本采集、理学检查 一、标本采集 （一）标本容器 盛标本的容器应清洁、干燥、有盖，无吸水和渗漏。细菌学检查，粪便标本应采集于灭菌、有盖的容器内。 （二）标本采集 1.采集标本的量 一般采集指头大小（约3～5g）的新鲜粪便。 2.送检时间 标本采集后一般应于1h内检验完毕，否则可因pH值改变及消化酶的作用等，使有形成分分解破坏及病原菌死亡而导致结果不准确。检查阿米巴滋养体时，应于排便后立即检验，冬季还需对标本进行保温处理。 3.采集标本的性质 应尽可能挑取含有黏液、脓血等异常成分的粪便。外观无明显异常时，应于粪便内外多点取样。 4.隐血试验标本 隐血试验时，应嘱咐患者素食3d后留取标本，禁服维生素C及铁剂等药品。 5.特殊情况的标本 无粪便排出而又必须检验时，可采用肛门指诊或采便管采集标本。 6.寄生虫检验标本 检查蛲虫时需要用透明薄膜拭子或棉拭子于清晨排便前拭取肛门四周，并立即镜检。 7.24h标本 检查胆石、胰石、寄生虫体及虫卵计数时，应收集24h内粪便送检。 二、理学检查 （一）量 粪便量的多少与进食量、食物的种类及消化器官的功能状态有直接关系。进食粗糙粮食及含纤维素较多的食物，粪便量相对较多。反之，则相对较少。 （二）外观 1.性状 正常成人粪便为成形的、黄褐色软便，婴儿粪便多为黄色、金黄色糊状便。 （1）黏液便：常见于各种肠炎、细菌性痢疾及阿米巴痢疾、急性血吸虫病等。小肠炎症时，增多的黏液均匀混合于粪便之中，而来自大肠病变的黏液则一般附着于粪便表面。 （2）鲜血便：提示下消化道有出血，常见于肛裂、痔疮、直肠息肉及结肠癌等。 （3）脓便及脓血便：常见于细菌性痢疾、阿米巴痢疾、溃疡性结肠炎、结肠癌或直肠癌等。其中细菌性痢疾以脓及黏液为主，脓中带血；阿米巴痢疾以血为主，血中带脓，呈果酱样。 （4）柏油样便：上消化道出血，超过50ml时粪便呈黑色或褐色、质软有光泽，柏油样。服用铋剂、活性炭排出黑色便，但无光泽，隐血试验为阴性。 （5）胨状便：呈黏胨状、膜状或纽带状物，多见于肠易激综合征患者腹部绞痛之后。
微生物标本采集大全 日期:2015-12-17 20:44:38 来源:中华检验医学网点击:21 次 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、骨髓的采集
临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题一填空（15分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿＿套血培养，一套血培养包括一个＿＿＿＿ ＿和＿＿＿＿＿，“双侧双套”是指＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿。 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿＿＿＿＿；若从导 管取血，必需同时从＿＿取血。 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿＿小时以上，所以夜间 最好＿饮水。尿液培养标本宜立即送检，＿小时内接种。 4、抽血培养时的皮肤消毒程序：首先＿＿＿＿擦拭静脉穿刺部位30秒，再用＿＿ 30秒或＿＿60秒；最后用＿＿脱碘并待干。 5、婴幼儿采血量不能超过全血量的（）不能少于（）ML. 6、空气细菌培养（自然沉降法） （1）、采样时间:选择后与进行之前采样。 (2)、采样高度:与地面垂直高度米（洁净手术室等除外）。 (3)、布点方法（洁净手术室除外） （3、1）、室内面积，设一条对角线取三点，即中间一点，两端各距墙1米处各取一点。 （3、2）、室内面积，设两条对角线，于东、西、南、北、中取五点，其中东、西、南、北距墙均1米。 （4）、采样方法及培养时间:用直径普通琼脂平皿放置各采样点，打开后盖面朝＿＿斜扣到底盘，在采样点准确暴露规定时间后盖上平皿盖，及时送检。 （5）、要求标准: （5、1）门诊手术室、美容科手术室、宫腔镜室、介入科、新生儿室、烧伤病房、重症监护病房、血液病病区空气中的细菌菌落总数。 （5、2）儿科病房、母婴同室、妇产科检查室、人流室、注射室、治疗室、换药室、输血科、消毒供应中心、血液透析室、急诊室、化验室、各类普通病室、感染疾病科门诊及其病房等，空气中的细菌菌落总数。 7、物体表面细菌培养 （7、1）、采样时间：在后或有关时进行采样。
