生物素标记核酸技术
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生物素标记方法
生物素标记方法是研究分子生物学、生物医学以及基因工程领域中常用的一种技术手段。
生物素是一种小分子,能够稳定结合在蛋白质、DNA、RNA等生物分子上,然后通过化学反应将其标记,从而实现对这些生物分子的检测、分离、纯化等目的。
下面,我将介绍几种常用的生物素标记方法。
1. 化学合成法
该方法是指直接将生物素与目标分子进行化学反应合成标记物。
一般情况下,将生物素与分子中含有取代基或官能团的氨基酸、碳水化合物、核苷酸等分子反应,形成生物素标记分子。
这种方法操作简单,标记分子的稳定性相对较高,但也存在反应产物多样性和纯化难度较大的问题。
2. 酶标法
生物素酶标方法是通过先将目标分子与无生物素酶的生物素结合蛋白偶联,然后加入酶标记化学底物,使之被生物素结合蛋白吸附,生成酶标记。
该方法不需要化学反应,有色或荧光信号明显,而且有较高的检测灵敏度和特异性,可以用于定量检测和高通量筛选。
3. 亲和柱纯化法
该方法是利用生物素亲和柱的特异性吸附作用,对生物素标记蛋白、DNA等生物大分子进行纯化,从而获得高质量的样品。
最常用的是streptavidin疏水亲和纯化柱和avidin疏水亲和纯化柱。
这种方法操作简单,纯化效果好,但标记分子的稳定性较低,可能存在对目标蛋白活性影响等问题。
以上是生物素标记方法的三种常用技术手段,可以根据不同的研究需求选择合适的方法使用。
生物素标记技术的广泛应用不仅有助于分子生物学和生物医学的研究发展,也为新药发现和治疗提供了重要的帮助。
biotin标记蛋白原理
蛋白质标记技术是生命科学研究中的一项重要技术,可以用来研究蛋白质的结构、功能和相互作用等方面。
其中,一种常用的标记方法是使用生物素(biotin)进行标记。
生物素是一种小分子化合物,通过与蛋白质中的特定结构域相互作用,实现对蛋白质的特异性标记。
生物素标记的原理主要包括两个方面:生物素与蛋白质的亲和性和生物素与检测物质的亲和性。
在生物素标记中,通常会将生物素化合物与蛋白质结构域相互作用,将生物素引入到蛋白质中。
生物素与蛋白质之间的相互作用可以通过不同的方法实现,其中较常用的方法是通过生物素-蛋白质亲和素(BAP)相互作用。
BAP是一种革兰氏阳性菌
内生物素酶,它能够特异性地结合生物素,并形成坚固的结合,从而实现对蛋白质的标记。
一旦生物素成功地与目标蛋白质结合,就可以利用生物素与检测物质之间的亲和性来进行后续的检测和分析。
检测物质通常是与生物素结合的酶或荧光染料等,可以通过检测酶的活性或荧光信号来间接或直接地确定标记蛋白质的存在或活性。
通过生物素标记技术,可以实现对蛋白质的高特异性和高灵敏度的检测。
生物素标记的蛋白质可以被用于免疫印迹、免疫组化、流式细胞术和免疫沉淀等多种实验技术中,帮助研究者探究蛋白质的功能和相互作用。
总结来说,生物素标记蛋白质的原理是通过生物素与蛋白质之间的特异性亲和性相互作用,将生物素引入到蛋白质中,并利用生物素与检测物质的亲和性进行后续的检测和分析。
该技术在生命科学研究中具有广泛的应用,并为科研工作者提供了一种重要的工具。
生物素标记1,向皿中加入2ml 1mg/ml的生物素试剂。
2,4℃,温和shaking30min,孵育后有一些细胞会悬浮起来,转移这些细胞至离心管中,离心收集细胞,并按下面方法洗涤细胞。
3,用2ml含0.1mM Ca+,1mM mg2+,100Mm Glycine的PBS清洗细胞2次,这时也会有一些细胞悬浮起来,转移它们到一个离心管,离心收集细胞。
