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痰检室标准操作程序一、进入实验室工作前，穿戴工作衣、口罩、帽子、手套。
二、痰标本分类：1、即时痰；2、夜间痰；3、次日晨痰。
三、痰标本性状分类：A、干酪痰；B、血痰；C、黏液痰；D、唾液痰。
标本量一般3—5ml。
四、标本采集：（一）初诊患者应收集3份痰液标本（1.即时痰；2.夜间痰；3.次日晨痰）；（二）治疗中或者随访患者按期留取2份标本（1.晨痰；2.夜痰）。
注：若当日未能检查的标本，应放入4℃冰箱保存，避免干固或污染。
五、标本处理：（一）收集痰标本后，首先将病人姓名、编号（初诊病人门诊序号或随访病人登记号）、痰标本序号和性状作登记。
（二）用铅笔在有磨砂面的新玻片上注明实验序号及标本序号。
注：确保玻片上的编号与痰盒上的编号一致（三）小心打开痰标本容器，使用折断的竹签挑取痰标本中可疑部分，于玻片正面均匀涂抹成10㎜×20㎜的卵圆形痰膜。
注：取样、染色必须在通风柜中进行。
（四）待痰涂片自然干燥后，放置在染色架上，玻片间距离10㎜以上，酒精灯5秒钟内将玻片经过火焰加热4次固定。
（五）染色：1、滴加石炭酸复红初染液盖满玻片，加热出现蒸汽，染色5分钟。
2、用流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，滴加脱色液，脱色1分钟。
3、用流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，滴加亚甲蓝复染液，染色30秒。
4、流水自玻片一端轻缓冲洗，沥干水，待玻片干燥后镜检。
（六）镜检：1、取染色干燥的玻片，痰膜向上放置在显微镜台上并固定。
2、先用10倍目镜调节成像清晰后，在玻片上滴1—2滴专用镜油，使用100倍油镜进行细致观察。
六、结果判定：阅片时，从头开始，以“弓”形移动读片，在淡蓝色背景下，抗酸杆菌呈红色杆状，其他细胞呈现蓝色。
1、观察300视野未见抗酸杆菌为阴性；2、1-8条/300视野以条数报告；3、3-9条/100视野为1+；4、1-9条/10视野为2+；5、1-9条/每视野为3+；6、≥10条/每视野为4+。
七、使用完显微镜后，立即用镜头纸将油镜擦净，关闭显微镜电源。
、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25 为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25 为合格痰标本。
2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养18-24 小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验---- 报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌一待冷却后一取粪便一接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板得底部向上）于35°C 培养。
4培养18-24 小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验--- 报告结果。
尿培养标准操作流程1收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌一待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul（大约一接种环）一接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
痰液常规检查标准操作规程【操作人员】经批准人授权的同志。
【部门主管】【质量控制员】【目的】保证测试结果的准确性。
【适用仪器范围】双目显微镜。
【该SOP变动程序】该标准操作程序的更改，可由任一使用本程序的操作人员提出并报请专业主管及科主任签字后生效。
【应用范围】痰液常规检查的手工操作。
【标本采集】痰液标本收集法因检验目的不同而异，但所用容器须加盖，痰液勿污染容器外(用不吸水容器盛留)。
1．痰液的一般检查应收集新鲜痰，病人起床后刷牙，漱口(用3％H2O2及清水漱3次) 用力咳出器官深部痰液,勿混入唾液及鼻咽分泌物。
2．细胞学检查用上午9-10时深咳的痰液及时送检(清晨第一口痰在呼吸道停留时久，细胞变性结构不清)，应尽量送含血的病理性痰液。
