实验三家兔失血性休克
【实验目的】
1.复制失血性休克的动物模型。
2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变。
3.了解失血性休克的治疗。
【实验原理】
休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC 期）。但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。【材料与方法】
一、实验动物家兔（体重2.0kg以上）
二、器材与药品
动物手术器械、动脉导管、静脉导管、三通管、体温计、注射器（1ml、10ml、50ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、婴儿秤、兔固定台、微循环观察装置、MedLad生物信号采集处理系统。
20%氨基甲酸乙酯溶液，肝素生理盐水溶液，微循环灌流液、0.2%多巴胺、0.2%间羟胺。
三、手术步骤
⒈麻醉和固定家兔称重后，20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
⒉颈部手术从甲状软骨向下作5cm长的颈正中切口，分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。
⒊启动MedLad生物信号采集处理系统。点击MedLad“文件”菜单“打开配置”，选择“失血性休克”。MedLad放大器和采样参数如表2-7-1所示。
表2-7-1 MedLad通道设置和采样参数
内容通道1 通道2 通道3 通道4
处理名称中心静脉压血压心电呼吸
换能器10kPa 40kPa 心电电极呼吸换能器
显示方式记录仪记录仪记录仪记录仪
DC/AC DC DC AC DC
放大倍数100~500 100~500 500~1000 500~1000
采样间隔1ms 1ms 1ms 5ms
⒋插管左侧颈总动脉插入与40kPa换能器相连的颈动脉导管，推入少量的0.3%肝素抗凝，保持动脉通畅；从右侧颈外静脉插入与10kPa换能器相连的静脉导管，深约5cm，推入少量的0.1%肝素抗凝，保持静脉通畅；气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线；分别将红、黄、黑针形心电电极放置于动物的右前肢、左前肢和右后肢皮下（或将红、黄、黑针形电极分别放置于下颌、心尖和右后肢皮下），描记心电波形。
【观察指标】
⒈放血前观察动物各项生理指标，包括一般情况、皮肤粘膜颜色、心率、血压、呼吸、肛温以及肠系膜微循环状态。
⒉打开三通开关，使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝的50ml注射器注射器内，注意观察血压变化，一直放血使血压（平均动脉压）降至45mmHg，并通过调节注射器内放出的血量，使血压稳定在45mmHg水平15～20min后，观察失血后动物各生理指标和肠系膜微循环的变化。
⒊停止放血，分组抢救：①回输原血（50滴/min）；②按1∶1回输原血和生理盐水（50滴/min）；③回输原血和生理盐水后，给予多巴胺0.2mg/kg；④回输原血和生理盐水后，自行选择现有药物进行抢救。
输血输液后复查动物的各生理指标和微循环是否恢复正常，亦可根据休克的病理生理改变，自行设计方案，再观察抢救效果。
【注意事项】
⒈麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。
⒉牵拉肠袢要轻，以免引起创伤性休克。
⒊动、静脉导管，事先用肝素充盈，排除空气。导管插入后，再推入少量的肝素抗凝，防止导管前端堵塞；静脉导管插入后可缓慢滴注生理盐水保持管道通畅。放血后也应及时往动脉导管内推注肝素。
⒋不能将血液直接倒入输液瓶内，而要顺着瓶壁流下来，以免损伤红细胞。
⒌输液时应注意三通管的使用，输液装置只能单向与静脉导管相通，不能在输液的同时测中心静脉压。要观察中心静脉压时，需关闭输液通道，使换能器与静脉导管单向相通。【思考题】
⒈失血性休克时微循环改变及其机制是什么？
⒉失血性休克时各观察指标变化的机制是什么？
⒊当血压降至45mmHg以后，停止放血，可以观察到血压有所回升，为什么？
⒋失血性休克的抢救原则及措施是什么？
⒌抢救药物的作用机理是什么，各自在什么时候应用比较恰当？
（戴雍月王万铁）