常见标本采集指南 起草日期：2013 年7月5 日生效日期2013年9 月1日批准人：丁正林 Ⅰ.目的：标本的采集是实验前质控的重要环节,直接影响到检验结果的可靠性和准确性,制定本采集指南是为了规范标本的正确采集,减少采集误差，有效提高检验质量。 Ⅱ.适用范围：适用于全检验科。 Ⅲ. 实施办法、程序： 一.静脉血采集 1.带上手套，并注意常规安全防护。 2.核对检验申请医嘱或检验申请单上的病人信息及检验项目是否吻合。 3.信息核对无误后绑定真空采血条码管，门诊病人可通过诊疗卡调出相应信息。 4. 受检者取坐位或卧位，前臂水平伸直置于抽血台枕垫上或病床上，选择容易固定、明显可见的肘前静脉或手背静脉，幼儿可用颈外静脉采血。 5.在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露。 6.用25g/l碘酊自所选静脉穿刺处从内向外、顺时针方向消毒皮肤，待碘酊挥发后，再用75%乙醇以相反方向脱碘，待干。 7.采血：拔除采血穿刺针的护套，以左手固定受检者前臂，右手拇指和十指持穿刺针，沿静脉走向使针头与皮肤成300角，快速刺入皮肤，然后成500角向前刺破静脉壁进入静脉腔，见回血后将刺塞针端（用橡胶管套上的）直接刺穿真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管内，如需多管血样，将刺塞端拔除，刺入另一真空采血管中即可。达到采血量后，松压脉带，嘱受检者松拳，拔下刺塞端的采血试管，将消毒棉签压住穿刺孔，立即拔除穿刺针，嘱受检者继续按压针孔数分钟。抗凝血需立即轻轻颠倒混匀6-8次。 8. 将已使用过的针放入医疗硬器盒内。 附注: 1)采血部位通常选择肘前静脉，如此处静脉不明显，可采用手背、手腕、腘窝和外踝部静脉。幼儿可采用颈外静脉。 2) 压脉带捆扎时间不应超过1分钟，否则会使血液成分浓度发生改变。 3) 如果一次要求采血多管样本时，应按以下顺序采血：血培养蓝头管黑头管黄头管红头管橘黄头管绿头管紫头管灰头管 4)如采血时发生晕针，应立即拔出针头，让其平卧。必要时可用拇指压掐或针刺人中、合谷等穴位，或嗅吸芳香酊等药物，严重时立即送急诊室救治。 二、动脉血采集 1 填写血气检测申请单，并对病史、诊断和用药情况、抽血时体温、是否用氧及流量等进行填写。 2标本采集：选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点，经皮肤消毒后，用动脉采集专用针穿刺动脉血管，当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后。拨出针用小橡皮封针头，隔绝空气，立即将注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固，并立即送检。 三、浆膜腔积液采集 由临床医生按相关操作规范采集。标本包括胸腔积液、腹腔积液、心包积液。 采集标本分三管留取，每管１-２ml。 第一管供细菌学检查，必须置于无菌管中，如浆膜腔积液培养。 第二管供化学及免疫学检查，如浆膜腔积液生化检查。 第三管供细胞学检查（置于帽为紫色的试管中抗凝），如浆膜腔积液常规检查。 四、脑脊液采集 由临床医生按相关操作规范采集。
粪便标本采集与运送SOP 急性感染性腹泻可以由细菌、病毒、及原虫引起，实验室常规检查是细菌培养。沙门氏菌、志贺氏菌、假单胞菌和气单胞菌应作为实验室常规培养的主要腹泻病原菌。住院3天以上发生腹泻的患者进行常规培养意义不大，秋冬季，儿童（2岁以内）腹泻多以病毒性肠炎为主，应将病毒性腹泻排除后再考虑做细菌培养。 1、物品的准备与申请： ①领取清洁便盒。 ②填写检验申请单。用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。 2、采集指针： ①粪便涂片镜检白细胞≥5个∕HP ②重症腹泻； ③体温大于38.5℃； ④血便； ⑤便中有脓液； ⑥未经抗菌药物治疗的持续性腹泻患者； ⑦来自疫区的患者。 3、采集方法： 标本的采集尽可能在发病早期和应用抗菌药物治疗之前。在不同的时间采集2—3份标本可以提高病菌的分辨率。方法有： ①自然排便法： 直接留置粪便标本于清洁、干燥广口容器中送检。注意若有脓血、粘液、组织碎片，则取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便2—3g，液体粪便取絮状物，一般取1—3ml。 ②直肠拭子法： 用无菌拭子插入肛门2—4cm，轻轻旋转拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入运送培养基内，立即送检。本法只适用于排便困难的患者或婴幼儿。 4、标本的运送和验收： ①标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存小于2h。如采集后2h内未培养，标本应放入培养基中4℃冰箱保存，一般可保存24h。 ②粪便标本的验收与拒收程序; 采用一次性无菌杯，瓶盖严密，留取时间符合要求者为合格标本；否则为不合格标本，应拒收。 当怀疑沙门菌、志贺菌以外的细菌引起的腹泻时，临床医生及时和检验科联系，因为分离大肠埃希菌O157：H7等细菌需要特殊的试验程序和培养基。
标本采集方法 标本的定义：是指采取患者少许的血液、排泄物（粪、尿）、分泌物（痰、鼻分泌物）、呕吐物、体液（胸腔积液、腹腔积液）和脱落细胞（食道、阴道）等样品，经过物理、化学和生物学的实验室技术和方法对其进行检验，作为判断患者有无异常存在的依据。 本章重点： ●掌握标本采集的原则 ●掌握痰标本、咽拭子标本、血标本、尿标本、粪标本的采集方法 标本采集的意义 ●明确诊断观察病情指导制定治疗措施 标本采集的原则 ●遵照医嘱 ●充分准备： ● 1）患者准备 2）用物准备 3）护士自身准备 ●严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住院号 ●正确采集：方法、时间、量、容器 ●及时送检 ●明确检验项目、检验目的及注意事项 ●标本的容器贴好标签，附上验单：患者的姓名、科室、床号、住院号、送检 目的、送检日期和时间等 ●每次采集血标本时应做到“三个一”：一患者、一化验单、一容器 ●一般培养标本的采集应在使用抗生素之前 各种标本的采集 一、痰液标本的采集 ★痰常规标本★痰培养标本★24小时痰标本 三种痰标本的区别 分类目的 痰常规标本痰液一般形状，涂片查细胞、细菌、虫卵等痰培养标本痰中的致病菌
24小时痰标本24小时痰液的量和性状 分类用物 痰常规标本普通容器，痰盒 痰培养标本无菌集痰器，漱口液 24小时痰标本500ml的广口玻璃瓶，内盛少量清水 分类采集方法 痰常规标本幻灯片 10 能自理的患者； 无法咳痰或不合作者 痰培养标本步骤基本同上。不同的是先用漱口液漱口，再用 清水漱口；无菌容器，无菌操作。 24小时痰标本从晨7时~次晨7时第一口痰结束。全部痰液留 在容器中送检。 能自理的患者： 1、晨起后用清水漱口 2、以清晨第一口痰为宜 3、深吸气后用力咳出气管深处的痰液 4、不可混入漱口液、唾液、鼻涕 无法咳痰或不合作者：用吸痰法收集（集痰器） 痰标本采集注意事项 1、如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或用10%甲醛固定后送检 2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中 3、收集痰液宜在清晨，因此时痰量较多，痰内细菌也较多，提高阳性率。 二、咽拭子标本采集 目标：从咽部和扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离，协助诊断。 操作步骤及要点 操作前准备核对点燃酒精灯，指导患者张口发“啊”音，用长棉签蘸以敏捷、轻柔的动作擦拭两侧腭弓、咽扁桃体上的分泌物，取毕，将试管口及棉塞在酒精灯火焰上消毒后插入棉
《微生物标本采集与运送规范》培训试卷科室姓名职业得分 一、单选题50分（每题5分） 1. 微生物实验室误差最大的影响因素为: ( ) A. 实验前误差 B. 实验误差 C 验后误差 D. 随机误差 2. 血培养必须在( )内送检 A. 30min B. 1h C. 2h D. 4h 3 血培养的阳性检出率与( )成正比例的关系 A. 温度和时间 B. 采血量和采血时间 C. 采血量和采血套数 D. 采集方法和采血量 4. 某患者采血培养1套,培养结果为“表皮葡萄球菌”,判断这是污染菌还是致病菌,需要( ) A. 增加消毒次数 B. 增加采血量 C. 增加采血套数 D. 延长培养时间 5. 血培养瓶接种前和接种后,放置的最佳温度为( ) A. 0℃ B. 4℃ C. 室温(15~25℃) D. 35℃ 6. 