PCR荧光检测试剂盒生产质控规程.doc
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PCR生产操作规程PCR(聚合酶链反应)是一种分子生物学技术,用于扩增特定的DNA序列。
PCR的操作过程需要严格控制条件,以保证反应的准确性和稳定性。
以下是PCR生产的操作规程:1. 实验室准备:- 确保实验室整洁干净,操作台面清洁无尘。
- 确保实验室内温度适宜,保持恒温状态。
- 准备PCR试剂盒,包括DNA模板、引物、逆转录酶、聚合酶、dNTPs等。
2. 样品处理:- 提取DNA样品时,要避免污染、降解和损伤。
- 使用无菌管、无菌试剂和消毒仪器,避免样品交叉污染。
3. PCR试剂配置:- 根据实验样品的数量和浓度,计算所需的试剂量。
- 试剂配置过程中要注意无菌操作和准确的配比,避免试剂误差。
4. 反应体系:- 根据实验需求进行不同的PCR反应设置,包括温控系统、反应管、引物和试剂的加入顺序等。
- 准备阳性和阴性对照样本,以检验PCR反应的准确性。
5. 反应条件:- 根据PCR扩增的要求,设置反应体系的温度、时间和循环次数等。
- 设置好PCR反应的温度曲线,包括变性、退火和延伸阶段,以保证扩增效果。
6. 仪器操作:- 启动PCR仪器前,确保设备完好、无异常情况。
- 设置好PCR仪器的程序和参数,包括温度梯度、循环次数、温度保持时间等。
- 监控PCR反应的过程,及时调整温度和时间等参数。
7. 结果分析:- PCR反应结束后,分析PCR产物的扩增结果。
- 使用电泳技术对PCR产物进行分析,观察扩增片段的大小和条带的强度。
- 对PCR结果进行解读,确认是否成功扩增目标DNA序列。
8. 结果记录和保存:- 将PCR结果记录在实验日志中,包括样品编号、反应条件、扩增结果等信息。
- 将PCR产物进行保存,可以冷冻保存或进行二次扩增和测序等后续实验。
9. 试剂和废弃物处理:- 将使用过的试剂垃圾按照规定的分类进行处理,尽量减少对环境的污染。
- 将废弃物进行消毒处理,避免有害生物的传播和污染。
10. 定期维护和检验设备:- 定期对PCR仪器进行检验和维护,确保其正常工作。
PCR荧光检测试剂盒生产质量控制规程一. 微量加样器的使用规定1.微量加样器校正:: 使用微量加样器吸10μl 10次是否为100μl。
2.加样前吸头润湿:当吸头排空时,仍会有一些残留的液体以薄膜的形式吸附在吸头里面,所以,在加样时先吸打液体数次,充分润湿吸头管腔,以保证加样的一致性。
3.加样时吸头应靠试管壁:加样时吸头的液体顺着管壁流出,防止液滴的形成由于其表面张力的作用而阻止样本的释放。
4.吸头是否与加样器上吸头套筒密封:样器上吸头与套筒密封完好。
5.加样时注意第一停点和第二停点:吸液是应注意大拇指按下按钮至第一停点,缓慢慢慢吸入液体。
停留1s,然后将吸头提离液面。
用吸纸抹去吸嘴外面可能黏附的液滴。
放液时经过第一停点,停1-2s后,继续按压到第二停点,排出残余液体。
6.PCR反应原液由于有甘油在冷的状态较黏稠,易于1次吸取数人份,慢一些。
7.边加边看,直观估计,防止跳管。
8.低温冷藏批量DNA提取液、PCR反应液A和B取出时是否充分混匀后,分装使用,PCR反应液A和B是否避光低温冷藏和使用。
9.配PCR反应液应先加缓冲液再加PCR反应液充分混匀,必要时倒置混匀,再离心,或用灭菌吸头上下吸几次。
10.PCR反应液(包括样品)应充分混匀:保证PCR反应曲线呈S形,全阴性样品呈近似水平曲线。
二.PCR试验操作规程**血清稀释液:全阴性血清再加2倍HBV DNA提取液混匀, 5000rpm,离心1分钟,混匀血清98℃ 5分钟变性,12000rpm,离心10分钟,吸取上清液。
三.超净工作台的使用、维护保养与清洁标准操作规程1.目的建立一个超净工作台的使用、维护保养与清洁标准操作程序,使操作过程标准化。
