赤霉素检测方法

反向电渗流非水毛细管电泳法快速测定微量赤霉素郭振朋;王晓瑜;陈义【摘要】A non⁃aqueous capillary electrophoresis ( NACE) method for the rapid determination of micro gibberellins (GAs) was established. Dynamically poly(ethylene oxide) coated capillary was used, and electroosmotic flow ( EOF ) was reversed by using positive ions and adjusted by regulation the types and concentrations of the positive ions, running buffer, and pH of the buffer. With a buffer of 95% ( v/v ) methanol containing 10 mmol/L ammonium acetate at an acidity of 0�08% ( v/v) acetic acid, the EOF was successfully reversed to separate the eight GAs in less than 10 min. Its applicability was validated by the determination of GAs in germinating wheat seeds, with relative standard deviations ( RSDs) ≤2�1% ( intra⁃day) or ≤4�3% ( inter⁃day) for migration times, and RSDs≤4�5% ( intra⁃day) or≤6�9% ( inter⁃day) for peak areas. The limits of detection ( S/N=3) were in the range of 1�10-2�20 mg/L, with correlation coeffi⁃cients ( r2 ) of 0�998 2-0�999 3. The recoveries of the spiked samples were between 87�2% and 93�5%. The established method is simple, rapid, stable, and compatible with mass spectrome⁃try, so it is valuable to be further studied.%赤霉素是一类重要的植物激素，是结构相似的弱酸性二萜类化合物。

二、大麦胚乳试法
实验步骤： 实验步骤：
1.溶液配制 1.溶液配制 2.选籽粒饱满大小一致的大麦种子50粒 选籽粒饱满大小一致的大麦种子50 2.选籽粒饱满大小一致的大麦种子50粒 3.淀粉酶活力测定 3.淀粉酶活力测定
二、大麦胚乳试法 优点：
① α-淀粉酶的释放是和赤霉素原初作用位点 淀粉酶的释放是和赤霉素原初作用位点 关系较为密切的步骤之一 ②α-淀粉酶的释放不受溶剂中杂质的影响， 淀粉酶的释放不受溶剂中杂质的影响， 淀粉酶的释放不受溶剂中杂质的影响 而且对赤霉素是极其专一的 ③α-淀粉酶的释放不受植物天然提取物中其 淀粉酶的释放不受植物天然提取物中其 他非赤霉素类物质的影响
第二节 赤霉素（GA）的生物 测定计术
赤霉素促进结实
/AMuseum/agricul/2_2_14_zhiwyycms.html
赤霉素促进器官伸长
/AMuseum/agricul/2_2_14_zhiwyycms.html二、大麦胚乳试法源自大麦胚乳法测定赤霉素的标准曲线
三.矮生玉米叶鞘法
矮生玉米生长与GA3浓度的关系曲线
-13 3*10 mol/L -13
-12 3*10 mol/L
-12
-11 10 mol/L
-11
-12 3*10 mol/L
-12
-9 3*10 mol/L
-9
3*10-10mol/L
-10
第二节 赤霉素（GA）的生物测 定技术
水稻幼苗叶鞘伸长“点滴” 一、水稻幼苗叶鞘伸长“点滴”法 二、大麦胚乳试法 三、矮生玉米叶鞘法
第二步
第
步
% 第一 •
芽
第
步
恒温光照培养3d, 恒温光照培养3d, 长