3．浓缩法找抗酸杆菌应留24h痰（量不少于5ml)，细菌检验应避免口腔、鼻咽分泌物污染。
4．困难者用45摄氏度10%NaCl水溶液雾化吸入，刺激咳痰。
【一般性状检查】正常人一般无痰或仅有少量泡沫痰或粘液样痰。
1.颜色正常参考值：无色或灰白色。
临床意义：(1)黄色提示呼吸道化脓性感染，见于化脓性支气管炎、金黄色葡萄球菌性肺炎、支气管扩张、肺脓肿等；(2)红色或咖啡色因痰中含有血液或血红蛋白，见于肺癌、肺结核、支气管扩张等；(3)绿色痰可见于黄疸、吸收缓慢的大叶性肺炎或肺部铜绿假单胞菌感染；(4)铁锈色多因血红蛋白所致，见于大叶性肺炎或肺坏死等；(5)棕褐色见于慢性充血性心脏病肺淤血、阿米巴肺脓肿；(6)灰黑色因吸入大量煤炭粉尘或长期吸烟所致，见于各种肺尘埃沉着症。
(7)烂桃样或果酱样痰见于肺吸虫病。
2.性状正常参考值：稍粘稠状。
临床意义：(1)浆液脓性肺组织坏死、支气管哮喘、肺脓肿。
(2)粘液性支气管哮喘、大叶性肺炎等。
(3)血性肺结核、肺吸虫、支气管扩张、肺梗塞、肺癌。
(4)脓性肺脓肿、穿透性脓胸、支气管扩张。
3. 肉眼可见的异样物质(1)支气管管型：是由纤维蛋白、粘液等在支气管内塑型而成的白色、灰白色树枝状。
2.2.2.3滴加亚甲蓝复染液，染色30秒，流水从玻片一端轻缓冲洗，冲去复染液，沥去玻片上剩余的水，待玻片干燥后镜检。
2.2.3待检涂片检查2.2.3.1染色合格的涂片，由于被亚甲蓝染色而呈均匀亮蓝色，且无红色斑块；染色后的痰膜脱落部分应小于整个涂布面积的10%2.3镜检2.3.1油镜下观察300个视野以上或者连续观察5分钟2.3.2观察方法2.3.2.1使用10×目镜双目显微镜读片；2.3.2.2取染色完毕且已经干燥的玻片，痰膜向上放置在玻片台上并以卡尺固定；2.3.2.3首先使用40×物镜，转动卡尺移动玻片至痰膜左端，将光线调节至适当亮度，调节焦距至可见细胞形态；2.3.2.4移开40×物镜，在玻片上滴1-2滴镜油，使用100×油镜进行仔细观察。
但应注意避免油镜镜头直接接触玻片上的痰膜。
2.3.2.5读片时，首先应从左至右观察相邻的视野；当玻片移动至痰膜一端时，纵向向下转换一个视野，然后从右至左观察，以此类推；2.3.2.6在淡蓝色背景下，抗酸菌呈红色；其他细菌和细胞呈蓝色。
2.3.2.7仔细观察完300各视野，一般需要5分钟；每个工作日，一位镜检人员阅读玻片量不超过25张，且连续阅读10-12张玻片后应休息20分钟左右。
2.4结果判断2.4.1阴性：镜检300个视野以上或连续观察5分钟未发现抗酸杆菌2.4.2阳性：阳性（300个视野内有1~8条抗酸杆菌）阳性1+（100个视野内有3~9条抗酸杆菌）阳性2+（10个视野内有1~9条抗酸杆菌）阳性3+（每个视野内有1~9条抗酸杆菌）阳性4+（每个视野内有9条以上抗酸杆菌）2.5结果报告与记录2.5.1将检测结果填写入申请单报告栏，报告格式如下:涂片1：阴性（-）镜检结果：涂片2：阴性（-）涂片3：阴性（-）2.5.2将检测结果记录于结合门诊检测登记册中：涂片号标本性状检测结果例： 1： D 阴性（-）2： D 阴性（-）3： D 阴性（-）2.6痰涂片的保存2.6.1阅读完毕后的涂片，应及时用擦镜纸轻轻在涂片上揭取数次，彻底去除玻片上的镜油。
.痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1 观察标本合格后操作。
一般为晨痰，再留取痰之前刷牙、反复漱口，应从气管深部咳出痰，吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10，上皮细胞大于25为不合格痰，相反白细胞大于25，上皮细胞小于10-25为合格痰标本。
2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域的划线应接触上一区域的接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板的底部向上）于35°C培养18-24小时。
4观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
便培养标准操作流程1.收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2.点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3.接种环灭菌—待冷却后—取粪便—接种到血平板、SS平板、中国兰平板（或麦康凯平板上）。
