缓冲液的配制方法
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常见缓冲液配制方法
一、介绍
缓冲液是常见的生物或化学反应的催化剂,主要用于维持反应物的酸
碱度在一定的范围内,有利于提高反应效率。
缓冲液有许多种,其配制方
法也多种多样。
下面将介绍常见缓冲液的配制方法,包括常用缓冲液的配
制方法,复合缓冲液的配制方法,以及常见的国际标准缓冲液的配制方法。
二、常用缓冲液的配制方法
1、磷酸缓冲液的配制
磷酸缓冲液是常用的酸性缓冲液,可以根据需要使用不同浓度的磷酸
来配制。
比如,将0.2mol/L的磷酸钠和0.2mol/L的磷酸氢钠混合,可以
得到一种磷酸缓冲液,其碱度为pH7.0。
同样,如果需要制备一种低碱度
的磷酸缓冲液,可以将3mol/L的磷酸钠和3mol/L的磷酸氢钠混合,以得
到其pH值为2.12的缓冲液。
2、碳酸缓冲液配制
碳酸缓冲液是常用的酸性缓冲液,可以根据需要使用不同浓度的碳酸
氢钠来配制。
比如,将0.2mol/L碳酸氢钠和0.2mol/L碳酸钠混合,可以
得到一种碳酸缓冲液,其碱度为pH7.0。
同样,如果需要制备一种低碱度
的碳酸缓冲液,可以将3mol/L碳酸氢钠和3mol/L碳酸钠混合,以得到其pH值为2.12的缓冲液。
3、氨水缓冲液配制
氨水缓冲液是常用的碱性缓冲液。
实验常用试剂缓冲液的配制方法
一、常用试剂和试剂配置
1、氯仿。
将1L 99.7%纯度的氯仿加入水中,调节pH值至7.4,溶解
即可得到0.5mol/L的氯仿溶液。
2、二氧化碳水。
将100mL弱碳酸氢氧化钠溶液(NaHCO3,0.5mol/L)加入1L水中,经过气泡交换,可制得CO2水。
3、磷酸盐缓冲液。
将200mL磷酸盐溶液(K2HPO4,0.5mol/L)加入800mL水中,调节pH值至7.2,搅拌均匀,即可得到0.2mol/L磷酸盐缓
冲液。
4、EDTA标准溶液。
将25.0g EDTA·4Na(C10H14N2O8Na2)加入
1000mL水中,热溶解,调节pH值至7.0,搅拌均匀,得到0.2mol/LEDTA
标准溶液。
5、肌酐标准溶液。
将10.0g肌酐(C10H13N3O8)=14.2H2O)加入
1000mL的水中,搅拌,调节pH值至7.4,搅拌均匀,即可得到0.1mol/L
的肌酐标准溶液。
二、缓冲液的配置
1、弱酸缓冲液。
将3.0mL 0.2mol/L磷酸钠溶液(Na2HPO4)加入到
97mL 0.2mol/L磷酸钙溶液(Ca(H2PO4)2)中,搅拌均匀,即可得到
0.2mol/L的弱酸缓冲液。
2、弱碱缓冲液。
将3.0mL 0.2mol/L磷酸氢氧化钠溶液(NaH2PO4)
加入到97mL 0.2mol/L碳酸氢钙溶液(Ca(HCO3)2)中,搅拌均匀,即可
得到0.2mol/L的弱碱缓冲液。
3、弱盐缓冲液。
各种缓冲液的配制方法缓冲液(Buffer)在生物化学和分子生物学实验中起到了至关重要的作用,它可以维持溶液的稳定性,调节pH值,同时还提供所需的离子环境。
这是一个关于不同类型缓冲液的配制方法的综合指南。
1. Tris缓冲液Tris缓冲液是实验室中最常用的缓冲液之一、以下是Tris缓冲液的配制方法:- 配制0.1 M Tris缓冲液(pH 7.4):a. 在100 mL去离子水中加入12.11 g Tris(Tris(hydroxymethyl)aminomethane)粉末。
b.用盖住容器的滤纸纸带覆盖容器,并将其放在磁力搅拌器上。
c.用盖住容器的锡纸覆盖容器,加热至溶解。
搅拌以加速溶解过程。
d.继续搅拌,使其冷却至室温。
e.使用0.1MHCl或0.1MNaOH调节pH值至7.4,直到所需的pH值稳定。
