血压测量的实验报告
姓名：张嘉杨性别：女
班级：英语114 学号：201110010402
实验内容：血压测量（水银台式血压计）
实验地点：学15
实验日期：2012年10月14号
一、实验目的
1.通过学习，使我们掌握血压计使用的正确方法
2.加深自己的体验过程，要熟练血压的测量目的，要为自己在生活中或工作做好准备。
3.在实践过程中尽早发现问题，查出错误，在改正中不断进步。
4.了解人体血压的测量方法及相关知识，达到理论与实际相结合的目的。
二、实验要求
1.保持实验室的安静。
2.要爱护实验室的器材，尽量要做到实验室器材不要损坏。
3.认真听和看老师示范的方法，注意老师讲的注意事项。
4.实验结束后注意学会分析总结和会使用血压计。
三、实验对象和器材
实验对象：
实验器材：听诊器、血压计
四.实验过程：
1.先让测血压的人保持情绪稳定。
2.把盒子打开，在把水银柱的最下边银色水银槽的开关打开。
3.被测者脱去一只衣袖，将前臂平放在桌子上，与心脏在同一水平位，掌心向上半握拳。测验着要
和被测者在同一水平，将压脉带缠住该上臂处，大约距肘横纹2指，松紧适宜。
4. 将听诊器置于,肱动脉平第4肋软骨.把袖带平整的缠在上臂中部(松紧以能放入一指为宜)。
5. 测量时快速充气，使气囊内压力达到桡动脉搏动消失后再升高20mmHg，然后以恒定的速率缓慢放气。在
心率缓慢者，放气速率应更慢些。使水银柱下降，视线与水银柱刻度平行．
6. 在听诊器中听到的第一声，水银柱所指刻度为收缩压；当搏动音消失或减弱时，所指刻度为舒张压．
7. 测量后，放尽袖带中的空气，解开袖带．测血压完毕．
8.将血压计右倾45°，关闭气门，气球放在固定的位置，以免压碎玻璃管．
9.按要求整理好，把听诊器和袖带放在袋中，整理实验桌，把垃圾带走。
五、实验总结
血压测量的结果：
姓名性别专业班级年龄收缩压舒张压
mm/Hg mm/Hg
总结：收缩压范围90-140mm/Hg,舒张压范围60-90mm/Hg.正常人高血压为90/mmHg～130/mmHg，低血压为60mm/Hg～80mm/Hg，所以实验对象的血压是正常的。
六、注意事项
1.血压计要定期检查，以保持其准确性，并应放置平稳，切勿倒置或震荡。
2.被测者的衣袖不应过紧，以免阻碍血循环，如果过松，会影响测试结果。
3.读数时，最好水平目视，以防误读数值。
4.如发现血压计听不清或异常时，应重测。使汞柱降至“0”点再测，心要时测双上臂以资对照。
5.须密切观察血压者，应尽量做到四定：定时间、定部位、定体位、定血压计.
