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实验一家禽解剖实验一、试验目的：通过对鸡的解剖，了解和认识健康家禽的外观、皮肤、各个脏器所处的位置、脏器的外形、颜色、脏器的组织结构，以及家禽各部位的淋巴结等，为进一步进行动物检验打下实践基础。
二、实验材料：以市场上购买的健康、宰杀去毛后的光鸡作为解剖对象。
三、实验用具：不锈钢盆、解剖刀、解剖剪、照相机（自备）。
四、实验步骤：1、颈部淋巴结：先将颈部皮肤延纵径解开、剥落，观察颈部皮下淋巴结，观察食管、气管和嗉囊。
仔细观察所处位置、颜色、外形、结构，必要时剪开观察内部状况。
并用相机拍照。
2、内脏：先延纵线剪开腹部，再剪开胸部肌肉，最后剪开胸骨，向两边拨开，观察各个脏器、淋巴结，并拍照。
注意观察其所处位置、颜色、外形、结构，必要时剪开观察内部状况。
3、内脏观察内容：心、肝、脾、肺、肾、肌胃、腺胃、胆囊、胰腺、卵巢、输卵管、肠道等。
五、实验结果列表说明所观察内容的颜色、外形、内部结构，并附上图片。
最好带上分析和自己的看法。
（仅供参考）淋巴结：圆形或卵圆形食管：从口腔通至腺胃肠，白色软质肌质管气管：从咽喉通至肺部白色由多个软骨环组成嗉囊：与食道并行，不进入体腔白色膨大部，具有伸缩性，，内部暂时贮存食物2、内脏心位于胸腔的后下方，夹于肝脏两叶之间红褐色圆锥形，肝位于腹腔前下方，浅巧克力色较大，分左右两大叶。
脾位干腺胃右侧。
红褐色，较小，呈圆形，肺紧贴于胸腔，嵌入肋骨之间，并与气囊相通。
浅红色能运动缩张，背侧有肋沟，腹侧光滑肾位于脊椎两侧，嵌于椎骨和额骨形成的凹窝处，呈红褐色，质软而脆，鸡肾分叶，即前、中、后三个肾叶。
肌胃腺胃胆囊胰腺卵巢输卵管肠道讨论（李忠晓 200630610313）在鸡病的诊疗过程中,解剖具有直观、简便、快速、费用低廉的特点。
鸡群发生异常时,早发现、早诊断、早治疗是控制疾病蔓延的有效措施,而快速诊断尤为重要。
1 解剖时的注意事项1．1要注意个人防护,重点是手与口的防护,就是戴口罩与戴手套,穿好工作服或防护服,解剖后还要注意手的消毒与清洁。
实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项[取材内容]大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。
[试剂及药品]戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液[器材]备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、1.5ml 、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐[取材动物]大鼠[取材步骤]1. 取材前夜禁食，自由饮水。
2. 小鼠称重，按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。
3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴，另外三个手指抓住大鼠的颈部，使大鼠头部向向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
右手持注射器，从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入，动作轻柔，缓慢注射。
注射完药物后，缓缓拔出针头，手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩，促进麻醉药物的吸收，掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。
4.将小鼠四肢固定于解剖台上，暴露小鼠整个胸部和腹部，修剪去腹部毛发，75%酒精消毒。
5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突，向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织，暴露腹壁浅肌层。
沿白线钝性分离腹壁肌肉，剪开腹膜，暴露腹腔，将肝脏向上翻起，显露肝门。
