JIANGSU
UNIVERSITY
药 理 学 实 验 报 告
学院 班级 姓名 学号 时间 2012.05.08
江
苏
实 验
大
报
学
告
班级 学号 时间
学院 药学院 姓名 天气 多 云 实验时间 2012.04.25 13：00——17：00
4h
实验五
一、实验目的
药物对兔血压的作用实验
观察肾上腺素(adrenaline)、去甲肾上腺素(noradrenaline)、异丙肾上腺素和乙 酰胆碱(isoprenaline)和乙酰胆碱(acetylcholine)等药物对兔血压的作用，并以阻断 药为工具分析各药对受体的作用。
二、实验原理
血压形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素相关，通过神经-体液调 节机制维持正常血压。传出神经是一大类药物，或拟似神经递质，或拮抗神经递质，通 过激动或阻断分布于心血管上的肾上腺素受体或胆碱受体， 影响心肌收缩性、 血管舒张 度，从而升高或降低血压。
三、实验材料
1、实验动物：健康兔子一只 2、 实验试剂： 200g/l 的氨基甲酸乙酯(urethane)， 1000U/ml 肝素钠(sodium heparin)， 0.02g/L 盐酸肾上腺素(adrenaline hydrochloride)，0.02g/L 重酒石酸去甲肾上腺 素（noradrenaline bitartrate),0.02g/L 硫酸异丙肾上腺素(isoprenaline sulfate)，10g/L 酚妥拉明(phentolamine)，2.5g/L 盐酸普萘洛尔（propranolol hydrochloride）0.01g/L 氯化乙酰胆碱（acetylcholine chloride）,1g/L 硫酸阿托品 （atropine sulfate）10g/L 阿托品（atropine） ，生理盐水 3、实验设备：兔箱，兔台，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，静脉夹， 眼科剪，压力换能器，动脉夹，传感器，记录电极
四、实验方法和步骤
1．动物的麻醉： （1）用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，提起家兔，然后用左手托住臀部，使呈 坐位姿势。 （2）动物（家兔）称重后，固定于兔箱内，经耳缘静脉注射200g/l的氨基甲酸乙酯。动 物被麻醉后，身体松软，疼痛感觉消失。 （3）注意事项： 1）注射器内气泡排净； 2）首先从静脉的较远端（耳末梢处）确定进针位置，而不是耳朵根部，否则，注射失 败后没有弥补的余地； 3）将进针处及附近的毛拔净，使血管清晰暴露，用手指弹血管（或用酒精棉擦），使 血管充分膨胀； 4） 针头开口朝上进针 （注射器刻度方向与针头开口方向保持一致， 以便掌握注射剂量） ， 扎入血管后，针头往前送一些，以确保在血管内（如果在血管内，则阻力很小）， 避免拔除； 5）注药要慢，并密切注意动物反应，如果角膜反射消失，药即使没有注完，也应停止 注射（麻醉药注射太快和过多，都容易导致动物死亡）。 2．动物的固定 （1）将动物背位（腹面朝上）固定于手术台（兔台）上，保持颈部挺起，身体正直、舒 展。 （2）动物头部固定用细绳勾住兔牙并将兔头固定好。 （3）前肢背交叉（向后向下交叉，为使动物胸部挺起）、后肢伸展，用绳固定在兔台上。 3．手术 （1) 剪毛：用毛剪平贴皮肤剪去颈部被毛，剪毛范围尽量大一些。 （2）暴露气管、颈总动脉、迷走神经与减压神经： a. 用手术刀沿颈部正中纵向切开皮肤3-4cm。注意避开喉头，喉头处有甲状腺，血液 丰富，如伤及，则出血不止，易造成动物死亡。 b. 用止血钳紧贴气管分离肌肉。 此为钝性分离方法， 不会造成出血： 止血钳顶住肌肉， 撑开，反复几次，出现创口，双手食指伸进，纵向扩大创口。注意不要用手术剪。
（如果发生出血现象， 用干棉花或沾生理盐水按压出血部位1-2分钟；也可用止血钳 夹住出血部位止血。） c. 肌肉分离后，暴露出气管。用手指将气管两侧的肌肉向外翻开，可见到纵向走行的 颈总动脉以及伴行的三根神经：最粗的迷走神经，最细的减压神经，以及介于之间 的交感神经。 （3）分离左右颈总动脉（左右任选一侧）： 将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。用玻璃分针分别沿动脉、神经纵 向划开附着的结缔组织膜， 游离出一段。 动脉尽量游离得长一些。 分别穿双线备用， 先不结扎。 （4）右侧颈动脉插管：动脉插管与压力换能器相连，直接检测血压值。在此之前，必须 将压力换能器以及动脉插管中充满生理盐水（肝素），并确保有良好的气密性！压 力换能器已经与仪器连接，各项参数都已设置好，处于工作状态。 a. 首先在远心端结扎血管（尽量远端，保证有足够的血管长度来插管）。 b. 然后在近心端夹动脉夹（尽量近端，用动脉夹根部夹住血管，确保夹紧！！！否则 剪开血管后，由于动脉压力很大，血液会喷出）。血管中间这段鼓起。 c. 拎起结扎线，将血管提拉起，在靠近结扎处用小剪在血管上向下剪一开口，在小镊 子的辅助下，将动脉插管插入，尽量插入长一些，避免插管滑脱。在结扎好动脉插 管前，一定不能轻易放开动脉夹！！！ d. 将动脉插管与血管结扎紧，结扎处应靠近血管开口处，不要太靠下，否则管子容易 滑出。 e. 慢慢松开动脉夹， 观察动脉插管没有出现异常情况， 计算机屏幕上也显示出正常的 血压波后，再将动脉夹撤掉。（用湿纱布盖住伤口，防止伤口干燥） 4.实验程序 (1）装置连接：RM6240B 通道4，接压力换能器，采集血压信号。 (2）参数设置：打开信号采集软件，连接4通道，对应血压信号。示波状态下修改参数 设置：滤波频率100Hz,采集频率800Hz，灵敏度12kp，扫描速度500ms/s。实验连续 记录，不要间断，每一次处理都应做好标记。 (3）操作步骤：