4,加2ml含0.1mM Ca+,1mM mg2+的PBS到皿中。
5,4℃,45min停止未反应的生物素试剂的反应。
(使生物素试剂失活),并收集浮起来的细胞,离心收集细胞。
6,收集细胞:将皿中的细胞和浮起来的细胞转移进入一个1.5ml的离心管。
7,向1.5ml的离心管中加入1ml RIPA/lysis buffer。
(含蛋白酶抑制剂1table /50ml)8,4℃涡旋1h。
9,20000g,10min,4℃,以沉淀核酸与其他残渣。
10,把上清转入新的EP管,(这是总蛋白,T,一般情况下浓度应该在1-5mg/ml,可以用B radford method来测定浓度,并调整全部样品至同一浓度)11,向300ul pre-cleared sample中加入300ul含50% slurry-Avidin beads的PBS,P I孵育。
(PI,蛋白酶抑制剂,的工作浓度0.1-1mM,17-174ug/ml)12,室温涡旋1h。
(使生物素和亲和素充分结合)13,离心除去beads,将上清转移至一新离心管中。
(这是位结合的蛋白质,浓度相对于总蛋白被稀释了1.5倍。
)14,向beads中加入150ul 2×Laemmli buffer来将beads上的蛋白质洗掉。
(洗下来的蛋白浓度是总蛋白浓度的2倍)。
⽣物素标记EMSA探针-AP1⽣物素标记EMSA探针-AP1产品简介:⽣物素标记EMSA探针-AP1是⽤于EMSA(也称gel shift)研究的并经⽣物素(Biotin)标记的AP1 consensus oligonucleotide。
这个⽣物素标记的双链寡核苷酸含有公认的AP1结合位点,可以⽤作EMSA研究时的探针。
AP1 consensus oligo的序列如下:5’-CGC TTG ATG ACT CAG CCG GAA-3’3’-GCG AAC TAC TGA GTC GGC CTT-5’本⽣物素标记EMSA探针已经过纯化,可以直接⽤于EMSA结合反应。
本⽣物素标记EMSA探针可以和碧云天的化学发光法EMSA试剂盒(GS009)配套使⽤。
⼀个包装的⽣物素标记探针可以进⾏约200-400个样品的EMSA检测。
保存条件:-20℃保存,⼀年有效。
注意事项:避免加热到40℃以上,温度过⾼会导致双链DNA探针解聚成单链。
⽽单链⽆法⽤于EMSA研究。
对于基于⽣物素标记的EMSA检测的详细操作可以参考碧云天的化学发光法EMSA试剂盒(GS009)的使⽤说明。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴⼀次性⼿套操作。
使⽤说明:1.本⽣物素标记EMSA探针⽤于EMSA结合反应时,参考如下步骤进⾏:A.如下设置EMSA结合反应:阴性对照反应:Nuclease-Free Water 7-7.5µl EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液(5X) 2µl 细胞核蛋⽩或纯化的转录因⼦ 0µl ⽣物素标记探针 0.5-1µl 总体积 10µl探针冷竞争反应:Nuclease-Free Water 4-4.5µl EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液(5X) 2µl 细胞核蛋⽩或纯化的转录因⼦ 2µl 未标记的探针 1µl ⽣物素标记探针 0.5-1µl 总体积 10µlSuper-shift反应:Nuclease-Free Water 4-4.5µl EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液(5X) 2µl 细胞核蛋⽩或纯化的转录因⼦ 2µl ⽬的蛋⽩特异抗体 1µl ⽣物素标记探针 0.5-1µl 总体积 10µl 样品反应:Nuclease-Free Water 5-5.5µl EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液(5X) 2µl 细胞核蛋⽩或纯化的转录因⼦ 2µl ⽣物素标记探针 0.5-1µl 总体积 10µl突变探针的冷竞争反应:Nuclease-Free Water 4-4.5µl EMSA/Gel-Shift 结合缓冲液(5X) 2µl 细胞核蛋⽩或纯化的转录因⼦ 2µl 未标记的突变探针 1µl ⽣物素标记探针 0.5-1µl 总体积 10µl注:⽣物素标记EMSA探针的推荐⽤量为每个反应0.5微升,如果检测出来的⽬的蛋⽩的EMSA条带偏弱,可以适当加⼤⽣物素标记EMSA探针的⽤量⾄0.75微升或1微升。
生物素标记核酸方法引言:生物素标记核酸方法是一种常用的实验技术,用于检测、定位和研究核酸的功能和分布情况。
生物素(Biotin)是一种小分子化合物,具有较强的亲和力和特异性,可以与酶和抗体等蛋白质结合,从而实现对核酸的标记和检测。
本文将介绍生物素标记核酸的原理、方法和应用。
一、生物素标记核酸的原理生物素标记核酸的原理基于生物素与亲和剂的结合。
生物素能够与亲和剂如酶、抗体等特异性结合,形成稳定的复合物。
通过将亲和剂标记在生物素上,就可以实现对核酸的标记。
常用的生物素标记方法包括生物素标记末端法、生物素标记引物法和生物素标记缺口法等。
二、生物素标记核酸的方法1. 生物素标记末端法生物素标记末端法是一种将生物素标记在核酸的末端的方法。
首先,将核酸末端修复,以便连接生物素分子。
然后,在核酸末端上引入生物素分子,通过特定的酶或化学试剂进行连接。
最后,通过适当的检测方法,如酶标测定法或荧光探针法,可以检测到生物素标记的核酸。
2. 生物素标记引物法生物素标记引物法是一种将生物素标记在核酸引物上的方法。
在引物的适当位置引入生物素分子,并通过特定的酶或化学试剂进行连接。
接下来,使用生物素标记的引物与待检测的核酸进行反应,形成生物素标记的核酸引物-目标核酸复合物。
最后,通过适当的检测方法,如PCR、电泳或原位杂交等,可以检测到生物素标记的核酸。
3. 生物素标记缺口法生物素标记缺口法是一种通过特定酶切割核酸,形成生物素标记的缺口的方法。
首先,在核酸的适当位置引入生物素分子,并通过特定的酶或化学试剂进行连接。
然后,使用特定酶切割核酸,使核酸链断裂形成缺口,并在断裂的位置上引入生物素标记。
最后,通过适当的检测方法,如原位杂交或荧光显微镜观察等,可以检测到生物素标记的核酸。
三、生物素标记核酸的应用1. 分子生物学研究生物素标记核酸方法在分子生物学研究中广泛应用。
例如,通过生物素标记的引物进行PCR扩增,可以检测和定量目标核酸的存在和表达水平。
HRP酶标记生物素方法:生物技术的关键应用
在生物技术领域,酶标记技术是一种广泛应用的检测方法。
其中,HRP(辣根过氧化物酶)酶标记生物素方法因其高灵敏度、高特异性和非放射性等优点,成为了生物医学研究中的重要工具。
本文将介绍HRP酶标记生物素方法的原理、应用及优化方法。
一、HRP酶标记生物素方法的原理
HRP酶标记生物素方法的基本原理是利用酶与底物的反应产生可检测的光学信号。
具体来说,将目标分子(如抗体、抗原、核酸等)与生物素结合,形成生物素标记的目标分子。
随后,将生物素标记的目标分子与HRP酶结合,形成酶标