6. 防止血压计本身造成的误差：水银不足，则测得血压偏低。水银柱上端通气小孔被阻塞，空气进出有困难，可造成收缩压偏低、舒张压力偏高现象。
一、实验名称——动脉血压调节和失血性休克（一） 二、实验目的 掌握动脉血压的神经和体液调节 三、合作同学 四、实验原理 ( 1 )神经调节 每搏输出量 血压升高主动脉窦心率 颈动脉体 缩血管中枢舒张外周阻力减小血压下降 五、实验对象 家兔（新西兰大白兔），2.5公斤，雄性。 六、实验器材和药品 手术器械一套，计算机多导生理记录仪一台、刺激电极、微循环观察装置，带三通针头的细塑料管2个，注射器若干，20%乌拉坦，0.3%肝素，去甲肾上腺素针剂，0.02g/L 肾上腺素，0.03g/L去甲肾上腺素，0.01g/L异丙肾上腺素，5g/L酚妥拉明。 七、实验方法 1.家兔称重后背位交叉固定于手术台，颈部备皮。 2.20%乌拉坦耳缘静脉注射麻醉，沿兔颈部正中皮肤作6~8cm切口，分离气管，再沿气管 分离两侧颈总动脉、一侧迷走神经和减压神经，穿线备用。 3.自耳缘静脉注入0.3%肝素5ml/kg抗凝。 4.一侧颈总动脉插管并与计算机多导生理记录仪相连。 5.观察正常血压并记录曲线带血压稳定后开始实验。 6.按下列顺序注入药品 肾上腺素去甲肾上腺素异丙肾上腺素酚妥拉明5分钟后去甲肾上腺素肾上腺素异丙肾上腺素。 说明：给药体积均为0.2ml/kg；每次给药后可住生理盐水，将死腔内的药液注入静脉； 给药后待血压平稳后再给另一种药物。 （1）夹闭一侧颈总动脉 （2）刺激一侧减压神经，双侧结扎剪断后再分别刺激减压神经中枢端和外周端
（3）结扎并剪断一侧迷走神经观察 八、实验结果及结论 1.正常波形 2. 注射肾上腺素 3. 去甲肾上腺素
4. 异丙肾上腺素 5.酚妥拉明 6.去甲肾上腺素
家兔缺氧实验报告 篇一：家兔解剖实验 一、实验目的 1. 通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2. 掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征 3. 熟练解剖动物的方法 二、实验原理 将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。 三、实验器材 活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等 四、实验步骤 1、外形观察，处死 家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区，提
起此处皮肤，开口，打开皮肤。 取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤 润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切 从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。 小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“ U ”形，空肠和回肠界限不易区分。 大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。 膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝 肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日 （一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL 、1mL ）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、 0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品
1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 （四）实验主要设备和仪器、药品和用品（要求分类、简洁、清晰表述）
血压测量护理技术操作流程（肱动脉法） 素质要求：仪表端庄、着装整齐、修剪指甲、洗手、戴口罩 病人：查对病人 了解病情、治疗情况、心理状态及合作程度、解释测血压的目 评 估 的、方法、注意事项及配合要点 环境：室温适宜、光线充足、环境安静 患者准备 体位舒适、情绪稳定 测量前20—30分钟禁止吸烟、运动、情绪波动 准备用物：治疗盘、血压计、听诊器、记录本、笔 携用物至床旁 核对患者 体位 手臂位置（肱动脉） 心脏 同一水平 坐位：平第四肋 卧位：平腋中线 卷袖至肩 露上臂 手掌向上 肘部伸直 打开血压计，垂直放妥，检查血压计，驱尽袖带内空气， 汞柱无裂损，汞柱降至“0”点 平整缠袖带，松紧以能插入 1指为宜，带下缘距肘窝2—3cm 开水银槽开关 注气：听诊器，置肱动脉搏动处，关闭气门 ，挤压气球注气，至肱动脉搏动音消失再升高20 —30mmHg 注气：听诊器 置肱动脉搏动处 关闭气门 挤压气球注气 至肱动脉搏动 再升高 20—30mmHg 音消失 2.66—4Kpa 缓慢 每秒4mmHg 听诊器出现第一声为收缩压 放气：放气 测血压 搏动突然变弱或消失为舒张压 完毕 排袖带余气 拧紧气门 解袖带 关水银槽开关 关血压计 （血压计倾斜45°） 收缩压/舒张压mmHg （Kpa ） 病人 病床单元 用物 目 的：测量血压值，观察血压的动态变化，为治疗与护理提供依据 注意事项：1、对需要长期密切观察血压的病人应定时间、定部位、定体位、定血压计、以保 证血压值的准确性与可比性。 2、充气不可过猛、过高，防止水银外溢；放气不可过快过慢，以免读值误差。 准 备 操作步骤 记 录 整 理 理 论