平板划线分离培养：（1）用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线，在第二三区依次用接种环划线。
（2）每划一区域应将接种环烧灼一次，冷却后再划下一区域，每一区域的划线应接触上一区域的接种线2-3次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
（3）划线完毕将平板加盖倒置（琼脂平板的底部向上）于35°C培养。
4培养18-24小时后观察菌落特征涂片染色，确定阳性菌、阴性菌、球菌还是杆菌后鉴定种属。
5 做药敏试验-------报告结果。
尿培养标准操作流程1 收取晨尿第一泡清洁中段尿。
（把外阴用肥皂清洗一遍，再用清水清洗两遍，待干或用干净布擦干）用导尿管的病号需新换导尿管后取标本2 点燃酒精灯，尽量保证无菌中间。
3 接种环灭菌—待冷却后将标本混匀，用定量接种环取尿液1ul(大约一接种环）—接种到血平板，接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板（或麦康凯平板上）。
乡镇卫生院痰检点设置及实验室操作规程卫办疾控发〔2005〕16号各省、自治区、直辖市卫生厅局，新疆生产建设兵团卫生局，中国疾病预防控制中心：根据卫生部办公厅《关于开展在乡镇卫生院设置结核病痰涂片检查点工作的通知》（卫办疾控发〔2004〕78号）的要求，我部组织制定了《乡镇卫生院结核病痰涂片检查点设置及实验室操作规程》，现印发各地，请遵照执行。
二○○五年一月十四日乡镇卫生院结核病痰涂片检查点设置及实验室操作规程在以县（市）为单位实施现代结核病控制策略（DOTS）的地区，通过在乡镇卫生院设臵结核病痰涂片检查点（以下简称查痰点），方便肺结核可疑症状者和疑似肺结核病人的就诊查痰，以达到提高涂阳肺结核病人发现率，缩短传染性肺结核病人的就诊延误和治疗延误时间，降低结核病传播的目的。
一、乡镇卫生院查痰点工作职责（一）乡镇卫生院查痰点负责辖区及周围乡镇肺结核可疑症状者和疑似肺结核病人的痰检工作。
（二）查痰点是结核病诊断的初筛单位，凡痰涂片阳性病人或痰涂片阴性但高度怀疑肺结核者需转至县级结防机构进一步检查确诊。
（三）镜检阳性的痰涂片2日内应得到县级结防机构实验室确认，阴性涂片一周内应得到县级结防机构实验室的复验。
痰涂片的转送方法可根据当地情况决定。
（四）乡镇卫生院查痰点实验室须按要求做好痰涂片保存和各项资料的登记、统计管理工作。
二、查痰点的基本要求（一）痰涂片检查点首先应做好实验室工作用房的准备，根据乡镇卫生院现有工作用房进行合理调整和布局。
实验室面积不小于10平方米，按功能划分为操作区，用于痰涂片制备、染色，相对洁净区，用于镜检、登记等（见图1）。
（A）供收集痰标本使用；（B）痰涂片制备；（C）染色池；（D）洗手池；（E）显微镜读片；（F）实验室登记和痰涂片储存图1：痰涂片检查实验室基本布局（二）依据《病原微生物实验室生物安全管理条例》规定，查痰点实验室须具备开展痰涂片检查工作的水源、消毒、污物处理等一般检验条件。
第1篇一、目的为了规范痰诱导实验工作，提高痰诱导实验质量，确保实验结果准确可靠，特制定本制度。
二、适用范围本制度适用于所有进行痰诱导实验的工作人员、实验室及相关管理人员。
三、痰诱导实验工作流程1. 实验准备（1）实验人员需具备一定的医学基础知识，熟悉痰诱导实验原理和操作流程。
（2）实验前，需了解受试者的病史、用药史、过敏史等，评估受试者是否适合进行痰诱导实验。
（3）实验前，向受试者详细讲解实验目的、方法、可能出现的反应及注意事项，取得受试者同意。
（4）实验所需设备、试剂、耗材等准备齐全，并进行质量检查。
2. 实验操作（1）受试者进入实验室，安静休息15-20分钟。
（2）实验人员协助受试者取舒适体位，嘱其深呼吸，将痰液咳出。
（3）使用痰诱导剂，如氯化铵、乙酰半胱氨酸等，按照说明书要求配制成溶液。
（4）将痰诱导剂溶液雾化吸入，时间约5-10分钟。
（5）雾化吸入后，嘱受试者静坐休息10分钟，观察受试者是否有咳嗽、咳痰等反应。
（6）受试者咳嗽时，指导其将痰液咳入集痰杯中。
（7）收集痰液样本，按照实验室规定进行编号、记录。
3. 实验结果处理（1）实验人员将收集到的痰液样本进行离心、沉淀等处理。
（2）采用显微镜、仪器等对痰液样本进行检测，如细菌培养、细胞学检测等。