记的复合物。
当底物加入酶标记复合物时,酶催化底物反应产生可检测的光学信号,通过信号的强弱判断目标分子的含量。
二、HRP酶标记生物素方法的应用
HRP酶标记生物素方法在生物医学领域有着广泛的应用,如免疫分析、核酸检测、蛋白质组学等。
其中,在免疫分析中,HRP酶标记生物素方法可用于检测抗原或抗体的含量,具有高灵敏度、高特异性和低背景干扰等优点。
此外,在核酸检测中,HRP酶标记生物素方法可用于检测DNA或RNA的存在及表达水平。
在蛋白质组学中,HRP酶标记生物素方法可用于蛋白质的相互作用研究和蛋白质组学分析。
三、HRP酶标记生物素方法的优化
为了提高HRP酶标记生物素方法的灵敏度和特异性,研究者们不断尝试优化该方法。
其中,以下几点是优化HRP酶标记生物素方法的关键:
1.选择合适的酶浓度和底物浓度:在保证酶催化反应速率的同时,降低背景
干扰和信号的非特异性。
2.优化反应条件:如pH值、温度、离子强度等,以获得最佳的酶催化反应
效果。
一种从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸的方法与流程生物素标记核酸与链霉亲和素磁珠的巧妙分离之旅在分子生物学的魔法世界中,有一种神秘而又精准的“拆CP”技术——从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸。
这场微观世界的舞蹈,犹如解开精密锁链的艺术,充满了科学的魅力与挑战。
首先,让我们揭开这奇妙舞台的序幕。
生物素标记核酸,这位身披“生”字光环的主角,通过生物素与链霉亲和素这对“黄金搭档”的强力牵手,被牢牢吸附在磁性舞台上——链霉亲和素磁珠。
这种紧密结合如同“天作之合”,稳定且特异,是无数实验操作中的关键一环,例如核酸纯化、测序以及杂交等。
然而,天下没有不散的筵席,科学研究的需求往往需要我们巧妙地将这对紧密拥抱的“伴侣”分开。
这个过程就像是一场精心策划的“和平分手”,我们需要温和且高效地让生物素标记核酸从链霉亲和素磁珠的怀抱中解脱出来。
首当其冲的是选择适宜的“调解剂”,也就是洗脱液。
它犹如一把无形的钥匙,能打破生物素与链霉亲和素间稳定的非共价键结合。
常用的洗脱液包括高浓度生物素、巯基化合物或者低pH环境下的溶液,它们各具特色,根据实验需求灵活选用,仿佛是科学家手中的魔杖,轻轻一点,便能触动那微妙的化学反应。
随后,便是耐心而细致的操作环节。
把负载有生物素标记核酸的链霉亲和素磁珠置于选定的洗脱液中,像是给这对“情侣”提供了一个缓冲的空间,让他们逐渐松开紧握的手。
在适当的时间(通常为几分钟至十几分钟)后,借助外加磁场的力量,磁珠被吸附,而那曾经紧紧依附的生物素标记核酸则得以优雅地游离于溶液之中,实现了期待已久的“解脱”。
此过程中,“洗脱”二字真可谓道出了其中精髓,既有力量的适度施加,又有时间的悠然等待,更兼有科学智慧的巧妙运用。
每当看到清澈溶液中释放出的生物素标记核酸时,科学家们心中不禁涌起一阵欣喜:“瞧!我们的努力终见成效!”总结起来,从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸这一方法流程,无疑是一场微观尺度上的艺术表演,充分展现了科学的精确与巧妙。
生物素标记的应用实验原理1. 引言生物素标记是生命科学研究中常用的一种实验技术,在生物学领域中有着广泛的应用。
本文将介绍生物素标记的原理、实验步骤以及常见应用领域。
2. 生物素标记的原理生物素标记是利用生物素与亲生物素的高亲和力进行标记的一种技术。
生物素是一种小分子,能够与亲生物素结合蛋白质相互作用。
