(附具体方法)基因工程菌质粒(遗传)稳定性--原创
- 格式:pdf
- 大小:256.08 KB
- 文档页数:2
关于基因工程菌的稳定性摘要:研究了定态与周期操作对基因工程酒精酵母质粒稳定性的影响,周期操作有利于提高底物的利用率并增强质粒的稳定性;发现了固定化重组菌高稳定性的原因,另外还讨论了诸多培养条件对基因工程菌稳定性的影响。
关键字:固定化;基因工程菌;质粒;稳定性;基因工程基因工程菌就是将目的基因导入细菌体内使其表达,产生所需要的蛋白的细菌成为基因工程菌。
基因工程菌在传代过程中常出现质粒不稳定的现象。
质粒不稳定可分为:分裂不稳定和结构不稳定。
分裂不稳定:指工程菌分裂时出现一定比例不含质粒子代菌的现象。
结构不稳定:指外源基因从质粒上丢失或碱基重排、缺失所致工程菌性能的改变。
1 常见分裂不稳定的两个因素:1.1 含质粒菌产生不含质粒子代菌的频率;1.2 这两种菌比数率差异的大小。
2 提高质粒稳定性的方法2.1 选择合适的宿主菌;2.2 选择合适的载体,适当增加质粒拷贝数;2.3 加入选择性压力;2.4 采用两阶段培养法;先使菌体生长至一定密度,再诱导外源基因的表达。
由于第一阶段外源基因未表达,减小了重组菌与质粒丢失菌的生长速率的差别,增加了质粒稳定性。
在培养基中加入抗菌素抑制质粒丢失菌的生长,提高质粒稳定性。
调控环境参数如温度、pH、培养基组分和溶解氧浓度。
有些含质粒菌对发酵环境的改变比不含质粒菌反应慢,间歇改变培养条件以改变两种菌比生长速率,可改善质粒稳定性。
通过间歇供氧和改变稀释数率,都可以提高质粒稳定性。
2.5 控制工程菌的培养条件;2.6 采用固定化培养基因工程技术是生物技术的核心和关键,已成功地表达了一系列与人类健康有关的重要多肽物质以及使多种氨基酸和抗生素增产,对人类社会生活产生了深远的影响。
基因工程菌中质粒稳定性问题是影响基因工程菌实现规模生产的一个重要因素,这种不稳定性主要表现为两种形式:一种是重组DNA质粒的丢失,称为脱落性不稳定;另一种是质粒中的基因结构发生突变,称为结构性不稳定。
这两种不稳定都能使细胞失去生产能力。
质粒遗传稳定性目前没有明确的规定,但一般用斜面传代法,一定数量点接抗性和非抗性板,生长计数(主要证明分裂稳定性);更严谨时,可进一步双酶切、测序等验证(证明结构稳定性--国家药品监督管理局的新生物制品审批)。
工业用菌确实存在很多问题,免不了质粒丢失严重,高突变等现象,但是一般工业用菌都是经过10代以上稳定筛选之后才用于小试、中试和工业生产的。
菌体不稳定造可能成的损失巨大,所以鲜有工业用菌使用在2-3代菌就没有产量或者产量低的菌株。
一般来说,一代菌用一点少一点,一代菌上罐太伤了,工业用菌一般会存储足够量的二代菌(多数是冷冻干燥安瓿管)用于生产,在生产中需要活化、制作摇瓶种子,如果菌体生长慢,还要进一步做种子罐,最后才能用于生产。
如果菌体稳定性差,几代传下来,发酵的不稳定造成损失是很难估计的,而且一般不稳定菌都是先做小试、中试,成功后才能用于生产。
质粒在宿主中的稳定性确实需要进行筛选,实验中遇到的质粒突变能避免尽量避免,做好的质粒也不一定一直存放,由于不断的被用于各种改进实验,期间经过的大量筛选,避免了一代菌用完之后就没有更好的使用。
使用高保真酶扩增、保证没有物理化学因素促变,使用合适的宿主,还是很容易得到没有突变的质粒的,后续连续传代培养也可以得到比较稳定的质粒的。
质粒不稳定是重组基因工程菌培养过程中的常见问题,也是影响外源基因高效表达的限制因素之一[77~78]。