药物注射顺序:
序号 1（1） （2） （3） 2（1） （2） （3） （4） 3（1） （2） （3） 4 (1) （2） （3） 放血
药品 肾上腺素 去甲肾上腺素 异丙肾上腺素 酚妥拉明 肾上腺素 去甲肾上腺素 异丙肾上腺素 乙酰胆碱 阿托品 乙酰胆碱 乙酰胆碱 阿托品 乙酰胆碱
剂量ug/kg 10 10 50 1mg/kg 10 10 50 1 0.1mg/kg 1 10 1mg/kg 10
给药体积ml/kg 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.2 0.1 0.1 0.1 0.1
4)观察RM6240B系统记录的血压曲线 正常情况：
肾上腺素（adrenaline） ：
去甲肾上腺素（noradrenaline） ：
异丙肾上腺素(isoprenaline sulfate)：
酚妥拉明(phentolamine)：
肾上腺素（adrenaline） ：
去甲肾上腺素（noradrenaline） ：
异丙肾上腺素(isoprenaline sulfate)：
乙酰胆碱（acetylcholine） ：
阿托品（atropine） ：
乙酰胆碱（acetylcholine） ：
阿托品（atropine） ：
乙酰胆碱（acetylcholine） ：
阿托品（atropine） ：
乙酰胆碱（acetylcholine） ：
放血： 第一次放血：
生理盐水：
第二次放血：
第三次放血：
第四次放血：
第五次放血：
第六次放血：
五、实验数据记录和整理
mmHg 收缩 舒张 平均 mmHg 收缩 舒张 平均 mmHg 收缩 舒张 平均 正常 121.79 86.83 105.87 肾上腺素 191.91 151.91 169.15 去甲肾上腺素 159.16 126.40 141.84 阿托品 56.28 28.8 37.84 放血一 67.49 48.36 55.07 异丙肾上腺 119.15 98.27 109.83 乙酰胆碱 56.28 26.82 36.12 放血二 51.22 31.22 38.98 芬妥拉明 69.47 32.76 44.98 阿托品 57.38 26.6 36.83 放血三 38.25 20.88 28.46 肾上腺 115.85 101.34 107.97 乙酰胆碱 73.64 -1.76 38.6 放血四 41.55 24.62 32.36 去甲肾上腺 116.51 96.73 107.07 阿托品 54.96 26.38 35.59 放血五 27.7 8.57 16.99
异丙肾上腺素 98.93 80.9 90.99 乙酰胆碱 41.55 17.81 26.05
乙酰胆碱 64.85 31.22 40.25 生理盐水 69.69 50.56 5814
六、实验讨论
肾上腺素具有α 、β 受体激动作用；去甲肾上腺素具有α 受体激动作用；异丙肾上 腺素具有β 受体激动作用； 乙酰胆碱具有 M 胆碱受体激动作用， 阿托品为 M 胆碱受体 阻断药。 当耳缘静脉注射肾上腺素时家兔血压升高，注射去甲肾上腺素时家兔血压上升， 注射异丙肾上腺素时家兔血压再次下降。 注射α 受体阻断剂酚妥拉明后家兔血压降低，再注射肾上腺素时家兔血压上升， 注射去甲肾上腺素血压再次上升，注射异丙肾上腺素时血压下降。 注射乙酰胆碱时家兔血压下降，正常情况下注射阿托品时血压应该回升，但在实 验中血压却降低，有可能是阿托品剂量太小，不足以对抗乙酰胆碱的降血压作用，当 再次加大阿托品的注射量时，家兔血压略微回升，与其拮抗乙酰胆碱的 M 受体激动作 用相符，但当再次交替注射乙酰胆碱和阿托品时，对家兔血压的作用与理论不符，有 可能与两者的剂量有关。 放血时， 第一次 15ml， 以后每次放血 10ml， 血压大致呈下降趋势， 直到抽不出血， 最后注射空气处死家兔。
七、注意事项
1、Adrenaline 等药物静脉注射时容积小速度快，阻滞药需缓慢注入。 2、待血压恢复到基本稳定后，再注射下一个药物。
八、思考题
1、肾上腺素能激动哪些受体？ 答：肾上腺素能激动 α、β 受体，产生强烈快速而短暂的兴奋 α 和 β 型效应，对心 脏 β 1 -
受体的兴奋，可使心肌收缩力增强，心率加快，心肌耗氧量增加。同时作用于骨骼 肌 β2-受体，使血管扩张，降低周围血管阻力而减低舒张压。兴奋 β2-受体可松弛支 气管平滑肌，扩张支气管，解除支气管痉挛；对 α-受体兴奋，可使皮肤、粘膜血管 及内脏小血管收缩。 2、静脉注射肾上腺素，血压常出现先升高后降低，最后恢复，其原因是什么？ 答：肾上腺素能兴奋心脏 β1 受体，使心脏兴奋，心输出量增加，故收缩压升高；作 用于骨骼肌 β2-受体，使血管扩张，降低周围血管阻力，故舒张压降低；随着激素 浓 度减小，血压恢复到原来的水平。 3、简述两种肾上腺素激动药对心脏活动、血压影响的异同点。 答： 肾上腺素（E） 心脏 心率、心收缩力、心输出量均增加 外周阻力无明显变化， 血管 效应 皮肤、肾、胃肠血管收缩， 骨骼肌、肝、冠脉血管舒张 血压升高（心输出量增加） 去甲肾上腺素(NE) 对心脏的直接作用同 E， 但因降压 反射使心率降低 外周阻力明显增加 较 E 更明显 无明显作用 血压升高更多（外周阻力增加）
4、酚妥拉明对肾上腺素对血压的作用有何影响？ 答：酚妥拉明为 α 受体阻断剂，肾上腺素为 α 受体激动剂，酚妥拉明会选择性地与 α 受