亲生物素是一种对生物素具有高亲和力的结合剂,通过与生物素结合形成稳定的复合物。
3. 生物素标记的实验步骤生物素标记实验通常包括以下步骤:3.1 标记反应首先,需要准备好待标记的分子,可以是蛋白质、核酸或其他小分子。
然后,将生物素和亲生物素标记剂一起与待标记的分子进行反应。
标记反应可以通过化学交联、生物合成或标记基团的化学反应等方式进行。
3.2 纯化和检测完成标记反应后,需要对反应产物进行纯化和检测。
纯化可以使用凝胶过滤、柱层析等方法进行。
检测可以利用电泳、质谱等技术进行,以确保标记的分子具有高纯度和理想的标记效果。
3.3 应用实验标记完成的分子可以用于各种生物学实验中。
常见的应用实验包括免疫组化、荧光染色、原位杂交等,这些实验可以在细胞水平或组织水平上观察到标记分子的位置和定位。
4. 生物素标记的应用领域生物素标记在生命科学研究中有着广泛的应用。
下面将介绍几个常见的应用领域:4.1 蛋白质研究生物素标记可以用于蛋白质的表达和纯化过程中,通过标记蛋白质使其易于检测和纯化。
此外,生物素标记还可以用于蛋白质间相互作用的研究,通过标记不同蛋白质使其易于检测和定位。
4.2 基因组学研究生物素标记可以用于DNA或RNA的标记,用于基因组学研究中的测序、杂交等实验。
标记后的DNA或RNA可以用于检测特定序列、寻找基因突变等。
4.3 细胞信号转导研究生物素标记可以用于研究细胞信号转导通路中的蛋白质相互作用和定位。
通过标记信号蛋白,可以研究其在信号传递过程中的活性、相互作用和定位。
4.4 药物研发生物素标记可以用于药物研发中的药物靶点筛选和药物活性评价。
常用的分子生物学基本技术核酸分子杂交技术由于核酸分子杂交的高度特异性及检测方法的灵敏性,它已成为分子生物学中最常用的基本技术,被广泛应用于基因克隆的筛选,酶切图谱的制作,基因序列的定量和定性分析及基因突变的检测等。
其基本原理是具有一定同源性的原条核酸单链在一定的条件下(适宜的温室度及离子强度等)可按碱基互补原成双链。
杂交的双方是待测核酸序列及探针(probe),待测核酸序列可以是克隆的基因征段,也可以是未克隆化的基因组DNA和细胞总RNA。
核酸探针是指用放射性核素、生物素或其他活性物质标记的,能与特定的核酸序列发生特异性互补的已知DNA或RNA片段。
根据其来源和性质可分为cDNA探针、基因组探针、寡核苷酸探针、RNA探针等。
固相杂交固相杂交(solid-phasehybridization)是将变性的DNA固定于固体基质(硝酸纤维素膜或尼龙滤膜)上,再与探针进行杂交,故也称为膜上印迹杂交。
斑步杂交(dot hybridization)是道先将被测的DNA或RNA变性后固定在滤膜上然后加入过量的标记好的DNA或RNA探针进行杂交。
该法的特点是操作简单,事先不用限制性内切酶消化或凝胶电永分离核酸样品,可在同一张膜上同时进行多个样品的检测;根据斑点杂并的结果,可以推算出杂交阳性的拷贝数。
该法的缺点是不能鉴定所测基因的相对分子质量,而且特异性较差,有一定比例的假阳性。
印迹杂交(blotting hybridization)Southern印迹杂交:凝胶电离经限制性内切酶消化的DNA片段,将凝胶上的DNA变性并在原位将单链DNA片段转移至硝基纤维素膜或其他固相支持物上,经干烤固定,再与相对应结构的已标记的探针进行那时交反应,用放射性自显影或酶反应显色,检测特定大小分子的含量。
可进行克隆基因的酶切图谱分析、基因组基因的定性及定量分析、基因突变分析及限制性长度多态性分析(RELP)等。
Northern印迹杂交:由Southerm印杂交法演变而来,其被测样品是RNA。
