HCV核心抗原检测(ELISA法)
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丙型肝炎病毒核心抗原检测的临床价值目的探讨血清中丙型肝炎病毒核心抗原(HCV-cAg)检测的临床价值。
方法采用酶联免疫吸附试验检测HCV-cAg;采用化学发光方法检测HCV-Ab;采用实时荧光定量PCR方法检测HCV-RNA。
结果137例HCV-Ab阳性标本中HCV-RNA与HCV-cAg检测两种方法通过Kappa检验得出的结论一致性较好(P <0.001,Kappa=0.893);HCV-RNA和HCV-cAg阳性检出率分别为40.15%和37.96%,采用配对卡方检验,差异无统计学意义(χ2=0.571,P>0.05)。
55例HCV-RNA阳性标本中HCV-RNA拷贝数对数值与HCV-cAgOD均值之间有良好的正相关性(r=0.882,P<0.05)。
结论HCV-cAg检测操作简便,能够缩短诊断丙肝病毒感染的时间,其水平一定程度上能反应丙型肝炎患者体内HCV复制程度,具有较好的临床实用价值。
标签:丙型肝炎病毒抗体;丙型肝炎病毒-RNA;丙型肝炎病毒核心抗原丙型肝炎病毒(HCV)是丙型病毒性肝炎的病原体,主要经血液传播,是目前引起输血后肝炎最常见和最严重的病原体。
丙型肝炎能引起急性和慢性肝炎,其感染慢性化占75%~85%,且慢性丙型肝炎与肝硬化和原发性肝癌关系密切[1]。
我国丙型病毒性肝炎的报告病例数呈现出逐年上升的趋势,严重威胁人民的生命健康。
由于目前尚无针对HCV的有效疫苗可供临床使用,因此对于丙肝感染的及早检出并通过一系列有效措施阻断其在易感人群间的传播就显得尤为重要。
近年来,陆续出现了一些关于HCV核心抗原(HCV-cAg)可以缩短丙肝感染检测窗口期,提高感染检出率的报道[2-3]。
本文通过检测丙型肝炎病毒抗体(HCV-Ab)阳性患者血清中HCV-cAg、HCV-RNA来探讨HCV-cAg检测在临床的应用价值。
1 资料与方法1.1一般资料137例HCV-Ab阳性血清标本来自我院2014年1月~2015年5月门诊和住院患者,其中男性76例,女性61例,年龄16~68岁,平均39.7岁。
图1 抗 HCV阴性样本Cov值频数由表4结果,分别对各样本不同稀释倍数的检测结果绘制抗 HCV阳性样本稀释Cov曲线图,并对相同稀释倍数的不同样本计算平均值绘制抗 HCV阳性样本稀释Cov平均值曲线图,结果见图3。
由结果可知,阳性样本,经过稀释,最终使筛查实验无法检出。
但是,阳性样本稀释到一定程度,虽然Cov值持续下降,结果呈阴性反应,在阳性和阴性结果转换期间,曲线总体趋势逐渐由陡峭到平坦,进入1个相对稳定的平台期。
统计表4中Cov均值<2 0的数据,Cov平均值=0 731、s=0 410、平均值+2s=1 552。
图3 抗 HCV阳性样本稀释Cov平均值图3 讨论综合阴性、阳性样本和阳性稀释样本统计数据,两者灰区范围结果吻合,均在0 70左右,该值远高于多数阴性样本Co v值(表2结果中94 48%的阴性样本Cov值<0 70),足以区识阴阳性,可以作为分界线,弥补ELISA试剂盒单纯以cut off值判断阴阳性的缺陷,因此把筛查结果Cov值下浮30%范围视为“灰区”较为合适。
对该区样本需要增补试验联合检测,以防漏检。
把“灰区范围”设置为30%,处于该区域内的样本占本项研究全部样本的0 49%,“灰区范围”内的这些样本经文中方法鉴定后的真阳性率为10 0%。
由此表明确实存在灰区样本漏检情况发生,故而有必要对这些样本进行确认。
而处于“灰区范围”内的样本仅占全部样本的0 49%,即便增加试验联合检测,也不会过多增加工作量,在实际工作中是现实可行的。
另外,结果不一致的样本,Cov平均值、s和Cov平均值+2s分别为2 13、0 77、3 67,从而表明结果不一致的样本多为弱阳性样本,一般情况下Cov值<4 0。
在常规检测过程中,可能会有一些阳性样本,由于抗体浓度较低而出现假阴性结果的现象。
所以,设置1个适当的“灰区范围”,对处于该范围的样本做进一步的检测,采用多种试剂联合检测,只有当结果均为阴性时方可发出检验报告,必要时需再次取样随访调查,以避免漏检现象的发生。