f.用去离子水稀释至总体积100mL。
2.PBS缓冲液PBS缓冲液是生物学实验中常用的缓冲液之一、以下是PBS缓冲液的配制方法:-配制10×PBS缓冲液:a.在1L去离子水中加入80gNaCl,2gKCl,14.4gNa2HPO4,2.4gKH2PO4b.使用10MNaOH或10MHCl调节pH值至7.4c.用去离子水稀释至总体积1L。
-配制1×PBS缓冲液:a.取10×PBS缓冲液100mL,用去离子水稀释至总体积1L。
3.TAE缓冲液TAE缓冲液常用于琼脂糖凝胶电泳。
以下是TAE缓冲液的配制方法:-配制50×TAE缓冲液:a. 在1 L去离子水中加入242 g Tris base,57.1 mL 0.5 M EDTA,100 mL冰醋酸。
b.用10MNaOH或10MHCl调节pH值至8.3c.用去离子水稀释至总体积1L。
-配制1×TAE缓冲液:a.取50×TAE缓冲液20mL,用去离子水稀释至总体积1L。
4. Tris-HCl缓冲液Tris-HCl缓冲液常用于DNA或RNA的酶切反应。
常见缓冲溶液配制方法1.醋酸钠/醋酸酸性缓冲液醋酸钠/醋酸酸性缓冲液适用于pH范围为4.0-6.0的实验。
配制方法如下:- 准备质量浓度为0.1mol/L的醋酸钠溶液和0.1mol/L的醋酸溶液。
-根据所需pH值,按照相应的比例混合醋酸钠溶液和醋酸溶液即可。
2.磷酸/盐酸性缓冲液磷酸/盐酸性缓冲液适用于pH范围为1.0-3.0的实验。
配制方法如下:- 准备0.2mol/L的盐酸溶液。
- 准备分别为0.2mol/L和0.1mol/L的磷酸溶液。
-具体配制时,根据所需pH值,按照相应的比例混合盐酸溶液和磷酸溶液即可。
3.磷酸/氢磷酸二盐酸性缓冲液磷酸/氢磷酸二盐酸性缓冲液适用于pH范围为2.0-7.0的实验。
配制方法如下:- 准备0.2mol/L的盐酸溶液。
- 准备分别为0.2mol/L、0.1mol/L和0.05mol/L的氢磷酸二盐溶液。
-具体配制时,根据所需pH值,按照相应的比例混合盐酸溶液和氢磷酸二盐溶液即可。
4.磷酸盐缓冲液磷酸盐缓冲液适用于pH范围为5.0-8.0的实验。
配制方法如下:- 准备分别为0.2mol/L的梯度磷酸盐溶液。
-根据所需pH值,按照相应的比例混合相应浓度的磷酸盐溶液即可。
5.三氯乙酸/三氯乙酸钠酸性缓冲液三氯乙酸/三氯乙酸钠酸性缓冲液适用于pH范围为3.0-4.6的实验。
配制方法如下:- 准备质量浓度为0.2mol/L的三氯乙酸钠溶液和0.2mol/L的三氯乙酸溶液。
-根据所需pH值,按照相应的比例混合三氯乙酸钠溶液和三氯乙酸溶液即可。
以上是一些常见的缓冲溶液配制方法,具体的配制过程可能会因实验需求和具体试剂而略有不同。
在配制缓冲溶液时,一定要注意使用高纯度的试剂,并按照配制方法进行准确的实验操作。
缓冲溶液及其配制方法
以下是一些常见的缓冲溶液及其配制方法:
1.甲酸钠缓冲液(pH3.3):取2mol/L甲酸溶液25mL,加酚酞
指示液1滴,用2mol/L氢氧化钠溶液中和,再加入2mol/L甲酸溶液75mL,用水稀释至200mL,调节pH值至
3.25~3.30即可。
2.邻苯二甲酸盐缓冲液(pH5.6):取邻苯二甲酸氢钾10g,加
水900mL,搅拌使溶解,用氢氧化钠试液(必要时用稀盐酸)调节pH值至5.6,加水稀释至1000mL,混匀即可。
3.氨-氯化铵缓冲液(pH8.0):取氯化铵1.07g,加水使溶解成
100mL,再加稀氨溶液(1→30)调节pH值至8.0即可。
4.氨-氯化铵缓冲液(pH10.0):取氯化铵
5.4g,加水20mL溶
解后,加浓氯溶液35mL,再加水稀释至100mL即可。