高效液相色谱法分离和测定小麦中的5种内源激素张玉琼;仲延龙;高翠云;董召荣;陈娜;王梅方【摘要】A high performance liquid chromatographic (HPLC) method was developed to determine the five endogenous hormones including indole-3-acetic acid (IAA),abscisic acid (ABA),gibberellic acid (GA3),zeatin (ZT) and salicylic acid (SA) in wheat.The separation conditions were optimized,and methanol was chosen as the extraction solvent.Then the extract was extracted by petroleum ether and ethyl acetate,and purified with the Sep-Pak C18 column.The chromatographic conditions were as follows:Eclipse XDB-C18 reversed phase column (250 mm ×4.6 mm,5 μm),the flow rate of 1 mL/min,the injection volume of 10 μL,and the detection wavelength of 240 nm were used for the separation of SA from 14.5 min to 18 min,while the detection at 254 nm used for the separation of the others.Methanol (A) and acetic acid aqueous solution (pH 3.6) (B) were used as the mobile phases with the linear gradient set as follows:0-7 min 20％ A,7-10 min 20％A-28％ A,10-17 min 28％ A,17-19min 28％ A-40％ A,19-35 min 40％ A.The results showed that:the hormones were separated well with the recoveries of 96.9％-98％,and the RSDs were in the range of 1.54％ to 2.29％.It is a reliable method for rapid,accurate separation and determination of the endogenous hormones in wheat.%建立了高效液相色谱法(HPLC)用于分离和测定小麦中的吲哚乙酸(IAA)、脱落酸(ABA)、赤霉素(GA3)、玉米素(ZT)和水杨酸(SA)5种植物内源激素.经过条件优化,选用甲醇作为样品提取溶剂.然后,经石油醚和乙酸乙酯萃取,经Sep-Pak C18小柱纯化.液相色谱的分离采用Eclipse XDB-C18(250 mm ×4.6 mm,5μm)反相色谱柱；流速为1 mL/min；进样量10μL.检测器波长设置为254 nm; 14.5 min时切换到240 nm; SA洗脱后即18min时切换回254 nm.流动相A为甲醇,B为乙酸溶液(pH 3.6).梯度条件为0～7 min,20％A；7～10 min,20％A～ 28％A；10～17 min,28％A；17 ～ 19 min,28％ A～40％ A; 19 ～35 min,40％A.结果表明,小麦中各激素的分离效果理想,加标回收率达96.9％～ 98％,相对标准偏差在1.54％～ 2.29％之间.因此,该方法的建立为快速、准确地分离和测定小麦内源激素提供了可靠的方法.【期刊名称】《色谱》【年(卷),期】2013(031)008【总页数】4页(P800-803)【关键词】高效液相色谱法;内源激素;小麦【作者】张玉琼;仲延龙;高翠云;董召荣;陈娜;王梅方【作者单位】安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学农学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036;安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥230036【正文语种】中文【中图分类】O658植物激素对植物的种子萌发、生长、开花、成熟、衰老、休眠等生命活动起直接或间接的调节、控制作用［1，2］。

植物赤霉素(GA)酶联免疫分析（ELISA）试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的：本试剂盒用于测定植物组织，细胞及其它相关样本中赤霉素(GA)含量。

实验原理：本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中植物赤霉素(GA)水平。

用纯化的植物赤霉素(GA)抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入植物赤霉素(GA)，再与HRP 标记的赤霉素(GA)抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物 TMB 显色。

TMB 在 HRP 酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的赤霉素(GA)呈正相关。

用酶标仪在 450nm 波长下测定吸光度（OD 值），通过标准曲线计算样品中植物赤霉素(GA)浓度。

试剂盒组成：标本要求：1．标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。

若不能马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融2．不能检测含 NaN3 的样品，因 NaN3 抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。

操作步骤：1.标准品的稀释与加样：在酶标包被板上设标准品孔 10 孔，在第一、第二孔中分别加标准品100µl，然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50µl，混匀；然后从第一孔、第二孔中各取100µl 分别加到第三孔和第四孔，再在第三、第四孔分别加标准品稀释液50µl，混匀；然后在第三孔和第四孔中先各取50µl 弃掉，再各取50µl 分别加到第五、第六孔中，再在第五、第六孔中分别加标准品稀释液 50ul，混匀；混匀后从第五、第六孔中各1取50µl 分别加到第七、第八孔中，再在第七、第八孔中分别加标准品稀释液50µl，混匀后从第七、第八孔中分别取50µl 加到第九、第十孔中，再在第九第十孔分别加标准品稀释液50µl，混匀后从第九第十孔中各取50µl 弃掉。