硕世生物hcv说明书硕世生物HCV说明书一、产品概述硕世生物HCV(乙型肝炎病毒)试剂是一种用于检测乙型肝炎病毒感染的检测试剂。
本试剂采用酶联免疫吸附法(ELISA)原理,能快速、准确地检测出乙型肝炎病毒感染。
二、产品特点1.高灵敏度:本试剂具有高灵敏度,能够有效检测出HCV感染。
2.快速检测:本试剂使用方便,操作简单,检测快速,减少了检测时间和工作负担。
3.准确可靠:本试剂具有良好的准确性和可靠性,能够准确判定阳性和阴性结果,降低了误判的风险。
4.经济实惠:本试剂的价格合理,经济实惠,适合各类医疗机构和实验室使用。
三、适用范围本试剂适用于医疗机构、实验室等单位,用于乙型肝炎病毒感染的筛查、诊断和监测。
四、试剂组成本试剂包含以下部分:1.HCV抗原:作为标记物,用于检测乙型肝炎病毒抗原。
2.溶液:用于稀释和洗涤。
3.酶标板:用于固相吸附抗原。
4.显色液:用于显示结果。
五、试剂保存本试剂应存放在2-8摄氏度的阴凉干燥处,避免阳光直射。
开封后需密封保存并迅速使用,避免长时间暴露在空气中。
六、试剂使用方法1.取出所需试剂并将其温度恢复至室温。
2.打开试剂包装并将试剂倒入空白标准孔板中。
3.将待检样本加入孔板的样本孔中。
4.将盖片盖在孔板上,轻轻摇晃孔板,使样本充分与试剂混合。
5.静置孔板15-30分钟,使抗原与抗体发生特异性反应。
6.倒出孔板内的液体,并用洗涤溶液进行洗涤操作。
7.加入酶标记物,静置孔板15-30分钟。
8.倒出孔板内的液体,并用洗涤溶液进行洗涤操作。
9.加入显色液,静置孔板15-30分钟。
10.倒出孔板内的液体,洗涤2-3次。
11.加入底物,静置孔板10-20分钟。
12.用显微镜观察结果,根据显色程度判定结果。
七、结果解读根据试剂说明书上的阳性对照样本和阴性对照样本的反应程度进行比较,阴性对照样本的吸光度低于阳性对照样本。
通过对照样本反应的结果,判断所测样本的阴性或阳性。
八、注意事项1.试剂包装在使用前应先检查是否完好,过期试剂禁止使用。
丙型肝炎病毒抗体的两种检测方法结果比较黄乙清【摘要】目的比较双抗原夹心酶联免疫吸附试验(ELISA)法与间接ELISA法检测丙型肝炎病毒抗体(抗-HCV)灵敏度和特异性,为无偿献血的血液筛查提供参考依据.方法采用双抗原夹心ELISA法和间接ELISA法分别对1500份无偿献血者标本(经血液筛查抗-HCV阴性标本1416份,抗-HCV阳性标本84份)进行检测,记录标本结果与丙型肝炎病毒核酸(HCV-RNA)的符合性,评价两种检测方法的差异.结果双抗原夹心ELISA法检测84份抗-HCV阳性标本的灵敏度为97.6%(82/84),间接ELISA法的阳性检出率为85.7%(72/84),双抗原夹心ELISA法灵敏度高于间接ELISA法,差异有统计学意义(P<0.05);双抗原夹心ELISA法的特异性为100.0%(1416/1416),高于间接ELISA法的85.9%,差异有统计学意义(P<0.05).结论双抗原夹心法的灵敏度和特异性优于间接法,可降低间接ELISA法引起的假阳性,减少血液不必要浪费,同时也避免了献血者淘汰.【期刊名称】《海南医学》【年(卷),期】2016(027)023【总页数】2页(P3935-3936)【关键词】丙肝病毒抗体;双抗原夹心法;间接ELISA法;灵敏度;特异性【作者】黄乙清【作者单位】海南省血液中心检验科,海南海口 570311【正文语种】中文【中图分类】R512.6+3丙型肝炎是由丙型肝炎病毒(HC)感染引起的一种世界性传染病,主要通过输血和血液制品等途径传播。
为控制HCV经血液传播,要求对献血者进行抗-HCV的检测。
常用的第三代抗-HCV检测试剂,包被用抗原一般包括HCV-core、NS3、NS4和NS5抗原,特异性和灵敏度达99%[1]。
目前国内对献血者HCV感染的筛查,主要依赖间接酶联免疫吸附试验(ELISA)法检测其血清中的抗-HCV。
而间接ELISA法也存在一定的假阳性[2],主要是由于抗-HCV ELISA试剂均采用二抗作酶结合物,由于血清中IgG含量高,故少量的非特异性吸附可造成假阳性结果,血清中类风湿因子等也可能干扰检测结果。