2.职责质量部QC负责本文件的起草,质量部及QC检验人员负责本标准的实施。
3.范围本标准适用于超净工作台的使用、维护和保养与清洁。
4.内容4.1超净工作台的主要组成部分:高效过滤器、中效过滤器、通风机、电气控制及排气管道部分。
试剂盒质量控制方案及流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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检测中心荧光定量PCR检测试剂盒验收细则1、目的规范了本中心荧光定量PCR检测试剂盒的验收方法,以确保检测试剂盒的质量符合检测技术的要求;确保检测结果的准确、有效。
2、使用范围适用于本中心荧光定量PCR检测试剂盒的验收。
3、职责由动物疫病监测室相关人员负责荧光定量PCR试剂盒的验收。
4、验收内容4.1 荧光定量PCR检测试剂盒选用规定荧光定量PCR检测试剂盒的选用以政府招标的方式进行,由具有相关资质的供应商提供试剂盒。
所提供的试剂盒的保质期必须在半年以上,否则予以退货。
每一批号检测试剂盒都必须进行验收,符合要求后方可使用4.2 验收标准及方法4.2.1 荧光定量PCR检测试剂盒的验收按照《H5亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法》(GB/T19438.2-2004)与《新城疫病毒中强毒株检测方法荧光RT-PCR法》(SN/T1686-2005)中的规定执行。
试剂盒中提供的试剂有荧光RT-PCR反应液、转录酶、反转录酶和Taq 酶。
验收指标就是使用试剂盒的反应体系,按照GB/T19438.2-2004中的反应程序,使质控阴性对照无Ct值且无扩增曲线;阳性对照Ct值≤30.0,且出现特定的扩增曲线。
4.2.2 主要使用仪器荧光定量PCR扩增仪,生物安全柜4.2.3 验收步骤按照GB/T19438.2-2004以及SN/T1686-2005中的规程对质控阴、阳性对照进行核酸提取,再进行荧光RT-PCR反应。
质控阴性对照无Ct值且无扩增曲线;阳性对照Ct值≤30.0,且出现特定的扩增曲线。
这两个参数同时满足,表明试剂盒符合要求,可以使用。
5、相关记录FNAJ/BG-B-406-05 日常采购(包括易耗品)验收记录表GB/T19438.2-2004 H5亚型禽流感病毒荧光RT-PCR检测方法SN/T1686-2005 新城疫病毒中强毒株检测方法荧光RT-PCR 法。
检测中心荧光定量PCR检测试剂盒验收细则一、引言荧光定量聚合酶链反应(PCR)是一种常用的分子生物学技术,广泛应用于医学、生物学和农业等领域。
在检测中心中,正确使用和验收PCR试剂盒对确保检测结果的准确性和可靠性至关重要。
本细则旨在规范检测中心对PCR试剂盒的验收工作。
二、验收前的准备工作1.阅读试剂盒说明书,了解试剂盒的基本信息、存储条件和使用方法。
2.确保试剂盒未过期,检查试剂盒上的生产日期和有效期限。
三、试剂盒物品清点1.打开试剂盒包装,对照说明书上的清单,确认试剂盒所含物品是否齐全。
2.检查试剂盒内的试剂、标准品和控制品的外观是否正常,如颜色、透明度、凝聚物等。
3.检查试剂盒内的试剂、标准品和控制品的容量是否符合标注要求,比较标贴上的容量和体积。
四、试剂盒存储条件和有效期检查1.检查试剂盒包装上的存储条件是否符合实验室的存储环境。
2.检查试剂盒上的有效期是否仍在有效期范围内,避免使用过期试剂进行实验。
五、试剂试验1.使用空白样品(无样本)进行试剂试验,检查试剂盒的表现如何。
2.检查试剂盒的放大效果,使用适当的阳性对照进行检测,并与实验室标准结果进行比对。
六、数据分析1.将试剂盒试验结果录入实验数据管理系统,并与试剂盒说明书和实验室标准结果进行比对。