（3）对实验结果进行统计分析，撰写实验报告。
四、痰诱导实验工作要求1. 实验人员应具备良好的职业道德，严格遵守实验规范，确保实验结果准确可靠。
2. 实验过程中，严格遵守无菌操作原则，防止交叉感染。
3. 实验操作前，对受试者进行充分沟通，取得受试者同意。
4. 实验过程中，密切观察受试者反应，如有不适，立即停止实验，给予相应处理。
5. 实验结束后，对受试者进行健康教育，告知实验结果。
6. 实验记录完整、准确，及时整理归档。
五、痰诱导实验工作考核1. 定期对实验人员进行专业技能培训，提高实验人员业务水平。
2. 对实验人员进行考核，考核内容包括实验操作、实验记录、实验结果处理等方面。
痰检室工作制度
1．痰检人员要树立不怕脏，不怕累，全心全意为病人民效劳的优良传统，认真负责，正确检验每一份痰标本，为临床医生提供可靠的诊断依据。
2．保持痰检室内外卫生清洁，定期进展消毒，经常开启窗户通风。
3．检查前必须穿戴工作衣帽，戴口罩、手套，做好个人防护。
3．收到痰标本先查看是否合格，不合格者应要求重新送检，合格痰标本及时登记、检验，在24小时内报告检验结果，难以获得合格的痰标本时，也应进展细菌学检查，但应注明标本性状，以供分析结果参考。
4．严格按实验室规程进展操作。
5．痰检报告单上病人姓名、实验室序号及结果必须与实验室登记本保持一致。
6．按实验序号依次妥善保存近期3个月内的全部痰涂片，以备上级实验室复查。
7．废弃的标本和痰盒等污物须用专用的带盖法污物桶收集，并及时进展无害化处理。
8．痰检工作台面应以5%石碳酸或期其它可靠消毒液擦拭，再用紫外线灭菌距离50cm，照射30分钟。
9．染色液的配制必须准确，以免造成检验误差，每次配制的染色液须先行试用，不合格者重新配制。
备用的染色液存放在棕色瓶内避光保存，试剂瓶上标明染色液的名称、浓度和配制时间，做好配制
记录，以备检查。
10．维护好显微镜等仪器设备，每次用毕后及时切断电源并擦拭干净，保证仪器性能的良好。
痰标本采集标准操作规程
痰标本质量的合格与否，是确定痰标本检验成败的基础和前提。
如果没有一份合格的标本，检验人员无论如何也不会做出能够准确反映病人真实状况的检验结果，检验质量的控制更无从谈起，属无效检验。
因此，痰标本的规范化采集是检验结果准确性的前提。
一．采集方法指导：
对疑似肺结核病者，临床医护人员应通过口头讲解，使其充分了解标本质量对涂片显微镜检查、一般细菌培养、结核菌培养的重要性。
如果患者识字，可提供宣传教育材料。
二．正确的收集痰液方法如下：
1．清晨刷牙漱口，深吸气2~3次，每次用力呼出。
2．从肺部深处咳出3~5ml（约一到二口）
3．将打开盖的痰盒靠近嘴边处收集痰液
4．拧紧盒盖
三．采集痰标本地点
当患者咳嗽、咳痰时，易产生含有结核菌的气溶胶，感染周边人群的几率很高，故采集痰标本时应在远离人群的开放空间或通风良好的留痰室内进行。
四．痰标本的评价
（一）合格的痰标本按性状，可分为以下几种：
1．干酪痰：标本外观以黄色（或奶酪色）、脓样、团块状的肺部分泌物为主，黏度较黏液痰低，制片时较易涂抹；有大量脓性炎症细胞、肺上皮脱落细胞。
对肺结核的诊断最有价值，故抗酸杆菌（AFB）涂片及细菌培养的检出率较高。
2．血痰：此类标本是在黏液痰或干酪痰中混有血液，颜色为褐色或深褐色、鲜红色或伴有血丝。
3．黏液痰：标本外观以白色、黏稠度较高的肺部和支气管分泌物为主，此类标本AFB的检出率较唾液高。
（二）不合格痰液：
唾液或口水：标本外观以透明或半透明水样、黏度较低的口腔分泌物为主，有时伴有气泡；AFB检出率最低。
留取痰标本的正确采集方法
留取痰标本是一项重要的临床操作，正确的采集方法对于确诊
呼吸道疾病具有重要意义。
以下是正确的痰标本采集方法：
1. 预备工作，在进行痰标本采集前，首先要保证患者口腔的清洁，以避免口腔细菌的污染。
同时，采集工具如痰杯、标签等也要
提前准备妥当。
2. 咳痰方法，让患者坐在椅子上，深呼吸几次，然后用力咳嗽，将痰咳出到痰杯中。
有时候需要让患者进行雾化吸入，以促进痰液
的分泌。
3. 痰液采集，使用消毒过的痰杯，将患者咳出的痰液收集到痰
杯中。
避免接触痰液的外部容器，以免污染。
4. 标本处理，在痰杯上标注患者的姓名、日期、时间等信息，
确保标本能够被准确识别。
然后将标本送往实验室进行检验。
5. 清洁消毒，采集完痰标本后，要及时清洁消毒采集工具，以
避免交叉感染。
另外，需要注意的是，在采集痰标本的过程中，医护人员要做好个人防护，避免接触患者的呼吸道分泌物，以免感染。