体结合， 其本身不激动或较少激动肾上腺素受体， 却能妨碍肾上腺素与 α 受体结合， 从而产生抗肾上腺素作用，进而将肾上腺素的升压作用翻转为降压，这个现象称为 “肾上腺素作用的翻转”（adrenaline reversal） 受体阻断药选择性地阻断了与血管 。α 收 缩有关的 α 受体，留下与血管舒张有关的 β 受体；所以能激动 α 受体和 β 受体的肾 上 腺
素的血管收缩作用被取消，而血管舒张作用得以充分地表现出来。但对于主要作用
于血管 α 受体的去甲肾上腺素，它们只能取消或减弱其升压效应而无“翻转作用”。 5、阿托品对乙酰胆碱对血压作用有何影响？ 答：阿托品为 M 受体阻断剂，与 M 胆碱受体有较高亲和性，能阻断乙酰胆碱与 M 受体的结合，拮抗其对 M 受体的激动作用。因乙酰胆碱能舒张血管，使血压降低， 而阿托品能够对抗其舒张血管的作用，从而使血压升高。
九、参考文献
[1]朱依谆，殷明，等.药理学.第 7 版.北京：人民卫生出版社，2011.8 [2]陆源，夏强，等.生理科学实验教程.浙江:浙江大学出版社，2004.8
十、感想
做实验前几天就听老师说这次做的实验是静脉插管实验，做不好有可能会造成 血喷，同学们都感觉既激动又恐怖，特别是对于从小晕血的我而言，完全是噩梦， 就这样一直纠结到做实验当天。丑媳妇总是要见公婆的，我硬着头皮提早来到实验 室缓和情绪。 这次是视频实验指导，当看到切开家兔颈部皮肤时，感觉有点胃里一阵翻滚， 此时我就识趣的做到一边的凳子上了，过了一会感觉缓和了很多就继续看视频。 实验开工啦，当绑好家兔后，感觉很高兴，可是老师过来一看，着实把我们使劲 的批了一顿，原来是我们固定家兔四肢的时候太靠下了。在实验成员的配合下，我们 成功的切开了家兔皮肤、撕开黏膜，并在老师的帮助下找到了颈静脉和神经（这是第 一次看到动物神经，感觉很激动） ，安装好三通。开始注射药品了，当注射肾上腺素 时，家兔血压升高与理论相符，可是当注射去甲肾上腺素注射到一半时，家兔剧烈抽 搐，此时不得不停止注射，待家兔缓和后再次将剩余药品推入静脉，过了大约 5min 家兔死亡，实验失败。 本组失败后就加入到其他组的实验中， 极度郁闷。 后来得知也有几组也同本组一 样注射到去甲肾上腺素时就死亡了， 但有的组却做的很成功， 因此推断家兔存在个体 差异性，致使实验失败。
在同一水平面上。然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。 1.4.2压力换能器的另一端与三通管相连。 三通管的一个接头将与动脉插管相 连。在将动脉插管插入左颈总动脉 前，先用盛有肝素的注射器与三通管 另一接头相连，旋动三通管上的开 关，使动脉插管与注射器相通，推动 注射器，排空动脉插管中的气体，使 动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭 三通管。 1.5手术准备： 1.5.1麻醉固定：家兔称重后，按5ml/kg 体重剂量耳缘静脉注射20%氨基甲 酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧放置 于兔台上，先后固定四肢及兔头。 1.5.2用手术剪剪去颈部皮肤被毛并切开 颈部皮肤5~7cm，钝性分离颈部肌 肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用 玻璃分针仔细分离右侧主动脉神经 和迷走神经，穿细线备用，用玻璃分 针分离两侧颈总动脉，各穿一线备
用。 1.5.3 动脉插管：在左颈总动脉中枢端结 扎，外周端用动脉夹夹住，并在动脉 下端预先穿以细线备用。用眼科剪在 靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字型 切口，将动脉插管向心方向插入颈总 动脉内，扎紧固定。打开动脉夹。1.6实验观察： 1.6.1记录正常血压曲线。 1.6.2静脉注射去甲肾上腺素：家兔耳缘静 脉注射0.3ml去甲肾上腺素，观察血 压变化，待血压曲线显示正常后再进 行下一个实验。 1.6.3静脉注射乙酰胆碱：家兔按0.1ml/mg 体重剂量耳缘静脉注射0.01g/L乙酰 胆碱，观察血压变化，待血压曲线显 示正常后再进行下一个实验。 1.6.4用血管夹突然夹闭右侧颈总动脉20s， 观察血压变化，待血压曲线显示正常 后再进行下一个实验。 1.6.5突然松开右侧颈总动脉的血管夹，观 察血压变化，待血压曲线显示正常后
实验日期：2015年12月16日 带教教师：米鍇 小组成员：彭佳杏（201402534）钟佳冀（201401197），陈靖珊（201401328），周丹婷（201401370），郭碧润（201401385） 专业班级：2014级临床十三大班，临床法语班 家兔动脉血压的调节 一、实验目的 1.掌握心血管活动调节的神经、体液机制 2.进一步熟悉家兔颈部解剖结构、学习直接测定家兔动脉血压的急 性实验的方法。 3.观察神经、体液因素对心血管活动的影响。 二、实验原理 在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种
相对稳定性是通过神经调节，体液调节和自身调节来实现的。神经调节主要通过颈动脉窦主动脉弓压力感受性反射来实现。原理如下图。 体液调节包括肾素血管紧张素系统，肾上腺素和去甲肾上腺素（主要），血管升压素。 心血管活动的变化可以通过血压的变化间接加以判断。血压的变化可通过血压换能器和Mdelab 系统记录并处理，得出结果。 二、 实验仪器设备 生物信号采集系统，兔手术台，兔手术器械、塑料动脉插管及三通开关、动脉夹、注射器、双凹夹、铁支架、保护电极、丝线、 1 mg/Kg 的肝素钠注射液、乌拉坦溶液、去甲肾上腺素、眼科剪