5.硼砂-碳酸钠缓冲液(pH10.8~11.2):取无水碳酸钠5.30g,
加水使溶解成1000mL;另取硼砂 1.91g,加水使溶解成100mL。
各种缓冲液的配制方法_
一、磷酸缓冲液的配制方法
1.准备:蒸馏水或纯净水、磷酸二铵,滴定级别不低于AR级;
2.计算配制用量:根据实验要求,计算出所需磷酸二铵的总量,用m1表示(单位:克);
3.将磷酸二铵加入蒸馏水或纯净水中,用称取出适量的磷酸二铵,用m2表示(单位:克),加入搅拌槽中,充分搅拌均匀,然后加入剩余的磷酸二铵(m3=m1-m2,单位:克),继续搅拌;
4.检查温度:温度应大于室温;
5.检查pH值:用pH计测量溶液的pH值,调整到与实验要求相符的值;
6.搅拌均匀,过滤,储存,可使用或直接投放使用;
二、碳酸缓冲液的配制方法
1.准备:蒸馏水或纯净水、碳酸氢钠,滴定级别不低于AR级;
2.计算配制用量:根据实验要求,计算出所需碳酸氢钠的总量,用m1表示(单位:克);
3.将碳酸氢钠加入蒸馏水或纯净水中,用称取出适量的碳酸氢钠,用m2表示(单位:克),加入搅拌槽中,充分搅拌均匀,然后加入剩余的碳酸氢钠(m3=m1-m2,单位:克),继续搅拌;
4.检查温度:温度应大于室温;
5.检查pH值:用pH计测量溶液的pH值。
各种缓冲液的配制方法缓冲液是一种用于调节溶液酸碱度(pH值)的溶液,它可以稳定溶液的pH值,满足实验的需要。
不同实验需要使用不同pH值的缓冲液,因此配制方法也会有所不同。
下面将介绍常见的几种缓冲液的配制方法。
1.磷酸盐缓冲液:磷酸盐缓冲液是最常用的一种缓冲液,在生物化学和分子生物学实验中广泛应用。
配制方法:-0.2M磷酸盐酸(pH2.5):用稀磷酸(H3PO4)溶液调节酸度至所需pH值。
-0.2M磷酸盐盐(pH2.5):用0.2M磷酸钠(Na2HPO4)溶液调节碱度至所需pH值。
-混合上述两种液体,按体积比例混合即可配制所需pH值的磷酸盐缓冲液。
2.乙酸缓冲液:乙酸缓冲液常用于酶催化反应的研究和生物制剂的稳定。
配制方法:-0.1M乙酸酸(pH3.6):用浓烧碱(CH3COOH)溶液调节酸度至所需pH值。
-0.1M乙酸盐(pH3.6):用0.1M乙酸钠(CH3COONa)溶液调节碱度至所需pH值。
-混合上述两种液体,按体积比例混合即可配制所需pH值的乙酸缓冲液。
3.碳酸氢盐缓冲液:碳酸氢盐缓冲液常用于生命科学实验中。
配制方法:-0.1M碳酸酸(pH6.0):用稀碳酸(H2CO3)溶液调节酸度至所需pH 值。
-0.1M碳酸盐(pH6.0):用0.1M碳酸氢钠(NaHCO3)溶液调节碱度至所需pH值。
-混合上述两种液体,按体积比例混合即可配制所需pH值的碳酸氢盐缓冲液。
4. Tris缓冲液:Tris缓冲液是一种多用途的缓冲液,在生物化学和分子生物学研究中广泛应用。
配制方法:- 0.1 M Tris酸(pH 8.0):用三羟甲基氨基甲烷(Tris)溶液调节酸度至所需pH值。
- 0.1 M Tris盐(pH 8.0):用0.1 M Tris盐溶液调节碱度至所需pH值。
- 混合上述两种液体,按体积比例混合即可配制所需pH值的Tris缓冲液。
配制缓冲液时需要准备所需浓度的酸液和盐液,然后根据所需pH值逐渐调整酸度和碱度至目标值。
各种缓冲液配制方法不同缓冲液的缓冲范围pH缓冲液是化学实验室中常用的一种试剂,可以帮助维持溶液的酸碱度。
下面介绍三种常用缓冲液的配制方法和缓冲范围。
一、甘氨酸-盐酸缓冲液(0.05 mol/L)配制方法:取X毫升0.2 mol/L甘氨酸和Y毫升0.2 mol/L 盐酸,加入适量的水稀释至200毫升。
缓冲范围:pH值在2.2至3.6之间,X和Y的取值见上表。