比色谱法是最早应用于生长 素分析的光谱法，但由于该法选 择性差，现很少被应用。荧光分 析法是进行痕量、超痕量甚至分 子水平上分析的重要手段，它具 有选择性好、取样少、灵敏度高 以及简便快速等优点，近年来在 植物激素分析中得到广泛应用。
电化学分析法
电化学分析法相对于气相色谱(GC)、液相色 谱(HPLC)、毛细管电泳(CE)、免疫法等分析方法具 有简单、方便和仪器价廉等特点. 在早期的研究中, 植物激素的电化学分析方法主要是针对脱落酸、赤 霉素、玉米素和激动素等植物激素标准品的电化学 行为进行探讨. 通过研究发现, 植物激素存在的本底 溶液的性质和pH 对测定结果会产生很大影响。
色谱法和光谱法
色谱法
光谱法
色谱学是利用物质在不同介质中的 分配原理进行测定的, 包括纸上层析、薄 层层析( TLC)、气相色谱( GC)、高效相 色谱( HPLC) 以及气质联用( GC-M S) 等, 将分离和测定结合起来是色谱法的基本 特点。根据色谱学理论, 某种化合物在一 定色谱条件下的出峰时间(保留时间) 是 固定的, 这是色谱学定性的依据； 而色 谱峰面积(或峰高) 与物质的含量(或总量) 成正比, 这是色谱学定量的基础。
植物激素 的 检测方法
目录
CONTENTS
01
02
03
04
植物 激素 定义
植物 激素 分类
植物 激素 检测 方法
参考 文献
1
植物激素的定义
植物激素的定义
天然植物激素或内源性植物激素, 是植 物自身代谢产生的一类具有高度生物活 性的有机小分子化合物. 它们一般先在 植物的某一部位合成, 然后再转运到其 他部位去发挥作用。植物激素虽是小分 子, 却调控着几乎整个植物生命周期, 如 种子萌发、茎叶伸长、果实成熟以及脱 落等生理过程。植物激素还能感应植物 所处生存环境的外界刺激, 如水分、光 照、温度和损伤等, 并作出相应的反应。

考虑 2, 4 - D 溶于有机溶剂 ,不溶于水 ,化学 性质稳定 ,而其钠盐则可溶于水 ,所以选用氢氧化
第 2期 彭 姝等 :豆芽中三种常见激素的高效液相色谱检测法
97
钠溶液 (0101 mol/L )作为提取剂 。将 2, 4 - D 转 化为钠盐 ,溶于水中 ,高速离心分离 ,上清液用磷 酸调 pH至 215,将钠盐还原成弱酸 2, 4 - D ,此时 2, 4 - D 从水相中析出 。有报道称可利用二氯甲 烷液 - 液萃取 ,但实际操作中发现该法乳化现象 比较严重 ,回收率不高 。故考虑先用蛋白沉淀剂 处理 ,后再通过液 - 液萃取提取 2, 4 - D ,提取度 比较高 ,但是多次萃取操作繁琐 、试剂消耗量大 。 而用 ODS - C18 SPE柱萃取 ,用水淋洗后再用流 动相洗脱 ,不仅具有较理想的净化效果和回收率 , 而且试剂消耗少 ,操作简单 、快捷 。2, 4 - D 为有 机弱酸 ,所以流动相体系应为酸性 ,以 pH 310为 佳 ,试用了冰乙酸和磷酸 ,结果冰乙酸对基线影响 较大 ,噪声较多 ,而磷酸较理想 。
酸化甲醇溶液 :每 100 m l甲醇 +水 ( 60 + 40, V /V )中加入乙酸 50μl,混匀 。
固相萃取小柱 : ODS - C18 SPE柱 ,用时先经 10 m l甲醇洗脱活化 ,再用 10 m l水洗去残留甲 醇 ,保持萃取柱湿润状态待用 。 21212 色谱条件 检测器 :紫外检测器 ;色谱柱 : kromasil C18 ( 25010 mm ×416 mm ×5 μm ) ; 柱 温 : 35℃;检测波长 : 267 nm;流动相 :甲醇 + 115% 磷酸溶液 (40 + 60) ;流速 : 110 m l/m in;进样量 : 10 μl。 21213 样品前处理方法 称取捣碎混匀的豆芽

