实验动物常用操作方法
1.小鼠的抓取与固定
抓取和固定是动物实验操作中一项最基本的技术，所有的动物实验都要涉及到。由于动物害怕陌生人接触其身体，对于非条件性的各种剌激会进行防御性反抗。因此，在抓取、固定前应对动物的生活习性有所了解，根据其生活习性采用相应的抓取固定方法。一般在抓取固定动物过程中首先慢慢友好地接近动物，并注意观察其反应，让动物有一个适应过程。抓取时的动作力求准确、迅速、熟练，争取在动物感到不安之前抓取到动物。
（1）抓取方法
习惯用右手者，首先用右手从笼盒内将小鼠尾中部或基部抓住(不可抓尾尖)，并提起或放在左手上或笼盖表面。如下图。也可用尖端带有橡皮的镊子夹住小鼠的尾巴。抓取时需注意如果过分用力，会使动物窒息或颈椎脱臼，力过小，动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习，熟练掌握。
（2）固定方法
①徒手固定：右手抓取小鼠尾，将小鼠放在笼盖(或表面粗糙的物体)上，轻轻向后拉鼠尾。然后在小鼠向前挣脱时，用左手(熟练者也可用同一只手)拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤，无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部，并调整好动物在手中的姿势。习惯用左手者，操作时可调整左右手。这类抓取方法多用于灌胃以及肌肉、腹腔和皮下注射等实验。
②固定板固定：小鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。此方法常用作心脏采血、解剖、外科手术等实验。
③固定架固定：让小鼠直接钻入固定架里，封好固定架的封口，露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。
④简易固定：进行尾静脉注射或抽血时，如果没有这些固定装置，也可采用一种简易的办法。即倒放一个烧杯或其他容器，把小鼠扣在里面，只露出尾巴。然后酒精擦拭，暴露血管，注射或采样。这种烧杯或容器的大小和重量要适当，既能够压住尾部不让其活动，同时起到压迫血管的作用。
2.小鼠的麻醉方法
实验动物的麻醉就是用物理的或化学的方法，使动物全身或局部暂时痛觉消失或痛觉迟饨，以利于进行实验。
（1）麻醉类型与麻醉方法
实验动物的麻醉可分为全身麻醉和局部麻醉两种类型。全身麻醉的方法常用的主要有吸入麻醉和非吸入麻醉。局部麻醉的方法常用的是浸润麻醉。
①吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体麻醉剂，由动物经呼吸道吸入体内从而产生麻醉效果的方法。吸入麻醉药物常见的有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等。乙醚麻醉的一般方法：将含有乙醚的棉球或纱布放入大烧杯内，将动物放入，用塑料薄膜或瓶皿封口，观察动物的行为。经过1-2min左右，开始时动物出现兴奋，继而出现抑制，自行倒下。当动物角膜反射迟钝、肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐开始恢复肌肉紧张(重新挣扎)，则重复麻醉一次，待平静后即可进行实验。当发现其倾斜后仍不能站立而跌倒，则说明已进入深度麻醉期，立刻取出动物。若实验时间长，可先将动物固定在实验台上，将
含有乙醚棉球或纱布靠近其鼻部。在实验过程中，应注意动物的反应，适时追加乙醚吸入量，以维持其麻醉深度和时间。
②非吸入麻醉：常采用注射方法，如静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。静脉注射、肌肉注射，多用于较大的动物，如兔。腹腔注射多用于较小的动物，如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。静脉注射的部位是：兔由耳缘静脉注入，大鼠由尾静脉注入。肌肉注射的部位多选臀部。腹腔注射的部位约在腹部后1/3处略靠外侧(避开肝和膀胱)。
③浸润麻醉：将麻醉药物注射于皮肤、肌下组织或手术野深部组织，以阻断用药局部的神经传导，使痛觉消失。
3.动物的给药途径与方法
在动物实验过程中，应根据不同的实验目的、动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方法。动物的给药方法主要分为注射法和投入法两种，不同方法按给药途径又分为很多具体类型。注射法分为：皮下注射、肌肉注射、腹腔注射、脑膜下注射、脑内注射、胸腔内注射、腰椎内注射、静脉注射、关节腔注射和心内注射等。投入法可分为：鼻腔内投入、胃腔内投入、肠管内投入、气管内投入和经口腔投入等。
（1）皮下注射
注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射（2）皮内注射
皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮
肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
（3）肌肉注射
肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（4）腹腔注射