生物素标记步骤生物素标记啊,就像是给小分子或者生物大分子戴上一个独特的小标签。
这事儿听起来有点复杂,可一旦搞明白,就像学会了一个超级有趣的魔法。
先来说说生物素标记的材料准备。
你得有生物素化试剂,这就像是魔法药水,是整个标记过程的关键家伙。
不同的生物素化试剂就像不同口味的糖果,各有各的用处。
然后呢,要标记的目标分子也得准备好,不管是蛋白质还是核酸,它们就像等待打扮的小娃娃。
还需要合适的缓冲液,缓冲液就像一个温柔的保护罩,让整个反应在合适的环境里进行,不至于太“暴躁”或者太“消沉”。
比如说,对于某些蛋白质的生物素标记,磷酸盐缓冲液就常常被用到,就像某些菜一定要放特定的调料一样。
接着就是正式的标记过程啦。
如果是标记蛋白质,要先确保蛋白质处于一个良好的状态。
就像人要精神饱满才能去参加活动一样。
一般要把蛋白质溶解在合适的缓冲液里,浓度也要合适,不能太浓像浆糊,也不能太稀像清汤寡水。
然后慢慢地加入生物素化试剂,这个加入的速度很有讲究,太快了就像一阵狂风把好好的布置都吹乱了,可能会导致标记不均匀或者产生一些不好的副反应。
就像画画的时候一笔画得太急,线条就歪歪扭扭的。
要慢慢地、稳稳地加进去,一边加还要一边轻轻搅拌,就像搅拌咖啡一样,让生物素化试剂和蛋白质能够充分地“拥抱”“打招呼”。
标记核酸也有它自己的小窍门。
核酸分子本身就像一串精致的小珠子项链。
首先要让核酸处于合适的离子环境中,这就像给项链找一个合适的展示台。
然后加入生物素化试剂的时候,要注意温度的控制。
有些核酸标记在常温下就可以顺利进行,就像有些花在春天的常温下就开得很好。
但有些可能需要稍微高一点或者低一点的温度,就像有些花需要在温室或者凉爽的环境里才肯盛开。
而且标记的时间也很关键,时间太短可能标记不完全,就像给蛋糕上的奶油只涂了一半。
时间太长呢,又可能会出现一些意外情况,就像蛋糕在烤箱里烤过头了。
在标记的过程中,有时候会遇到一些小麻烦。
比如说标记效率不高,这就像种庄稼收成不好一样让人头疼。
生物素标记rna
生物素标记RNA是一种常用的实验技术,它可以用于研究RNA的生物学功能和分子机制。
生物素标记RNA的原理是将生物素分子与RNA分子结合,从而使RNA分子具有生物素的特性,可以用生物素亲和素或其他生物素结合蛋白进行检测和纯化。
生物素标记RNA的制备方法有多种,其中最常用的是化学合成法和转录法。
化学合成法是将生物素分子与RNA分子通过化学反应结合在一起,而转录法则是利用RNA聚合酶将生物素标记的核苷酸加入到RNA分子中。
无论是哪种方法,都需要对生物素标记RNA进行纯化和检测,以确保其质量和纯度。
生物素标记RNA的应用范围非常广泛,包括基因表达分析、RNA 互作研究、RNA结构和功能研究等。
其中,基因表达分析是最常见的应用之一。
通过将生物素标记RNA与细胞或组织中的RNA混合,可以利用生物素亲和素或其他生物素结合蛋白将其分离出来,从而分析RNA的表达水平和差异表达基因。
此外,生物素标记RNA还可以用于RNA互作研究,通过将生物素标记RNA与RNA结合蛋白或RNA结合小分子混合,可以分析RNA的结构和功能。
生物素标记RNA是一种非常有用的实验技术,可以用于研究RNA 的生物学功能和分子机制。
它的制备方法简单,应用范围广泛,是RNA研究领域中不可或缺的工具之一。
生物素-亲和素放大技术考点总结第一节生物素的理化性质与标记一、活化生物素利用生物素的羧基加以化学修饰可制成各种活性基团的衍生物,称为活化生物素。
(一)标记蛋白质氨基的活化生物素将生物素与N-羟基丁二酰胺在碳二亚胺的作用下进行缩和,生成BLAHS。