2.检查试剂盒试验结果的准确性和可靠性,评估试剂盒在实验室中的适应性和性能。
七、实验记录1.记录试剂盒的验收日期、试验结果和验收结论。
2.如有问题或异常情况,记录并及时向上级主管报告。
八、试剂盒处置1.将已经使用完毕的试剂盒及时处理,按照实验室的废弃物管理规定进行处置。
2.未使用的试剂盒按照包装说明妥善保存,避免存放环境受潮、暴露于阳光直射等不良条件。
九、验收报告1.编写试剂盒验收报告,包括试剂盒信息、试验结果和验收结论等内容。
2.将验收报告归档并交由实验室主管保存。
总结:以上是对检测中心荧光定量PCR检测试剂盒的验收细则进行规范的一份详细说明。
PCR质量控制2022.3PCR质量控制2022.31. 引言PCR(Polymerase Chn Reaction)是一种用于扩增DNA的重要技术,广泛应用于份子生物学研究、基因工程、疾病诊断等领域。
然而,在PCR实验中,质量控制是至关重要的,惟独保证PCR反应的可靠性和准确性,才干得到可靠的实验结果。
本文将介绍PCR质量控制的基本原则和常用方法。
2. PCR质量控制的基本原则PCR质量控制的基本原则包括以下几个方面:2.1 实验室环境准备PCR实验室应具备洁净、无菌的条件,防止外部污染对PCR反应的影响。
实验室应定期消毒,保持干净整洁,同时应采取适当的空气过滤措施,避免空气中存在的DNA污染。
2.2 试剂的质量控制在进行PCR实验前,必须对所有试剂进行质量控制。
首先,确保DNA模板的纯度和浓度合适,可以通过比色法、琼脂糖凝胶电泳等方法检测DNA的纯度和完整性。
此外,引物和酶也应检测其质量,确保其纯度和活性。
2.3 实验设计与优化PCR实验设计应合理,考虑到引物的选择、浓度的优化、扩增条件的调整等因素。
特殊是引物的设计,应保证其特异性和互补性,减少非特异性扩增的发生,避免产生虚假阳性结果。
2.4 防止交叉污染PCR实验过程中,交叉污染是一个常见的问题,可能导致假阳性结果。
为了避免交叉污染,应在每一个PCR反应中设立空白对照,即无模板的反应管,与样品一同处理。
同时,应采取严格的操作措施,如使用专用的操作工具、分装试剂避免交叉污染等。
3. PCR质量控制的常用方法PCR质量控制的常用方法主要包括以下几个方面:3.1 琼脂糖凝胶电泳检测琼脂糖凝胶电泳是一种常用的质量控制方法,可以检测PCR产物的大小和纯度。
通过与标准DNA片段进行比较,可以确定PCR扩增产物是否正确,同时还可以检测是否存在非特异性扩增。
3.2 实时荧光定量PCR(qPCR)实时荧光定量PCR(qPCR)可以进行精确的定量检测,并实时监测PCR反应的进程。
医院PCR实验室室内质控标准操作程序医院PCR实验室室内质控标准操作程序1 ⽬的随时了解并控制实验室检测的精密度变化。
2 适⽤范围核酸扩增荧光定量检测实验室,其中包括使⽤Roche LightCycler定量PCR仪的实验室。
3 操作⼈XXX4 操作步骤4.1 ⾃制⾎清质量控制品a)⾃制的质量控制⾎清来⾃临床收集的已知HBV阳性⾎清,每收集到⼀份冻存于-20℃。
b)预定室内质控品靶值为1×106copies/ml,总量20ml,计算各份⾎清的混合量。
c)室温下复融质控⾎清,按⽐例混合⾎清,充分混匀。
d)⽤0.5ml离⼼管盛装质控⾎清,每管100µl,分装100管,剩余⾎清根据废弃物处理及⽣物防护操作程序处理。
e)每10管质控品装⼀⼩袋,可分成10⼩袋。
1⼩袋置于-20℃冰箱,其余9⼩袋置于-80℃超低温冰箱,⽤完1⼩袋,就从-80℃转移1⼩袋质控品到-20℃冰箱备⽤。
4.2 测定及计算RCV取准备⽤于下⼀阶段室内常规室内质量控制的⾎清,每天随病⼈标本测定⼀管,20天后计算各项⽬的测定结果的 X、s和CV。
此处的CV即RCV。
RCV的计算公式如下:其中X为RCV测定中所得20份结果的均值。