用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液，为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。
（5）静脉注射
小白鼠和大白鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉比较容易固定，多采用，背侧一根也可采用，但位置容易固定。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连4(1/2)号细针头，使针头与静脉平行（小于30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖2-3厘米）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射
完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射。
实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可
避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg 体重，静脉注射70～120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg 体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快，一
实验动物麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程屮所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验屮服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5 % 1%；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用 1 %?2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉， 也可用0. 25 %-0. 5 %溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醯乙瞇吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙瞇局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程屮要注意。但总起来说乙醛麻醉的优点 多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期岀现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20- 30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重5-10mg）及阿托品（每公斤体重0. lmg）。盐酸吗啡可降低屮枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醯用量及避免乙醸麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醸刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醯，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程屮， 仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程屮，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔 突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能 无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80-100mg/kg体重，静脉注射70-120mg/kg体重（一般每公斤体重给70-80mg即可麻醉，但有的动物要100-120mg才能麻醉，具体用量可根据各个动物的敏感性而定）。兔腹腔注射150-200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使 用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1-3% 生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注 射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg体重，腹腔注射 40 ^45mg/kg 体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配，常用浓度为 5%o此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快， 一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的麻醉深度。
一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法： 吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。 1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。动物先兴奋后抑制，自行倒下。当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。 2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。 乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。 非吸入麻醉：该方法是一种简单方便能够让动物很快进入麻醉期，而且没有明显的兴奋期麻醉方法。一般采用注射的方法，有静脉注射、肌肉注射、腹腔注射等。 静脉注射、肌肉注射主要用于较大的动物的麻醉，如兔、猫、猪、犬等；腹腔注射多用于较小动物的麻醉，如小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠等。
动物常用麻醉药及应用 舒泰麻醉剂使用说明书简要说明： 舒泰是一种新型分离麻醉剂，它含镇静剂替来他明和肌松剂唑拉西泮。在全身麻醉时，舒泰能够保证诱导时间短、极小的副作用和最大的安全性。在经肌肉盒静脉途径注射时，舒泰具有良好的局部受耐性。舒泰是一种非常安全的麻醉剂。适用范围 用于犬、猫和野生动物的保定及全身麻醉。应用剂量麻醉前给药 注射舒泰前15分钟按以下剂量给予硫酸阿托品犬：0.1mg/kg ，皮下注射猫：0.05mg/kg ，皮下注射诱导麻醉剂剂量 犬：7—25mg/kg ，肌肉注射5—10mg/kg ，静脉注射 犬：10—15mg/kg ，肌肉注射5—7.5mg/kg ，静脉注射 麻醉维持时间：根据剂量不同，从20到60分钟不等。维持麻醉剂量 建议给予初始剂量的1/3—1/2 ，静脉注射。野生动物：使用详细说明 灵长类动物（平均值）肌肉注射..........................4—6mg/kg 。猫科动物（平均值）肌肉注射..........................4—7.5mg/kg 。犬科动物（平均值）肌肉注射..........................5—11mg/kg 。熊科动物（平均值）肌肉注射..........................3.5—8mg/kg 。牛科动物（平均值）肌肉注
射..........................3.5—33mg/kg 。灵猫科动物（平均值）肌肉注射..........................2.5—6mg/kg 。小鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。大鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。豚鼠（平均值）肌肉注射..........................20mg/kg 。仓鼠（平均值）肌肉注射..........................50mg/kg 。应用指南 为了获得需要的麻醉药浓度，可将含有效成分的冻干粉与总量无菌溶液混合（舒泰20：20mg/ml ;舒泰50：50mg/ml ;舒泰100：100mg/ml )。野生动物需要投掷注射时，可将减少加入溶剂，从而使舒泰浓度提高到400mg/ml 。应用禁忌 用有机磷盒氨基酸酯进行系统治疗的动物。严重的心机能和呼吸机能不全。胰脏功能不全。患严重高血压。 注意事项 舒泰只能用于动物。 建议麻醉前12小时禁食。 动物处于麻醉恢复期时应保证环境黑暗和安静。注意麻醉动物的保暖，防止热量过度散失。与其他药物的配伍禁忌 不要与以下药物一起联合应用： *吩噻嗪类药物（乙酰丙嗪、氯丙嗪等），一起应用抑制心肺功能和引起体温降低。 *氯霉素，一起应用引起麻醉药物的清除率。贮存 舒泰冻干粉在至少2年内是稳定的。
实验动物麻醉 所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。 包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。 使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。 2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。 3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。 4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。 5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。注射前3小时应限制饮水。 6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。 7．