矮牵牛组织培养文献检索

矮牵牛‘漫波红色’再生及遗传转化体系的初步建立作者：董亚茹王照红杜建勋陈传杰赵东晓来源：《山东农业科学》2016年第03期摘要：以矮牵牛‘漫波红色’无菌苗叶片为外植体，建立无菌再生体系，并在此基础上建立其遗传转化体系。

结果表明，诱导矮牵牛叶片分化的最佳培养基为Ms+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/LNAA；最佳生根培养基为1/2MS+0.1 mg/L NAA；最适出芽和生根的卡那霉素筛选压分别为100 mg/L和20 mg/L；最适头孢霉素抑菌浓度为200 mg/L。

关键词：矮牵牛；漫波红色；再生体系；遗传转化中图分类号：S681.603.6 文献标识号：A 文章编号：1001—4942（2016）03—0014—04矮牵牛比较容易再生，组织与细胞操作技术简单，生活周期短，遗传背景清晰，又是一种重要的园林花卉，因而其基因工程育种开展的较早，成为常见的转基因花卉。

并在植物基因工程育种、体细胞育种及单倍体育种方面均取得一定进展，基因工程育种已创造出新的矮牵牛品种并加以应用。

国内外对矮牵牛组织培养方面的研究已经相当深入，曾进行过叶、茎、节间、叶肉原生质体、花粉粒、根分生组织、茎分生组织、芽、花瓣等外植体类型的研究。

常用作矮牵牛组织培养外植体的有种子、带芽茎段、茎尖、叶片、花蕾、花瓣、花药等。

利用生物技术手段改变观赏植物的性状，创造优良新品种，是目前园林植物研究的一个热点。

本试验以矮牵牛‘漫波红色’为材料，建立其再生体系以及遗传转化体系，为下一步农杆菌介导的转基因研究做好准备工作，也为其他观赏植物的转基因研究奠定基础。

1材料与方法1.1试验材料以矮牵牛‘漫波红色’无菌苗为材料，取生长一致的无菌苗叶片做为外植体，接种在添加不同激素的MS基本培养基（附加蔗糖30g/L、琼脂7.8g/L，pH 5.8～6.0）中，培养温度为（25±2）℃，光照强度2 000～3 000 lX，光照时间16 h/d。

2019·09摘要：试验针对“梅林系列”红色品种，对矮牵牛花药培养技术的最适培养基的配制方法以及试验过程中涉及的部分影响因素展开研究。

目的：为加快矮牵牛花的培育速度与质量，充分发挥矮牵牛花的观赏价值。

研究表明：诱导时选择N6培养基为宜，分化是选择MS 培养基更合适；花蕾直径选择在1.5～2.0mm ；0.1%HgCl 2的灭菌时间在10min ；冷藏的最佳时间是48h ；碳源选择麦芽糖最利于提高诱导率；生长调节剂的种类与剂量确定为诱导培养基中需1.5mg/L 6-BA 、1.0mg/L IBA ，分化培养基中则需0.5mg/L 6-BA 、0.2mg/L IBA 。

关键词：矮牵牛；花药培养；技术；影响因素中图分类号：S681文献标识码：ADOI 编号：10.14025/ki.jlny.2019.09.025张馨默1,2，刘丽萍1,2*（1.黑龙江大学农业微生物技术教育部工程研究中心；2.黑龙江大学生命科学学院黑龙江省普通高校分子生物学重点实验室，黑龙江哈尔滨150000）花药培养是利用植物组织培养技术，将花药进行无菌操作接种到人工培养基上，通过改变小孢子的发育途径，使其诱导分化，进行连续的有丝分裂，形成细胞团，继而形成愈伤组织后胚状体，最终分化成完整的植株。