∑表⽰总和。
n表⽰结果的份数(或天数)。
其中各符号所代表的含义与X计算公式相同。
n-1为⾃由度。
S计算也可以使⽤下⾯的公式其中∑X2为各检测结果平⽅值之总和。
(∑X)2为各检测结果之和的平⽅。
4.3 绘制RCV图a)计算X+2s、X-2s、X+3s、X-3s并在纵坐标上标出的X、X+2s、X-2s、X+3s、X-3s的位置,并将其具体数值标在左侧标尺上。
b)⽤红笔画出X±2s线,⽤蓝笔画出X±3s线,即成为⼀张“空图”。
其中每⼀⼩格代表实际检测数值的1/10。
还应填齐图纸上⽅的各项,如:试验项⽬,质控⾎清来源及批号,起⽌⽇期,主要仪器等。
还应填上RCV中测定中所得的X、s、CV。
检测中心荧光定量PCR检测试剂盒验收细则
一、科学选材
1.测序级合成核苷酸:合成产品应经全长光谱比色检测,确认无肽键
断和错义残基;
2.反应相关试剂:应经分子生物学检测,确认无污染情况;
3.其他活性物质:无反应性活性物质,可保证活性物质以及荧光活性
物质的稳定性;
4.荧光活性物质:其荧光活性物质的滴度必须稳定,没有偏离正常谱
线的情况;
5.合成核苷酸扩增片段:应确保试剂盒所使用的合成核苷酸扩增片段
的序列准确性及效率;
6.唯一性:检测试剂中所用活性物质的唯一性,比如它的荧光量子产
量在一些符合的范围内,可保证检测试剂的性能稳定,可以准确检测出检
测物质;
二、检测实验
1.合成核苷酸的检测:应在实验所用的检测试剂中检测它的质量,通
过GC/MS、全长光谱比色法,检测出来的结果要符合产品质量要求;
2.反应相关试剂的检测:通过分子生物学检测,检测每种试剂的活性,并定量测定;
3.荧光活性物质的检测:确保各种荧光活性物质的谱线分布正常,以
及它们的滴度稳定,没有异常偏移的情况;
4.核苷酸扩增片段的检测:通过质控检测,确保序列的准确性和扩增片段的效率;。
pcr实验室质量控制流程英文回答:Quality control is an essential part of any PCR laboratory workflow. It ensures that the results obtained from PCR experiments are accurate, reliable, and reproducible. In this article, we will discuss the quality control process in a PCR laboratory.1. Equipment and reagent verification:Before starting any PCR experiment, it is crucial to verify the performance of the equipment and reagents used. This includes checking the functionality of the thermal cycler, ensuring the accuracy of pipettes, and confirming the integrity and quality of the PCR reagents.中文回答:质量控制是PCR实验室工作流程中至关重要的一部分。
它确保从PCR实验中获得的结果准确、可靠且可重复。
在本文中,我们将讨论PCR实验室中的质量控制流程。
1. 设备和试剂验证:在开始任何PCR实验之前,验证所使用的设备和试剂的性能非常重要。
这包括检查热循环仪的功能,确保移液器的准确性,并确认PCR试剂的完整性和质量。