手术过程中如实验动物大量失血，应补充大约3倍失血体积的0.9%生理盐水。 肌肉舒张剂 肌肉舒张剂必须与全身麻醉同时使用。如需使用肌肉舒张剂，必须在实验动物研究方案中予以详细说明，并得到实验动物管理委员会的批准。 止痛剂 不同动物疼痛持续时间不同，因此应密切观察实验动物的行为等指标。对创口较大的手术，至少在术后48小时内应给予实验动物适当的止痛剂，对较小的手术，至少在术后24小时内应给予实验动物适当的止痛剂。如24小时或48小时后实验动物表现出明显的疼痛，应持续给药，并应与兽医讨论实验动物是否存在其它的健康问题。通常同时给予两种以上不同的止痛剂有更好的效果，如鸦片类止痛剂与非类固醇类消炎药共同使用。在手术前提前使用止痛剂也有助于帮助实验动物减轻疼痛感，并可减小麻醉剂和止痛剂的使用剂量。
第一节实验动物的抓取固定方法 一、小鼠抓取固定方法 小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤（见图2-1之一），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图2-1之二）。有经验者可直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。尾静脉注射时，可用小鼠尾静脉注射架固定（图2-2），先根据动物大小选择好合适的固定架，并打开鼠筒盖，手提鼠尾巴，让动物头对准鼠筒口并送入筒内，调节鼠筒长短合适后，露出尾巴，固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。 图2-1 小鼠的抓取固定方法 图2-2 小鼠尾静脉注射方法 二、大鼠的抓取固定方法 大鼠的抓取方法基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指。抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活结缚腿，背卧位绑在大鼠固定
板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒）。 三、蛙类的抓取固定方法 蛙类抓取方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小指压住其左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左、右前肢、右手进行操作（见图2-3）。 图2-3 蛙、蟾蜍抓取固定方法 在抓取蟾蜍时，注意勿挤压其两则耳部突起之毒腺，以免毒液射进眼中。 实验如需长时间观察，可破坏其脑脊髓（观察神经系统反应时不应破坏脑脊髓）或麻醉后用大头针固定在蛙板上。依实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。 四、兔的抓取固定方法 （一）抓取实验家兔多数饲养在笼内，所以抓取较为方便。一般以右手抓住兔颈部的毛皮提起，然后左手托其臀部或腹部，让其体重重量的大部分集中在左手上（图2-4），这样就避免了抓取过程中的动物损伤。不能采用抓双耳或抓提背部。 （二）固定一般将家兔的固定分为盒式、台式和马蹄形三种。盒式固定，适用于兔耳采血、耳血管注射等情况；若做血压测量、呼吸等实验和手术时，则需将兔固定在兔台上，四肢用粗棉绳活结绑住，拉直四肢，将绳绑在兔台四周的固定木块上，头以固定夹固定或用一根粗棉绳挑过兔门齿绑在兔台铁柱上；马蹄形固定多用于腰背部，尤其是颅脑部位的实验，固定时先剪去两侧眼眶下部的毛皮，暴露颧骨突起，调节固定器两端钉形金属棒。使其正好嵌在突起下方的凹处，然后在适当的高度固定金属榛。用马蹄形固定器可使兔取用背卧位和腹卧位，所以是研究中常采用的固定方法。 图2-4 家兔抓取方法
八、实验动物的麻醉 在一些动物实验，特别是手术等实验，为减少动物的挣扎和保持其安静，并便于操作，常对动物采用必要的麻醉。由于动物种属间的差异等情况，所采用的麻醉方法和选用的麻醉剂亦有不同。 (一)常用的麻醉剂 动物实验中常用的麻醉剂分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。 1．挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。乙醚吸入麻醉适用于各种动物，其麻醉量和致死量差距大，所发安全度亦大，动物麻醉深度容易掌握，而且麻后苏醒较快。其缺点是对局部刺激作用大，可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多，再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动，并且容易引起窒息，故在乙醚吸入麻醚时必需有人照看，以防麻醉过深而出现上情况。 2．非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多，包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物，氨基甲酸乙脂和水合氯醛。这些麻醉剂使用方便，一次给药可维持较长的麻醉时间，麻醉过程较平衡，动物无明显挣扎现象。但缺点是苏醒较慢。 3．