金山学院课程实习报告报告题目《家兔活体解剖课程实习》课程名称《家畜解剖学》 实习地点动物医学家畜解剖实验室实习时间2014年12月14日 专业动物医学 年级 2014级 学生姓名陈意 学号 0146726093
（一）.实验日期2014年12月14号(8:00～11:30) （二）.家畜品种：家兔 性别：母 年龄：未知 放血后重：6.98斤 体长：75cm （三）.解剖程序和观察内容 1.活体观察 ?毛色：浅棕色前后关节：健全 ?观察巩膜为白色，瞳孔为椭圆形，眼结膜粉红色、正常 ?健康状况：良好鼻镜：湿润眼神：呆滞 2.处死 ?磨刀，绑定。 ?用手术刀切开颈动脉。进行放血。 ?放血后，用手触摸睫毛，判断是否死亡。 ?放血后称重。 3.剥皮 ?在四肢系部环切，再沿内侧正中线纵切至腹正中线。从下颌至肛门沿腹正中线做纵切 切开皮肤。
?在正中线处向外顺序剥开皮肤，剥皮时其他人员将皮拉紧，沿皮下组织层切割。先剥 四肢后剥躯干。 4.观察肌肉 ?冈上肌、冈下肌、肱三头肌斜方肌、背阔肌 臀浅肌、阔筋膜张肌、臀股二头肌
5.胸、腹部解剖观察 ?沿着腹底正中心线切开，并剪断胸壁所有肋骨的下端和隔肌的附着线，便可把整个胸 腔、腹腔暴露在外 ?肺、气管、食管(在腔静脉的背侧有气管，气管的背侧偏左有食管) ?心脏(观察心的外形，分清进出心腔的主动脉，前、腔静脉，肺动脉，肺静脉。分清 心房心室的部位，以及心耳部位 ?小肠，大肠
小肠分为十二指肠、空肠、回肠。大肠分为盲肠、结肠、直肠 测量肠管的长度：在胃的幽门后、降结肠入骨盆腔处及总肠系膜根部双结扎。把整个肠管摘除。把各段肠管的系膜分离。拉直肠管测量各段长度。 ?肝、胆囊、脾、胃 ?胰散在于十二指肠间的肠系膜中,形如脂肪 ?肾红褐色，卵圆形，位于最后肋骨和前两个腰椎横突的腹侧面。光滑单乳头肾。
°实验五：小鼠解剖实验 吴雪薇121140059 一、实验目的 1、通过实验学习给小鼠注射、灌胃等技术操作 2、了解戊巴比妥对哺乳动物的影响 3、复习解剖的基本操作 4、通过实验了解小鼠唾液腺的结构 5、通过实验了解小鼠体内器官、系统构造 二、实验原理 1、小鼠唾液腺 唾液腺由颌下腺、腮腺、舌下腺组成，颌下腺最明显，颌下腺两边弥散的是腮腺，舌下腺连于颌下腺上，容易与颌下腺上连的淋巴结搞混。 2、会厌软骨 会厌软骨即构成会厌的软骨，形状扁平，像树叶，下部附着在喉结的内壁上。会厌是喉头上前部的树叶状结构，由会厌软骨和黏膜构成。呼吸或说话时，会厌向上，使喉腔开放；咽东西时，会厌向下，盖住气管，使东西不至进入气管内。 3、小鼠体内结构 （1）胸腔：胸腔内的结构主要有食道、心、肺。 （2）腹腔：主要有胃、肝、胆、胰、脾、肠、肾（包括肾上腺）、输尿管、膀胱和生殖器官：卵巢、输卵管、子宫（雌），睾丸、附睾、精囊腺、输精管（雄）。 （3）胸腔与腹腔由膈膜隔开。 三、实验器材 注射器、烧杯、灌胃针、解剖盘、解剖剪刀、镊子、解剖针、钉子 四、实验材料 小鼠1只、戊巴比妥溶液 五、实验操作 1、抓取一只小鼠，拎住尾巴根部，使其前肢抓在抹布上，后肢提起，用注射器 向其腹腔注射0.5ml戊巴比妥溶液。 2、将小鼠放在烧杯中，观察它的反应。 3、待小鼠不再动时，用注射器向其腹腔再注射0.5ml戊巴比妥溶液，使其死亡。 4、将小鼠放在解剖盘上，用大头针将四肢固定在解剖盘上。 5、用解剖剪刀，从靠近肛门处剪开表皮直至口腔，观察唾液腺。 6、剪开口腔，观察会厌软骨。 7、剪开腹腔和胸腔，观察小鼠体内结构。 8、处理小鼠，清洗、整理实验器材。 六、实验结果 1、观察注射戊巴比妥溶液后的小鼠 本次实验第一次注射，注射了0.4ml的戊巴比妥溶液，第二次注射了0.6ml。
生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适
应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
血压的测量 目的： 1、测量、记录患者的血压，判断有无异常情况。 2、监测血压变化，间接了解循环系统的功能状况。 准备用物：血压计、听诊器、记录本、笔。 操作流程： 一、着装规范，七步洗手，备齐用物。 二、评估 1、环境：安静舒适。 2、评估患者：病情、意识、合作能力。 3、影响血压的相关因素。 三、实施要点： 1、核对病人，解释目的、方法，取得患者的配合。 2、检查血压计。 3、协助患者采取坐位或卧位，保持血压计零点、肱动脉与心脏 同一水平。 4、驱尽袖带内空气，平整地缠于患者上臂中部，松紧以能放入 一指为宜，下缘距肘窝2-3厘米。 5、听诊器置于肱动脉位置。 6、缓慢匀速打气，勿过快、过猛，至肱动脉音消失后再打 20-30mmHg；以每秒2-4mmHg速度放气，第一声为收缩压，变 音或消失为舒张压。 6、测量完毕，排尽袖带余气，血压计倾斜45度待水银全部流入 水银槽内后，关闭血压计。 7、安置患者舒适体位，征询患者感受。 6、消毒手并记录。 四、指导患者 1、告知患者测量血压时的注意事项。