英文回答:2. Positive and negative controls:One of the key steps in PCR quality control is the inclusion of positive and negative controls. Positive controls contain the target DNA sequence, and their amplification serves as a validation of the PCR reaction. Negative controls, on the other hand, do not contain the target DNA sequence and should not produce any amplification. These controls help identify contaminationor other issues that may affect the accuracy of the results.中文回答:2. 阳性和阴性对照:PCR质量控制的关键步骤之一是包含阳性和阴性对照。
PCR荧光检测试剂盒生产质量控制规程一 . 微量加样器的使用规定1.微量加样器校正: : 使用微量加样器吸10μl10 次是否为 100μl。
2.加样前吸头润湿:当吸头排空时,仍会有一些残留的液体以薄膜的形式吸附在吸头里面,所以,在加样时先吸打液体数次,充分润湿吸头管腔,以保证加样的一致性。
3.加样时吸头应靠试管壁:加样时吸头的液体顺着管壁流出,防止液滴的形成由于其表面张力的作用而阻止样本的释放。
4.吸头是否与加样器上吸头套筒密封:样器上吸头与套筒密封完好。
5.加样时注意第一停点和第二停点:吸液是应注意大拇指按下按钮至第一停点,缓慢慢慢吸入液体。
停留 1s,然后将吸头提离液面。
用吸纸抹去吸嘴外面可能黏附的液滴。
放液时经过第一停点,停 1-2s 后,继续按压到第二停点,排出残余液体。
6.PCR反应原液由于有甘油在冷的状态较黏稠,易于 1 次吸取数人份,慢一些。
7.边加边看 ,直观估计 ,防止跳管。
8.低温冷藏批量 DNA 提取液、 PCR反应液 A 和 B 取出时是否充分混匀后 , 分装使用, PCR反应液 A 和 B 是否避光低温冷藏和使用。
9.配 PCR反应液应先加缓冲液再加 PCR反应液充分混匀 ,必要时倒置混匀 , 再离心 ,或用灭菌吸头上下吸几次。
10.PCR反应液(包括样品)应充分混匀:保证 PCR反应曲线呈 S 形,全阴性样品呈近似水平曲线。
二. PCR试验操作规程程序操作检查操作1 混匀方法每一次提醒注意倒置混匀、移液器吹打、震荡, 50000rpm离心 1 分钟。
2 取血清样本1)因水分蒸发变浓按(1 )法混匀 ,再取 25μ l 加水 5μ l 混匀。
2)冻状、混浊温水浴37℃溶解按(1)法混匀,或12000rpm 离心 5 分钟,取清液。
3取质控品冻状、混浊温水浴37℃溶解按(1)法混匀或12000rpm 离心 5 分钟,取清液。
4 血清样本稀释混匀血清阴性血清 40μ l 加阳性血清10μ l,按(1)法混匀。
5 倍稀释5 质控品稀释混匀质控品血清稀释液 40μ l 加质控品10μ l,按(1)法混匀 5 倍稀释。
6 血清样本 DNA 提DNA 提取液完好血清样本按( 1)法混匀,取 30μ l 加 DNA取提取液 60μ l,按( 1)法混匀, 98℃ 8分钟变性 , 0℃冷却 2-3 分钟, 12000rpm ,离心 10 分钟 ,吸取上清液。
7 质控品 DNA 变性分装,有效,呈清液质控品按( 1)法混匀,取30μ l5000rpm状态,未反复加热、离心 1 分钟, 98℃ 5 分钟变性 ,5000rpm ,冻融离心 1 分钟 ,吸取上清液。
8 PCR反应液混匀状态取 25μ l 反应液加 5μ l 提取 DNA,按(1)法混匀,5000rpm 离心 1 分钟, 5000rpm ,离心 1 分钟 ,吸取上清液。