印度Guha 等最早针对毛曼陀罗的离体花药，诱导出单倍体植株，而后花药培养法被运用到烟草上，并受到世界的广泛关注。

此后，人们陆续开展了对观赏性植物的花药培养研究。

花药培养在育种中的应用价值：一是可缩短育种年限，加速育种进程。

通过对获得的单倍体植株进行染色体加倍，从而获得纯合的二倍体植株；二是对育种研究提供原材料。

通过鉴定和选择满意的基因组合，对遗传变异方面的研究提供了科学的理论依据；三是提供了外源基因的转化受体，从而利于外源基因的整合与表达。

矮牵牛（Petunia hybrid Vilm ），又名碧科茄、灵芝牡丹、撞羽牵牛等，为茄科矮牵牛属一年生或多年生的半蔓性草本花卉。

垂吊矮牵牛叶片的无菌快繁技术研究摘要以垂吊矮牵牛的幼嫩叶片为外植体进行组织培养试验，从中筛选出合适的材料灭菌用药剂与方法以及适宜的诱导、增殖、生根培养基。

结果表明：适量吐温-80+0.1%升汞溶液消毒8min、无菌水冲洗8次的灭菌效果最好，诱导、增殖、生根的最适培养基分别为：MS+6-BA 2.5 mg/L、6-BA 1.0 mg/L和纯碳（C）。

关键词垂吊矮牵牛；叶片；灭菌；培养基；组织培养垂吊矮牵牛是矮牵牛的杂交种，基本性状与矮牵牛相同，其最大的区别就是：垂吊矮牵牛悬挂栽种而不占用地面面积，故更适宜在居住面积狭小但又渴望有更多绿色环境的城市家庭种植观赏；另外悬挂在城市街道两旁的灯柱或一些立面物体上，也能营造出一种别致的立体绿化效果。

近年来垂吊矮牵牛越来越得到人们的青睐，其需求量不断扩大，甚至出现了供不应求的局面。

垂吊矮牵牛的常规繁殖方法有播种和扦插两种。

其中以播种繁殖最为常用，但种子多是从国外进口的杂交F1代，价格十分昂贵，加上再经种子繁殖的下一代又易发生分离变异，会严重影响观赏效果；而扦插繁殖又普遍存在着繁殖率低、种苗质量不均匀等弊端，故仅靠这两种方法已无法满足市场需求，寻求新的繁殖生产技术势在必行。

组织培养有着周期短、增殖率高以及能全年生产等特点，加上培养材料的小型化，即使是有限的空间也能培育出大量的幼苗，短时间内便能迅速扩大植物的数量。

因此，用组织培养的方法进行种苗的繁殖是生产上最有潜力的手段。

1材料与方法1.1材料的选择垂吊矮牵牛植株从花卉市场购买，品种为Petunia hybrida‘Easy wave’（轻浪）。

试验时尽量选用生长健壮、干净无病虫害的幼嫩叶片作为试验材料。

1.2培养基的配备以MS为基本培养基，分别配制出以下几种垂吊矮牵牛诱导用培养基：①MS+6-BA1.0mg/L；②MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L；③MS+6-BA2.5mg/L；④MS+6-BA2.5mg/L+NAA0.2mg/L；⑤MS+6-BA4.0mg/L；⑥1/2MS+NAA0.2mg/L。

矮牵牛愈伤组织的生根诱导一、实验原理本实验为矮牵牛愈伤组织的生根诱导培养，在总结前人研究的基础上选择在培养基中加入IBA和NAA两种生长因子。

研究了IBA和NAA两种生长因子对及其不同浓度组合对生根的影响。

选取生长良好的愈伤组织接种到灭菌的1/2MS和不同浓度组合的生长因子的培养基中，在25±1℃，光照2000lx环境中培养，结果表明1/2MS+0.4mg/LIBA+0.1mg/LNAA诱导效果良好，生根率为100%。

愈伤组织的平均生根数最大，根最长，易于移植。

前言组织培养兴起于上个世纪初，是一种高效快捷的植物无性繁殖技术。

并于上个世纪的70年代后期，广泛用于针叶树种的快速繁殖，并取得了较大的进展[1]。

矮牵牛（petunia hybrida vilm）又名“碧冬茄”、“灵芝牡丹”，为茄科矮牵牛属多年生生草本，通常作一年生栽培。

原产南美，为矮牵牛（pviolacea）与腋花矮牵牛（p.axillaries）的杂种，喜光照,不耐阴，喜温畏寒[2]。

矮牵牛花大，花色丰富，花期长，6～10月整个夏、秋季节花开不断，栽培管理省工，园林绿化上需求量大。

但由于重瓣或大花品种常不易结实或实生苗不易保存母本的优良性状，常采用扦插繁殖，但扦插繁殖速度太慢，满足不了生产发展的需要，而组织培养可在短时期内获得大量的优良种苗[3]。