植物激素检测⽅法植物激素是植物体内合成的⽤于调控植物⽣成发育的⼩分⼦化合物。

⽬前，被公认的植物激素有6⼤类：细胞分裂素类（CK）、⾚霉素类（GAs）、⽣长素类（Auxins）、脱落酸类（ABA）、⼄烯和油菜素甾醇类（BRs）。

以下介绍⼏种常⽤的植物激素检测⽅法。

1. ⽣物检测法利⽤植物激素作⽤于植物组织或离体器官后产⽣的特异性反应，从⽽间接对植物激素的含量进⾏检测。

然⽽，不同结构的⾚霉素、⽣长素或激动素对不同⽣物检测法的响应有差异，因此有时可能⽆法测出。

由于⽣物检测法可以检测植物激素的活性，常⽤于植物激素的定性分析，也常与其他检测⽅法结合使⽤。

2. ⽓相⾊谱法通过与标准样品共⾊层分离来鉴定样品中植物激素的含量，但由于⽆法排除杂质与标准品的共⾊层分离，所以不能准确检测植物激素含量。

待测样品必须形成易挥发的甲基化和三甲基硅烷化衍⽣物才可以运⽤⽓相⾊谱法检测，所以在⼄烯的测定种，⽓相⾊谱法⽐较常⽤。

3. 酶联免疫法（ELISA法）将抗原或抗体与酶结合形成酶标抗原或抗体，加⼊酶反应的底物后，底物被酶催化⽣成有⾊产物，通过颜⾊反应的深浅来进⾏定性或定量分析。

酶联免疫吸附法的主要缺点在于抗体的制备复杂，且检测中难以排除交叉反应，⽆法保证植物激素检测的准确性。

4. ⾼效液相⾊谱法⾼效液相⾊谱法与不同检测器结合，能直接分析多种植物激素，是⽬前应⽤较⼴泛的植物激素检测⽅法之⼀。

除⼄烯外的其它植物激素均可以采⽤⾼效液相⾊谱法进⾏检测。

5. 质谱法液质联⽤（LC-MS）和⽓质联⽤（GC-MS）克服了⾼效液相⾊谱和⽓相⾊谱的在植物激素定性和定量⽅⾯的局限性，成为普遍接受和认可的植物激素检测⽅法。

GC-MS具有选择性好、专⼀性强、灵敏度⾼等特点，不⾜之处在于对样品的纯化要求很⾼，且样品需要衍⽣化处理。

不同于GC-MS，LC-MS不需要衍⽣化处理，简化了操作步骤，缩短了检测时间。

因此LC-MS更适⽤于植物激素的检测（除⼄烯外）。

植物激素的测定方法植物激素是一类在植物生长和发育过程中起调节作用的化合物。

它们能够通过调节细胞分裂、扩展和分化以及调控植物对环境的适应能力，从而影响植物的形态和功能。

为了研究和了解植物激素的作用机制，科学家们发展了多种测定植物激素的方法。

这些方法可以帮助我们准确地测定植物激素的浓度，并进一步揭示植物激素在植物生长和发育中的作用。

一种常用的测定植物激素的方法是高效液相色谱法（HPLC）。

HPLC 是一种基于植物激素在液相中的分离和检测原理的分析方法。

首先，样品中的植物激素会被提取出来，然后通过在柱子中的固定相上进行分离，最后利用紫外光谱仪或质谱仪等设备进行检测和定量。

这种方法具有高分离效果、高灵敏度和高准确性的优点，常用于测定植物激素如生长素、赤霉素、脱落酸等的浓度。

除了HPLC，放射免疫测定法（RIA）也是一种常用的测定植物激素的方法。

RIA利用植物激素与标记同位素结合的原理，通过测量放射性同位素的放射线强度来定量植物激素的浓度。

这种方法具有高灵敏度和高特异性的优点，可以测定植物激素如赤霉素、激动素、玉米素等的浓度。

酶联免疫吸附测定法（ELISA）也是一种常用的测定植物激素的方法。

ELISA利用植物激素与特异性抗体的结合反应，通过测量抗体与酶标记物质之间的酶活性来定量植物激素的浓度。

这种方法具有简单、快速和高灵敏度的优点，常用于测定植物激素如赤霉素、生长素、激动素等的浓度。

除了上述几种常用的测定方法，还有一些新兴的测定植物激素的方法也在不断发展中。