9 PCR反应室温 10-30 ℃PCR反应槽四角不放管。
10 设阴性对照阴性混匀血清CT〉 3811 阳性参考品各浓度呈梯度以 PCRA反应液制作标准曲线,呈直线。
12 阴性质控品 B 各浓度呈梯度以 PCRA和 B 反应液制作标准曲线,呈直线。
**血清稀释液:全阴性血清再加 2 倍 HBV DNA提取液混匀 , 5000rpm,离心 1 分钟,混匀血清 98℃ 5 分钟变性 ,12000rpm,离心 10 分钟 ,吸取上清液。
三 .超净工作台的使用、维护保养与清洁标准操作规程1.目的建立一个超净工作台的使用、维护保养与清洁标准操作程序,使操作过程标准化。
2.职责质量部 QC 负责本文件的起草,质量部及QC 检验人员负责本标准的实施。
3.范围本标准适用于超净工作台的使用、维护和保养与清洁。
4.内容超净工作台的主要组成部分:高效过滤器、中效过滤器、通风机、电气控制及排气管道部分。
安放点的选择:4.2.1 应安放于卫生条件较好的地方,便于清洁,门窗能够密封以避免外界的污染空气对室内的影响。
4.2.2 安放位置应远离有震动及噪音大的地方。
4.2.3 严禁安放在产生大尘粒及气流大的地方,以保证操作区空气的正常流动。
使用前的检查:4.3.1 接通超净工作台的电源。
4.3.2 旋开风机开关,使风机开始正常运转,这时应检查高效过滤器出风面是否有风送出。
4.3.3 检查照明及紫外设备能否正常运行,如不能正常运行则通知工程部检修。
4.3.4 工作前必须对工作台周围环境及空气进行超净处理,认真进行清洁工作,并采用紫外线灭菌法进行灭菌处理。
4.3.5 净化工作区内严禁存放不必要的物品,以保持洁净气流流动不受干扰。
使用:4.4.1 使用工作台时,先经过清洁液浸泡的纱布擦拭台面,然后用消毒剂擦拭消毒。
4.4.2 接通电源,提前 50 分钟打开紫外灯照射消毒,处理净化工作区内工作台表面积累的微生物,30 分钟后,关闭紫外灯,开启送风机。
4.4.3 工作台面上,不要存放不必要的物品,以保持工作区内的洁净气流不受干扰。
4.4.4 操作结束后,清理工作台面,收集各废弃物,关闭风机及照明开关,用清洁剂及消毒剂擦拭消毒。
4.4.5 最后开启工作台紫外灯,照射消毒30 分钟后,关闭紫外灯,切断电源。
4.4.6 每二月用风速计测量一次工作区平均风速,如发现不符合技术标准,应调节调压器手柄,改变风机输入电压,使工作台处于最佳状况。
4.4.7 每月进行一次维护检查,并填写维护记录。
清洁4.5.1 每次使用完毕,立即清洁仪器,悬挂标识,并填写仪器使用记录。
4.5.2 取样结束后,先用毛刷刷去洁净工作区的杂物和浮尘。
4.5.3 用细软布擦拭工作台表面污迹、污垢目测无清洁剂残留,用清洁布擦干。
4.5.4 要经常用纱布沾上酒精将紫外线杀菌灯表面擦干净,保持表面清洁 , 否则会影响杀菌能力 .4.5.5 效果评价 :设备内外表面应该光亮整洁,没有污迹。
四 .检验方法操作规范1.混匀:反应液混匀,按人份量取出,加样,再混匀后 5000 rpm 离心数秒 (按原说明进行 )。
2.准确:反应液及样本混匀后,每一步加样准确 (按原说明进行 )。
3.新鲜血清样本:血清样本混匀后离心( 5000 rpm 离心数秒),取 30μl,加2 倍量 DNA 提取液 60μ l 混匀 100℃ 8--9 分钟变性,放置冰箱 0℃冷却 2-3 分钟 , 12000rpm 离心 5 分钟,取出全部上清液置另 1 管混匀,再取 5μl 加样。