二、邻苯二甲酸-盐酸缓冲液(0.05 mol/L)配制方法:取X毫升0.2 mol/L邻苯二甲酸氢钾和Y毫升0.2 mol/L盐酸,加入适量的水稀释至20毫升。
缓冲范围:pH值在2.2至3.8之间,X和Y的取值见上表。
三、磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液配制方法:根据上表中的数据,取相应的0.2 mol/L和0.1 mol/L的Na2HPO4和柠檬酸,加入适量的水稀释至20毫升。
缓冲范围:pH值在2.2至8.0之间,具体取值见上表。
以上缓冲液的配制方法和缓冲范围可根据实验需要进行调整和改变。
在实验过程中,正确选择缓冲液可以提高实验的成功率和准确性。
以下是已经修改好的文章:柠檬酸的浓度可以用毫升表示,其浓度数据如下:9.28 mL8.85 mL8.40 mL7.91 mL7.37 mL6.78 mL6.15 mL5.45 mL4.55 mL3.53 mL2.61 mL1.83 mL1.27 mL0.85 mL0.55 mL对于Na2HPO4,其分子量为141.98,0.2 mol/L的溶液需要28.40 g/L。
而Na2HPO4·2H2O的分子量为178.05,0.2 mol/L的溶液需要35.61 g/L。
最后,Na2HPO4·12H2O的分子量为358.22,0.2 mol/L的溶液需要71.64 g/L。
对于C6H8O7·H2O,其分子量为210.14,0.1 mol/L的溶液需要21.01 g/L。
以下是柠檬酸-氢氧化钠-盐酸缓冲液的相关数据:pH: 2.2.3.1.3.3.4.3.5.3.5.8.6.5钠离子浓度(mol/L): 0.20.0.20.0.20.0.20.0.35.0.45.0.38柠檬酸(g) 氢氧化钠(g) 盐酸(mL)C6H8O7·H2O NaOH 97% HCl (浓)210 210 210210 245 285266 84 8383 144 186156 160 116106 45 68105 126最终体积(L):10使用时可以每升中加入1克酚。
几种溶液的配制方法1、PBS:取ZLI-9061 PBS溶于1000ml的蒸馏水中,混匀,测pH 值应在7.2~7.4之间,若偏离此范围,请用0.1N的HCL 或NaOH调整。
2、TBS:2.1 Tris缓冲液配方:(0.5 M pH7.6)Tris(三羟甲基氨基甲烷)60.57g1N HCL 约420ml双蒸水加至1000mlTris缓冲液配制方法:先以少量双蒸水(300~500ml)溶解Tris,加入HCl后,用HCl(1N)或NaOH(1N)将pH调至7.6,最后双蒸水加至1000ml。
此液为储备液,4℃冰箱中保存。
2.2 TBS配方:Tris-HCI缓冲液(0.5M pH7.6)100mlNaCI 8.5~9g (0.15mol/L)双蒸水加至1000mlTBS配制方法:先以少量双蒸水溶解NaCl,再加入Tris-HCl 缓冲液,最后加双蒸水至1000ml,充分摇匀。
3、枸橼酸盐缓冲液(Citrat e buffer):3.1 储存液:A. 0.1M枸橼酸溶液:称取21.01g枸橼酸(C6H8O7·H20)溶于1000ml蒸馏水中。
B. 0.1M枸橼酸钠溶液:称取29.41g枸橼酸钠(C6H5Na3O7·2H20)溶于1000ml蒸馏水中。
3.2 工作液:取9ml A液和41ml B液加入450ml蒸馏水中,溶液pH值应为6.0±0.14、胰酶(Trypsin):4.1 ZLI-9011胰蛋白酶消化液:常用浓度为0.125%,即使用前将一滴试剂1胰酶溶液和三滴试剂2胰酶稀释液均匀混合(1:3稀释),则可直接滴加使用。