HCV—cAg与HCV—Ab联合检测的互补作用及HCV阳性者与ALT的关系目的探讨丙肝病毒核心抗原(HCV-cAg)与丙肝病毒抗体(HCV-Ab)联合检测对诊断丙肝病毒(HCV)感染的互补作用及HCV感染阳性者与丙氨酸氨基转移酶(ALT)的关系。
方法检测手术前检查组2061例患者和ALT>80 U/L 组242例患者的HCV-cAg、HCV-Ab和ALT等指标,然后将检测结果作出统计分析。
结果手术前检查组联合检测有 2.7%的阳性率,显著高于单独HCV-cAg 和单独HCV-Ab的1.6%(P<0.05);ALT>80 U/L组联合检测有14.5%的阳性率,显著高于单独HCV-cAg的7.0%(P<0.01);手术前检查组ALT均值和ALT>80U/L 例数是2项均阳性高于HCV-Ab阳性、HCV-Ab阳性高于HCV-cAg。
结论HCV-cAg和HCV-Ab 2项联合检测明显优于单项检测,这对HCV感染的诊断能起到很好的互补作用,加上ALT等肝功能指标的检测,有利于HCV感染的正确诊断。
标签:丙肝病毒核心抗原;丙肝病毒抗体;丙氨酸氨基转移酶;联合检测;互补作用丙型肝炎(丙肝)是一种主要经血液传播的传染病,而丙肝病毒(HCV)是其主要的致病因素,HCV感染的实验室检查是丙肝诊断的重要依据。
近些年来的HCV检测技术主要是丙肝病毒抗体(HCV-Ab)和丙肝病毒核酸(HCV-RNA)检测,二者均存在一定的局限性。
该院于2013年3月起正式开展了丙肝病毒核心抗原(HCV-cAg)检测,这与HCV-Ab联合检测能起到一定的互补作用,可望提高HCV感染的阳性检出率。
但2项联合检测到底能起到多少互补作用以及HCV阳性者与丙氨酸氨基转移酶(ALT)的关系如何还值得探讨,现报道如下。
1 对象与方法1.1 研究对象该研究的研究对象为2013年3月1日—5月31日这一时段来我院作疾病诊治的并来源于2个方面的患者,一是手术前(含输血前)作例行检查的患者,共2 061例;二是ALT>80 U/L的肝炎和疑似肝炎患者,共242例。
- 107 -①黑龙江省佳木斯市妇幼保健院 黑龙江 佳木斯 154004通信作者:孙健HCV-cAg在丙型肝炎中的诊断价值孙健①【摘要】 目的:探讨HCV-cAg 在丙型肝炎中的诊断价值。
方法:选取2017年2月-2019年2月于本院就诊的72例疑似丙型肝炎患者为研究对象。
采用实时荧光定量PCR 法检测HCV-RNA 水平,分析HCV-RNA 与HCV-cAg 的检测结果,HCV-RNA 不同载血量血清的HCV-cAg 阳性率。
结果:HCV-cAg 检测的准确度88.9%(64/72),特异度92.7%(38/41),灵敏度83.9%(26/31)。
HCV-RNA 载血量血清数值<103 IU/mL、≥103 IU/mL 且<104 IU/mL、≥104 IU/mL 且<105 IU/mL、≥105 IU/mL 且<106 IU/mL、>106 IU/mL 患者的HCV-cAg 阳性率分别为4.9%、75.0%、83.3%、91.7%、100%。
结论:HCV-cAg 诊断丙型肝炎的准确度、特异度及灵敏度均较高,HCV-RNA 载血量血清数值越大,HCV-cAg 阳性率越高,因此HCV-cAg 的检测可作为HCV-RNA 的补充检测,临床应用价值较高。
【关键词】 丙型肝炎 丙肝病毒核心抗原 丙型肝炎病毒 Diagnostic Value of HCV-cAg in Hepatitis C/SUN Jian. //Medical Innovation of China, 2021, 18(05): 107-110 [Abstract] Objective: To explore the diagnostic value of HCV-cAg in hepatitis C. Method: A total of 72 suspected hepatitis C patients admitted to our hospital from February 2017 