下呼吸道感染患者最佳的送检标本为( ) A. 痰液 B. 支气管肺泡灌洗液(BALF) C. 咽拭子 D.唾液(口水) 7. 下呼吸道感染患者,除了做痰培养以外,还应该做( ) A. 血培养 B. 咽拭子 C. 厌氧菌 D. 分泌物 8. 下列申请单中标本采集部位不确定,检验目的不明确,属于不合格申请单的是( ) A. 中段尿培养 B. 痰培养 C. 分泌物培养 D. 脑脊液培养 9. 中段尿标本最常见的影响因素是( ) A. 容易受污染 B. 喝水过量 C.喝水过少 D. 无影响 10. 下列尿液标本中适合做厌氧菌培养是( ) A. 清洁中段尿 B. 留置尿管导尿 C. 耻骨上膀胱穿刺 D. 24h尿 二、多选题25分（每题5分） 1. 下列标本类型中, ( )属于有价值的标本,有重要的临床意义,鼓励送检 A. 血液 B. 骨髓 C. 胸腹水 D.脑脊液 E. 关节液 2 常用的拭子标本不适合作为送检标本的原因有( ) A. 使用方便 B. 标本量太少 C. 容易干燥 D. 不易接种到培养基中 E. 木(竹)签中含有抑菌物质 3. 下列关于痰液标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 采样前应刷牙（不用牙膏）或用冷开水漱口,以避免口腔正常菌群污染 B. 采取晨痰第一口痰最佳,咳痰时应咳取深部痰液 C. 做结核分支杆菌检查时,痰液量应增加 D. 肺部感染患者中有25%~50%可能会有菌血症,因此应同时做血培养 4. 下列关于血培养标本采集和运送的做法正确的有( ) A. 在使用抗菌药物治疗前采集 B. 如患者已经使用抗菌药物的,应在下次使用抗菌药物之前采集 C. 应在患者寒战开始时,或发热初起时采集 D. 血培养标本应按“套”采集,采集套数为2~3套,不能采集单一瓶数 E. 必须严格执行无菌操作,避免污染,采集后应快送检,如未能及时送检,应放置4℃冰箱保存 5.下列痰培养标本属于不合格标本,应予拒收的有( ) A. 24h内重复采集的痰样本 B. 唾液(口水) C. 咽拭子 D.. 痰液做厌氧菌培养 三、简答题25分 简述微生物样本采样基本原则
临床微生物标本的送检与采样指南 呼吸道标本采集及运输 一、上呼吸道标本 1、送检指征上呼吸道感染包括咽炎、喉炎、会厌炎等，凡具有以下情况任何一项者疑似患者。 1.1 病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。 1.2 细菌性咽-扁桃体炎：明显咽痛、咽部发红、畏寒、发热，体温可达39°C以上。 1.3 喉咙痛、咳嗽、喉部有脓样分泌物等临床症状。 1.4 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管-支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。 2、标本采集上呼吸道标本包括鼻、鼻咽、咽拭子标本。应根据临床表现和感染部位的不同有选择性的采集标本，以便更好地分离出病原菌。采集时应选择无菌、不含抑制剂的棉拭子，预先用无菌生理盐水或营养肉汤蘸湿拭子，并直取感染部位，减少污染。 2.1 鼻拭子的采集：最好使用扩鼻器，先用拭子拭去鼻黏膜表面的分泌物并丢弃，用第2个试子蘸取无菌生理盐水或营养肉汤，插入鼻孔采集病灶标本。 2.2 咽拭子的采集：采集标本时患者先用清水漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌的鼻咽拭子（一端弯曲的金属棉拭）由口腔进入，越过舌根到咽后壁或腭垂后侧，采集鼻咽红肿处标本，取材后小心将试子退出，立即放人无菌试管内。若咽部明显发红或有假膜存在时，应在局部擦拭取标本（最好拭子从膜底下擦拭）。采集标本可在咽部多点采集标本，以提高检出率。若无局部病变或做带菌者测试应于咽部或扁桃体上擦拭。 3、采集时间及频率 3.1 检查时间：应于抗菌药物应用之前。时间上无严格限制，但咽部是呼吸和食物的