四、实验方法与步骤 1、称重、麻醉、固定、剪毛 2、颈部手术 1)气管插管 2)分离右侧减压神经（穿2根线备用）、交感神经、迷走神经（穿1 根线备用）、颈总动脉（穿1根线备用） 注意：减压神经、交感神经、迷走神经、颈总动脉位于气管两旁深层肌肉内的血管神经鞘内。 按先神经后血管，先细后粗的顺序分离 按减压神经、交感神经、迷走神经的顺序分离神经，穿线，末端打结备用。 3)分离左侧颈总动脉（穿2根线打结备用），1mg/Kg 的肝素钠注射 液全身抗凝，做颈总动脉插管，连接血压换能器 颈总动脉插管： 血管游离2以上（注意避开分支），穿2根线备用 远心端（头端结扎） 近心端用动脉夹夹闭动脉（留出一定的操作空间）靠近结扎点（头端）于血管前壁做V型切口 插入动脉插管固定 轻轻松开动脉夹（先不要拿开），观察是否渗血，结扎是否紧 换能器用胶布粘在桌子上，专人照看 五、实验结果
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）
传出神经系统药物对家兔离体肠管平滑肌的影响 实验目的 1、掌握离体平滑肌的实验方法。 2、观察传出神经系统药物对离体家兔小肠平滑肌的作用 教学时数2学时 实验原理 一、离体实验 1、所用组织：心脏、膀胱、子宫、气管、肺、肠等均可用于离体实验 2、特点：实验条件易于控制、操作简便、结果准确、节省时间，可进行大量 药物的筛选。 3、要求：离体实验需在一定生理环境下进行，模拟体内环境。 （1）温度：38±0.5℃ （2）通氧气：1－2气泡/s （3）营养液：含有一定离子和葡萄糖的溶液，不同的组织所选用的营养液不同。 二、离体肠管实验 1、肠管的选择：根据实验目的的不同进行选择 （1）小肠：十二指肠、空肠、回肠 （2）自律性：频率较慢，起博点位于十二指肠，自律性自上而下渐弱。 （3）空肠多做定性实验，回肠多做定量实验 2、肠内受体及作用原理 （1）受体：家兔小肠平滑肌上存在α、β、M受体。 （2）作用：α、β受体兴奋可使小肠平滑肌抑制而舒张；M受体兴奋可使小肠平滑肌兴奋而收缩。 （3）药品对受体的作用：
1、氯化乙酰胆碱（Ach）：M受体激动剂，乙酰胆碱可兴奋M受体，使小肠收缩幅度 增加，蠕动加强。 2、阿托品(Atro)：M受体阻断药，为竞争性拮抗剂，单独用药对肠管无作用，可阻断 M受体，对抗乙酰胆碱的M样作用，使肠管收缩幅度降低。 3、肾上腺素(Ad)：α、β受体激动剂，可激活α、β受体（主要是β2受体），α、β 受体激动可产生与M受体激动相反的效应，表现为肠管舒张，小肠蠕动减弱。 4、氯化钙（Bacl2）：①Ba2+进入细胞与钙调蛋白结合，使平滑肌收缩，②Ba2+可使细 胞膜发生去极化。所以加入Bacl2肠管会发生强直性收缩，Bacl2并非作用于受体，所以阿托品不能对抗这一作用。 实验材料 1．动物：家兔 2．药品①5X10-4氯化乙酰胆碱 ②0.5％硫酸阿托品 ③0.1%盐酸肾上腺素 ④20％BaCL2 3、器材：RM6240多媒体化生物信号记录分析系统、PC80586计算机、张 力传感器、保温式麦氏浴槽、超级恒温水浴、“L”型通气钩、高位吊瓶、量 筒、烧杯、培养器、氧气瓶、外科剪刀、眼科剪刀、眼科镊子、缝衣针、棉线、注射器、台式营养器。 实验方法 一、首先调试RM6240系统，使进入肌张力测定状态． 1．在主菜单中用鼠标选择<实验>中的<消化>，选择系统显示<平滑肌生理特性>。 2．在界面右侧控制参数区选择<张力>,〈选择3g〉,扫描速度1.0s/div,确定信号输入，选择〈通道2〉，在工具菜单选择快速归零（空载时钩上无任何东西）。 3．在主菜单中选择〈示波〉，进入示波状态。
实验六传出神经系统药对家兔血压的影响 【目的】1.观察传出神经系统药物对兔血压的影响，联系其临床应用。 2.探讨传出神经系统药影响血压的作用机制及应用时注意事项。 【材料】 器材兔手术台、手术灯、20ml注射器、5ml注射器、8号针头、6号针头、5号针头、气管套管（Y形玻璃或T玻璃管）、动脉套管、静脉套管（或细塑料管）、动脉夹、手术刀、眼科剪、普通剪、手术剪、止血钳、眼科镊、烧杯、血压描记装置、压力换能器、电动记纹双鼓（或二导生理记录仪、计算机）、手术线、纱布、棉纱绳、磅砰。 药品0.5%肝素、生理盐水、3%异戊巴比妥钠、10%葡萄糖、10-5乙酰胆碱、1%阿托品、10-5肾上腺素、10-4去甲肾上腺素、1%酚妥拉明、10-3普萘洛尔。 动物家兔。 【方法】 1．取家兔一只，称重，以3%异戊巴比妥钠1ml/kg耳缘静脉注射，麻醉后将家兔仰位固定手术台上。 2．压力换能器连于pclab生物信号采集处理系统上。 记录方式：连续记录；存盘方式：连续存盘；输入：DC；放大倍数：100～200；采样率：1ms。 3．剪去颈部毛，在颈部正中纵行切开长约10cm的皮肤，分离出气管并将其切开，插入气管套管，用粗线绳结扎固定。于气管分离出左侧颈总动脉，结扎其远心端，并在相距3～5cm的近心端处，用动脉夹夹住动脉阻断血流。然后在靠近结扎线处用眼科剪刀剪一小口，将连于压力换能器充满20～25ml肝素生理盐水的动脉插管朝向心方向插入颈动脉内，用线结扎固定。（将水银检压计的压力调整到100～120mmHg，用记纹鼓记录。如果用二道仪或计算机，动脉套管与压力换能器相连，插管前，充好肝素溶液）。 4．剪去耳缘静脉处毛，以备给药用。 5．分别在家兔的四肢皮下组织插入针头，接好心电图机电极（右前肢-红色，左前肢-黄色，左后肢-绿或蓝色，右后肢-黑色），记录标准Ⅱ导联的心电图，以