同时，要确保痰标本的采集和处理符合医疗废物处理的相关规定，避免对环境和他人造成污染和危害。
总的来说，正确的痰标本采集方法包括预备工作、咳痰方法、痰液采集、标本处理和清洁消毒等环节，严格遵循操作规程，可以确保采集到的标本质量良好，有助于准确诊断呼吸道疾病。
第1篇一、实验目的痰标本实验主要用于检查痰液中是否存在病原微生物，如细菌、病毒、真菌等，以协助诊断呼吸系统疾病。
本实验报告流程旨在规范痰标本的采集、处理、检验及报告流程。
二、实验流程1. 标本采集（1）评估患者病情：采集痰标本前，评估患者的病情、年龄、治疗情况、排痰情况及配合程度。
（2）物品准备：备好痰标本采集容器、无菌手套、生理盐水、漱口液等。
（3）采集方法：a. 常规痰标本：嘱患者晨起后用清水漱口清洁口腔，然后用力咳出气管深处的痰液，盛于痰标本容器内。
b. 24小时痰标本：嘱患者将24小时内（晨7时至次晨7时）的痰液全部留于清洁广口瓶内。
c. 培养标本：嘱患者清晨起床后先用朵贝儿溶液漱口，再用清水漱口，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液，盛于无菌培养瓶或盒内。
2. 标本处理（1）常规痰标本：将痰液置于生理盐水中，剧烈振荡5-10秒，然后用接种环将沉淀于管底的脓痰小片沾出，放入另一试管内，重复此过程两次。
（2）培养标本：将痰液接种于适宜的培养基上，置于37℃恒温箱中培养。
3. 检验（1）一般细菌涂片检查：挑选痰液中脓性或带血部分，涂成均匀薄片，行革兰氏染色，镜检。
（2）痰培养：观察培养基上是否有菌落生长，并进行鉴定。
4. 结果报告（1）根据检验结果，报告病原微生物的种类、数量等信息。
（2）若为细菌感染，报告敏感抗生素及耐药情况。
（3）若为病毒、真菌感染，报告病原微生物的种类。
三、注意事项1. 采集痰标本时，注意无菌操作，避免污染。
2. 标本采集后，尽快送检，以免影响检验结果。
3. 检验过程中，严格按照操作规程进行，确保检验结果的准确性。
4. 对患者进行解释，取得患者的配合。
四、实验总结痰标本实验是呼吸系统疾病诊断的重要手段之一。
本实验报告流程规范了痰标本的采集、处理、检验及报告流程，有助于提高检验结果的准确性，为临床诊断提供有力支持。
在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保实验结果的可靠性。
第2篇一、实验目的痰标本实验是对痰液进行微生物学、细胞学、病理学等方面的检测，以辅助临床诊断和治疗。
痰培养标本采集与运送标准操作规程目的：正确采集痰培养标本并运送内容：一.标本来源：痰/气管抽吸物（TA）、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。
二.容器：洁净、广口、无菌、加盖、密封、防渗漏。
不含防腐剂和抑菌剂，一次性使用。
三.采集方法清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用洁口液，再用清水漱口，以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，痰量极少可用45℃10%氯化钠溶液雾化吸入导痰。
建立人工气道，如气管切开或气管插管者，戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管，一头缓慢插入气管致隆突（叶支气管）水平，一头接电动吸引器，螺旋式抽吸，吸引痰液。
四.注意事项1．以清晨第二口痰为佳。
防止唾液及上呼吸道分泌物污染。
2．在抗生素使用前采集价值高。
3．连续采集3～4次,采集间隔时间>24h。
五.结果判断1．正常人体的下呼吸道是无菌的，上呼吸道有正常菌群栖居。
2．合格痰的涂片镜检鳞状上皮细胞〈10个/低倍视野，白细胞〉25个/低倍视野，或两者比例小于1：2.5。
3．连续两次分离出相同的病原菌可认为是感染病原菌。
4．经纤维支气管镜和人工气道吸引采集分泌物分离出的细菌可认为是感染病原菌。
5．痰液与血液或胸水中分离到相同病原体，有诊断意义。
6．痰培养常见病原菌为肺炎链球菌、乙型溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌、厌氧性球菌、结核分枝杆菌等。
7．痰中的病原菌不少属于机会致病菌，应根据病情判断。
六.临床微生物标本送检的注意事项1．标本及时送检避免干燥，不能及时送检者可暂存4℃冰箱。