胰酶的最终浓度可以根据使用者的要求进行调整,浓度范围可以从0.05%(1:10稀释)至0.25%(1:1稀释)。
4.2 ZLI-9010胰蛋白酶:取0.05g或0.1g胰蛋白酶加入到100ml 0.05%或0.1% pH7.8的无水氯化钙水溶液中,溶解即可。
核酸电泳相关试剂、缓冲液的配制方法50×TAE Buffer (pH8.5)组份浓度 2 M Tris-醋酸,100 mM EDTA配制量 1 L配制方法3.加入57.1 ml的乙酸,充分搅拌。
4.加去离子水将溶液定容至l L后,室温保存。
10×TBE Buffer (pH8.3)组份浓度 890 mM Tris-硼酸,20 mM EDTA配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定容至l L后,室温保存。
10×MOPS(3-吗啉基丙磺酸)Buffer组份浓度 200 rnM MOPS,20 mM NaOAc,10 mM EDTA配制量 1 L配制方法 1.称41.8 g MOPS,置于1 L烧杯中。
2.加约700 ml DEPC处理水,搅拌溶解。
3.使用2 N NaOH调节pH值至7.0。
6.用0.45 m滤膜过滤除去杂质。
7.室温避光保存。
注:溶液见光或高温灭菌后会变黄。
变黄时也可使用,但变黑时不要使用。
溴乙锭 (10 mg/ml)组份浓度 10 mg/ml溴乙锭配制量 100 ml配制方法 1.称量1 g溴乙锭,加入到100 ml容器中。
2.加入去离子水100 ml,充分搅拌数h完全溶解溴乙锭。
3.将溶液转移至棕色瓶中,室温避光保存。
4.溴乙锭的工作浓度为0.5 g/ml。
注意:溴乙锭是一种致癌物质,必须小心操作。
Agarose凝胶配制方法 1.配制适量的电泳及制胶用的缓冲液(通常是0.5×TBE或1×TAE)。
2.根椐制胶量及凝胶浓度,准确称量琼脂糖粉,加入适当的锥形瓶中。
3.加入一定量的电泳缓冲液(总液体量不宜超过锥形瓶的50%容量)。
注:用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须统一。
4.在锥形瓶的瓶封上保鲜膜,并在膜上扎些小孔,然后在微波炉中加热熔化琼脂糖。
加热过程中,当溶液沸腾后,请戴上防热手套。
小心摇动锥形瓶。
使琼脂糖充分均匀熔化。
此操作重复数次,直至琼脂糖完全熔化。
必须注意,在微波炉中加热时间不宜过长,每次当溶液起泡沸腾时停止加热,否则会引起溶液过热暴沸,造成琼脂糖凝胶浓度不准,也会损坏微波炉。
熔化琼脂糖时,必须保证琼脂糖充分完全熔化,否则,会造成电泳图像模糊不清。
5.使溶液冷却至60℃左右,如需要可在此时加入溴乙锭溶液(终浓度0.5 µg/ml)。
并充分混匀。
注:溴乙锭是一种致癌物质。
使用含有溴乙锭的溶液时,请戴好手套。
6.将琼脂糖溶液倒入制胶模中,然后在适当位置处插上梳子。
凝胶厚度一般在3~5 min之间。
7.在室温下使胶凝固(大约30 min~1 h),然后放置于电泳槽中进行电泳。
注:凝胶不立即使用时,请用保鲜膜将凝胶包好后在4℃下保存,一般可保存2~5天。
琼脂糖凝胶浓度与线形DNA的最佳分辨范围6× Loading Buffer(DNA电泳用)组份浓度配制量 500 ml配制方法3.加入180 ml的甘油(Glycerol)后,使用2 N NaOH调节pH值至7.0。
4.用去离子水定容至500 ml后,室温保存。
10 × Loadlng Buffer(RNA电泳用)组份浓度配制置配制方法3.加入5 ml的甘油(Glycerol)后,充分混匀。
4.用DEPC处理水定容至10 ml后,室温保存。