to February 2019 were selected as the research subjects. The level of HCV-RNA was detected by real-time fluorescence quantitative PCR, and the detection results of HCV-RNA and HCV-CAG were analyzed, the positive rate of HCV-CAG in serum with different blood loads of HCV-RNA was analyzed. Result: The accuracy, specificity, and sensitivity of HCV-cAg detection were 88.9% (64/72), 92.7% (38/41), 83.9% (26/31). The positive rates of HCV-cAg were 4.9%, 75.0%, 83.3%, 91.7%, 100% in patients with HCV-RNA blood load and serum value <103 IU/mL, ≥103 IU/mL and <104 IU/mL, ≥104 IU/mL and <105 IU/mL, ≥105 IU/mL and <106 IU/mL, >106 IU/mL, respectively, the higher the serum value of HCV-RNA blood load. Conclusion: The accuracy, specificity and sensitivity of HCV-cAg in the diagnosis of hepatitis C are high, the higher the serum value of HCV-cAg blood carrying volume, the higher the positive rate of HCV-cAg, therefore, the detection of HCV-cAg can be used as a supplementary detection of HCV-RNA, its clinical application value is high. [Key words] Hepatitis C HCV-cAg HCV-RNA First-author ’s address: Jiamusi Maternal and Child Health Hospital, Jiamusi 154004, China doi:10.3969/j.issn.1674-4985.2021.05.027 丙型肝炎为全球范围内传染性疾病,临床数据显示丙型肝炎发病率出现逐年上升趋势,该病感染率较高,约为3%[1]。
丙肝病毒抗体双抗原夹心法的临床价值-医学技术论文-基础医学论文-医学论文——文章均为WORD文档,下载后可直接编辑使用亦可打印——HCV 是在输血后导致肝炎发生的一个重要因素, 往往经血液或血液制品进行传播, 经调查发现, HCV 感染具有世界性分布特点, 为了能够避免HCV 通过血液进行扩散, 需对每个献血者实施抗-HCV 指标检测[1].通常选取间接酶联免疫法进行检测, 此方法操作时包被抗原的组成及质量具有关键作用[2].目前对抗-HCV 间接酶联免疫法试剂进行单独检测时显现阳性, 且处于临界值相邻样本, 以双抗原夹心酶联免疫法试剂进行检测时则呈现阴性, 伴随临床医学发展,双抗原夹心酶联免疫吸附实验(ELISA)对于HCV 血清学诊断具有较为显着的改善作用, 效果明显[3].本文选取190 份血液筛查阴性标本, 分析双抗原夹心法作用, 现报告如下。
1材料与方法1. 1试验材料选取本院2012 年 6 月~2014 年12 月190份血液筛查阴性标本, 同时采集190 份质控血液标本。
1. 2方法将所选取的380 份血液标本进行严格检测, 应用双抗原夹心法检测HCV 抗体。
