SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳步骤.

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【跑电泳的步骤】

1、取出电泳仪器和四个烧杯;

2、将超纯水倒入烧杯中,保鲜膜封口;

3、配制过硫酸铵溶液(AP):0.1gAP+0.9g超纯水,保鲜膜封口;

4、取出所有药品。Tris-HCL(88,6.8),TEMED,SDS,Acry-bis,按次序排好;

5、拿卷纸平铺,移液枪枪头:三个蓝,两个黄,一个白,移液枪3只;

6、先配分离胶

7、组装凝胶模具,插好板

(1)海绵用自来水润湿,插在下面槽里;

(2)板:Bio-Rad前后玻璃板,注意前后顺序,夹子夹好,塞枪头于夹子上。

8、配胶见配方,用2号蓝混匀所有试剂;

9、加液至支架上方,用超纯水液封(不能用气泡);

10、待界面清晰后,用滤纸将水吸干;

11、配浓缩胶;

12、插梳子:一个个斜着插,有字面朝向我;

13、拔下梳子,转移(有字朝里,白色架子垫黄纸,将玻璃板卡在绿卡下面,不要有空隙,装去离子水,不能漏(1h),等待。),样品煮沸3分钟;

14、用10uL移液枪移液,移液,每个依次加入梳槽内;

15、电压(浓缩胶)90V,电流20mV;

16、盖上盖子:红对红,黑对黑;插上电源插头:红对红,黑对黑。

【附配方】

分离胶 separating gel (5mL) ( 1个板3.5mL) 1板 2板

Prescription 12% 10% 7.5% 3.5 mL 7.0 mL

Del H2O 1.6 mL 1.9mL 2.3 mL 1.3 3mL 2.66mL

1.5M Tris-HCL pH8.8 1.3 mL 1.3 mL 1.3 mL 0.91 mL 1.82 mL

30%Acry/bis 2 mL 1.7 mL 1.3 mL 1.19mL 1.38 mL 单体胶(29.2g+0.8g/100mL)10%SDS 50uL 50uL 50uL 35uL 70uL

10%AP 50uL 50uL 50uL 35uL 70uL

7uL(夏)~8TEMED 2uL 2uL(5 uL) 2uL 3.5uL uL

浓缩胶Stacking gel ( 2板3mL)

Prescription Volume(2 mL) (2 mL)

Del H2O 1.4mL 2.1mL

0.5M Tris-HCL pH6.8 250uL 375uL

30%单体胶 330uL 495uL

10%SDS 20uL 30uL

10%AP 20uL 30uL

TEMED 2uL(5 uL) 3uL(8 uL冬,5 uL夏)

【附所需试剂配制】

1、30%单体胶(30%单体胶即30%T,2.67%C)配制50mL:丙烯酰胺Acry:14.6g,甲叉双丙烯酰胺bis:0.4g; (100mL:Acry 29.2g,bis 0.8g) 超纯水定容至50mL,0.45 uM膜过滤,4℃保存(一个月);说明:单体浓度%T是指单体总质量(丙烯酰胺+双丙烯酰胺)在溶液中的百分比(m/V),可选择的范围为

3%~30%;%C是指双丙烯酰胺与单体总质量的比值(m/m),也指交联度。

2、分离胶缓冲液pH8.8配制100mL(1.5M Tris-HCL pH8.8):Tris 18.15g,部分去离子水溶解,并用HCL调pH8.8,最后定容至100 mL,过0.45 uM膜,4℃保存。

3、浓缩胶缓冲液pH6.8配制50mL(0.5M Tris-HCL pH6.8):Tris 3.0g,部分去离子水溶解,并用HCL调pH6.8,最后定容至50 mL, 4℃保存。

4、10%SDS:5g/50 mL H2O,配制后 4℃保存。

5、10%AP(过硫酸铵):用时现配,溶解状态十分不稳定,0.1g/1mL H2O。.

6、电泳缓冲液:配1000 mL

Tris 3.0g,甘氨酸14.4g,SDS1.0g,去离子水定容至1000 mL。

7、染色液:

(1)原液:配制200 mL:考马斯亮蓝(R-250):2.0g+200 mL去离子水;(2)染色液:配制500 mL:原液62.5mL,甲醇250mL,冰乙酸50mL,去离子水137.5mL。

8、脱色液:1000 mL

甲醇500 mL,冰乙酸100 mL,去离子水定容至1000 mL。

9、TEMED原液

稳压:Stacking:90V(20mA),Seperate:120V(25mA)。