如在室温下放置数小时，则定植于口咽部的非致病菌过度生长，而肺炎球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显下降。
故标本采集后送检时间不得超过2小时。
2．送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3．送检期间要予以安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
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痰培养操作流程sop痰培养是一种常见的临床实验室检查方法，用于检测痰样本中的细菌、真菌和病毒等微生物。
正确的痰培养操作流程对于准确诊断和治疗疾病至关重要。
下面是一份关于痰培养操作流程的标准操作规程（SOP）：1. 收集痰样本：首先，需要向患者解释痰培养的目的和过程，并告知患者如何正确收集痰样本。
患者应该在清晨醒来后进行痰样本的收集，以确保样本的新鲜度和准确性。
2. 标本处理：将患者收集的痰样本转移到干净、干燥的容器中，并密封好。
在标本处理过程中，操作人员应该佩戴手套和口罩，以避免交叉感染。
3. 样本传送：将标本送往实验室进行痰培养前，需要填写标本送检单，并确保标本的标识清晰准确。
在传送过程中，要注意避免样本的温度变化和震动。
4. 样本处理：实验室接收到痰样本后，首先需要进行样本的离心处理，以分离细菌和其他微生物。
然后将样本接种到不同的培养基上，以促进微生物的生长。
5. 培养条件：根据不同的微生物种类，需要在不同的培养条件下进行培养。
通常情况下，细菌需要在37摄氏度的培养箱中培养，而真菌和病毒则需要在不同的培养基上进行培养。
6. 结果解读：培养后的样本会形成不同形状和颜色的菌落，实验室技术人员需要根据菌落的形态和生长特性来鉴定微生物的种类。
最终，会生成一份痰培养报告，告知医生检测结果。
7. 结果分析：医生根据痰培养报告来判断患者是否感染了细菌、真菌或病毒，并根据检测结果来制定相应的治疗方案。
痰培养结果对于选择抗生素和其他治疗药物具有重要的指导意义。
总的来说，痰培养操作流程需要严格按照标准操作规程来进行，以确保检测结果的准确性和可靠性。
只有通过正确的操作流程和专业的实验室技术人员，才能为临床医生提供准确的诊断信息，帮助患者及时得到有效的治疗。
市人民医院痰标本采集法操作规程
目的：
根据医嘱采集患者痰标本，进行临床检验，为诊断和治疗提供依据
评估：
1、询问、了解患者身体状况，向患者解释采集标本的目的、意义、方法及注意事项，取得配合。
2、观察患者口腔黏膜有无异常和咽部情况
准备：
1、护士准备：衣帽整洁、洗手、戴口罩、必要时戴手套
2、用物准备：化验单。
常规痰标本：痰盒。
24h小时痰标本准备容积约500ml的清洁广口容器。
培养标本准备无菌集痰器、漱口溶液200ml.
操作：
1、携用物至患者床旁，核对患者
2、常规标本：患者晨起后漱口，去除口腔中杂质，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液，盛于收集的痰盒中送检。
如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或10%甲醛固定后送检。
3、24h痰标本：注明留痰起止时间，嘱患者将24痰吐入容器内，并嘱不可将痰液，漱口水、鼻涕等混入，及时送检
4、培养标本：清晨起床后先用漱口溶液漱口，以清除口腔内细菌，深呼吸数次后用力咳出气管渗出的痰液于无菌集痰器内，立即送检。
昏迷患者可用吸痰法吸取
5、为人工辅助呼吸者吸痰时，要戴无菌手套，将痰液收集器连接在负压吸引器上，正确留取标本
6、分类整理用物，洗手；协助患者取舒适卧位；并做好记录。
整体要求：
1、护士在采集过程中要注意根据检查目的选择正确的容器
2、患者做痰培养及痰找癌细胞检查时，应及时送检。
痰检实验室操作规程一、检查程序（一）痰标本收集：在三个痰标本盒上注明病人的姓名、编号、检查日期和容器序号。
病人首次留痰前应指导病人，留取“即时痰”、“夜间痰”、“晨痰”合格的痰标本，对所送不合格痰标本除常规检查外，应要求患者重新送检，合格的痰标本包括干酪痰、血痰、粘液痰。
唾液或口水用于病人确诊时为不合格痰标本，标本量一般在3～5 ml。
（二）痰涂片制作：1、检查前对新的玻片用95%的乙醇擦拭脱脂，经干燥、清洁、检查无油污、无划痕后作为合格的玻片备用。