在检测时所应用试剂有吉比爱、Ortho 丙肝病毒抗体酶联免疫诊断试剂, ChironRIBA确认试剂。
1. 2. 1抗原制备嵌合表位抗原经包涵体的形式表达, 采取离子交换层析措施进行纯化, 然后通过SephadexG-50 柱凝胶完成过滤采集, 应用SDS-PAGE 将抗原蛋白进行仔细鉴定。
1. 2. 2双抗原夹心法应用50 mmol/L 碳酸盐缓冲液对抗原予以稀释处理, 多肽抗原具体浓度为:结构处多肽151 g/ml,NS4 处多肽0.51 g/ml, NS5 处多肽0.251 g/ml, 所应用到的基因工程表达抗原具体浓度有c7 应用1 g/ml, C11 应用1 g/ml.每个孔内均加进100 l, 在37℃状态中持续保存1 h, 然后放置到4℃冰箱内过夜, 应用30% 小牛血清PBST 实施封闭处理, 在每个孔内加进200 l, 37℃状态中保存1 h, 然后去除封闭液, 应用50 l 样品稀释液, 每个孔内加进5 l, 37℃状态中保存30 min, 然后应用PBST 进行5 次冲洗。
HCV-RNA与HCV-cAg检测的相关性分析苏明权;杨柳;王娟;常亮;肖凤静;马越云;郝晓柯【期刊名称】《临床和实验医学杂志》【年(卷),期】2013(012)017【摘要】目的探讨丙型肝炎病毒核心抗原(HCV-cAg)与HCV-RNA检测的相关性及其在丙型肝炎病毒感染诊断中的价值.方法采用双抗体夹心酶联免疫分析法(ELISA)检测HCV-cAg;采用实时荧光定量PCR法检测HCV-RNA,以了解两者检测方法的相关性.结果在160例HCV-RNA阳性血清中,HCV-cAg阳性148例,阳性符合率92.5%;在60例HCV-cAg阳性血清中,HCV-RNA阳性59例,阳性符合率98.3%.结论通过对HCV-RNA与HCV-cAg检测,说明HCV核心抗原与HCV-RNA检测可作为反映HCV复制的间接指标,预防窗口期感染.由于HCV-cAg在方法学上与HCV-RNA相比,具有方法简便、快速、价廉,所需设备简单,易于普及应用等优点,特别是在不具备HCV-RNA检测条件的基层医疗单位作为HCV感染检测的直接证据具有重要的意义.【总页数】2页(P1362-1363)【作者】苏明权;杨柳;王娟;常亮;肖凤静;马越云;郝晓柯【作者单位】第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032;第四军医大学西京医院检验科,陕西,西安,710032【正文语种】中文【相关文献】1.HCV-Ab、HCV-cAg和HCV-RNA联合检测的临床价值 [J], 顾娟;孙明忠2.联合检测血清HCV-RNA、HCV-cAg与HCV-Ab对丙型肝炎的诊断价值分析[J], 卢庆文;董娅;刘红霞3.HCV-RNA与 HCV-Ab,HCV-cAg相关性分析研究 [J], 李娅;张赟;皇海;章迪;苏明权;郭旭昌4.丙肝患者血清HCV-Ab、HCV-cAg、HCV-RNA检测的比较及肝功能的相关性研究 [J], 王中东;黄麦华5.丙型肝炎病毒抗体阳性人群中抗-HCV、HCV-cAg与HCV-RNA结果的相关性及其联合检测在临床应用价值的评估 [J], 金晶;高智勇;关冲;孙静怡因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
HCV核心抗原联合抗-HCV检测在丙型肝炎诊断中的作用发表时间:2012-10-29T15:06:52.937Z 来源:《医药前沿》2012年第20期供稿作者:何志君[导读] 探讨HCV核心抗原联合抗-HCV检测在丙型肝炎诊断中的作用。
何志君 (安徽省蒙城县第一人民医院检验科安徽蒙城 233500)【摘要】目的探讨HCV核心抗原联合抗-HCV检测在丙型肝炎诊断中的作用。
方法收集156例HCV-RNA阳性的标本同时检测抗-HCV和或HCV核心抗原,了解其检验结果的符合率。
结果 156例HCV-RNA阳性的标本中,检出抗-HCV阳性126例,HCV核心抗原132例,抗-HCV 和或HCV核心抗原阳性151例。
结论 HCV核心抗原联合抗-HCV检测可以提高丙型肝炎的诊断率。