例如，质谱法（MS）是一种基于植物激素分子的质量和质荷比的分析方法，可以精确测定植物激素的结构和浓度。

另外，生物传感器和光谱法等新技术也被应用于植物激素的测定领域，为研究人员提供了更多的选择。

测定植物激素的方法多种多样，各有优劣。

科学家们根据研究目的和需求选择合适的方法来测定植物激素的浓度。

这些测定方法的发展和应用，不仅有助于我们深入了解植物激素的作用机制，还为植物生长和发育的调控提供了重要的理论和实践基础。

附件3豆芽中植物生长调节剂的测定BJS 2017031范围本方法规定了豆芽中11种植物生长调节剂的高效液相色谱-串联质谱测定方法。

本方法适用于豆芽中6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑和噻苯隆的检测。

2原理试样经含1%甲酸的乙腈溶液匀浆提取，脱水，离心后，上清液经分散固相萃取净化，用高效液相色谱-串联质谱测定，外标法定量。

3试剂和材料除另有规定外，本方法所用试剂均为分析纯，水为GB/T 6682 规定的一级水。

3.1试剂3.1.1甲醇：色谱纯。

3.1.2乙腈：色谱纯。

3.1.3甲酸：色谱纯。

3.1.4乙酸铵：色谱纯。

3.1.5无水硫酸镁。

3.1.6无水乙酸钠。

3.1.7十八烷基键合硅胶吸附剂（C18）：粒径范围为40 μm—60 μm。

3.2试剂配制3.2.1含1%甲酸的乙腈溶液：量取10 mL甲酸，加乙腈稀释至1000 mL，混匀。

3.2.2含0.1%甲酸的5 mmol/L乙酸铵溶液：称取0.3854 g乙酸铵，用水溶解并稀释至1000 mL，加入1 mL甲酸，混匀。

3.3标准品6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑、噻苯隆标准品，纯度均≥90%。

标准品的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子质量详见附录A中的表A.1。

—22 —3.4标准溶液的配制3.4.1植物生长调节剂标准储备液（1 mg/mL）：精密称取6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸、赤霉素、吲哚乙酸、吲哚丁酸、2,4-二氯苯氧乙酸、4-氟苯氧乙酸、异戊烯腺嘌呤、氯吡脲、多效唑、噻苯隆标准品（3.3）各10 mg，分别置于10 mL容量瓶中，用甲醇溶解并稀释至刻度，摇匀，制成浓度各为1 mg/mL标准贮备液，-20℃保存。

3.4.2混合标准中间液A（10 μg/mL）：分别精密量取11种植物生长调节剂标准储备液（1 mg/mL）（3.4.1）各1 mL，置于同一100 mL容量瓶中，用甲醇稀释至刻度，摇匀，制成浓度均为10 μg/mL 的混合标准中间液A。

► 积的变化不会影响影响定量结果。 内ꢉ法抵消了前处理的操作误差，乃至流动相、 检测器的影响。
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类别 游离态生长素 结合态生长素
生长素前体
脱落酸 游离态茉莉酸 结合态茉莉酸 茉莉酸前体 游离态水杨酸 结合态水杨酸
天然细胞分裂素
人工合成细胞分裂素 赤霉素系列 油菜素内酯
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比色法
乙醇提取-比色法测定