在已经准备的痰玻片背面左端的1/3处注明编号，挑取痰标本中可疑部分约0.05～0.1 ml，于玻片正面右侧2/3处，均匀涂抹成10×20 mm的卵圆形痰膜。
2、痰膜朝上静置自然干燥后(一般约需要30分钟)进行染色镜检。
当气温低，痰膜不易干燥时，严禁将玻片直接在火焰上烘拷，以防产生气溶胶或痰膜脱落。
一张载玻片上只能涂抹一份痰标本，一张载玻片只能使用一次，不得清洗后再次用于痰涂片染色检查。
3、涂抹完毕后的痰标本，在检查结果报告前，应暂时保留。
以备涂片、染色不合格影响镜检结果时，重新涂片和染色之用。
4、萋－尼氏染色油镜检查.（三）实验室登记：按照年度病人序号和痰标本序号在实验室登记本上进行登记，并以同样的号码在痰涂片检查单上进行标记。
检验单的病人姓名应与实验室登记本一致。
（四）痰涂片检查结果登记与报告：及时在登记本上登记痰涂片检查结果。
当病人的三次痰涂片检查完成后，发现有阳性痰涂片，应在规定时间内报医院防保科，县级结核病防治机构再对痰涂片进行确认。
（六）痰涂片的保存：每个查痰点镜检后的全部痰涂片应按实验室登记本序号连续排列，分别存放在各点固定的玻片盒中，供上级实验室复核确认。
（七）痰检质量控制：每个痰涂片检查点均按照中国结核病防治规划《痰涂片镜检质量保证手册》的要求，作为一个独立的被质控单位接受室间质量评估和检查工作。
二、萋－尼氏染色1、涂片自然干燥后，放置在染色架上，玻片间距保持在10 mm以上的距离；火焰固定(在5秒钟内将玻片置于火焰上来回烘烤4次)。
2、滴加石碳酸复红染液，盖满痰膜，火焰加热至出现蒸汽后，脱离火焰，保持染色5分钟。
染色期间应始终保持痰膜被染色液覆盖，必要时可续加染色液。
加温时勿使染色液沸腾。
3、流水自玻片一端轻缓冲洗，冲去染色液，沥去标本上剩余的水。
4、自痰膜上端外缘滴加脱色剂布满痰膜，脱色1分钟；如有必要，需流水洗去脱色液后，再次脱色至痰膜无可视红色为止。
5、流水自玻片一端轻缓冲洗，冲去脱色液，沥去玻片上剩余的水。
6、滴加亚甲蓝复染液，染色30秒钟。
7、流水自玻片一端轻缓冲洗，冲去复染液，沥去标本上剩余的水。
待玻片干燥后镜检。
一张染色合格的痰玻片，由于被亚甲蓝染色而呈亮蓝色。
将染色后的玻片放置在报纸上，如果报纸上的文字透过痰膜不能被看清，表明该玻片涂抹过厚。
三、显微镜检查1、使用10倍目镜双目显微镜读片。
2、取染色完毕且已干燥的玻片，痰膜向上放置在玻片台上并以卡尺固定。
首先使用40倍物镜，转动卡尺移动玻片至痰膜左端，将光线调节至适当亮度，调节焦距至可见细胞形态；移开40倍物镜，在玻片上滴1～2滴镜油，使用100倍油镜进行细致观察。
在淡蓝色的背景下，抗酸菌呈红色，其他细菌和细胞呈蓝色。
为防止抗酸杆菌的交叉污染，严禁镜头直接接触玻片上的痰膜。
3、读片方法：首先应从左向右观察相邻的视野；当玻片移动至痰膜一端时，纵向向下转换一个视野，然后从右向左观察，依此类推。
通常10×20 mm大小的痰膜，使用100倍油镜，每行可观察100个视野，观察三行则约为300个视野。
仔细观察完300个视野，一般至少需要5分钟以上。
油镜观察，可见单个存在的，也能看到聚集成簇或分枝状排列的菌体，染色良好痰标本，可见菌体内着色较深的异染颗粒。
四、镜检结果报告与登记痰涂片镜检的结果报告，不仅是对结核病的诊断提供依据，报告的数量也一定程度的反映疾病严重程度和传染性的大小。
痰涂片镜检结果的登记应按照镜检结果的分级报告标准登记在结核病细菌学实验室登记本上和痰检验单上。
不能只填写阴性、阳性或(－)、( + )等。
萋尼氏染色镜检结果分级报告标准抗酸杆菌阴性(－)：连续观察300个不同视野未发现抗酸杆菌。
报告抗酸杆菌菌数：1～8条/300视野。
抗酸杆菌阳性（1＋）：3～9条/100视野。
抗酸杆菌阳性（2＋）：1～9条抗酸杆菌/10视野。
抗酸杆菌阳性（3＋）：1～9条抗酸杆菌/每视野。
抗酸杆菌阳性（4＋）：≥10条抗酸杆菌/每视野。
五、抗酸染色玻片的处理阅读完萋尼氏染色玻片后，应立即用浸满二甲苯（分析纯）的擦镜纸揭取数次，彻底去除玻片上的镜油。
经脱油干燥后的玻片，按实验室序号及涂片编号放置在玻片盒中，存放在阴凉干燥的环境中，以备复检或质控抽检。
六、痰涂片抗酸染色检查注意事项痰涂片抗酸染色检查要注意预防假阳性和假阴性结果的产生。
假阳性是指将阴性涂片错误判读为阳性，假阴性是指将阳性涂片错误判读为阴性。
属于技术因素的影响要通过一系列实验室内和实验室间的质量控制不断改善。
（一）假阳性结果的预防措施1、必须使用新的载玻片进行痰涂片检查。