2、指导患者了解影响测量的相关因素。 3、指导患者或家属学会正确测量血压的方法。 注意事项 1、保持测量者视线与血压计刻度平行。 2、长期观察血压的患者，做到“四定”：定时间、定部位、定体 位、定血压计。 3、按照要求选择合适袖带。 4、若衣袖过紧或太多时，应当脱掉衣服，以免影响测量结果。 简易流程 着装规范→洗手→携用物至床旁→核对病人→评估解释目的→摆体位→驱尽袖带内空气，平整地缠于患者上臂中部，松紧以能放入一指为宜，下缘距肘窝2-3厘米→正确记录收缩压与舒张压→测量完毕，排尽袖带余气关闭血压计→患者舒适体位→消毒手→记录
家兔动脉血压的神经体液调节 【实验目的】 1.学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法 2.观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响 【实验材料】 家兔 器材：手术台，止血钳，眼科剪，BL420E+生物机能分析系统，气管插管，动脉套管，动脉夹，保护电极，照明灯，纱布，棉球，丝线，注射器 试剂：生理盐水，肝素，乌来糖（麻醉剂），肾上腺素，乙酰胆碱 【实验步骤】 1.手术 （1）麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉注射麻醉剂（1g/kg）进行麻醉。麻醉过程要缓慢，当动物角膜反应迟钝，掐其大腿无反应，即可停止注射，避免过度麻醉致死。 （2）将动物背位交叉固定，将颈部喉结下部毛剪掉。 （3）仅靠喉结下缘，沿颈部正中线做一长约5-7cm的皮肤切口，将皮下结缔组织钝性分离，至露出气管，穿线，用手术刀在气管上做一横切口，插入气管插管，结扎。 （4）分离颈部神经血管：分离胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌及其周围结缔组织，在接近气管外侧，有一条较细，壁厚的血管，即为主动脉血管（可看出里面血流规律性搏动）。与主动脉伴行的有两条较粗的神经，最粗的为迷走神经，其次为交感神经，两者之间有一条很细的神经，减压神经。但减压神经的位置不固定，两条较粗的神经附近的细小神经都有可能是减压神经，可以进行刺激试探。确定迷走神经和减压神经后，分离出减压神经，迷走神经，主动脉血管，分别穿线备用。 （5）动脉套管插入：动脉套管插入前，需准备好压力换能器记录血压的装置。用注射器将肝素生理盐水注入套管，至将其中所有空气由插孔处排出，用肝素生理盐水代替。注入处用止血钳将胶管夹住。保证其中不能有空气。准备好动脉套管装置后，用动脉夹夹住近心端，远心端动脉结扎，在两者之间剪一小口，迅速插入动脉套管（动作迅速，否则动脉管腔急剧收缩，难以插入套管），用线将动脉插管固定于动脉内，并挂在套管（缠一圈胶布）上，以免滑脱。 （6）松开动脉夹，即可看到少量动脉血液冲入动脉套管。此时即可开始进行试验，记录曲线。 2.曲线描记 （1）描记一段正常曲线，识别一级波（心波），二级波（呼吸波）。 （2）提起另一侧颈总动脉的备用线，动脉夹夹闭5-10s，观察记录血压变化，分析原因。（3）中等强度的点刺激刺激另一侧减压神经，观察血压变化。双结扎后切断，再刺激减压神经神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化。 （4）对另一侧迷走神经进行同样处理，分别观察双结扎切断神经前、后的血压变化。（5）耳缘静脉注射肾上腺素，观察血压变化。 （6）耳缘静脉注射乙酰胆碱，观察血压变化。
狗的解剖实验报告 篇一：解剖母鸡实验报告 实验报告--母鸡的解剖 试验时间：XX年12月7日 一、解剖程序 把鸡处死，方法：在鸡的颈部靠近头处开口放血致死，然后进行解剖观察 二、观察内容 （一）消化系统 1. 口腔：无软腭，无唇齿，有上下喙，舌形态与喙相似。 2.嗉囊：食管的膨大部，位于叉骨之前，直接在皮下，偏右 2. 腺胃：纺锤形，粘膜层有胃腺 3. 肌胃：紧接腺胃，近圆形，呈暗红色，粘膜面被覆的角质膜又称鸡内金 4. 十二指肠：位于腹腔右侧，前端与肌胃相接，灰白色，管状
5. 空肠：前接十二指肠，后接回肠，灰白色，管状 6. 回肠：前接空肠，后接结直肠，夹在两条盲肠之间，灰白色，管状 7. 直肠：管腔较大，自回盲口直达泄殖腔 8.盲肠：一对相对很长的盲肠，壁内有丰富的淋巴组织，基部处集成盲肠扁桃体 9.泄殖腔：是消化泌尿生殖系统后端共同通道，由前向后分为粪道泄殖道肛道 10.胰腺：夹在十二指肠肠袢之间，淡黄色，长条形 11. 肝：位于腹腔前下部，暗褐色，分左右两叶，右叶内侧有一绿色胆囊 （二）呼吸系统 1.气管：较长而粗，半透明管状，位于皮下，偏右，进入胸腔在心基上方分为两个支气管 2. 鸣管：位于气管与支气管交叉处，分鸣骨和内外鸣膜，是发声器官 3. 肺：鲜红色，位于胸腔背侧，有很深的肋压迹。 4.气囊：肺内支气管粘膜突出形成，外被浆膜。
