胰酶消化贴壁细胞_图文-课件(PPT·精选)
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HePG2细胞和L-02细胞的传代:HePG2细胞属人肝肿瘤的恒生细胞株,L-02细胞则是人胎肝细胞株,二者所使用的培养基可以是一样的,即最常见的DMEM。
一干使用低糖的。
细胞长满培养瓶时既要传代。
使用胰酶消化即可。
用D-Hank's液配制成0.25%的胰酶。
使用前37度预热,细胞经PBS 清洗两遍后,每个中号培养瓶加0.7ml的胰酶,胰酶的量可根据自己培养瓶的大小而定,原则就是能够盖满瓶底。
加入胰酶以后,为使酶的活性最大,将培养瓶盖拧紧后放回培养箱中,3分钟左右即用含血清的培养基终止消化。
如果在室温情况下消化,时间相应加长,可以在显微镜下观察,当细胞界限已十分清楚,即已分离为单个细胞,且有少量细胞漂起,则要终止消化了。
16HBE细胞株的传代方法:镜下观察细胞生长融合达70-80%,准备传代。
常规开紫外照射超净台20分钟,同时把含10%胎牛血清的MEM培养基、0。
25%胰酶、PBS放置37度培养箱中孵育。
20分钟后开始传代。
先弃掉旧培养液,加PBS洗一次,然后加0。
25%胰酶2ml消化(指25乘25cm大小的培养瓶)细胞,镜下观察细胞,细胞突起回缩,细胞变圆,然后将培养瓶放置37度二氧化碳培养箱中孵育3分钟左右(当然时间是随机的,比如:新配的胰酶作用时间短一些,配制时间长的胰酶作用时间会长一些,当然要不断地镜下观察),待细胞大部分消化下来(大部分细胞呈流沙状脱离瓶壁),加4ml含10%胎牛血清的MEM培养基终止消化。
反复吹打瓶壁上残留的细胞,并将已消化下来的细胞吹打均匀,然后吸入离心管中1000转离心1分钟,然后弃掉上清,用手指将离心管中的细胞弹打均匀,加新培养基,吹打均匀,分至3个新的培养瓶中,补足培养液。
将培养瓶平放,小心移入37度二氧化碳培养箱中培养过夜。
次日观察。
胃癌细胞AGS和SGC-7901的培养:细胞传代时不能长的太满,70%-80%就可以传了.实验前先把紫外灯打开照30分钟,然后再把鼓风机开10分钟,同时把培养液和胰酶放入37度水浴箱中,千万记住不要盖上水浴箱的盖子.传代时,我一般把培养瓶口过一下火,就直接把培养液到去,再用0.25%的胰酶(不含EDTA)消化.等细胞变圆,细胞间空隙加大就直接把培养液到去,不用离心,然后再吹打,虽说要轻柔,但很难吹打成单细胞悬液,所以稍用力也没有关系.虽然操作不规范,但节省时间,细胞也没有被污染.AAV-293细胞的传代:AAV-293细胞较喜欢成团生长,比较娇嫩,怕冷,传代时不要一次从二氧化碳培养箱拿出很多瓶,一次只要拿2-3瓶出来传就可以了,否则细胞很容易死掉.细胞在50-60%传代,细胞生长状态最好.用D-Hank's液配制成0.25%的胰酶消化半分钟左右,弃去胰酶.观察培养瓶是否有针孔样缝隙,如有就可以加入培养液吹打细胞.消化过久,对细胞损害很大,而且成团很难吹打成单个细胞.然后加入含有10%小牛血清的DMEM.轻轻放入二氧化碳培养箱中培养.肺癌细胞(人类),其中绝大部分都是贴壁细胞,具体如:(1)A549(肺腺癌)(2)NCIH446(小肺细胞癌)(3)801(非小肺细胞癌)(4)NCIH460(大细胞肺癌)在消化传代过程中,步骤基本一致:吸去旧的培养液->用Hanks'(1X)清洗一两次->加入一定量的消化液(Trpsin-EDTA)->置显微镜下观察,待细胞大部分变圆时,回到超静台->吸去消化液->加入一定量的新培养液->反复吹打细胞->再置显微镜下观察,直到细胞全部悬浮起来->吸出一部分加入新的培养瓶中->最后再补充加入一定量新的培养液(RPMI1640with10%FBS).注意:吹细胞时尽量多吹边角儿,此处细胞生长的多.另外吸出细胞前要混匀.另注:消化液的配制方法:Trpsin-EDTA(1X)--0.25% Trpsin with EDTA-4Naprepared with 2.5g Trpsin(1:250) and 0.38g EDTA-4Na/L in HBSS.小鼠前脂肪细胞(3T3-L1):吸弃原培养液-->PBS洗一两次-->加入400ul0.125%胰酶(原代最好加0.05% EDTA)消化-->转动培养盘,保证整个盘面都被trypsin液润过->吸弃trypsin后37度消化3min-->以完全培液(DMEM+10% FCS+1/1000Biotin+1/1000泛酸钙-->吸打(枪的吸力调至最小),1:10接种,前后左右摇晃培养盘,细胞均匀后放入培养箱继续培养(10%CO2 ,37度)MDBK(牛肾细胞)类型:贴壁细胞来源:购自武汉病毒所细胞保存中心由四川农业大学动物生物技术中心繁殖保存传代步骤:弃去旧的生长液-->用无钙镁水(CMF)冲洗贴壁细胞数次(视细胞瓶的大小,3--5次)-->剩少许CMF,滴入ATV 2--3滴-->摇匀细胞瓶中的液体,使ATV均匀的分布到瓶里的没个地方-->放入37度二氧化碳温箱中3--5min消化-->弃去ATV,加入生长液,拍打吸吹下细胞-->镜下观察-->分瓶-->作好记号,放入37度二氧化碳温箱生长细胞特点:该细胞生长力强,而且快速一般24h就可以张到80%,48h不传就会变的很老,所以该细胞传时要勤点;我感觉MDBK还是很好传的,比以前我传的ST、Vero细胞等要好传一些,且不那么容易死亡,所以是我的一个比较好的选择!