实验九传出神经药对家兔血压的影响（模拟实验）【实验目的】 观察肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、乙酰胆碱、酚妥拉明、普萘洛尔、阿托品等药物对兔血压的作用，并分析各药对受体的作用。 【实验原理】 体循环动脉血压简称血压（systemic blood pressure，BP）。血压是血液在血管内流动时，作用于血管壁的压力，它是推动血液在血管内流动的动力。心室收缩，血液从心室流入动脉，此时血液对动脉的压力最高，称为收缩压（systolic pressure，SBP）。心室舒张，动脉血管弹性回缩，血液仍慢慢继续向前流动，但血压下降，此时的压力称为舒张压（diastolic pressure，DBP）。正常的血压是血液循环流动的前提，血压在多种因素调节下保持正常，从而提供各组织器官以足够的血量，藉以维持正常的新陈代谢。血压过低过高都会造成严重后果，血压消失是死亡的前兆，这都说明血压有极其重要的生物学意义。 血压形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素相关。每搏输出量的多少直接影响动脉血压，心输出量多，血压升高，输出量少，血压下降。血管外周阻力的改变对收缩压和舒张压也都有影响，但对舒张压的影响更为明显。外周阻力减小使舒张压降低，脉搏压加大。外周阻力加大，动脉血压流速减慢，舒张期末动脉存血加多，使舒张压升高，脉搏压减小。另外，正常封闭型循环的动物在严重失血时，如失血量超过30％，循环血量不能维持心血管系统的充盈状态，体循环平均压将下降到不能推动足够的血量回心。由于回心血量不足，会使心输出量减少，严重时可减少到零毫米汞柱。可见循环血量是决定动脉血压的重要因素。 以上这三方面的因素又受到神经-体液调节机制的影响，特别是交感神经和肾素-血管紧张素-醛固酮两大系统。其中，交感神经主要能使心跳加快，皮肤及内脏血管收缩，冠状动脉扩张，从而导致血压的上升。传出神经药物，通过拟似或拮抗神经递质来激动或阻断分布于交感神经突触上的肾上腺素受体或胆碱受体，影响心肌收缩性、血管舒张度和循环血量充盈程度，从而升高或降低血压。而肾素-血管紧张素-醛固酮系统对血压的调节机制相对复杂，主要通过肾素、血管紧张素和醛固酮这三种物质，而这三种物质之间又紧密联系。肾素直接作用于肝脏所分泌的无活性血管紧张素原，使血管紧张素原转变成血管紧张素Ⅰ。血管紧张素Ⅰ（10肽），在正常血浆浓度下无生理活性，经过肺、肾等脏器时，在血管紧张素转换酶的作用下，形成血管紧张素Ⅱ（8肽），此酶又称激肽酶Ⅱ，尚有降解缓激肽的作用。血管紧张素Ⅱ可经酶作用，转化为血管紧张素Ⅲ（7肽）。血管紧张素Ⅱ具有很高的生物活性，有强烈的收缩血管作用，其加压作用约为肾上腺素的10～40倍，而且可通过刺激肾上腺皮质球状带，促使醛固酮分泌，潴留水钠，刺激交感神经节增加去甲肾上腺素分泌，增加交感神经递质和提高特异性受体的活性等，使血压升高。它还可反馈性地抑制肾脏分泌肾素和刺激肾脏分泌前列腺素，使血压保持在正常水平。这个从肾素开始到生成醛固酮为止的调节机制，称为肾素-血管紧张素-醛固酮系统，具有调节血压的作用。传出神经药则能
药物对兔离体回肠平滑肌的作用 实验目的 1.学习离体平滑肌器官的试验方法。 2.观察药物对兔离体回肠平滑肌的作用，并初步分析其机制。 实验原理 多种动物的离体肠管在适宜的环境中，可以较长时间保持其自动节律性运动功能。根据受体在肠平滑肌中的分布的特点，可观察药物的作用，并借助工具分析其作用机制。 实验器材和药品 1．实验动物家兔，体重2~3kg，雌雄不拘。 2．实验器材木锤，小剪刀，小镊子，培养皿，HE-400S恒温平滑肌槽，张力传感器，电脑及记录装置。 3．实验药品和试剂台式（Tyro de's）液，0.01%氯化乙酰胆碱，0.1%硫酸阿托品，1%氯化钡。 实验步骤和方法 1．取家兔1只，以木槌击其枕骨部处死，迅速剖开腹腔，找到回盲部，剪取回肠，置盛有冷台式液的培养皿中，沿肠壁分离并减去肠系膜，将肠管剪成数段，轻轻压出场内容物，用冷台式液冲洗肠管，再换冷台式液，最后将肠管剪成若干2~3cm的小段置于4℃台式液中备用。 2．HW-400S恒温平滑肌槽的操作方法 ①将恒温平滑肌槽右侧面的排液口和排水口均置于关闭状态。
②在恒温平滑肌槽内添加足够量的清水，水量达到建议水平线。在预热筒内加入适量营养液。 ③确保电源已经连接良好。 ④打开机器电源。 ⑤此时数码管和加热指示灯快速闪烁，表明系统还没有处于加热状态，当确认水浴槽内加水后，轻按温度设定旋钮，系统进入加热状态。 ⑥设定实验温度（38±0.5）℃。 ⑦营养液先在预热筒中预热，然后通过按下自动加液按钮让其自动流到实验药筒。 ⑧温度达到试验温度后加入实验样本。试验样本通过随机配件中的实验片固定在试验药筒中，用滴管向实验药筒中滴入药液来进行实验。用过的营养液可通过打开设备侧板的放液阀向外排放，排放后请用预热筒中营养液将其冲洗数遍，实验效果更佳。 ⑨调节气量调节阀。 ⑩实验时将随机标配的支架杆固定座上，将张力传感器固定在支架杆上，然后将实验样本一端吊在张力传感器上，一端固定在实验钩上，将实验钩牢挂在试验药筒边沿即可开始试验。 3．打开电脑，点击桌面中BL-420(BL-410)图标，进入主菜单，再点击生理、药理实验项，选择平滑肌是实验项目进行试验。 4．待肠管稳定10min左右，描记一点正常收缩曲线，再依次向实验药筒中滴加药液。待肠平滑肌收缩曲线稳定后，加入一次药液立即标记，并观察、描记收缩曲线。