6.门静脉血采集：将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉，抽取门静脉血2ml，无创血管夹夹闭门静脉止血。
将抽取门静脉血加入一次性离心管低温静置过夜，4℃离心，3000-3500/min，10分钟，吸出上清液，分装，-80摄氏度保存备用。
常用实验动物的了解和解剖器械的使用一、常用实验动物常用的实验动物有蟾蜍、小白鼠、大白鼠、豚鼠、猫、兔和狗等。
在医学实验中，常常根据不同的实验目的而选用不同的动物进行实验研究。
例如，蟾蜍可以用于观察离体心脏搏动情况的实验，小白鼠常用于样本很大的实验(如药物的半数致死量的测定等)，猫常用于测定脑内电位的实验，而狗是局解手术中常用的实验动物。
在我们细胞生物学实验中，除应用培养细胞外，最常用的动物是蟾蜍和小白鼠，下面对其特点及基本处置做一简单的介绍。
蟾蜍蟾蜍是两栖类动物，由于其取材方便，常用于各种实验。
其细胞较哺乳类动物的细胞大得多，因此常用于观察细胞形态的实验。
1．雌雄鉴别通常雄性蟾蜍较雌性的为小，且在其前肢的l～3趾基部有被称为婚垫的黑疣。
2．捉拿及处死方法：常用捣髓法处死蟾蜍，即用解剖针捣毁其脑组织和脊髓。
具体方法是，左手握住蟾蜍的身体和四肢，使其腹部贴着掌心，食指压住蟾蜍头部前端使其尽量腹屈。
在头与躯干之间可触及一凹陷(即枕骨大孔所在处)，右手持解剖针直插入此凹陷约l～2mm，随即将针尖转向头侧插入颅腔捣毁脑组织。
然后将解剖针抽回并转向尾侧刺入脊椎管内捣毁其脊髓。
如此直至其四肢松软，呼吸消失为止。
小白鼠小白鼠是哺乳动物，是最为常用的实验动物。
1．捉拿方法：将小白鼠放在鼠笼盖铁网上，用右手持其尾巴向后拉，小鼠则会尽力向前蹬。
用左手的拇指和食指抓住其头顶部皮肤，然后用左手小指与手掌之间夹住其尾巴。
2．处死方法：处死应以安乐死为原则，即使之无痛苦而迅速死亡。
常用的方法有颈椎脱位法，断头法和二氧化碳吸入法等。
断头法需用特殊的断头器，二氧化碳吸入法则将小鼠放入盛有二氧化碳的容器内即可。
颈椎脱位法的具体方法是：左手拇指和食指按住小白鼠的头部，左手捉住其尾巴迅速向后猛拉，使其颈椎脱位而立即死亡。
一、实验目的1. 通过对动物内脏的解剖，了解动物内脏器官的结构和功能。
2. 培养观察和识别动物内脏器官的能力。
3. 学习和掌握动物解剖的基本方法和技巧。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：小白鼠（雄性）2. 实验器材：解剖盘、手术刀、解剖剪、镊子、解剖针、解剖针头、解剖放大镜、解剖图谱、生理盐水、75%酒精、碘酒、消毒棉签等。
三、实验步骤1. 解剖准备：将小白鼠处死，然后用生理盐水洗净其体表，置于解剖盘上。
2. 观察外形：仔细观察小白鼠的外形，了解其头、颈、躯干、四肢、尾等部位的结构。
3. 解剖皮肤：用手术刀在小白鼠的腹部做一横切口，用解剖剪剪开皮肤，暴露出腹部肌肉。
4. 解剖肌肉：沿腹中线切开肌肉，用镊子将肌肉向两侧轻轻拉开，暴露出内脏器官。
5. 观察内脏器官：- 消化系统：观察胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊、胰腺等器官的位置、形态和结构。
- 呼吸系统：观察气管、支气管、肺等器官的位置、形态和结构。
- 循环系统：观察心脏、血管等器官的位置、形态和结构。
- 泌尿系统：观察肾脏、输尿管、膀胱等器官的位置、形态和结构。
- 生殖系统：观察睾丸、卵巢、输卵管、子宫等器官的位置、形态和结构。
6. 观察血管和神经：用解剖放大镜观察血管和神经的分布情况，了解其与器官的连接关系。
7. 解剖完毕：将内脏器官按顺序摆放好，用碘酒和酒精消毒，然后进行清洗和干燥处理。
四、实验结果1. 消化系统：小白鼠的消化系统由胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊、胰腺等器官组成。
胃呈囊状，小肠分十二指肠、空肠和回肠，大肠分盲肠、结肠和直肠，肝脏呈红褐色，胆囊呈囊状，胰腺呈粉红色。
2. 呼吸系统：小白鼠的呼吸系统由气管、支气管和肺组成。
气管呈管道状，支气管呈树枝状，肺呈海绵状。
3. 循环系统：小白鼠的循环系统由心脏、血管组成。
心脏呈红色，分为四个腔室，血管呈管状，分布全身。
4. 泌尿系统：小白鼠的泌尿系统由肾脏、输尿管、膀胱组成。
