(免疫学课件)免疫学实验二
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第二次实验2:吞噬细胞吞噬功能检测一、实验目的学习并掌握吞噬细胞吞噬功能检测。
二、实验原理吞噬细胞具有对异物(细菌、绵羊红细胞、鸡红细胞等)吞噬和消化的功能,在机体固有免疫中发挥重要作用。
小鼠腹腔内注射硫代乙醇酸钠,可刺激巨噬细胞的聚集。
四日后小鼠腹腔内注入羊红细胞悬液,一小时后解剖收集腹腔吞噬细胞,染色、镜检可观察对羊红细胞的吞噬现象。
通过计算吞噬百分比或吞噬指数可测定吞噬细胞的吞噬功能。
一、实验材料1. ICR 品系小鼠(北京大学医学部实验动物中心提供)2. PBS 缓冲液3. 3%硫代乙醇酸钠4.羊红细胞(1%悬液,北京大学医学部实验动物中心提供)5. 解剖器材、注射器、尖吸管、橡皮吸头、小试管及载玻片6. 瑞氏染液、甲醇四、实验步骤1. 实验准备:用无菌注射器吸取3%硫代乙醇酸钠3ml,注射于小鼠腹腔内。
2. 四日后,注射羊红细胞(1%悬液)1ml 于小鼠腹腔内。
3. 注射1 小时后,将小鼠用颈椎脱臼法处死,解剖暴露腹腔,于腹腔靠上部位,用镊子轻轻夹起腹膜,将腹膜剪一小口,用尖吸管注入5ml 预温的PBS,同时用手反复揉搓腹腔约1—2 分钟,以便尽可能多地冲洗出小鼠腹腔的吞噬细胞。
4. 用尖吸管吸取腹腔液,置一洁净试管内。
5. 用尖吸管将腹腔液吹打均匀(尽量避免产生气泡),吸取一滴滴于载玻片上,加盖玻片镜检。
6. 观察结果,也可以将腹腔液涂片,平放于湿盘内,37℃,孵育30 分钟。
取出涂片,用预温的PBS 冲洗3 次,然后用甲醇固定1 分钟,以瑞氏染液1 份加pH6.4 的PBS 2 份混匀后,滴于涂片上染色5-10 分钟,以蒸馏水冲洗(切勿先将染液倾去)后,待干,镜检。
五、实验结果观察小鼠腹腔巨噬细胞和中性粒细胞对羊红细胞的吞噬现象,计算吞噬百分比,即每100 个吞噬细胞中吞噬有羊红细胞的细胞数。
也可用吞噬指数表示,即将100 个吞噬细胞中所吞噬羊红细胞的总数除以100。
吞噬百分比和吞噬指数一般是平行的。
目的:測量細菌在液體批次培養(batch culture)中的生長,繪製生長曲線圖並計算生長速率。
原理:測量細菌在液體培養基中的生長速度,必須先測出細菌族群在培養期間不同時間點的密度或數量,再繪圖或以電腦軟體求出族群增長的速率。
而測量族群密度常用的方法有三:(1)直接計數法在顯微鏡下算出固定體積培養液內的細胞數目,由於細菌細胞太小,容易與溶液中的灰塵混淆,此方法大多用於酵母菌、單細胞藻類等較大型的真核微生物;(2)混濁度利用分光光度計以波長590 - 600 nm的可見光測量細菌培養液的混濁度,通常以OD590表示,其數值在0.9以下時與細菌細胞密度呈直線關係,讀取數值超過0.9時則先做10倍稀釋再測量混濁度,獲得的細菌密度乘以10即得到原本的密度;(3)平盤測定法將細菌培養液作連續10倍稀釋後取一定體積塗在平盤培養基上,培養後計算培養基上的菌落數目以推算出原本的細胞密度。
第三個方法將在下一次實驗中操作,本次實驗使用第二個方法,為最便利快速而常用的細菌生長測量法。
材料:(每組)i.含5 ml LB (tryptone 1%, yeast extract 0.5%, NaCl 0.5%)培養基的白色旋蓋試管× 6ii.含5 ml 以NH4+為氮源的葡萄糖低限培養基(glucose minimal medium) (glucose 2%, Na2HPO4 1.3%, KH2PO4 0.3%, NaCl 0.05%,NH4Cl 0.1%)的白色旋蓋試管× 3iii.含5 ml 以NO3- 為氮源的葡萄糖低限培養基(glucose minimal medium) (glucose 2%, Na2HPO4 1.3%, KH2PO4 0.3%, NaCl 0.05%,KNO3 0.19%)的白色旋蓋試管× 3iv.過夜大腸桿菌培養液(培養在以NH4Cl為氮源的葡萄糖低限培養基中) × 1v.無菌水100 ml × 1vi.空懸蓋試管4支vii.P1000微量吸管一支、1000 ml微量吸管尖ㄧ盒、標籤紙8個、透明膠帶、小燒杯一個全班:分光光度計步驟:1.在裝有LB培養液的四支試管蓋上貼上標籤,註明組別,並分別標示為A、B、C與D。