Koch[79]最早对外源基因引入宿主而对细胞产生的代谢负荷进行考察,研究表明质粒的大小、拷贝数,质粒的维持,抗性基因的表达,培养环境的变化,都会对宿主细胞产生代谢负荷,当供氧不足或营养物质受限制时,代谢负荷对细胞生长的影响会更加明显。
基因工程菌中质粒稳定性问题是影响基因工程菌实现规模生产的一个重要因素,这种不稳定性主要表现为两种形式: 一种是重组DNA 质粒的丢失, 称为脱落性不稳定; 另一种是质粒中的基因结构发生突变, 称为结构性不稳定。
第七章基因工程菌发酵第二节工程菌的稳定性问题近年来,重组DNA技术(基因工程)已开始由实验室走向工业生产。
现在,由工程菌产生的珍稀药物如:胰岛素、干扰素、人生长激素、乙肝表面抗原等等都已先后供应市场,基因工程不仅保证了这些药物的来源,而且可使成本大大下降,但是从许多研究中发现,工程菌的保存过程中及发酵生产过程中表现出不稳定性,因而工程菌的稳定性的解决已日益受到重视并成为基因工程这一高技术的成就转变为生产力的关键之一。
一、工程菌不稳定性的表现(倾向)工程菌的不稳定实际上包括质粒的不稳定及其表达产物的不稳定两个方面。
具体表现为下列三种形式:质粒的丢失;重组质粒发生DNA片段脱落;表达产物不稳定。
由于某种环境因素或生理、遗传学上的原因,质粒从某些宿主细胞中丢失(消除curing),丢失率因环境、宿主、质粒结构而有不同。
由于质粒的丢失,工程菌的发酵过程实际上是两种菌的混合物。
在非选择性条件下,含有重组质粒的工程菌的比生长速率(μ+)往往小于不含重组质粒的比生长速率(μ-)。
宿主细胞的生长优势对工程菌的发酵极为不利。
有时质粒不稳定并非由于质粒丢失的缘故,而是重组质粒上一部分片段脱落,表现为质粒变小或某些遗传信息发生变化甚至丧失。
表达产物不稳定也是一个很重要的问题。
发现人干扰素工程菌在表达干扰素时,随着培养时间的延长,干扰素活性反而下降。
这种情况在别的工程菌培养过程中也有发现。
二、引起工程菌不稳定性的一些因素及对策组建成的工程菌的稳定与否,取决于重组质粒本身的分子组成、宿主细胞生理和遗传性及环境条件等三个方面。
就质粒本身的分子结构而言,引起工程菌不稳定常常是由于稳定区受到影响。
某些质粒如PSC101、R1、F等的分配系统在质粒上的位置已经确定,质粒col DF13有两个DNA序列part A, part B对它的稳定起着不可缺少的作用。
枯草杆菌质粒pUB110上几个与膜结合的蛋白基因对稳定性有关。
如质粒在重组过程中影响到这些序列的完整性,则其稳定性也受影响,另外可能由于重组质粒上有重复序列,或与宿主染色体有部分同源等等都会造成质粒的不稳定。
质粒遗传稳定性目前没有明确的规定,但一般用斜面传代法,一定数量点接抗性和非抗性板,生长计数(主要证明分裂稳定性);更严谨时,可进一步双酶切、测序等验证(证明结构稳定性--国家药品监督管理局的新生物制品审批)。
工业用菌确实存在很多问题,免不了质粒丢失严重,高突变等现象,但是一般工业用菌都是经过10代以上稳定筛选之后才用于小试、中试和工业生产的。
菌体不稳定造可能成的损失巨大,所以鲜有工业用菌使用在2-3代菌就没有产量或者产量低的菌株。
一般来说,一代菌用一点少一点,一代菌上罐太伤了,工业用菌一般会存储足够量的二代菌(多数是冷冻干燥安瓿管)用于生产,在生产中需要活化、制作摇瓶种子,如果菌体生长慢,还要进一步做种子罐,最后才能用于生产。
如果菌体稳定性差,几代传下来,发酵的不稳定造成损失是很难估计的,而且一般不稳定菌都是先做小试、中试,成功后才能用于生产。