（三）心血管系统 心脏：位于胸腔前下方，心基朝向前方，椎体形 （四）生殖系统 1. 卵巢：位于左侧前半部的腹侧，上有大小不一的卵泡。 2. 输卵管：分为：漏斗部，壶腹部，峡部，子宫，阴道五部分 壶腹部：受精部位 壶腹部：卵白分泌部位 峡部：形成卵壳膜 子宫部：形成卵壳 阴道部：在蛋壳外面形成一层角质薄膜 （五）淋巴系统 1.腔上囊（法氏囊）：位于鸡的泄殖腔的背侧，是泄殖腔的一个盲囊 2.脾：位于腺胃和肌胃交界处背侧，深红色 （六）泌尿系统
家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应， 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心 端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验 系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果： 1.正常心率和血压：260次/分，115mmHg。
家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统 的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号： 2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受 体而产生心血管效应，导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体 激动剂与拮抗剂之间的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率 的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉 注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，
正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药
竭诚为您提供优质文档/双击可除 家兔缺氧实验报告 篇一：家兔缺氧实验 家兔低张性缺氧(hypotonichypoxiaofRabbit) [实验目的]：缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。 [实验动物]：家兔 [实验药品及器材]： bL-410生物机能实验系统，动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。 [实验步骤]： 1.称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1ml/kg）,固定，剪毛。 2.气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3.描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。 4.将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。 〔实验结果〕 血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色 正常 缺氧5min 缺氧10min 缺氧20min 〔讨论〕： 1.缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。机制如下： 本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的co2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致pao2下降，当pao2＜60mmhg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，pao2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl，故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。 2．缺氧晚期：pao2越来越低，过低的pao2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓，心率↓此时pao2↓↓，cao2↓↓。脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀（cyanosis）。