【关键词】 HCV核心抗原抗-HCV 丙型肝炎联合检测符合率丙型肝炎是一种严重威胁人类健康的传染病,主要通过血液传播。
自1989年发现以来,据统计全球已有117亿人受到感染,我国的丙肝感染率在3.2%左右,感染丙肝病毒后形成慢性感染的机率很高,且有相当比例患者会发展成肝硬化、肝癌,因此,较早检出丙肝病毒感染,较早的抗病毒治疗是非常关键的[1]。
但是丙肝病毒感染后发展隐匿,临床表现不典型,因此其临床诊断、疗效观察还是依赖于实验室检测结果。
尽管第三代抗-HCV检测试剂提高了检测的灵敏度,缩短了窗口期,然而抗-HCV从HCV感染后到出现仍需6-12周(窗口期),因此抗-HCV阴性并不能排除携带HCV并具有传染性的可能[2]。
而HCV核心抗原在感染后14天即可检出,大大缩短了窗口期。
本文就HCV核心抗原联合抗-HCV检测在丙型肝炎诊断中的作用作以分析,报告如下。
1 材料与方法1.1 标本来源 2008年1月-2012年1月本院门诊及住院HCV-RNA检测阳性标本156。
1.2 方法与试剂抗-HCV试剂采用珠海丽珠试剂股份有限公司的抗-HCV酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒,阳性者二次复检;HCV 核心抗原试剂采用湖南景达生物公司生产的HCV核心抗原ELISA试剂盒,阳性者二次复检;HCV-RNA采用上海复星长征医学科学有限公司的HCV-RNA试剂盒;具体操作严格按照试剂盒说明书操作。
1. 检验目的与原理
1.1 检验目的
规范丙型肝炎病毒核心抗原检测试验,确保检测结果准确性和重复性。
可用于临床辅助诊断是否感染丙型肝炎病毒。
1.2 检验原理
应用ELISA法原理检测人血清或血浆中的丙型肝炎病毒游离核心抗原,用2株丙型肝炎病毒核心抗原的单克隆抗体包被酶标板,另2株丙型肝炎病毒核心抗原的单克隆抗体标记辣根过氧化物酶,加入TMB显色液后显色,用来检测血清或血浆中的丙型肝炎病毒游离核心抗原。
1.3 分析参数
样品量100μL
试剂量100μL
方法ELISA
反应时间90分钟
反应温度37℃
2. 样本收集和贮存
2.1 原始样本系统
血清(包括SST管)和血浆(EDTA-K2、肝素锂、肝素钠、枸橼酸钠、ACD、CPDA-1、CP2D、CPD、草酸钾),尿液(晨尿、随时尿、24小时尿等)或其它体液(羊水等)使用玻璃管或塑料管分离样本,无黄疸、无溶血、无脂血,已分离出的样本应立即分析。
2.2 试管及填充物类型
血清样本需用标准试管或有分离胶的真空管,收集3ml血液。
待血液凝固后3500rpm 离心5分钟,分离血清。
2.3 保存条件及时间
2.3.1接收标本后在置1-2h后将标本离心分离出血清或血浆,避免溶血。
离心必须达到3000rpm 15min,离心后的血清中不能含有颗粒物和微量纤维蛋白。
2.3.2标本保存时间:室温(15-25℃)下可稳定48h,普通冰箱中(2-8℃)稳定5d,在-20℃最多可保存4周。
避免反复冻融。
不可使用热灭活的标本。
2.3.3已完成测试的标本保持完整的识别号,置4-8℃冰箱内保存7d。
3. 试剂
3.1 试剂成分
丙型肝炎病毒核心抗原检测试剂盒(酶联免疫法),湖南康润药业有限公司,国药准字
3401179。
试剂盒组分:1. 抗HCV-cAg单克隆抗体包被酶标板;
2.抗HCV-cAg酶标记抗体工作液;
3. HCV-cAg阳性对照;
4. HCV-cAg阴性对照;
5.浓缩洗涤液;
6.TMB显色液A;
7.TMB显色液B;
8.终止液;
9.附件:自封袋、封板模和产品说明书。
3.2 试剂准备
试验前提前将所需的试剂盒从贮藏冰箱领出,室温平衡30分钟。
3.3 试剂贮藏要求(Storage Instruction)
未打开的试剂盒保存于2-8℃,效期12个月。
不可冻存。
4. 仪器
TECAN酶免工作站。
5. 校准
见TECAN酶免工作站SOP。
6. 操作步骤
6.1配液:浓缩洗涤液用蒸馏水或去离子水20倍稀释。
6.2加样:将微孔条固定于支架,按序编号。
每次检测均需设置阴性对照、阳
性对照和空白对照各2孔。