4.长期放置冰箱冷藏血清样本:取 25μl,加无菌水 5μl 加 2 倍量 DNA 提取液 60μl 混匀 98℃ 8--9 分钟变性,放置冰箱 0℃冷却 2-3 分钟 , 12000rpm 离心5 分钟,取出全部上清液置另 1 管混匀,再取 5μ l 加样 .5.DNA提取液处理并冷藏保存血清样本:DNA 提取液处理:血清样本混匀,取 200μl,加 DNA 提取液 400μl 混匀 98℃5 分钟变性,放置冰箱 0℃冷却 2-3 分钟 , 12000rpm 离心 5 分钟,取出全部上清液置另 1 管混匀,冷藏保存,按 100μl / 管分装冷藏保存 .保存血清样本使用:取 1 管分装冷藏保存血清样本,融化后混匀, 5000 rpm 离心数秒,再取 30-40μl 98℃ 5-6 分钟变性,放置冰箱 0℃冷却 2-3 分钟 , 5000 rpm 离心数秒,再取 5μ l 加样 .6.质粒 DNA 有关质控品( P 和 N):用全阴性血清与质粒 DNA 按 9:1 混匀 , 5000rpm,离心 1 分钟 ,再加 2 倍 HBV DNA提取液混匀 , 5000rpm,离心 1 分钟,混匀血清 98℃ 5 分钟变性 ,12000rpm,离心 10 分钟 ,吸取上清液 , 取出全部上清液置另 1 管混匀,冷藏保存,按 100μl / 管分装冷藏保存 .有关质控品使用:取 1 管分装冷藏保存质控品,融化后混匀, 5000 rpm 离心数秒,再取 30-40μ l 98℃ 5-6 分钟变性,放置冰箱 0℃冷却 2-3 分钟 , 5000 rpm离心数秒,再取5μ l 加样 .五 .防止荧光定量 PCR产物污染的质控规程1.目的规范荧光定量PCR实验和生产的操作过程,确保操作过程中无PCR产物污染。
2.适用范围本规范适用于荧光定量 PCR实验和生产的操作过程。
该规程参照中华人民共和国《艾滋病核酸检测技术规范》。
3.职责划分操作人员按照此标准操作规范进行荧光定量PCR实验和生产,质检部经理负责监督。
4.质量保证体系实验室和生产工作区质控体系4.1.1 实验室和生产工作区原则上应分为四个独立工作区,分别是试剂准备区 (GMP 车间超净工作室 )、样品处理区(质检室 1)、扩增区(质检室 2)和扩增产物分析区(质检室 3)。
前两区为扩增前区,后两区为扩增后区。
各区的功能是:(1)样品处理区:样品登记、分装。
各种组织匀浆或细胞裂解,进行核酸提取、保存和加样。
( 2)试剂准备区: PCR扩增试剂的配制、分装和保存。
(3)扩增区:普通 PCR扩增及荧光定量PCR扩增。
(4)扩增产物分析区: PCR扩增产物的电泳、杂交、成像、测定、结果分析、报告。
4.1.2 用有效的方法对操作区域和共用器具在实验前后进行清洁及消毒推荐的程序是:a. 实验前将次氯酸钠溶液或70%乙醇涂布于操作台或器具表面,两分钟后用纸巾擦除。
b.移入盛放污染材料的器皿、所需的试剂、耗材和样品,进行试验。
c.一个实验区域在同一时间段只进行一种实验。
d.实验结束后移出个人专用材料至个人专用区域保管;封好污染材料盛放器皿并移出至污物袋;移出共用器具至专门区域保管;将次氯酸钠溶液或70%乙醇涂布于操作台或器具表面,两分钟后用纸巾擦除;打开紫外灯照射至少15 分钟。
4.1.3 实验工作区内必须穿好实验工作服,并戴口罩,进行实验操作时根据要求戴不同规格的手套。
4.1.4 PCR产物分析使用相对封闭的系统或共用分析软件时,如特定的凝胶成像分析检测系统及分析软件或荧光定量PCR仪及分析软件,每位实验人员都要准确的命名自己的设置程序及分析结果,使用完毕后需收拾好所用的仪器并保存好自己的实验分析结果。
4.1.5 各区域的仪器、设备、器具和试剂应为该区专用,不得交叉使用。
荧光定量 PCR扩增实验过程控制体系:4.2.1 样品的采集和处理4.2.1.1 用于普通 PCR或荧光定量 PCR检测的样品有细胞、全血、血浆、各种组织和其他分泌物,有时还包括生物制品。
4.2.1.2 采集样品应避免微生物和核酸污染(所用器皿必须无菌或属于一次性用品, RNA类样品所用器皿必须没有RNA酶污染)。
4.2.1.3 处理样品应在样品处理区由专人进行。