肾脏呈红褐色，输尿管呈管状，膀胱呈囊状。
第1篇一、实验目的1. 熟悉动物内脏的结构和功能。
2. 掌握动物内脏标本的制作方法。
3. 通过观察动物内脏标本，加深对动物解剖学知识的理解。
二、实验原理动物内脏标本的制作是通过对动物内脏进行解剖、清洗、固定、染色等步骤，使其保持原有的形态和结构，便于观察和研究。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：小白鼠（或其他实验动物）、解剖刀、剪刀、镊子、解剖板、解剖针、生理盐水、福尔马林、酒精、石蜡、切片机、显微镜等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、显微镜、投影仪、数码相机等。
四、实验步骤1. 解剖小白鼠：在解剖显微镜下，沿小白鼠腹中线切开皮肤，分离肌肉，暴露内脏器官。
2. 清洗内脏：用生理盐水清洗内脏，去除血液和杂质。
3. 固定内脏：将清洗干净的内脏放入福尔马林溶液中浸泡24小时，使内脏固定。
4. 染色：取出固定的内脏，用苏木精-伊红染色液染色，使内脏结构更加清晰。
5. 切片：将染色后的内脏进行切片，切片厚度为5-10微米。
6. 观察：在显微镜下观察切片，观察内脏器官的形态、结构、功能等。
五、实验结果与分析1. 心脏：心脏由心肌构成，分为四个腔室：左心房、左心室、右心房、右心室。
心脏是血液循环的动力器官，负责将血液泵送到全身各个部位。
2. 肺：肺由肺泡和支气管组成，是呼吸系统的主要器官，负责氧气的吸入和二氧化碳的排出。
3. 肝脏：肝脏是人体最大的实质性器官，具有代谢、解毒、储存、分泌等功能。
4. 胃：胃是消化系统的重要器官，负责储存和消化食物。
5. 肠道：肠道是消化系统的主要器官，负责吸收营养和水分，排出废物。
六、实验讨论1. 通过本次实验，我们了解了动物内脏的结构和功能，加深了对动物解剖学知识的理解。
2. 在实验过程中，我们掌握了动物内脏标本的制作方法，为后续的学习和研究奠定了基础。
3. 实验过程中，需要注意以下几点：- 操作要轻柔，避免内脏器官损伤。
- 清洗内脏时要彻底，去除血液和杂质。
- 固定内脏时要充分，确保内脏保持原有形态。
一、实验目的1. 学习小鼠解剖技术；2. 观察小鼠肝脏的结构；3. 掌握肝脏取样的方法。
二、实验原理小鼠肝脏是重要的解毒器官，具有代谢、储存、合成等多种功能。
通过解剖小鼠，观察其肝脏的结构，有助于了解肝脏的生理功能和病理变化。
三、实验材料1. 实验动物：成年小鼠；2. 实验仪器：解剖盘、剪刀、镊子、解剖针、解剖刀、注射器、生理盐水、酒精、碘酒、消毒纱布、载玻片、显微镜等；3. 实验试剂：肝素钠、甲醛、酒精、碘酒等。
四、实验步骤1. 实验动物处死：采用颈椎脱位法处死小鼠，处死过程中注意动作轻柔，避免动物挣扎。
2. 解剖皮肤：将小鼠尸体置于解剖盘上，用剪刀剪开腹部皮肤，暴露腹壁肌肉。
3. 分离腹壁肌肉：用剪刀剪断腹壁肌肉，暴露腹腔器官。
4. 观察肝脏：观察小鼠肝脏的位置、大小、颜色、形状等。
5. 肝脏取样：用解剖针在肝脏上刺一个小孔，插入注射器抽取肝素钠生理盐水，冲洗肝脏，使肝脏表面无血液。
再用剪刀将肝脏剪成小块，放入装有甲醛的容器中固定。
6. 肝脏切片：将固定好的肝脏取出，用刀片切成薄片，放置在载玻片上。
7. 肝脏染色：用碘酒染色肝脏切片，然后用显微镜观察。
8. 数据记录：记录肝脏的位置、大小、颜色、形状等特征。
五、实验结果与分析1. 肝脏位置：小鼠肝脏位于腹腔右侧，呈红褐色，质地柔软。
2. 肝脏大小：小鼠肝脏长约2-3cm，宽约1-2cm。
3. 肝脏颜色：小鼠肝脏呈红褐色，表面光滑。
4. 肝脏形状：小鼠肝脏呈不规则形，边缘有锐角。
5. 肝脏显微镜观察：肝脏细胞排列紧密，肝细胞呈多边形，有明显的细胞核。
六、实验结论通过本次实验，我们成功解剖了小鼠，观察了小鼠肝脏的结构，掌握了肝脏取样的方法。
实验结果表明，小鼠肝脏位于腹腔右侧，呈红褐色，质地柔软，具有代谢、储存、合成等多种功能。
七、实验讨论1. 在解剖过程中，注意动作轻柔，避免动物挣扎，以免影响实验结果。
2. 肝脏取样时，注意使用肝素钠生理盐水冲洗肝脏，以防止血液污染。
一、实验目的1. 掌握小鼠肝脏的解剖位置。
2. 学习小鼠肝脏的取材方法。
3. 了解肝脏在生物研究中的应用。