由此看来，生根培养基的生根培养技术，可有望解决组培苗生产中瓶苗移栽成活率低和生产成本高问题，从而建立起快速、高效、优质的种苗产业化生产体系[4]。

这既是矮牵牛研究者的迫切需要，也是市场的需要。

在培养基中有浓度较高的营养元素，特别是糖能满足的情况下，试管苗产生依赖性而不易生根，减少培养基中营养成分和糖的含量可以刺激生根，因此经常采用1／2MS作为生根的基本培养基[5]。

生根培养基在以1/2MS为基本培养基基础上添加IBA和NAA是目前最流行的根生根培养基。

大部分研究者认为,NAA和IBA对生根有促进作用,但也有这两种激素对生根有抑止作用的研究结果。

矮牵牛组织培养的初步研究摘要：矮牵牛(Petuniahybrida)为茄科矮牵牛属多年生草本植物，通常都作为1～2年生草花栽培，原产于南非，由野生种杂交培育而成，现世界各地均有栽培，在园林中用途十分广泛。

矮牵牛一般采用播种繁殖，种子多是从国外进口的杂交种，价格昂贵。

本试验通过对矮牵牛组织培养的技术进行研究，以组织培养途径达到经济和快速繁殖的目的，实现矮牵牛的工业化生产。

关键词：矮牵牛、组织培养、栽培管理1、品种、形态特征1．1 形态特征与品种矮牵牛为多年生草本。

茎直立或匍匐。

叶卵形，全缘，互生或对生。

花单生，漏斗状，花瓣边缘变化大，有平瓣、波状、锯齿状瓣，花色有白、粉、红、紫、蓝、黄等，另外有双色、星状和脉纹等。

常见品种有：a、重瓣的小瀑布（Cascade）系列：早花种，可提前开花14～28天。

其中红色葡萄酒（Burgundy），花深玫瑰红色，早开花21～28天。

梅脉（PlumVein），花淡玫瑰红，具深色脉纹，可早开花14天。

随想曲（Caprice），花玫瑰红色，花瓣紧凑。

二重唱（Duet），为橙红／白双色品种。

b、的重瓣果馅饼（DoubleTart）系列：苹果馅（AppleTart）株高25～30厘米，花大红，花径6～7厘米。

樱桃馅饼（CherryTart）花白色具不规则玫瑰红纵条纹。

紫天堂（HeavenlyLavender）株高20厘米，花紫色，花径6～7厘米，早花种。

c、大花的阿拉廷（Aladdin）系列：株高30厘米，花色多种，其中蓝天（SkyBlue）花鲜蓝色，花径10厘米，更为突出。

d、（Dreams）系列：株高18～20厘米，抗病品种，其中玫瑰梦（RoseDreams）花玫瑰红，黄心，花径8～10厘米。

鹰（Eagle），矮生种，株高10厘米，花径9厘米，花色多，其中红星（RedStar）鲜红／白双色呈星状。

e、（Magic）系列：其中超级魅力（SuperMagic）为超大型花，分株性强，株高10厘米，花径10厘米；黄魅力（YellowMagic）花黄色，最诱人。

矮牵牛的组织培养研究
瞿素萍
【期刊名称】《西南农业大学学报》
【年(卷),期】2001(23)5
【摘要】矮牵牛以茎尖、茎段和叶片为外植体 ,以MS为基本培养基 ,添加不同的激素配比 ,在MS +BA 2mg/L +NAA0 .1mg/L上诱导形成的愈伤组织块 ,再移至MS+BA 1mg/L +NAA 0 .1mg/L上分化形成苗 ,如此交替作用 ,可达到最高的繁殖倍数、诱导率和分化率 ,变异苗也最少 ,能取得最佳效果 ;生根适宜的培养基为MS +NAA 0 .5mg/L和MS +NAA 0 .3mg/L +IAA 0 .2mg/L。