质粒在宿主中的稳定性确实需要进行筛选,实验中遇到的质粒突变能避免尽量避免,做好的质粒也不一定一直存放,由于不断的被用于各种改进实验,期间经过的大量筛选,避免了一代菌用完之后就没有更好的使用。
使用高保真酶扩增、保证没有物理化学因素促变,使用合适的宿主,还是很容易得到没有突变的质粒的,后续连续传代培养也可以得到比较稳定的质粒的。
质粒不稳定是重组基因工程菌培养过程中的常见问题,也是影响外源基因高效表达的限制因素之一[77~78]。
Koch[79]最早对外源基因引入宿主而对细胞产生的代谢负荷进行考察,研究表明质粒的大小、拷贝数,质粒的维持,抗性基因的表达,培养环境的变化,都会对宿主细胞产生代谢负荷,当供氧不足或营养物质受限制时,代谢负荷对细胞生长的影响会更加明显。
基因工程菌中质粒稳定性问题是影响基因工程菌实现规模生产的一个重要因素,这种不稳定性主要表现为两种形式: 一种是重组DNA 质粒的丢失, 称为脱落性不稳定; 另一种是质粒中的基因结构发生突变, 称为结构性不稳定。
这两种不稳定都能使细胞失去生产能力。
质粒的稳定性与宿主及载体的特性有关, 也与培养条件有密切的关系。
试验一:遗传稳定性验证(斜面活化代时)
连续传代实验:将构建好的四个质粒pBES、pBEF、pBESF和pBEG分别转化进入B. amyloliquefaciens TA208,取工程菌的培养液梯度稀释到合适浓度,涂布于LB(+)(含10 μg/mL 卡那霉素)平板,37 ℃培养16 h后随机挑取50个单菌落,同一菌落分别接种于LB(+)和LB(–)(不含卡那霉素)上,于37 ℃培养16 h(第1代)。
将LB(+)上的菌落接种于LB(+)平板上,LB(–)上的菌落接种于LB(–)平板上,于37 ℃培养16 h(称为第2代)。
依此进行连续转接50次,分别计算两个平板上菌落生长数。
平板传代稳定性实验:在传代过程中,每隔5- 10代将LB(–)平板上的菌落接种于LB(+)平板上,菌落计数,计算该基因工程菌在无选择压力下的遗传稳定性。
将各基因工程菌株分别在LB(+)和LB(-)上连续传代培养,在传代过程中LB(+)上的菌株长势都非常好,说明在抗生素压力下,菌株稳定性良好,未发生质粒丢失情况。
但在无抗生素压力下,如图3-11所示LB(-)上生长的50 个单菌在连续传代过程中,传代30次左右质粒开始丢失,到第50代18 % 的菌落质粒已经丢失,并且各工程菌株的质粒稳定性没有显著性差异。
说明工程菌株遗传稳定性一般,需要在传代及培养过程中加入抗生素,这对工业化生产和菌种保
藏均有重要意义。
图3-11 重组菌株的遗传稳定性测定
Fig. 3-11 The test of heredity stability of recombinant strains
试验二:质粒稳定性研究(分裂代时)
段取样涂布,挑单*50,分别接抗性与非抗性板,计算;同时转接至下一时间段。
)结果如图3‐25所示:
图3-25 质粒稳定性研究
Fig. 3-25 The plasmid stability test
摇瓶发酵培养30 h,约有10%的菌株丢失质粒;培养至50 h,质粒丢失率约为15%,且质粒pXMJ19和pXMJ19‐ilvA( F383V)的稳定性差异不大,说明ilv A (F383V)基因的插入不会影响质粒pXMJ19的稳定性。
同时在发酵生长期??质粒的丢失率高于中后期,推测分裂不稳定是此质粒丢失的主要原因。