二、实验原理肝脏是人体最大的实质性器官，具有代谢、解毒、储存等功能。
在生物研究中，肝脏常作为研究对象，用于观察药物、毒素等对肝脏的影响。
本实验通过解剖小鼠，取出肝脏，为后续实验提供材料。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康小鼠2只2. 仪器：解剖剪、镊子、解剖盘、解剖针、解剖剪、解剖刀、解剖镜、解剖生理盐水、生理盐水、75%酒精、10%福尔马林固定液四、实验步骤1. 将小鼠置于解剖盘上，用解剖剪剪开小鼠的颈部皮肤，暴露出气管和血管。
2. 用解剖针挑破气管，用镊子轻轻拉出气管，使小鼠呼吸停止。
3. 用解剖剪剪断气管，使小鼠血液流出。
4. 用解剖剪剪开小鼠的腹腔，暴露出肝脏。
5. 用解剖剪剪断肝脏周围的血管，取出肝脏。
6. 将肝脏放入生理盐水中清洗，去除血污。
7. 将肝脏放入75%酒精中浸泡，防止细菌感染。
8. 将肝脏放入10%福尔马林固定液中固定，待后续实验使用。
五、实验结果与分析1. 通过解剖操作，成功取出小鼠肝脏。
2. 肝脏呈红褐色，质地较软，具有弹性。
3. 肝脏位于腹腔右侧，上方与膈肌相连，下方与胃、小肠相邻。
六、实验讨论1. 在解剖过程中，应尽量减少对小鼠的损伤，以免影响实验结果。
2. 肝脏在生物研究中具有重要意义，可用于观察药物、毒素等对肝脏的影响，以及研究肝脏的代谢、解毒等功能。
3. 本实验成功取出小鼠肝脏，为后续实验提供了材料。
七、实验总结通过本次实验，我们掌握了小鼠肝脏的解剖位置和取材方法。
在实验过程中，应注意操作规范，减少对小鼠的损伤。
肝脏在生物研究中具有重要意义，本实验为后续实验提供了基础材料。
实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项本页仅作为文档封面，使用时可以删除This document is for reference only-rar21year.March实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项[取材内容]大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。
[试剂及药品]戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液LP 或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液[器材]备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐[取材动物]大鼠[取材步骤]1. 取材前夜禁食，自由饮水。
2. 小鼠称重，按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。
3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴，另外三个手指抓住大鼠的颈部，使大鼠头部向向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
右手持注射器，从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入，动作轻柔，缓慢注射。
注射完药物后，缓缓拔出针头，手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩，促进麻醉药物的吸收，掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。
4.将小鼠四肢固定于解剖台上，暴露小鼠整个胸部和腹部，修剪去腹部毛发，75%酒精消毒。
5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突，向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织，暴露腹壁浅肌层。
沿白线钝性分离腹壁肌肉，剪开腹膜，暴露腹腔，将肝脏向上翻起，显露肝门。
6.门静脉血采集：将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉，抽取门静脉血2ml，无创血管夹夹闭门静脉止血。