植物生长素相关知识点高二植物生长素是调节植物生长和发育的重要激素。

它们起着促进或抑制植物细胞分裂、膨大以及各个发育阶段的转变等作用。

本文将介绍高二学生应该了解的植物生长素相关知识点。

一、植物生长素的类型植物生长素主要包括：赤霉素（GA）、生长素（IAA）、细胞分裂素（CYT）、脱落酸（ABA）以及少量的赤霉素酸（GAA）等。

二、植物生长素的生理功能1. 生长素（IAA）生长素调节植物的细胞分裂和伸长，影响植物的高度增长和根系发育。

它还参与调控植物的光生物学和重力生物学反应。

2. 赤霉素（GA）赤霉素促进植物胚胎发育、幼苗生长和植物的开花过程。

它还调节植物细胞分裂和伸长，促进果实膨大。

3. 细胞分裂素（CYT）细胞分裂素参与植物的细胞分裂过程，调节植物器官的增长和分化。

4. 脱落酸（ABA）脱落酸参与调节植物的休眠、脱水、抗寒和抗逆等生理过程。

它还抑制种子的发芽和幼苗的生长。

三、植物生长素的运输和转运1. 植物生长素通过韧皮部（木质部和韧皮部）进行长距离的运输。

2. 植物生长素的转运主要通过细胞间和细胞内的转运蛋白完成。

四、外源植物生长素的应用1. 促进植物生长外源赤霉素和生长素的使用可以促进植物的生长和开花。

2. 抑制植物生长外源脱落酸可以抑制植物的生长，常用于调节植物的大小和形态。

3. 促进果实膨大外源赤霉素可以促进果实的膨大，增加产量。

五、植物生长素的检测方法1. 生化方法通过生物化学分析，如间接酶联免疫吸附实验（ELISA）等，可以测定植物生长素的含量。

2. 生理方法通过观察植物的生长状况、细胞分裂和伸长等现象，可以初步判断植物生长素的影响程度。

六、植物生长素的应用前景植物生长素在农林业生产中有重要的应用前景。

例如，利用生长素促进植物生长可以增加农作物的产量；利用生长素抑制杂草的生长可以提高农作物的纯度和品质。

总结：植物生长素是调节植物生长和发育的重要激素，包括生长素、赤霉素、细胞分裂素和脱落酸等。

确定食品中的植物生长调节剂残留量的新方法一、背景介绍植物生长调节剂（Plant Growth Regulators，PGRs）是一类能够调节植物生长发育，提高农作物产量和质量的化学物质。

在现代农业生产中，广泛使用的PGRs包括赤霉素、气体素、生长素等。

然而，PGRs如果未能正确使用或严格控制其标准化生产，会造成其在农产品中的残留，甚至可能对人体健康造成威胁。

因此，确立新的方法来确定食品中的PGRs残留量显得尤为必要。

二、相关研究及现状在既有的方法中，使用气相色谱法（Gas Chromatography，GC）、液相色谱法（High-performance Liquid Chromatography，HPLC）等对农产品中的残留物进行检测。

然而，这类方法的缺陷在于需要大量的时间和人力，且可能存在误差。

近年来，一些新的方法和技术正在应用于PGRs残留检测中，例如计算机视觉技术、激光光谱学等。

三、新方法的核心原理我们将探讨一种新的方法，该方法可以通过近红外光谱（Near-infrared Spectroscopy，NIRS）技术来确定食品中的PGRs残留量。