中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂，但由于其作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想，故在使用过程中不能得到普及，因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。 （二）动物的麻醉方法 1．全身麻醉 （1）吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻药。本法最适于大、小鼠的短期操作性实验的麻醉，当然也可用于较大的动物只是要求有麻醉口罩或较大的玻璃箱罢了。由于乙醚燃点很低，遇火极易燃烧，所以在使用时，一定要远离炎源。 （2）腹腔和静脉给药麻醉法 非挥发性和中药麻醉剂均可用作腹腔和静脉注射麻醉，操作简便，是实验室最常采用的方法之一。腹腔给药麻醉多用于大小鼠和豚鼠，较大的动物如兔、狗等则多用静脉给药进行麻醉。由于各麻醉剂的作用长短以及毒性的差别。所以在腹腔和静脉麻醉时，一定控制药物的浓度和注射量（见表11-6）。
目录 1.目的 (2) 2.范围 (2) 3.引言、定义和缩略语 (2) 4.程序 (2) 4.1大鼠的捉持 (2) 4.2小鼠的捉持 (3) 4.3豚鼠的捉持 (3) 4.4兔的捉持 (3) 4.5犬的捉持 (4) 5.登记和归档 (5) 5.1登记 (5) 5.2归档 (5) 6.职责 (5) 7.培训 (5)
1. 目的 本条SOP的目的是建立并规范实验动物的捉持及固定方法，使操作程序标准化。 2. 范围 本条SOP适用于所有参加动物试验的操作人员。 3. 引言、定义和缩略语 实验动物的捉持分为：大鼠的捉持、小鼠的捉持、豚鼠的捉持、兔的捉持、犬的捉持。 4. 程序 4.1大鼠的捉持 1)包身法：操作者一只手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上，向后 方轻拉鼠尾，使大鼠前肢固定在粗糙表面上，另一只手用拇指和另外4指从动物背部分别绕到动物的两侧腋下，将大鼠抓起（熟练者可不提鼠尾，直接将其抓住）。 2)提尾法：操作者用单手拇指和食指抓住动物尾根部提起。（图1） 图1 提尾法图2 固头法 3)固头法：操作者用单手拇指和食指抓住大鼠颈背部皮毛，使其头部固 定。（图2） 4)注意事项：不宜快速或突然抓取动物。对于有症状的大鼠，抓取时注
意避开其伤痛部位，避免增加动物痛苦。 4.2小鼠的捉持 1)双手法：操作者一只手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙表面上，向后 方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙表面上（图4）。迅速用另一只手的拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图3）（图5）。 图3小鼠双手捉持法图4小鼠单手捉持法图5 小鼠单手捉持法 2)单手法：小鼠置于笼盖上，先用食指和拇指抓住鼠尾后，手掌尺侧和 小指夹住鼠尾，然后拇指与食指捏住颈部皮肤（图5） 3)提尾法：用单手拇指和食指捉持尾根部。此法适用于从小群体中或单 一个体中操作小鼠。 4)固头法：操作者一只手拇指和食指抓住动物尾部，另一只手拇指和食 指抓住动物颈背部皮毛，使动物头部被固定。 4.3豚鼠的捉持 豚鼠性情温和，不易咬人，用手轻轻握住身体即可抓起（图6）。 图6 豚鼠的捉持 4.4兔的捉持 操作者一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，
常用的麻醉剂和麻醉方法 常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。 麻醉药物应用的方法和剂量如下： 一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚 开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。适用于各种实验动物。如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。较大动物可用麻醉口罩滴药法。 封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。防止麻醉过深，引起死亡。 常用全身麻醉剂： 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查
实验动物的麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成 0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物 神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。并施行必要的人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法：大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续2-4小时，所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～3%生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重，腹腔注射40～45mg/kg体重，大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。但动物个体间差异颇大。用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。镇痛效果差，恢复时间长，尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。近来使用日趋减少。