药物对家兔血压的影响 一．实验目的 掌握去甲肾上腺素和乙酰胆碱对家兔血压的影响 二．实验原理 血压的形成与心室射血、血管阻力和循环血量三个基本因素有关，通过神经—体液调节机制维持正常血压，传出神经药是一大类药物，或拟似神经递质，或拮抗神经递质，通过激动或阻断分布于心血管的肾上腺素受体和乙酰胆碱受体，影响心肌收缩性，血管的舒张与收缩程度，从而使血压升高或降低。 三．实验材料 家兔、兔手术台、哺乳类动物手术器械一套、动脉夹、动脉插管、血压换能器、双凹夹、铁支架、玻璃分针、细线、注射器（5ml）、小烧杯、台氏液、20%氨基甲酸乙酯、肝素（1000u/ml）、0.0001%乙酰胆碱、生物信号采集系统 四．实验方法 1.手术准备 （1）家兔称重，氨基甲酸乙酯按3-4ml/kg体重的剂量于耳缘静脉注射麻醉。麻醉剂不能过量，注射速度不能过快。 （2）动物仰卧与手术台上，用棉线拴住门牙，将绳子拉紧固定于固定台的铁圈上，固定四肢。 （3）暴露颈总动脉、颈静脉。分离，分别穿线备用。 （4）静脉注射肝素，剂量为1000u/kg体重。 （5）1分钟后（肝素在体内血液中均匀混合），左颈总动脉插插管，并在动脉下方穿一根线备用，用眼科剪在靠近结扎处剪一V形口，将动脉套管沿近心端插入颈总动脉，结扎。 2.装置仪器连接 （1）颈总动脉血压测量记录装置。将血压换能器固定于铁支架上，其位置应与心脏在同一平面 （2）生物采集系统的连接 3.观察项目 （1）观察正常血压波动曲线 （2）静脉注射0.001%的去甲肾上腺素0.5ml，观察血压变化并记录。 （3）静脉注射0.0001%的乙酰胆碱0.1ml/kg，观察血压变化并记录。 五．注意事项 1.采取保温措施，避免动物麻醉后体温下降 2.分离时，一定要小心，避免弄破血管。
实验七药物对离体肠的作用 【目的】1．观察药物对离体兔肠的作用，联系其临床应用。 2．探讨药物的作用机制，提高同学们综合分析及探索问题的能力。 【材料】 器材铁支架、恒温水浴箱、麦氏浴槽、L形通气钩、橡皮管（一端连玻璃管）水温度计、球胆、螺旋夹、延伸棒、双凹夹、杠杆、描笔、记纹鼓、记录仪或计算机系统、木棰、解剖用手术器械一套、缝针、手术线、胶泥、培养皿、1ml 注射器、烧杯、5号针头、100ml量筒、酒精灯、恒温装置一套、蛙心夹。 药品台氏液、10-4乙酰胆碱溶液、1%阿托品、0.1%扑尔敏、10-5磷酸组织胺溶液、1%氯化钡溶液、1%毛果芸香碱溶液、10-4水杨酸毒扁豆碱溶液、10-4盐酸新福林溶液、10-5异丙肾上腺素溶液、10-4普萘洛尔溶液。 动物家兔。 【方法】取家兔一只，击头致昏，立即剖腹，剪下空肠和回肠上半段，置于盛有台氏液的烧杯或培养皿内，将肠系膜沿肠壁分离掉，用台氏液把肠内容物冲净，将肠剪成2～2.5cm长的肠段备用。如不即时应用，可将肠段放入台氏液中，置于冰箱保存，一般可保持活力12h左右。实验前，先调好恒温装置，温度保持在37～38°C。在麦氏浴管中盛入5ml台氏液，并标记好液面高度。由球胆输入空气（每秒1～2个气泡）。然后取肠管一段，一端固定于通气管的小钩上，放入麦氏浴管中，另一端用线连接在描记杠杆上（或接张力换能器联记录仪或计算机）。待离体肠段稳定5～10min后，描记一段正常收缩曲线，继而依次于麦氏浴管中加药进行实验。加入一次药液，至作用明显后，用台氏液连续冲洗2次，等到曲线恢复到用药前的水平，又随之描记一段基线，再加入第二个药液。如果肠管反应不灵敏，可更换另一段肠段。 给药的顺序： （1）10-4乙酰胆碱液20μg； （2）1%毛果芸香碱溶液2ml； （3）10-4水杨酸酸毒扁豆碱液20μg。 第二组药物
实验二十 家兔动脉血压的调节 Regulation of Arterial B1ood Pressure in Rabbit 【实验目的】 学习哺乳动物动脉血压的直接测量方法，观察神经和体液因素对心血管活动的调节。 【实验原理】 心脏受交感神经和副交感神经支配。心交感神经兴奋使心跳加快加强，传导加速，从而 使心输出量增加。支配心脏的副交感神经为迷走神经，兴奋时心率减慢，心脏收缩力减弱， 传导速度减慢，从而使心输出量减少。 支配血管的自主神经绝大多数属于交感缩血管神经，兴奋时血管收缩，外周阻力增加。 同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。 心血管中枢通过反射作用调节心血管的活动，改变心输出量和外周阻力，从而调节动 脉血压。 心血管活动除受神经调节外，还受体液因素的调节，其中最重要的为肾上腺素和去甲 肾上腺素。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。肾上腺素对α受体与β受体均有激 活作用，使心跳加快，收缩力加强，传导加快，心输出量增加。它对血管的作用取决于两种 受体中哪一种占优势。去甲肾上腺素主要激活α受体，对β受体作用很小，因而使外周阻力 增加，动脉血压增加，其对心脏的作用远较肾上腺素为弱。静脉内注入去甲肾上腺素时，血 压升高，启动减压反射，可反射性地引起心跳减慢。本实验通过动脉血压的变化来反映心血 管活动的变化。 【实验对象】 家兔。 【实验材料】 哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器，刺激 电极，照明灯，万能支台，双凹夹，烧瓶夹，试管夹，气管插管，动脉夹，三通开关，动脉 导管，注射器(1ml、5ml、20ml)，有色丝线，纱布，棉花，1.5％戊巴比妥钠，1000U/ml 肝 素生理盐水，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 去甲肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液， 生理盐水。 【实验步骤】 1．连接实验仪器装置 将压力换能器固定在铁支架上，换能器的位置大致与心脏在同 一水平。将动脉导管经三通开关与压力换能器正中的一个输入接口相接。