家兔动脉血压的神经体液调节 实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要。 本实验应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器。 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管
内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有气泡）。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 （1）按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经（一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用）。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 （2）动脉插管首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素（200U？kg体重）以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下：将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎（务必扎紧，以防渗血），然后在另一备用线的向心侧（尽可能近心端），用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁（注意：不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半）。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右（如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插），用备用线将动脉连同进入的插管扎紧（插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液），并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意：插管应与动脉血管的方向一致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察
[目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素(1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体（不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管）后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住（注意：液导系统内不可有
华南师范大学实验报告 学生姓名学号 专业生物科学年级、班级11科二 课程名称生理学实验实验时间2014年 5 月 13 日 实验项目家兔动脉血压的神经、体液调节 实验指导老师实验评分 家兔动脉血压的神经、体液调节 室温：22℃左右 实验时间：2014年4月21日 作者：吴婉虹 合作者：陈普俊、陆雪丽、梁伟琪、吴晓丹、许佩珩 一、实验对象和材料 实验对象：家兔 实验试剂：麻醉剂（2%戊巴比妥钠2ml/Kg ）、4%柠檬酸钠溶液、肝素溶液 (200U/Kg) 、肾上腺素（1:5000）、生理盐水 实验器具：常规手术器械、止血钳5-7把、剪毛剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针、棉花、滴管、纱布、棉线8条、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳6 条、棉签、注射器、照明灯、保护刺激电极、支架、PowerLab生理 实验系统、动脉插管、动脉夹2个、压力传器感、液导系统 二、实验方法 （一）动物手术过程 1.称重，麻醉（耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠2ml/Kg ）、固定（仰式）、剪毛、剪颈部皮 肤6~7cm 2.钝性分离颈部肌肉等组织 3.暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口，事先准备好的棉签将气管中的血块弄出， 插好气管插管并结扎。 4.先分离主动神经（减压神经） 5.然后分离迷走神经，穿2条线备用。 6.分离同侧的右颈总动脉，穿1线备用 7.分离另一侧左颈总动脉，穿2线备用 8.动脉插管连胶管的液导系统检查有无气泡，有则排出，在插管尖端可加肝素。准备好眼 科剪和眼科镊，2个动脉夹、棉线1条 9.动脉插管法：