【总页数】2页(P447-448)
【关键词】矮牵牛;组织培养;愈伤组织;诱导率;牵牛花
【作者】瞿素萍
【作者单位】云南省农业科学院园艺所花卉研究中心
【正文语种】中文
【中图分类】S681.61
【相关文献】
1.矮牵牛(Petunia hybrida Vilm)组织培养技术研究 [J], 梁冰;杨爱馥;樊锐锋;胡宝忠
2.矮牵牛组织培养研究进展 [J], 赵琛
3.矮牵牛组织培养的初步研究 [J], 周志鑫
4.矮牵牛组织培养快速繁殖技术研究 [J], 周瑞金;胡艳;张灿;张欢
5.矮牵牛组织培养繁殖技术研究 [J], 刘雪微
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矮牵牛梅林愈伤组织诱导与植株再生作者：张洁郑益平杨成龙林觅林智敏来源：《福建农业科技》2021年第05期摘要：为建立矮牵牛梅林的高频再生体系，以叶器官为材料，研究不同生长调节剂配比、叶片不同部位和不同形态愈伤对不定芽再生的影响。

结果表明：6BA和NAA及其配比极显著影响矮牵牛梅林不定芽再生率，其中NAA 0.3 mg·L-1 极显著促进了矮牵牛梅林不定芽的再生，6BA和NAA浓度超过1.0 mg·L-1和0.5 mg·L-1时，刺激玻璃化的发生。

叶片不同部位极显著影响不定芽的再生，芽分化率由高到低依次是叶柄>带主叶脉>不带主叶脉，愈伤组织形态决定芽分化能力和质量，叶柄直接分化丛芽是梅林再生的优良外植体，分化率达98.3%。

芽诱导最佳培养基为MS+6BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1，其产生不定芽无玻璃化且分化率高，为68.3%。

叶片愈伤组织诱导最佳培养基为MS+6BA 1. 0 mg· L-1+NAA 0. 3 mg·L-1，其不定芽分化率为68.3%且未产生玻璃化苗;最佳生根培养基为1/2 MS培养基，生根率达100.0%;继代增殖培养最佳培养基为MS+6BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1，丛生芽多且大小均匀。

关键词：矮牵牛梅林;组织培养;愈伤;植株再生中图分类号：S 682.2 文献标志码：A 文章编号：0253-2301（2021）05-0022-06DOI： 10.13651/ki.fjnykj.2021.05.005Callus Induction and Plant Regeneration of Petunia Hybrida MeilinZHANG Jie， ZHENG Yi-ping， YANG Cheng-long， LIN Mi， LIN Zhi-min*（Biotechnology Institute， Fujian Academy of Agricultural Sciences， Fuzhou， Fujian 350003， China）Abstracts： In order to establish a high frequency regeneration system of Petunia hybrida Meilin， the effects of different ratios of growth regulators， different parts of leaves and different forms of callus on the regeneration of adventitious buds were studied. The results showed that 6BA，NAA and their ratios had significant effects on the regeneration rate of adventitious buds of Petunia hybrida. Among which，0.3 mg·L-1 NAA significantly promoted the regeneration of adventitious buds of Meilin. When the concentration of 6BA and NAA respectively exceeded 1.0 mg·L-1 and 0.5mg·L-1， the occurrence of vitrification was stimulated. Different parts of leaves significantly affected the regeneration of adventitious buds. The bud differentiation rate from high to low was petiole， with main vein， and without main vein. The ability and quality of bud differentiation were determined by the shape of callus. The direct differentiation of cluster buds from petioles was an excellent explant for the regeneration of Meilin， with the differentiation rate of 98.3%. The optimal medium for the induction of bud was MS+6BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1， the adventitious buds were produced without vitrification and the differentiation rate was high， reaching 68.3%. The optimal medium for the induction of leaf callus was MS+6BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.3 mg·L-1， and the differentiation rate of adventitious bud was 68.3% without vitrification. The best rooting medium was 1/2 MS medium， in which the rooting rate could reach 100.0%. The optimal medium for the multiplication culture was MS+6BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1， and the cluster buds wereabundant and uniform in size.Key words： Petunia hybrida Meilin;Tissue culture;Callus;Plant regeneration矮牵牛Petunia hybrida为茄科碧冬茄属，一年或多年生草本花卉。