该细胞适合接种疱疹病毒(如:伪狂犬病毒)!BHK-21:弃除旧的培养液后---用缓冲液冲洗一遍----用0.22%的胰酶消化液消化约两分钟左右可以看到细胞像沙子一样脱落-------赶紧倒掉胰酶加入含10%的牛血清培养液终止消化。
1,贴壁细胞用胰酶消化,离心收集。
2,细胞重悬于冰冷的PBS漂洗一次,离心收集。
3,重复2。
4,加入5ml DNA提取缓冲液,(10m mol/L Tris-cl, 0.1 mol/L EDTA, o.5% SDS),混匀。
5,加入25ul 蛋白酶K ,使终浓度达到100ug/ml, 混匀,50℃水浴3h,6,用等体积的酚抽提一次,2500r/min 离心收集水相,用等体积的(酚,氯仿,异戊醇=25:24:1)混合物抽提一次,2500r/min 离心收集水相。
用等体积的(氯仿,异戊醇=24:1)抽提一次。
7,加入等体积的5mol/L 的LiCL,混匀,冰浴,10min.8, 2500r/min,离心10min. 转上清与一离心管中。
加入等体积的异丙醇。
室温10分钟。
9, 2500r/min,离心10min。
弃上清。
加入0.1倍体积3mol/L 乙酸钠(PH5.2)与2倍体积-20℃预冷无水乙醇。
-20℃ 20分钟。
10, 12000r/min, 室温离心5分钟。
弃上清。
将DNA溶于适量TE中2. 试剂:(1)细胞裂解缓冲液:Tris (pH8.0) 100 mmol/LEDTA (pH 8.0) 500 mmol/LNaCL 20 mmol/LSDS 10%胰RNA酶 20ug/ml(2)蛋白酶K:称取20mg蛋白酶k溶于1ml灭菌的双蒸水中,-20℃备用。
(3)TE缓冲液(pH 8.0):高压灭菌,室温贮存。
(4)酚,氯仿,异戊醇(25:24:1)。
(5)异丙醇、冷无水乙醇、70%乙醇、灭菌水。
三、操作步骤1. 取新鲜或冰冻动物组织块0.1g(0.5cm3),尽量剪碎。
置于玻璃匀浆器中,加入1ml的细胞裂解缓冲液匀浆至不见组织块,转入1.5ml 离心管中,加入蛋白酶K (500ug/ml)20μl,混匀。
在65℃恒温水浴锅中水浴30min,也可转入37℃水浴12-24h,间歇振荡离心管数次。
于台式离心机以12000 rpm离心5min,取上清液入另一离心管中。
细胞实验乳腺组织块贴壁迁出细胞后胰酶消化:先把培养液、pbs、胰酶消化液放37℃水浴锅,倒掉培养液,加入0.25%(0.125%也可以)胰酶3 min,镜下观察细胞消化情况。
若消化不完全则继续消化,消化完全则加入等量培养液终止消化,反复吹打,将液体加入1.5 ml离心管。
对于一次难以消化下来的组织块,可以多加几次胰酶,每次消化后都要加入pbs洗一洗,然后再加入胰酶继续消化。
将离心管1000 rpm离心5分钟,去上清,加入培养液,重悬,置于合适的培养皿。
细胞换液:将pbs、培养液放37度水浴锅预热。
取出细胞镜下观察生长情况和杂质多少,倒掉原有培养液,用pbs洗一遍(杂质较多时可洗两遍),从壁上加入培养液。
细胞传代:先把培养液、pbs、胰酶消化液放于37℃水浴锅,取出细胞镜下观察生长情况和杂质多少,倒掉原有培养液。
加入0.25%胰酶,消化3 min,镜下观察消化情况。
消化完全则加入等量培养液终止消化,加入离心管内,1000 rpm离心5 min,去上清,加入培养液,重悬,置于合适的培养皿。
标记传了第几代。
注意:(1)293T细胞只需用胰酶消化大概1 min,不用放入培养箱;(2)293T 细胞不需要用PBS重悬,直接加培养液重悬。
对于加入裂解液或者原代培养的细胞需要PBS重悬来洗杂质;(3)加入6孔板时,用1 ml培养液重悬后,每孔加入100 μl。
可根据细胞数量调整加入的量。
细胞复苏:1.调节水温至37℃,取出细胞(4#5号第四格),放入手套中再浸入水中解冻;2.1000 rpm离心5 min,弃上清,用PBS清洗1遍(做磁珠的话用Buffer洗),加入培养液培养。
细胞冻存:需冻存的细胞先用PBS洗一遍,再加入胰酶消化3 min,1050 rpm离心5 min。
沉淀用细胞冻存液重悬,加入冻存管,-80℃保存过夜,第二天转移到液氮罐(4#5号第四格)。
注意:1.配置10% DMSO细胞冻存液:900 μl过滤的血清+100 μl DMSO。
细胞传代消化时所用胰酶浓度?