2、每个标本均使用一个新竹签完成制片涂抹。
3、所有染液均经过过滤。
4、染色时玻片彼此之间保持一定距离，相互彻底分隔开5、严禁使用染色缸将玻片放置一起染色。
6、染色时勿使玻片上的染液干燥。
7、滴加镜油时，严禁容器滴口直接接触玻片痰膜。
8、严禁物镜镜头直接接触玻片痰膜。
9、完整、准确的标注痰盒、玻片和实验室登记本的各项内容。
10、登记前、后对检验单和标本盒上的标注进行仔细核对。
11、认真按照要求读片，准确记录和报告结果。
（二）假阴性结果的预防措施1、确认标本是痰而非唾液。
2、确认每份标本至少有3 ml。
3、选择脓样、干酪样、粘液分泌物涂抹制备玻片。
4、制备玻片时标本涂抹均匀，不要太厚或太薄。
5、使用高质量染料、严格按照配方配制染液。
6、严格按照操作程序完成染色过程。
7、判断结果为“阴性”前，必须阅读规定要求的视野数。
8、作为对照，可采用已知结果为阳性的玻片，完成染色镜检过程。
9、完整、准确地标注痰盒、玻片和实验室登记本。
10、登记前对检验单和标本盒上的标注进行仔细核对。
11、准确记录和报告结果。
七、痰玻片的保存（一）镜检后的涂片应及时用浸满二甲苯的擦镜纸彻底去除涂片上的镜油。
（二）再次核对实验室登记本与每张涂片实验序号。
（三）严禁在涂片上标记镜检的阴、阳性结果。
（四）按实验室登记本序号连续排列全部涂片，存放于玻片盒内。
（五）涂片保存与实验室登记本记录应保持一致。
初诊病人第一张涂片存入涂片盒后需预留出两个空位置，以备第二张、第三张涂片检查后放入。
（六）保存近期3个月的全部痰涂片待各级实验室质量控制抽检，如果年涂片量不足500张，必须全部保存。
（七）装满涂片的玻片盒，需用标签注明涂片实验序号区间和日期区间，以便日后盲法复检或现场评价时抽样。
八、实验室管理（一）显微镜日常维护显微镜作为发现涂片阳性病人的重要设备，实验室工作人员应正确使用并给予正确维护，以保证其正常工作和延长使用寿命。
在使用和维护显微镜时应特别遵守下列要点：1、显微镜应放置在干燥、无尘和通风的环境中。
如果显微镜一段时期内停止使用，应拆开并放置在原包装盒内，并放置有效的干燥剂。
2、使用前和使用后必须使用擦镜纸彻底清洁物镜。
3、严禁物镜镜头直接接触玻片上痰膜。
4、使用油镜时，只能使用细螺旋调节焦距。
5、使用电光源显微镜时，注意电压和电流是否与仪器要求相匹配。
（二）耗材供应与管理为保障痰涂片检查工作能够连续不断开展，应储存一定数量的实验耗材和相应试剂，储备量可根据工作量来进行计算，一般应准备比平均工作量高20％的相应耗材和试剂。
染色试剂应由省结核病参比实验室或经省级结核病参比实验室进行了质量控制的地（市）级结核病参比实验室组织统一配制和供应，其它耗材可根据当地情况由省、地或县统一供应。
各项物资、耗材按照需要供应，并保证达到质量要求。
（三）实验室人员安全防护1、严格遵守实验室安全操作规程，实验室的技术人员必须经过生物安全培训后方可上岗。
2、严格遵守实验室安全操作规程，警惕分枝杆菌气溶胶的产生。
3、实验室应严格限制非实验室人员进入，减少实验室内外交叉生物污染。
完成实验工作离开实验室，要关好门窗。
4、进入实验室，尽量避免携带非必需物品。
实验台上不放任何与实验无关的物件或私人用品。
5、工作人员进入实验室，应穿工作服并注意着装整齐，操作时应戴口罩、帽子和手套，长发者须将头发装束在帽子内。
6、实验室内应保持肃静，试验过程中禁止一切与试验无关的活动，以保证集中精力完成实验操作。
7、实验室内禁止吸烟、饮食及用嘴湿润铅笔或标签等，也不要以手抚摩头面部等。
8、实验前须开启紫外灯对实验室和操作区域进行照射消毒1小时以上；实验结束后，开启紫外灯对操作区和实验室进行照射消毒2小时以上。
9、实验结束后，操作人员要用清洁剂（或肥皂）和清水充分洗净。
10、每次实验操作终止后，必须清理好实验台，所有物品归位并用70%酒精或3-5%石碳酸等有效消毒剂擦洗实验台和地面。
11、实验室中的生物危险物要根据检查项目和性质的不同，局限在相应的实验室或试验区域内，不得随意将其带到其它区域进行。
（四）污物消毒与处理1、痰标本、被污染的一次性用品及实验室垃圾应经高压灭菌后丢弃，或者使用专用的焚烧炉或固定的垃圾坑进行焚烧。
2、每次完成检查后，操作台和实验区域内经紫外灯近距离照射消毒2小时以上。
3、实验过程中，如标本被打翻污染了操作台或地面，应以大于污染面积的纱布或卫生纸吸满5%的苯酚溶液或70%酒精，覆盖污染区，30分钟后方可移去，再经紫外线近距离照射。