该技术是一种基于物质分子的振动和转动能量的非破坏性方法，通过分析被测物质吸收、散射近红外光信号的强度、频率等性质，来快速检测样品的属性。

四、新方法的实现步骤1. 样品准备：将待测物样品进行采样、预处理，使其样品介质均质化且不影响测量结果。

2. 近红外光谱测量：将准备好的样品放置在近红外光谱测量仪中，记录并累积多组样品近红外光谱数据。

3. 数据预处理：对测量到的光谱信号进行基线校正、分段和光谱分析处理，确保数据准确性和可信度。

4. 建立检测模型：将样品数据集分成训练集和预测集，利用机器学习等算法来建立模型，进一步深化模型效果。

5. 残留检测：将新样品光谱数据输入到已建立好的检测模型中，即可得到相应的残留数据，并进行数据分析和处理。

五、新方法的应用该方法在检测农产品中PGRs残留量上具有显著的优势。

植物中的赤霉素测定原理赤霉素是一种重要的植物生长素，对植物的生长、发育和生理代谢有着重要的影响。

测定赤霉素含量对于了解植物的生长状态、深入研究其生理代谢机制以及引导植物的农艺栽培具有重要的意义。

赤霉素的测定原理主要包括提取赤霉素、分离纯化、测定浓度三个步骤。

首先是赤霉素的提取。

赤霉素的提取主要通过溶剂法和生化法两种方法来实现。

溶剂法主要是将植物样品研磨成粉末，然后使用有机溶剂（如乙酸乙酯、甲醇等）进行提取。

在提取过程中，还可以加入一些辅助提取剂，如氢氧化钠、二氯甲烷等。

生化法是将植物材料经过一系列的生物化学反应，如酶解、水解、酶抑制等，来提取植物中的赤霉素。

无论是溶剂法还是生化法，提取过程中需要控制一些条件，如温度、时间、溶剂比例等，以保证提取的赤霉素的纯度和稳定性。

接下来是赤霉素的分离纯化。

提取出的赤霉素在种子、叶片、茎等植物组织中的含量相对较低，需要进行分离纯化才能实现精确的测定。

常用的方法有液体色谱法、气相色谱法、薄层层析法等。

液体色谱法是最常用的方法，它可以通过改变移动相的组成、调整流速和温度等参数，来实现赤霉素分离的选择性。

气相色谱法则将提取出的赤霉素转化为易挥发的衍生物，通过气相色谱柱进行分离。

薄层层析法是一种简单经济的分离方法，通过在薄层板上进行层析，利用固定相和流动相的相互作用，实现赤霉素的分离。

最后是赤霉素浓度的测定。

常用的测定方法有免疫分析法、酶联免疫吸附测定法（ELISA）、高效液相色谱法（HPLC）等。

免疫分析法是一种通过抗体与赤霉素结合来进行测定的方法，可以通过比色、荧光强度等信号来得出赤霉素的含量。

ELISA是一种常用的免疫分析方法，它可以通过特异性的抗体与赤霉素结合，再通过酶的作用，来产生比色或荧光信号，从而间接测定赤霉素的含量。

HPLC是一种高效液相色谱方法，常用于对赤霉素进行定量分析，通过调节流动相、控制流速和检测器等参数，可以实现赤霉素的分离和定量。

总的来说，赤霉素的测定原理包括提取赤霉素、分离纯化和测定浓度三个步骤。

代表有硫酸铜、硫磺、石硫合剂、 磷化铝、磷化锌和石油乳剂等
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生物源农药
包括植物源农药和动物源农药及微生物源农药。 植物类别有植物毒素、植物内源激素、植物源
昆虫激素、拒食剂、引诱剂、驱避剂、绝育剂、 增效剂、植物防卫素、异株克生物质等。 动物资源开发的农药包括动物毒素、昆虫激素、 昆虫信息素和天敌等。
于在基层推广等特点，是目前我国控制 高毒农药残留的一种有效方法，也是目 前国内和我省应用最为广泛的农药残留 快速检测方法。
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A 速测仪法的主要优点：
1. 该方法具有快速方便、前处理简单、成本较 低等优点，适用于现场定性测定，特别适合在 蔬菜生产基地、批发市场及农产品检测部门开 展快速检测工作。
蔬菜农药残留的快速检测方法原理及检 测标准
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1、目前农药在蔬菜中的残留问题
农药是把“双刃剑”，对促进农业增产有极其 重要的作用。但由于农药本身固有的化学属性 和对其使用不当，导致农产品农药残留严重超 标，严重危害到广大人民群众的身体健康。
在我国农药中，70％为有机磷农药，而在我国 生产使用的有机磷农药中，70％为剧毒、高毒 类，而且较多是禁止在蔬菜作物上使用的。
⒈速测卡法（纸片法） ⒉酶抑制率法（分光光度法）
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10、两种快速检测方法的技术原理
根据有机磷和氨基甲酸酯类农药能抑制昆虫中 枢和周围神经系统中的乙酰胆碱酯酶的活性造 成神经传导介质乙酰胆碱的积累，影响正常传 导，导致昆虫中毒致死的原理而设计。
如果蔬菜中不含有机磷和氨基甲酸酯类农药， 乙酰胆碱酯酶水解后，水解产物可与显色剂反 应产生颜色。
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速测卡法（纸片法）

玉米检测报告单1. 背景介绍玉米（学名：Zea mays）是一种重要的粮食作物，也是一种经济作物，广泛应用于动物饲料、食品加工、工业用途等领域。

为保证玉米的质量和安全性，进行玉米的检测是必要的。

本文档将介绍玉米检测的相关内容和结果。

2. 检测标准玉米的检测需要符合国家相关的标准和要求。

下面是一些常见的检测标准：•国家食品安全标准 GB2762-2017 玉米中赤霉素限量•国家食品安全标准 GB5009.34-2017 玉米中黄曲霉毒素限量•国家食品安全标准 GB23200-2018 玉米中农药最大残留限量3. 检测项目玉米的检测通常包括以下项目：3.1. 赤霉素检测赤霉素是一种自然存在于玉米中的激素，但过量的赤霉素会对人体健康造成一定的危害。