压力换能器的输入 信号插头与生物信号采集处理系统的信号放大器输入盒的某通道相连。 用注射器通过三通开 关向压力换能器及动脉导管内注满肝素生理盐水，排尽气泡，然后关闭三通开关备用。 将刺激电极输入端与生物信号采集处理系统的刺激输出口相连。 2．手术 (1)动物的麻醉与固定 用 1.5％戊巴比妥钠以 2.0ml／kg 的剂量由耳缘静脉缓慢注入。 动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上。 (2)气管插管 剪去颈部的毛，沿颈正中线作5~7cm的皮肤切口。分离皮下组织及肌肉， 暴露、分离气管。在气管下方穿一丝线，于甲状软骨下方 2～3cm处作“⊥”形切口，插入 气管插管，以丝线结扎固定。 (3)分离颈部神经和血管 在气管两侧辨别并分离颈总动脉、迷走神经、交感神经和减 压神经。三条神经中，迷走神经最粗，交感神经次之，减压神经最细，常与交感神经紧贴在 一起。分别在各神经下方穿以不同颜色的丝线备用。分离时特别注意不要过度牵拉，并随时 用生理盐水湿润。颈总动脉下方穿两条线备用。 (4)插动脉插管 静脉注射肝素(1000U／kg)以抗血凝。在左侧颈总动脉的近心端夹一动
结果讨论分析： 1血压的二级波是由于呼吸运动引起的血压波动。心搏为一级波，呼吸波为二级波。吸气时先是下降，继则上升；呼气时先是上升，继则下降，频率与呼吸频率一致。 2.夹闭对侧颈总动脉血压升高 3.刺激迷走神经血压下降 刺激迷走神经后，家兔的血压、心率恢复较快，说明迷走效应持续时间不长。 4. 刺激减压神经血压下降 刺激减压神经后，心率并不是预料中的无明显变化，变化明显，但不如刺激迷走神经显着。验证了刺激交感神经引起了迷走中枢的活动。 5.静脉注射0.1g/L去甲肾上腺素0.5ml，血压升高 注射去甲肾上腺素后，血压和心率都保持了长时间的变化，说明可能去甲肾上腺素对血压和心率的调节能力持续性好。 6.静脉注射10-2g/L乙酰胆碱（0.1ml/kg体重），血压下降 首先，乙酰胆碱作用与心脏的M受体，引起心率减慢，心肌收缩力减弱，房室传导减慢甚至阻滞，心输出量明显减少，血管舒张血压下降。其次，乙酰胆碱还作用于血管内皮的M受体，使血管内皮细胞释放“松弛因子”，引起血管平滑肌舒张，外周阻力下降。最后，乙酰胆碱激活交感神经的突触前M-R，产生突触前调制效应，导致交感神经末梢释放去甲肾上腺素减少，从而减少交感缩血管紧张效应。这不但可降低外周阻力，减少心输出量，还可扩张容量血管而减少循环血量，最终也导致了血压的下降。 注射乙酰胆碱后，血压急剧下降，而心率暂时没有减慢，可能是因为血压通过血压感受器对心率本身有调节效应，之后血压较快恢复之后，心率才明显减慢。这里血压和心率是交错受到乙酰胆碱调节的，但最终心率调节持续时间更长，说明乙酰胆碱更趋向于以调节心率为目的。 实验结论： 1.从以上实验分析中可以发现，无论是血管壁的被动收缩还是刺激不同的神经，其本质都是通过心交感神经与心迷走神经对心血管系统产生影响。即直接支配心血管活动的神经为交感神经和迷走神经。由于这两种神经节后神经末梢分别释放肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱作为递质，因此肾上腺素（去甲肾上腺素）和乙酰胆碱所产生的效应与刺激两种神经是相对应的。 2.从以上实验分析中，可以总结出心输出量是影响动脉血压的因素：心输出量由两个因素决定：心搏出量和心率。心搏出量增加时，心脏射血增多，动脉血压会升高（主要是收缩压），心率增加时，心舒期缩短，流向外周的血液不充分，因此心舒末期留于主动脉的血量增多，致使血压增大。心迷走神经或心交感神经兴奋，作用于心肌细胞，控制心输出量，会影响血压的升降。
家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
药物对家兔离体肠管的影响 【目的】 1．观察乙酰胆碱和阿托品对家兔离体肠管的作用，并分析其作用机制。 2．学习离体肠管的实验方法。 【原理】 消化道平滑肌与骨骼肌、心肌一样，具有肌肉组织共有的特性，如兴奋性、传导性和收缩性等。但消化道平滑肌兴奋性较低，收缩缓慢，富有伸展性，具有紧张性、自动节律性，对化学、温度和机械牵张刺激较敏感等特点。给予离体肠管以接近于在体情况的适宜环境，消化道平滑肌仍可保持良好的生理特性。 肠道平滑肌以胆碱能神经占优势，小剂量或低浓度的Ach即能激动M胆碱受体，产生与兴奋胆碱能神经节后纤维相似的作用——兴奋肠道平滑肌：收缩增强、张力增高。阿托品与M胆碱受体结合，能阻断胆碱能递质或拟胆碱药物与受体的结合，从而产生抗胆碱作用。氯化钡的兴奋肠道平滑肌作用为Ba2+的毒性表现，其作用机制与激动M胆碱受体无关。 【材料】 1．动物：家兔。 2．药物：1×10-5乙酰胆碱溶液、0.5mg/mL硫酸阿托品溶液、0.1g/mL氯化钡溶液、台氏液。 3．器材：RM6240BD多道生物信号分析处理系统（匹配微机、显示器、打印机）；麦氏浴槽，恒温电热器，压力换能器，空气泵；手术缝合器械等。 【方法】 1．取材：取家兔1只，左手执其髂上部，右手握木锤向其枕骨部猛击致死。迅速剖腹，取十二指肠、空肠及回肠，置于盛有冷台氏液的器皿中，沿肠壁剪去肠系膜，并将肠管剪成数段，轻轻压出肠内容物，再换冷台氏液继续冲洗肠管数遍，最后将肠管剪成2～3cm的小段备用。 2．制备离体肠管标本：取备用兔肠一段，两端分别作穿透肠壁（单侧或双侧）的缝合结扎并留线。 3．联接安装离体肠管实验装置：浴槽与恒温电热器联接，恒温电热器中的水温保持在38±0.5℃。离体肠管标本一端用线扎于L型通气管上，放入盛有30mL台氏液的浴槽内，固定L型通气管。