四、核酸、蛋白质杂交用相关试剂、缓冲液的配制方法20×SSC组份浓度 3.0 M NaCl,0.3 M Na3citrate·2H2O(柠檬酸钠)配制量 1 L配制方法 1.3滴加14 N HCl,调节pH值至7.0后,加去离子水将溶液定容至1 L。
4.高温高压灭菌后,室温保存。
20×SSPE Buffer组份浓度 3.0 M NaCl,0.2 M NaH2PO4,0.02 M EDTA配制量 1.L配制方法3.加NaOH 调节pH 值至7.4(约6.5 ml 的10 N NaOH)。
4.加去离子水将溶液定容至l L 。
5.高温高压灭菌后,室温保存。
50 X Denhardt’S 溶液组份浓度 配制量500 ml 配制方法 1.称量下列试剂,置于500 ml 烧杯中。
2.加去离子水约400 ml ,充分搅拌溶解3.加去离子水将溶液定容至500 ml 。
4.用0.45µm 滤膜过滤后,分装成每份25 ml 。
5.-20℃保存。
0.5 M 磷酸盐Buffer组份浓度 0.5 M Na2HPO 4。
配制量 l L配制方法 1.称量134 g Na 2HPO 4·7H 2O 置于l L 烧杯中。
2.加入约800 ml 的去离子水充分搅拌溶解。
3.加入85%的H 3PO 4(浓磷酸)调节溶液pH 值至7.2。
4.加去离子水定容至1 L 。
5.高温高压灭菌后,室温保存。
Salmon DNA (鲑鱼精DNA)组份浓度 10 mg/ml Salmon DNA配制量 约100 ml配制方法 1.称取鲑鱼精DNA 2 g 置于500 ml 烧杯中,加入约200 ml 的TE Buffer 。
2用磁力搅拌器室温搅拌2~4 h ,溶解后加入4 ml 的5 M NaCl ,使其终浓度为0.1 M 。
3.用苯酚和苯酚/氯仿各抽提1次。
4.回收水相溶液后,使用17号皮下注射针头快速吸打溶液约20次,以 切断DNA 。
5.加入2倍体积的预冷乙醇进行乙醇沉淀。
6.离心回收DNA 后,溶解于100 ml 的去离子水中。
测定溶液的OD 260值。
7.计算溶液的DNA 浓度后,稀释DNA 溶液至10 mg/ml 。
8.煮沸10min 后,分装成小份(1 ml/份)。
-20℃保存。
9.使用前在沸水浴中加热5min 后,迅速冰浴冷却。
DNA 变性缓冲液组份浓度 1.5 M NaCl ,0.5 M NaOH配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定容至l L 后,室温保存。
预杂交液/杂交液 (DNA 杂交用)组份浓度配制置 100 ml配制方法 1.称量下列试剂,置于200 ml 烧杯中。
2.充分混匀后,使用0.45 µm 滤膜滤去杂质后使用。
预杂交液/杂交液(RNA 杂交用)组份浓度配制量 100 mL配制方法 1.称量下列试剂,置于200 ml 烧杯中。
2.充分混匀后,使用0.45µm 滤膜滤去杂质后使用。
膜转移缓冲液(Western 杂交用)组份浓度 39 mM Glycine ,48 mM Tris ,0.037%(W/V)SDS ,20%(V/V)甲醇 配制量 1 L配制方法3.加去离子水将溶液定溶至800 ml 后,加入200 ml 的甲醇。
4.室温保存。
TBST Buffer(Western 杂交膜清洗液)组份浓度 20 mM Tris-HCl ,150 mM NaCl ,0.05%(V/V)Tween 20配制量 1 L配制方法3.加入0.5 ml Tween 20后充分混匀。
4.加去离子水将溶液定容至l L 后,4℃保存。