动物麻醉方法及给药剂量 一、动物麻醉的目的 1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。 2.防止动物伤害实验操作者。 3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。 二、麻醉的类型和方法 1.全身麻醉的方法： 吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。 1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。动物先兴奋后抑制，自行倒下。当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。 2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
实验动物的麻醉方法 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020
实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成 0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重(一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg体重。 3.戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显着抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4.硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快，一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的麻醉深度。此药对胃肠道无副作用，但对呼吸有一定抑制作用，由于其抑制交感神经较副交感神经为强,常有喉头痉挛,因此注射时速度必须缓慢。实验剂量和方法：狗静脉注射20～ 25mg/kg体重；兔静脉注射7～10mg/kg体重。静脉注射速度以15秒钟注射2ml左右进行。小鼠1％溶液腹腔注射0.1～0.3ml/只；大鼠0.6～0.8ml/只。 5.巴比妥钠使用剂量及方法：狗静脉注射225mg/kg体重；兔腹腔注射200mg/kg体重；鼠皮下注射200mg/kg体重。 6.氨基甲酸乙酯此药是比较温和的麻醉药，安全度大。多数实验动物都可使用,更适合于小动物。一般用作基础麻醉，如使用全部过程都用此麻醉时，动物保温尤为重要。使用时常配成20～25％水溶液，狗、兔静脉、腹腔注射0.75～1g/kg体重。但在作静脉注射时必须溶在生理盐水中，配成5％或10％溶液，及每公斤体重注射10～20ml。鼠1.5～2g/kg体重，由腹腔注射。以上麻醉药种类虽较多，但各种动物使用的种类多有所侧重。如做慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉(用吗啡和阿托品作基础麻醉)；急性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉；对家兔
生理学实验动物的麻醉方法 [ 2006-12-26 10:06:00 | By: mch40911 ] （一）使用挥发性麻醉药 1．乙醚、吗啡合并麻醉方法乙醚麻醉的优点：深度易于掌握，比较安全，麻醉后恢复比较快。缺点：需要专人管理，麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激性，需在麻醉前给一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉）。通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸吗啡或硫酸吗啡（每公斤体重5-10毫克）及阿托品（每公斤体重0.1 mg）2．氯仿、乙醚合并麻醉方法氯仿作吸入麻醉药，其麻醉作用比乙醚大，诱导期及兴奋期都极短，吸入气体中含1-2%容量的氯仿即能使动物麻醉，达到外科麻醉期容易，但也易转入延髓麻醉期而危及生命。其麻醉剂量及致死量较为接近，使用时应加以注意。一般与乙醚混合成1：1或1：2比例进行麻醉。麻醉方法基本同乙醚。（二）使用非挥发性麻醉药 1．苯巴比妥钠：该药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量下对动物呼吸、血压和其他功能无多大影响。