通路，也应晨起后采集为佳。 3.2 采集频率：重复采集标本的频率一般每日最多1次。 4、标本的运输标本采集后应立即送检，室温运送时间小于2小时，如果不能立即接种，必须装在无菌运送培养基中，避免由于干燥而使某些细菌死亡。检测淋病奈瑟菌或脑膜炎奈瑟菌的拭子应放人含碳的转运培养基，采集后2小时内接种平板，以防细菌死亡。 5、注意事项 5.1应于抗菌药物治疗前采集鼻咽喉拭子标本。 5.2标本采集前数小时不得用消毒药物漱口或涂抹病灶局部。 5.3用拭子采集标本时应小心、准确地在采集部位采取，避免触及舌、口腔黏膜和唾液，以防污染。 5.4疑为白喉杆菌感染时，应在咽部深沉组织中采取标本，避免咽部表面正常菌群污染。 5.5采集扁桃体标本时，应以晨起后采集为宜。 5.6采集标本时应戴口罩和手套，以防传染。 5.7咽部是呼吸和食物的通路，应以晨起后采集为宜。 5.8最好采集2份拭子，以方便直接涂片染色镜检和接种培养。 5.9采集标本用的拭子最好含藻酸钙或涤纶纤维的小头拭子采集。人造丝或棉拭子不能用，因为其所含的脂肪酸对病原菌有害。 二、下呼吸道标本 1、送检指征凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、黏稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿啰音，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查提示有炎症性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭的患者，应采集痰液或下呼吸道的标本。 2、标本采集时间 2.1以晨痰为好。多数患者晨痰较多，即使对谈量少的患者，也以清晨采集最为容易。
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误, 不当标本可导致假阴性。假阳性结果的出现。因此正确采集临床微生物标本, 直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物, 延缓细菌耐药, 减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步, 也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、皮肤消毒程序:a.75%酒精清洁局部皮肤 30s 以上。 b. 待皮肤干后, 再用1%-2.%碘酊作用 30s 或 10%碘伏作用 90s 以上,从穿刺点中心部位向外画圈消毒,范围不应小于 3cm (直径 , 且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 c. 皮肤碘酒干后 (约 1min , 穿刺采集血液, 采血量成人 10-20ml ,婴幼儿 1-2ml 。儿童 3-5ml 。 d. 培养瓶消毒程序:70%酒精擦拭血培养橡皮塞,作用 60s ;用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精。用注射器无菌采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。立即送检,切勿冷藏。一般情况下可把血培养瓶放 20-22℃。不放冰箱。 2、注意事项:a. 怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃采血可提高阳性率, 但也要防止因等待而延误时机。 b. 对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本, 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 c. 培养基与血液之比以 10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人, 培养基与采血量之比可为 20:1或大于这个比例。 d. 近年研究表明, 将血液注入血培养基前, 更换针头反而易导致污染。 e. 每例至少采血两次,间隔 0.5-1h , 以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 f. 疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h3-4次和增加采血量(可增加 10ml 。 g 采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 h 如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道痰标本