● 动脉夹夹住左侧颈总动脉靠心端 ● 结扎左侧颈总动脉靠头端，检查分支 ● 在结扎线下方2mm 剪向心1/2切口 ● 用眼科镊插进动脉切口，确定在动脉内，然后挑起动脉上壁，将动脉插管由眼科镊下方 开口处插入动脉内，用备用线扎死动脉和套管并挂住套管上，用另一动脉夹固定结扎部位。 （二）实验观察项目 确认实验装置有无气泡,排除气泡后松开动脉夹，调节通道ch2的放大参数:量程5mV,低通10Hz 1. 记录正常血压曲线，调节“走纸”速度400 2. 夹闭另一侧颈总动脉 3. 按压颈动脉窦位置 4. 刺激主动脉神经：100个脉冲、40Hz 、 2V ，10~20s 5. 双结扎分别刺激主动脉神经中枢端和外周端 6. 刺激迷走神经（注意不可过久）：50个脉冲、40Hz 、 2V ，10~20s 7. 双结扎分别刺激迷走神经中枢端和外周端 8. 注射肾上腺素 9. 注射乙酰胆碱 三、实验结果 图1 ：家兔正常动脉血压曲线 图1为家兔的正常动脉血压曲线，所观察到的血压波形有一级波和二级波，一级波反应每个心动周期血压的变化，二级波则反映呼吸对血压的影响，每个二级波包含多个一级波。 图2：夹闭一侧颈总动脉对家兔动脉血压的影响文件1 通道2 (m V )-0.5 0.0 0.5 1.0 1 50551:001:051:101:15342002-01-01 5:39:35.078
血压测量操作流程 1.核对血压测量医嘱。 双人核对付治疗上测血压医嘱和电子医嘱内“医嘱核查”的医嘱，核对内容包括：床号、姓名、测血压频次。注意事项：双人唱念法核对，一人看电脑医嘱，逐一念出，另一人看付治疗。 2.评估 评估患者病情、意识状态及合作程度，询问患者30min内有无剧烈活动、进食、洗澡、情绪不稳定等情况。如有这些影响因素应稳定后再测量。 3.个人准备。 衣帽整齐，六步洗手法洗手，戴口罩。 4.物品准备及环境准备 付治疗、血压计、听诊器、笔、记录本。 5.操作前查对 核对床头卡，反向核对，让患者说出床号、姓名。 6.操作中 患者取仰卧位或坐位，将衣袖卷至肩部露出上臂，伸直肘部，手掌向上外展 15度，保持血压计零点、肱动脉与心脏同一水平。放平血压计，水平放稳，打开水银槽开关，观察水银柱是否在零点。排尽袖带内空气，平整无折地缠于上臂中部，下缘距肘窝 2--3cm，松紧以能放入一指为宜。询问患者有无不适，嘱患者测量血压时暂时保持安静。戴好听诊器，摸到肱动脉最明显处，将听诊器胸件紧贴肱动脉搏动最明显处，打气至肱动脉搏动音消失，再上升 20--30mmHg，;然后以每秒 4mmHg 的速度慢慢放气。双眼平视水银柱刻度，听诊器出现的第一声搏动音，此时水银柱所指的刻度为收缩压；当搏动音突然减弱或消失时，此时水银柱所指的刻度为舒张压。测量完毕，排尽
袖带余气，缠好放入血压计盒内，将血压计右倾 45°角，使水银回流槽内，关闭水银槽开关，关闭血压计。协助患者穿好衣服，再次核对患者床号、姓名。 7.操作后 整理用物，听诊器胸件用酒精棉球擦拭后备用，洗手，记录。 流程图 双人核对医嘱（付治疗+电脑医嘱） ↓ 评估患者，取得配合 携付治疗和血压计至床旁 缠好袖带，放好听诊器 再次核对，测量血压 测量结束，解开袖带，整理衣袖，核对 洗手记录
创作编号：BG7531400019813488897SX 创作者：别如克* 家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将 其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。 5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告 篇一：家兔解剖实验 一、实验目的 1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、 循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点 2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征 3.熟练解剖动物的方法 二、实验原理 将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。 三、实验器材 活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等 四、实验步骤
1、外形观察，处死 家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。 取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。挣扎一会后死亡。 2、打开皮肤 润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。 3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切 从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨 剑突处，暴露腹腔。先观察各器官的自然位置。可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。 小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。