常见浓度为0.25%的胰酶(含有螯合剂),半贴壁细胞或者对胰酶敏感的细胞,可采用0.05%浓度的胰酶(含有或者不含有螯合剂)进行细胞消化。
由于细胞膜上的粘附蛋白需要金属离子维持其活性,常见的胰酶中含有EDTA等螯合剂,如果细胞贴壁不是非常紧密,也可用不含有螯合剂的胰酶进行细胞消化。
胰酶对细胞膜上粘附蛋白的损害比较大,如果进行细胞膜上蛋白的研究,建议选择温和的细胞消化试剂,尽量减少对细胞膜上蛋白的损伤。
此外,由于胰酶自身也是一种蛋白,胰酶也会自己剪切自己,建议胰酶不要反复冻融,拿到手中的大瓶胰酶进行分装使用。
除了常见的胰酶(含有或者不含有EDTA),百灵生物(除了提供cellmax 胎牛血清)还提供含另外一种更温和螯合剂的胰酶,对于娇贵或者贴壁不牢的细胞,这也不失为一种选择。
Cellmax胎牛血清Max choice, Max cells。
实验二细胞的传代培养【实验目的】1. 掌握贴壁细胞换液和细胞传代的方法。
2. 了解细胞传代培养的意义。
【实验原理】细胞在培养瓶里的生长,分为贴壁生长和悬浮生长。
贴壁生长细胞在培养瓶中生长数天后,就会在培养瓶底部长满,如果不进行处理,就会继续生长而产生堆积,最后因缺乏营养供给而死亡。
因此当细胞生长贴满瓶底时,就需要将细胞消化下来,并接种成多瓶细胞,使细胞继续生长。
这一处理接种的过程就叫传代,每接种一次就叫做传一代。
细胞传代培养使得细胞增殖,可获得大量细胞供实验所需。
传代培养是组织培养常规保种方法之一,是几乎所有细胞生物学实验的基础。
接种后的细胞放在培养箱里静置培养,培养的温度视动物种类而定。
一般,温水性鱼类细胞的最适培养温度为25℃,热带鱼类细胞为30℃,冷水鱼类细胞为20℃,哺乳动物细胞为37℃。
细胞培养过程中常出现培养基营养缺乏、代谢产物增多、变酸等不适宜细胞生长因素,而此时细胞还未生长达到饱和密度(没有贴满底部),仍需继续培养,因而需要更新营养液来更新营养成分,以满足细胞继续生长繁殖的需要,这一过程叫换液。
单纯换液不需要接种细胞。
【试剂、材料与仪器】试剂:生长培养基(PRMI-1640 或MEM,添加10% 小牛血清或胎牛血清),0.25% 胰蛋白酶,0.2% EDTA材料:细胞培养瓶,移液管(5 mL、10 mL),无菌离心管,废液缸,普镊,酒精灯,打火机,医用酒精,消毒纱布,酒精喷壶,记号笔,橡胶手套,封口膜仪器:生化培养箱或CO2培养箱,倒置生物显微镜,超净工作台,加液枪,低速离心机,4℃冰箱【实验分组】实验分组进行,每组4人,每班20人,共分5组。
【实验步骤】工作前打开超净工作台上的紫外灯,灭菌30 分钟后,关闭紫外灯,打开吹风和照明灯;带橡胶手套,用酒精擦拭消毒双手;超净工作台面用酒精喷洒,再用消毒纱布擦净。
在超净工作台中摆放好移液管、离心管和培养瓶等。
1.观察细胞:倒置显微镜下观察细胞形态,确定细胞是否需要传代,当细胞长满瓶底时可以传代;2.超净工作台准备:将试剂瓶、培养瓶等培养用具用酒精喷洒,用消毒纱布擦净,置于超净工作台酒精灯左侧;3.开盖:旋开细胞培养瓶瓶盖,将瓶盖侧立于(严禁倒扣放置)酒精灯旁,培养瓶瓶口、瓶盖均需过酒精灯火焰后再盖好;4.清洗细胞表面:打开移液管盒,用普镊捏住移液管(5mL)后部从盒子中拖出(注意移液管的管壁和管口不能碰到其他物品),安装好加液枪,移液管管口和管壁均过酒精灯火焰。