BLAHS中的-C=0基团与蛋白质分子中赖氨酸的氨基形成肽键,从而标记上生物素。
(二)标记蛋白质醛基的活化生物素有两种:生物素酰肼(BHZ,用于偏酸性糖蛋白的生物素标记)和肼化生物胞素(BGHZ)。
(三)标记蛋白质巯基的活化生物素:3-(N-马来酰亚胺-丙酰)-生物胞素(MPB)是能特异地与蛋白质巯基结合的活化生物素试剂。
(四)标记核酸的活化生物素:生物素戊酸侧链通过酰胺键与核酸分子相连,构成生物素标记的核酸探针。
1.光敏生物素:用于DNA或RNA的标记。
2.生物素脱氧核苷三磷酸:将生物素与某种脱氧核苷酸连接成活化生物素。
用缺口移位法掺入到双链DNA中。
3.BNHS和BHZ:与核酸胞嘧啶分子中的N-4氨基交联,使核酸分子生物素化。
二、生物素标记蛋白质(一)生物素化蛋白质衍生物的特性生物素通过羧基与多种大分子偶联活化。
一个蛋白质分子可连接多个生物素分子,在与亲和素的反应中成为多价。
生物素化蛋白质衍生物有两类,一种是生物素化的大分子活性物质(如抗原、抗体),另一种是标记材料(如酶)结合生物素后制成的标记物。
(二)标记方法1.标记抗体、抗原:由于一个抗体分子可连接多个生物素分子,因此一个生物素化的抗体分子在反应时可与多个亲和素分子结合。
通常选用第二抗体进行生物素标记,制备的标记物具有通用性。
2.标记酶:如生物素标记辣根过氧化物酶(HRP)。
(三)标记注意事项1.应根据抗原或抗体分子结构中所带可标记基团的种类(氨基、醛基或巯基)以及分子的理化性质(酸性、中性或碱性),选择相应的活化生物素和反应条件。
2.标记反应时,活化生物素与待标记抗原或抗体应有适当的比例,使每个蛋白质分子上标记的生物素分子数量控制在一定范围,以免影响标记物的活性。
抗体生物素标记操作方法一般每个抗体可以标记3-5个生物素,标记时,生物素与抗体的比率受抗体浓度影响,对于10 mg/ml 的抗体溶液来说,生物素应超过蛋白12倍(摩尔数),对于2 mg/ml 的抗体溶液应超过20倍,生物素也可以直接以粉末的形式加入蛋白溶液中。
蛋白样品不得含有叠氮钠、BSA、甘氨酸、Tris或其他任何有自由氨基的添加物。
一、试剂和器材:1、标记反应溶液:0.1M pH 7.2 PBS(0.15M sodium chloride)NaCl 8.77 g ;Na2HPO4·12H2O 32.3g ;NaH2PO4·2H2O 4.5g;加双蒸水 900mL左右,用HCl/NaOH 调pH至 7.2,最后定容为 1000mL2、 10mM NHS-dPEG4-Biotin配方:称取0.56mg NHS-dPEG4-Biotin(分子量为587),溶解于95 µl 超纯水中,临用前配置,不可储存,立刻使用。
NHS-PEG4-Biotin容易潮解,开瓶前平衡至室温。
也可以配置200 nmol/L 储备液:20mg NHS-dPEG4-Biotin溶解于170µl DMSO中,-20℃稳定几个月。
由于NHS-PEG4-Biotin昂贵,而且使用量少,不能保存,配制时,直接将NHS-PEG4-Biotin放入1.5ml EP管中,以实际称量的NHS-PEG4-Biotin按比率加入超纯水。
3、超滤管⑴、Millipore超滤管[0.5ml 10KD]:截留分子量10KD,残留体积200µl,蛋白回收率95%,7500×g(允许的最大离心力14000×g)离心10min。
⑵、Millipore超滤管[0.5ml 50KD]:截留分子量50KD,残留体积80µl,蛋白回收率94%,7500×g(允许的最大离心力14000×g)离心5 min。