封闭缓冲液(Western 杂交用)组份浓度 5%(W/V)脱脂奶粉/TBST Buffer配制量 100 ml配制方法 1.称5 g 脱脂奶粉加入到100 ml TBST Buffer 中,充分搅拌溶解。
2.4℃保存待用(本封闭液应该现配现用)。
五、实验室常用培养基的配制方法Ampicillin(氨卡青霉素)(100 mg/ml)组份浓度 100 mg/ml Ampicillin配制量 50 ml配制方法 1.称量5 g Ampicillin置于50 ml离心管中。
2.加入40 ml灭菌水,充分混合溶解后,定容至50 ml。
3.用0.22 µm过滤膜过滤除菌。
4.小份分装(1 ml/份)后,-20℃保存。
IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷)(24 mg/ml)组份浓度 24 mg/mL IPTG配制量 50 mL配制方法 1.称1.2 g IPTG置于50 ml离心管中。
2.加入40 ml灭菌水,充分混合溶解后,定容至50 ml。
3.用0 22 µm过滤膜过滤除菌。
4小份分装(1 ml,份)后,-20℃保存。
X-Gal (20 mg/ml)组份浓度 20 mg/ml X-Gal配制量 50 ml配制方法 1.称量l g X-Gal置于50 ml离心管中。
2.加入40 ml DMF(二甲基甲酰胺),充分混合溶解后,定容至50 ml。
3.小份分装(1 ml/份)后,-20℃避光保存。
LB培养基组份浓度 1%(W/V)Tryptone(胰蛋白胨),0.5%(W/V)Yeast Extract(酵母提取物),1%(W/V)NaCl配制量 1 L配制方法3.滴加5 N NaOH(约0.2 m1),调节pH值至7.0。
4.加去离子水将培养基定容至1 L。
5高温高压灭菌后,4。
C保存。
LB/Amp培养基组份浓度配制量配制方法3.滴加5 N NaOH(约0.2 mL)。
调节pH 值至7.0。
4.加去离子水将培养基定容至1 L 。
5.高温高压灭菌后,冷却至室温。
6.加入1 ml Ampicillin(100 mg/ml)后均匀混合。
7.4℃保存。
TB 培养基组份浓度配制量 1.L配制方法 1.配制磷酸盐缓;中液(0.17 M KH 2PO4,0.72 M K 2HPO 4)100 ml 。
溶解2.31 g KH 2PO 4和l2.54 g K 2HPO 4于90 ml 的去离子水中,搅拌溶解 后,加去离子水定容至100 ml ,高温高压灭菌。
4.加去离子水将培养基定容至1 L 后,高温高压灭菌。
5.待溶液冷却至60℃以下时,;加入100 ml 的上述灭菌磷酸盐缓冲液。
6.4℃保存。
TB/Amp培养基组份浓度配制量配制方法 1.配制磷酸盐缓冲液(0.17 M KH2PO4,0.72 M K2HPO4)100 ml。
溶解2.31 g KH2PO4,和12.54g K2HPO4于90 ml的去离子水中,搅拌溶解后,加去离子水定容至100 ml,高温高压灭菌。
4.加去离子水将培养基定容至l L后,高温高压灭菌。
5.待溶液冷却至60℃以下时,加入100 ml的上述灭菌磷酸盐缓冲液。
6.均匀混合后4℃保存。
SOB培养基组份浓度配制量配制方法 1.配制250 mM KCl溶液。
在90 ml的去离子水中溶解l.86 g KCl后,定容至100 ml。
2.配制2 M MgCl2溶液。
在90 ml去离子水中溶解19 g MgCl2后,定容至100 ml,高温高压灭菌。
5.量取10 m1 250 mM KCl溶液,加入到烧杯中。
6.滴加5 N NaOH溶液(约0.2 m1),调节pH值至7.0。
7.加入去离子水将培养基定容至l L。