空白对照孔直接加入样品稀释液200微升,其余每孔加样品稀释液100微升,分别在相应孔加入待测样品、阴性对照和阳性对照各100ul。
6.3温育:充分混匀,封板,置37°C孵育60分钟。
6.4洗板:小心揭掉封板模,用洗涤液洗涤5遍,最后一次尽量扣干。
6.5加酶:每孔加入酶结合物200ul。
6.7 温育:充分混匀,加上封板膜,置37℃温育30分钟。
6.8 洗涤:小心揭掉封板模,用洗涤液洗涤5遍,最后一次尽量扣干。
6.9 显色:每孔加入显色剂A、B各50μl,轻轻振荡混匀,37℃避光显色10分钟。
6.10 测定:每孔加终止液50μl,轻轻振荡混匀,用酶标仪读值,在双波长
450nm/630nm(单波长检测以空白对照调零)下读取各孔A值。
7. 质量控制
无
8. 检验结果报告
8.1 结果计算
CUT OFF值=阴性对照孔A值+0.06。
(阴性对照A值大于0.1和阳性对照A值小于0.6时应重新试验,阴性对照A值≤0.06时以0.06计算。
)
待测样品A值<CUT OFF值时,判为阴性。
待测样品A值≥CUT OFF值时,判为阳性。
8.2 结果审核
由资深专业人员负责检验结果的审核。
确认反应板结果的有效性及室内质控在控。
确认反应板反应外观与判读的结果一致,核对判断的阴阳性结果个数。
审核者认真审核每一个测定结果,对发出报告结果的可靠性负责,并在报告单的审核者处签字。
审核与其他标志物等的关系,如出现与临床不符甚至相悖的情况,应分析与查找原因。
对弱阳性标本再重复试验确定它的结果。
如果重复检测都是弱阳性结果的标本建议对其进行跟踪检测。
8.3 报告传输及打印
结果经审核后,确认准确无误后发出报告。
报告单上标明结果的参考区间、报告日期、时间、操作者和审核者签名,并有与申请单相同的信息。
如收到标本的质量可能对测定结果有影响的也在报告单上指出。
8.4 测量不确定度的评定方法见《免疫激素测量不确定度的评估报告》。
9.参考范围
阴性,提示没有检测到丙型肝炎病毒核心抗原。
10. 可报告区间
阴性~阳性。
11. 危急值报告
不适用。
12. 方法的局限性
12.1 本试剂仅用于定性检测人血清或血浆样品中的HCV游离核心抗原。
12.2 由于ELISA反应原理的限制,本试剂检测结果阴性并不排除HCV感染的可能,检测结果阳性必须结合确诊试剂或其他指标和临床信息进行分析。
13.临床意义
HCV-cAg为HCV的早期感染的标志,几乎与HCV-RNA同时出现,感染后的14-70d 为HCV-cAg的检测时段
14. 安全防范措施
本试剂盒应视为有传染性物质,请按传染病实验室检查规程处理。
14.1在处理试剂和标本的地方禁止吸烟,饮食。
14.2使用试剂盒和标本时,必须戴一次性手套,穿试验服。
使用后请彻底洗手清洁。
14.3用过的加样枪头等耗材应作为医用垃圾处理;患者样本及其他潜在感染材料试验后应放
入医用垃圾桶内。
14.4试剂含有叠氮钠作为防腐剂,叠氮钠可以和铅铜反应形成爆炸的金属叠氮化合物。
为防止金属叠氮化合物的形成,应用大量的水冲洗以免其堆积。
14.5使用过的器具、废液、废物等除用次氯酸钠(有效氯浓度1,000ppm,浸泡1小时以上),戊二醛(2%,浸泡1小时以上)进行消毒以外,还要进行高压蒸汽灭菌(121℃ 1小时以上)及焚烧等处理。
14.6为了避免形成气溶胶,所有样品尽可能不要在空气当中暴露太长时间;
14.7样本溢出,用吸水纸将溢出的标本吸干,并喷洒1000mg/L消毒液于表面保持
30-60分钟后再用抹布擦拭,最后用清水擦净。
将用过的抹布放入1000mg/L的消
毒液中浸泡2小时。
15. 性能参数
15.1 精密度
15.2 分析灵敏度及分析特异性
试剂盒内带有的阳性对照血清按规定进行试验时,抗体效价相对于标准值在±1管以内。
15.3 准确度
15.4 特异性和灵敏度
15.5 分析测量范围
15.6 临床可报告范围
15.7 携带污染率
不适用。
15.8 干扰物质
15.8.1 样品中如果存在红细胞等其他有型成分,会给反应带来不便,所以应在离心出去之后
在进行检查。
15.8.2 血清样品即使钝化也不会影响检查结果。
16. 参考文献
试剂使用说明书。