通常在实验前0.5-1h用药。使用剂量和方法为狗、猫腹腔注射80-100mg/kg，静脉注射70-120mg/kg；家兔腹腔注射15 0-200mg/kg。2．戊巴比妥钠：此药麻醉时间不很长，一次给药有效时间可延续3-5小时，所以十分适合一般实验要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用。用时配成1-3%生理盐水溶液，配好的药液的常温下放置1 -2个月不失药效。静脉或腹腔注射后很快进入麻醉期。使用剂量为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg，腹腔注射40-45mg/kg，皮下注射40-50mg/kg。大小鼠静脉或腹腔注射35-50mg/kg. 3．氨基甲酸乙酯：此药是比较温和的
实验动物麻醉药物使用指南 第一部分不同类型麻醉药物的一般特性 一、镇静剂和安定剂镇静剂使用前动物的生理状态能显著影响镇静的程度。给药前攻击性强的、不听话的、极其兴奋的动物会比较难处理，除非给予高剂量的呼吸抑制药物。 1. 吩噻嗪类Phenothiazines 常用制剂：乙酰丙嗪acepromazine ，氯丙嗪chlorpromazine ，丙嗪promazine 理想疗效 增强麻醉剂、安眠药和麻醉性镇痛药的效果（包括减少药物剂量，延长作用时间和顺利地从麻醉中恢复） 止吐作用 促进骨骼肌松弛引起兔耳静脉血管扩张 不良反应 中度低血压 导致低体温症 潜在的、与研究相关的并发症 基底神经节多巴胺阻塞降低自发肌动活动阻塞儿茶酚胺的外周作用 下丘脑儿茶酚胺耗尽引起的低体温症 高剂量阻碍FSH 和LH 的释放提高鼠、绵羊和山羊的催乳素水平发生肾上腺素通过肾上腺髓质释放引起的高血糖应用于猫，小剂量可减小肾 上腺素导致的血管加压作用，大剂量可翻转血管加压作用
减少动物的血细胞比容拮抗阿朴吗啡诱发的犬呕吐可能引起犬心律 不齐高剂量的氯丙嗪使猫产生颤动和僵硬可能导致胎鼠产生唇裂和 腭裂长时间使用可产生眼部病变 2. 苯二氮平类药物Benzodiazepines 常用制剂：地西泮diazepam,咪达唑仑midazolam 理想疗效 镇静作用因物种而异（作用最小的是犬, 最大的是兔子和鼠）增强 大部分麻醉药和麻醉镇痛药的药效良好的松弛骨骼肌作用不良反应 正常剂量下无不良反应 管制药物 潜在的、与研究相关的并发症主要通过作用脑干网状结构抑制中枢神经系统阻断脊髓多突触反射作用减少大鼠脑和纹状体边缘区多巴胺的合成 增强GABA 介导的中枢神经系统抑制在犬静脉注射后产生瞬时的动脉降血压作用人的腭裂的发生与怀孕期间母体摄入该药物有关其他 应通过静脉注射地西泮，肌肉注射和皮下注射会引起全身不均一的吸收。地西泮在溶液中不与其他药物相溶，因此不应与其他药物在同一注射器内混合（除氯胺酮） 咪达唑仑可以通过肌肉注射或皮下注射途径给药，也可与某些其他药物联合使用 3. a-2-肾上腺素受体激动剂 常用制剂：美托咪定xylazine,甲苯噻嗪medetomidine,地托咪定
（一）使用挥发性麻醉药 1．乙醚、吗啡合并麻醉方法乙醚麻醉的优点：深度易于掌握，比较安全，麻醉后恢复比较快。缺点：需要专人管理，麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激性，需在麻醉前给一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉）。通常在麻醉前20-30分钟，皮下注射盐酸吗啡或硫酸吗啡（每公斤体重5-10毫克）及阿托品（每公斤体重0.1 mg）2．氯仿、乙醚合并麻醉方法氯仿作吸入麻醉药，其麻醉作用比乙醚大，诱导期及兴奋期都极短，吸入气体中含1-2%容量的氯仿即能使动物麻醉，达到外科麻醉期容易，但也易转入延髓麻醉期而危及生命。其麻醉剂量及致死量较为接近，使用时应加以注意。一般与乙醚混合成1：1或1：2比例进行麻醉。麻醉方法基本同乙醚。 （二）使用非挥发性麻醉药 1．苯巴比妥钠：该药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量下对动物呼吸、血压和其他功能无多大影响。通常在实验前0.5-1h用药。使用剂量和方法为狗、猫腹腔注射80-100mg/kg，静脉注射70-120mg/kg；家兔腹腔注射150-200mg/kg。 2．戊巴比妥钠：此药麻醉时间不很长，一次给药有效时间可延续3-5小时，所以十分适合一般实验要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用。用时配成1-3%生理盐水溶液，配好的药液的常温下放置1-2个月不失药效。静脉或腹腔注射后很快进入麻醉期。使用剂量为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg，腹腔注射40-45mg/kg，皮下注射40-50mg/kg。大小鼠静脉或腹腔注射35-50mg/kg. 3．氨基甲酸乙酯：此药是比较温和的麻醉药，安全程度大。多数动物都可以使用，更适合于小动物。一般作基础麻醉。使用时常配成20-25%水溶液。狗、猫、兔直肠灌注1.5g/kg，皮下、静脉、腹腔注射0.75-1g/kg。与水合氯醛按1：1合并麻醉效果更好。缺点是该药可致癌，大型动物应用后不可食用。 4．水合氯醛：此药有窜透性的臭气及腐蚀性苦味。其溶解度较小，常配成1%水溶液。使用前先在水浴锅中加热，促其溶解，但加热温度不宜过高，以免影响药效。使用剂量及方法：狗、猫静脉注射80-100mg/kg体重；腹腔注射100-150mg/kg；兔：直肠灌注180mg/kg；静脉注射50-75mg/kg。以上麻醉药种类虽较多，但各种动物作用的种类多有所侧重，如作慢性实验的动物常用乙醚吸入麻醉（用吗啡和阿托品作基础麻醉）；包性动物实验对狗、猫和大鼠常用戊巴比妥钠麻醉；对家兔和蛙、蟾蜍常用氨基甲酸乙酯；对大鼠和小鼠常用硫喷妥钠或氨基甲酸乙酯麻醉。