标本另一端用线与压力换能器相连，后者联通RM6240BD多道生物信号分析处理系统。用空气泵向浴槽内缓慢输入气泡（2个/s）。 4．调试实验系统：打开相应软件“RM6240并口”，选择“实验／药理学专用实验／离体肠管实验（兔）；工具／坐标滚动；等等”，并正确设置参数（时间常数为直流，灵敏度3g，滤波频率10Hz，采样频率200Hz，扫描速度1s／div。），显示离体肠管活动曲线，并调节基础张力至2g左右。 5．加药：用注射器依次向浴槽内加入下列药物，实时显示并记录曲线变化。 （1）1×10-5乙酰胆碱溶液0.1～0.2mL，当肠管收缩显著时，立即加入； （2）0.5mg/mL硫酸阿托品溶液0.1mL，当描记曲线下降到基线时再加入； （3）1×10-5乙酰胆碱溶液，剂量同（1），若作用不明显，接着追加1次。 （4）0.1g/mL氯化钡溶液0.1mL，待作用稳定后立即加入； （5）0.5mg/mL硫酸阿托品0.1mL。 【结果】 打印肠管收缩曲线图，并在曲线中相应位置注明所加药物及剂量。 【注意事项】 ①控制好浴槽内温度：38±0.5℃。 ②冲洗干净制作离体肠管标本所需的肠管；离体肠管标本在制作时与使用前应置于冷台氏液中。 ③全程操作中，不宜过度牵拉肠管。给药前调好肠肌张力，不要过紧或过松，以不影响肠肌收缩功能及对药物的反应性为原则。实验过程中不得再调整张力。 ④浴槽内台氏液应该浸没肠管，实验中应结合标本大小控制液量，依据标本大小和液量调整加药量。 ⑤不要把药液直接加在标本上。 ⑥用作给氧的气泡不能太大或太快，避免其对描记波形的干扰。 ⑦重做实验时，先取出标本、放液，冲洗浴槽三遍后再加入台氏液（可先预热），当浴槽内温度适宜时，重置（新）标本，重新实验。 ⑧离体肠管标本不宜过长，两端结扎点相距不超过2cm。 ⑨本实验体系还可检验其他多种类别药物对离体肠管的影响，如拟肾上腺素药、抗肾上腺素药，拟组胺药、抗组胺药等。 ⑩检测每一种药物对离体肠平滑肌的影响时，都需换液后操作，分步进行。
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应， 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心 端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验 系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果： 1.正常心率和血压：260次/分，115mmHg。
理化因素和药物对家兔离体肠肌的作用 浙江中医药大学14级临床医学本部三班张伊娜 【摘要】目的：研究乙酰胆碱、肾上腺素、NaOH、HCl、低温台氏液、缺氧对离体家兔肠肌的作用及机制。方法：向浸有离体家兔肠肌的38℃台氏液中依次滴加乙酰胆碱、肾上腺素、NaOH、HCl各2滴，将38℃台氏液迅速换成25℃的台氏液，停止供氧及恢复供氧，用生物信号采集处理系统记录肠肌的收缩情况。结果：滴加乙酰胆碱、NaOH后，肠肌收缩张力和频率都增大；滴加肾上腺素、HCl和将38℃的台氏液迅速换成25℃台氏液后，肠肌收缩张力与频率都降低；停止供氧后，肠肌收缩早期张力及频率增强，晚期减弱。通气后频率先降低又逐渐恢复正常。结论：一定浓度乙酰胆碱、NaOH可促进肠肌的运动；一定浓度的肾上腺素、HCl以及低温会抑制肠肌的运动；短时间的缺氧能使肠肌收缩一开始增强，随后减弱。 【关键词】理化因素；小肠平滑肌；家兔；电活动 1实验材料和方法 1.1实验材料 家兔（雌雄不限）。 微机化生物信号采集处理系统（RM6240系统），麦氏浴槽，张力换能器，铁支架，双凹夹，恒温水浴箱，气泵，温度计，烧杯，螺旋夹，棉线，L型固定钩，剪刀，眼科镊，注射器，持针器，手术圆针，手术盘，搪瓷碗等；台氏液，乙酰胆碱（10-4mol/L），肾上腺素（10-4mol/L），氢氧化钠，盐酸，阿托品等。
1.2实验方法 安装麦氏浴槽，在麦氏浴槽中加固定量（10-15mL）的台氏液，调节超级恒温器的温度，使麦氏浴槽内温度温度在38℃。通气管接95%O2+5%CO2混合气体管道。用螺丝夹调节气体管道的气体流量，调节至浴槽中气体一个个逸出为止。换能器输出线连接微机生物信号采集处理系统，仪器参数设置：RM6240，点击“实验”菜单中的“肠肌记录”，通道时间常数为直流，滤波频率10Hz，灵敏度3g，采样频率200Hz，扫描速度1s/div。 取家兔一只，用木槌猛击兔头枕部使其昏迷，迅速剖开腹腔找到胃，以胃幽门与十二指肠交界处为起点，先将肠系膜沿肠缘剪去，再剪取20-30cm肠管，用4℃台氏液冲洗，除去肠管内容物。冲洗干净后将肠管剪成数小段（约1~1.5cm），换以新鲜台氏液备用（注意操作时勿牵拉肠段以免影响收缩功能）。取小段肠管置于盛有台氏液的培养皿中（此过程一直通有空气），在其两端对角壁处，分别用缝针穿线，并打结。注意保持肠管畅通，勿使其封闭。 肠管一端连线系于浴槽固定钩上，然后放入38℃麦氏浴槽中，再将肠管另一端系结在张力换能器的悬梁壁上。 ，记录一段正常张力曲线。然后用滴管加ACh（10-4mol/L）2滴于浴槽内，观察并记录其张力曲线，然后立即从排水管放出浴槽内含ACh的台氏液，然后从侧管加入38℃的新鲜台氏液，重复2次（每次用针管抽取20mL），以洗去残余药物，使之降到无效浓度，再加入与一开始等量的台氏液。待张力恢复到用药前的水平后进行下一项实验。 ，观察并记录其张力曲线，然后按相同步骤处理含肾上腺素的台氏液。待张力恢复到正常水平后进行下一项实验。
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察