赤霉素的检测主要通过高效液相色谱法（HPLC）进行。

3.2. 黄曲霉毒素检测黄曲霉毒素是由黄曲霉菌产生的一类毒素，对人体有一定的毒性。

黄曲霉毒素的检测常使用液相色谱-质谱联用法（LC-MS/MS）或酶联免疫吸附测定法（ELISA）。

3.3. 农药残留检测玉米的种植过程中可能使用农药进行病虫害的防治，因此农药残留的检测也是重要的一项内容。

农药残留的检测方法多种多样，包括气相色谱法（GC）、液相色谱法（LC）等。

4. 检测结果根据以上的检测项目，对一批玉米的检测结果如下：•赤霉素含量：符合国家食品安全标准 GB2762-2017 的限量要求，未检出超标情况。

•黄曲霉毒素含量：符合国家食品安全标准 GB5009.34-2017 的限量要求，未检出超标情况。

•农药残留：符合国家食品安全标准 GB23200-2018 的农药最大残留限量要求，未检出超标情况。

5. 结论根据对该批玉米的多项检测结果分析，该批玉米符合国家相关标准的要求，可以安全使用于食品加工和饲料领域。

6. 建议为了确保玉米的质量和安全性，建议玉米生产企业加强对种植环境的管理，合理使用农药，并定期进行玉米的检测。

肥料中赤霉酸含量标准1.标题本标准规定了肥料中赤霉酸的含量要求、取样规则、试验方法以及判定规则等内容。

2.背景随着农业生产的发展，肥料在作物生长中的作用日益凸显。

赤霉酸作为一种植物生长调节剂，在肥料中起着调节作物生长、提高产量和改善品质的作用。

为了规范肥料市场，保障农民权益，制定本标准。

3.目的本标准的目的是规定肥料中赤霉酸的含量要求、取样规则、试验方法及判定规则，确保肥料中赤霉酸的有效含量及其稳定性，从而为农业生产提供可靠的保障。

4.范围本标准适用于含有赤霉酸成分的肥料，包括但不限于复合肥、掺混肥、有机肥等。

5.方法5.1取样规则：从每批次肥料中随机选取10个以上样品进行检测，每个样品重量不低于100克。

5.2试验方法：采用液相色谱法测定肥料中的赤霉酸含量。

具体步骤如下：(1)将肥料样品粉碎，过60目筛；(2)称取适量样品，加入甲醇溶液进行提取；(3)提取液进行过滤，滤液进行真空干燥；(4)干燥后的残渣用甲醇溶解，进行液相色谱分析；(5)根据色谱峰面积，计算赤霉酸的含量。

6.取样规则6.1取样人员应经过专业培训，具备取样知识和技能。

6.2取样时应选取有代表性的样品，确保样品数量足够，并详细记录取样地点、时间、批次等信息。

6.3取样后应及时进行试验，以保证样品的新鲜度和准确性。

7.试验方法按照第5章所述的试验方法进行操作，需注意的是，在进行液相色谱分析时，应使用适合的色谱柱和检测器，并根据具体的色谱条件进行参数设置。

此外，在试验过程中要进行空白试验和平行试验，以验证试验的准确性和可靠性。

8.判定规则根据第7章的试验结果，判定肥料中赤霉酸的含量是否符合本标准的要求。

如果肥料中赤霉酸的含量低于规定的最小值，则判定该肥料为不合格产品。

需要注意的是，判定结果应由专业人员进行审核和确认，以保证判定结果的准确性和公正性。

9.实施日期本标准自发布之日起生效实施日期可根据实际情况进行设定具体日期可参照相关法规或规定的要求进行设定。

专利名称：控制植物赤霉素合成和株型的基因突变位点检测引物和检测方法及应用
专利类型：发明专利
发明人：凌宏清,刘毅
申请号：CN202111666507.7
申请日：20211231
公开号：CN114182044A
公开日：
20220315
专利内容由知识产权出版社提供
摘要：控制植物赤霉素合成和株型的基因突变位点检测引物和检测方法及应用。

本发明首先公开了一个控制植物赤霉素合成和株型的基因突变位点，所述突变位点位于植物CPS基因的第2768位核苷酸，从鸟嘌呤(G)突变为腺嘌呤(A)，导致CPS蛋白Terpenesynth结构域中的第326位缬氨酸(V)突变成蛋氨酸(M)。

所述突变位点直接影响植物的赤霉素合成量及株型，所述位点突变会导致植物体内赤霉素含量低，株型矮化、丛生。

本发明还公开了用于检测该突变位点的引物以及检测方法，所述突变位点和引物在植物赤霉素合成量调节及株型改造的辅助选择育种，以及通过基因编辑该位点达到植物赤霉素合成量调节及株型改造的应用。

申请人：中国科学院遗传与发育生物学研究所,江西省中国科学院庐山植物园
地址：100101 北京市朝阳区北辰西路1号院2号
国籍：CN
代理机构：天津耀达律师事务所
代理人：侯力
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