实验动物的麻醉方法 The Standardization Office was revised on the afternoon of December 13, 2020
实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用％～％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重(一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg体重。 3.戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显着抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4.硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现
动物实验常用麻醉药物的性质及应用 好的麻醉是对动物实施有创操作安全性的重要保证，对动物的麻醉同人一样，要尽量做到快速诱导，术中平稳，以及快速复苏及术后良好状态。正确的选择和使用麻醉药物及用药剂量，不仅能快速正确得获得实验结果，同时也可减轻或消除动物痛苦，减少实验动物的死亡率，符合国际上对实验动物的人道主义原则；更重要的一点是麻醉药对实验动物的副作用及对实验结果的干扰也必须引起人们密切关注。 目前，动物试验应用广泛，麻醉方法也有很多，为了更好的利于研究人员的工作，本文分别就动物常 用吸入麻醉药物及注射麻醉药物的理化性质、适用范围、药物副作用以及使用注意事项作一综述。 一、吸入麻醉药物 1、乙醚：是一种挥发性麻醉药，广泛应用于动物的麻醉，优点是乙醚的肌松作用较强，适合时间短 的小手术或实验，或者手术前的短小操作，比如静脉切开等[1]。其麻醉量和致死量差距大,较安全,动物麻醉深浅度容易掌握,麻醉后苏醒较快；缺点是有刺激性气味，对呼吸道有较强刺激作用，使黏液分泌增加，易阻塞呼吸道而发生窒息，且其性质不稳定，易燃易爆[2]。乙醚应用时易泄漏，对研究人员身心健康产生危害，操作尽量在通风厨中进行。 2、安氟醚：是一种较新的卤化麻醉药，呈无色透明液体，理化性能稳定，不燃烧，不爆炸。麻醉性 能强，诱导麻醉期和苏醒期较快[3] 。诱导比乙醚快且平稳，一般用于复合全身麻醉，可与多种静脉全身麻醉药和全身麻醉辅助用药联用。有研究发现[4]，安氟醚麻醉可以导致基因组离子通道相关基因、信号转导相关基因、转录相关基因、细胞因子基因、突触功能基因、细胞结构基因等差异性表达，因此相关基因研究中选择动物麻醉药物尽量避免选用安氟醚。另外，安氟醚能抑制心肌的收缩力，抑制程度与吸入浓度有相关性。随着吸入浓度的增加，心肌收缩力减弱[5]。因此在选用安氟醚麻醉时特别注意应用浓度，密切观察生命体征变化。 3、地氟醚：其性质稳定，分配系数比其他的挥发性麻醉药低，具有快速诱导，快速苏醒的优势[6]。 有研究表明[7]，地氟醚在 1.4MAC 可以使犬的冠脉血流增加，有助于保护心肌。地氟醚0.5-1.0MAC 时使 猪的脑血流量随浓度增加而增加[8]。因此低浓度应用此麻醉药物有助于保护脑及心脏组织。但是在研究缺血缺氧动物模型时，就尽量避免使用地氟醚。 4、异氟醚：是一种带乙醚样气味的无色透明液体，对金属、橡胶和塑料具有腐蚀作用，沸点48.5℃， 广泛应用于各种大型动物的各种手术全身麻醉。麻醉时无交感神经系统兴奋现象，可使心脏对肾上腺素的作用稍有增敏，有一定的肌松作用，在加深麻醉时易引起呼吸抑制，需适当给予辅助呼吸，诱导时可能出现咳嗽、屏气或抑制呼吸等现象，苏醒期偶尔有寒战。异氟醚对鼠脑缺血再灌注损伤有保护作用，不适于脑缺血动物模型的麻醉[1]。同时，它在低浓度时使犬冠脉血流增加，作用同地氟醚[7]。 5、七氟醚:是一种无色透明、芳香无刺激性的液体；化学性质不稳定；对心率影响不显著，可对心脏 产生抑制作用、心输出量减少以及血管扩张作用，最终可致动脉压下降；气道刺激性小、可松弛气道平滑肌；对肌松药的强化作用比异氟醚强。Bernard 等[9]报道，1.2MAC 的七氟醚可使犬的冠脉血流量明显增加。但在增加到2MAC 时会使心排血量减少，其作用同异氟醚。Akazawa 等[10]对犬实施七氟醚麻醉发现： 七氟醚虽然有快速的心血管抑制，但是这种作用可能并不影响冠脉循环及心肌代谢。因此异氟醚也广泛应用于各种大型动物的麻醉。 二、注射麻醉药 1、氯胺酮：盐酸氯胺酮为白色结晶性粉末，无臭，溶于水，该药对体表镇痛作用明显，内脏镇痛作 用差，但诱导迅速，麻醉时间短，对呼吸系统抑制轻微，对循环系统具有兴奋作用[11] ，适于手术时间短，要求尽快苏醒的大动物实验，目前犬、猪、灵长类及绵羊等动物麻醉基本选用氯胺酮。该药进入体内 1