石蜡切片技术实验(内附组织染色后的照片)
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石蜡切片实验报告实验目的,通过石蜡切片实验,观察细胞的形态结构和组织构成,掌握石蜡切片技术的操作方法,提高细胞学实验操作技能。
实验仪器与试剂,显微镜、石蜡切片、染色剂、玻璃片、显微镜载玻片、酒精、甘油、显微镜盖玻片。
实验步骤:1. 取一块石蜡切片,将其放置在玻璃片上,用酒精浸泡片切片5分钟,使其软化。
2. 用刮刀将石蜡切片刮至薄如纸张。
3. 将切好的石蜡切片浸泡在染色剂中,染色10分钟,使细胞染色。
4. 将染色后的石蜡切片放入酒精中脱水,然后放入甘油中固定。
5. 取一个显微镜载玻片,将固定好的石蜡切片放在载玻片上,盖上显微镜盖玻片。
6. 将载玻片放置在显微镜上,调节倍率,观察石蜡切片下的细胞结构。
实验结果与分析:经过显微镜观察,我们发现石蜡切片下的细胞结构清晰可见,细胞核、细胞质、细胞壁等结构清晰可辨。
通过不同染色剂的染色,我们可以清晰地观察到不同细胞器的形态和分布,比如细胞核的形态、染色颜色的深浅等。
此外,我们还可以观察到细胞在不同发育阶段的变化,对于研究细胞生物学和组织学具有重要意义。
实验总结:通过本次石蜡切片实验,我们掌握了石蜡切片技术的操作方法,提高了细胞学实验操作技能。
在实验中,我们需要注意石蜡切片的切割技巧和染色方法,以保证观察到的细胞结构清晰、准确。
在未来的实验中,我们将继续加强对细胞结构和组织构成的观察,不断提高实验操作技能,为细胞生物学和组织学的研究工作做出更多的贡献。
参考文献:1. 高等学校生物学实验教学指导委员会. 生物学实验指导[M]. 北京,高等教育出版社,2003.2. 张三等. 细胞生物学实验指导[M]. 上海,上海科学技术出版社,2005.。
石蜡切片苏木精-伊红(HE)染色方法
(1)选择切片:组织尽量完整,无分裂;
(2)脱蜡:65℃烤片1h,使用二甲苯进行脱蜡,二甲苯Ⅰ-20min(二甲苯先加热到65℃,然后水浴)→二甲苯Ⅱ-15min(常温);(3)水化:采用乙醇梯度水化,乙醇二甲苯-2min→无水乙醇Ⅰ-2min →无水乙醇Ⅱ-2min→95%-2min→90%-2min→80%-2min→70%-2min→60%-2min;
(4)RO/UP水冲洗一遍(约10s);
(5)苏木精染色:水化后的切片放入苏木精染液中浸15min,染细胞核。
RO/UP水冲洗1min;
(6)1%盐酸乙醇分化10 s; 弱碱性水溶液(5%氨水溶液)返蓝10s (7)自来水冲洗10分钟;
(8)梯度乙醇脱水:60%-70%-80%-90%,各2min
(9)伊红染色:充分水化后的切片直接入伊红染色液中,染细胞质1min;
(10)梯度乙醇脱水:95%→100%Ⅰ→100%Ⅱ→乙醇二甲苯—二甲苯Ⅰ→二甲苯Ⅱ,各2min;
(11)中性树胶封片,65℃烤片至树胶凝固(3h以上)。
实验时间石蜡切片及染色过程
石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。
苏木素与伊红对比染色法(简称H.E.对染法)是组织切片最常用的染色方法。
这种方法适用范围广泛,对组织细胞的各种成分都可着色,便于全面观察组织构造,而且适用于各种固定液固定的材料,染色后不易褪色可长期保存。
经过HE染色,细胞核被苏木素染成蓝紫色,细胞质被伊红染色呈粉红色。
实验步骤及注意事项
一、石蜡切片
1. 取材: 刀片要求锋利而薄,组织厚度约2—3mm, 大小1.5×1.5×0.2~0.3cm 为宜. 取材时间越快越好.
2. 固定: 组织取下后应立即放入 10%福尔马林(相当于 4%甲醛)固定.
注意:
(1) 固定液量应为组织块体积的 40 倍.
(2) 固定时间固定时间与使用的固定液种类和组织块大小, 温度等
有关. 一般为 3—24h.
(3) 固定温度大多可在室温固定, 在低温(4℃)时间应延长.
(4) 固定容器应大些.
3. 漂洗: 流水冲洗 2—10h.。
石蜡切片免疫荧光实验步骤
一、样品处理
1、选择适当体积的样品石蜡切片,防止干燥,封好盖子到-80℃,直
到使用时将其取出变性到室温,以备后续操作。
2、室温下取出石蜡切片,施加蛋白酶将切片上原有的细胞、细胞膜
分解,具体操作步骤为:将取出的石蜡切片放入0.1%胰蛋白酶(Protease,Roche)或0.5% Triton X-100溶液中,置于37℃水浴摇床,25min后将石
蜡切片放入3mm×2mm的转移槽内,加入200ul去离子水,搅拌进行超声
处理,30s后用1000ul去离子水冲洗,放入4℃冰箱保存,以备后续操作。
二、组织切片染色
1、在刻线玻片上放入石蜡切片,用吸水棉柱将石蜡切片固定。
2、用0.1%胰蛋白酶(Protease, Roche)或0.3% Triton X-100溶液
浸泡石蜡切片,置于37℃水浴摇床,15min后去除液体,另用500μl去
离子水洗涤,将含有抗体的抗体溶液稀释至0.3μg/ml,加入石蜡切片上,放入35℃恒温箱,反应1h。
3、取出石蜡切片,加入1000μl去离子水洗涤,放入4℃冰箱保存,以备后续操作。
三、免疫荧光检测
1、把石蜡切片放入适量的去离子水中浸泡,去除多余的抗体。
2、将放入去离子水中浸泡的石蜡切片放入多孔玻片,在摇床上稀释FITC标记的抗体,加入石蜡切片上,置于37℃水浴摇床上,1h后去除液体。
实验时间石蜡切片免疫组化实验(含详细步骤)
免疫组化是利用抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及定量的研究。
根据标记物的不同分为:免疫酶法、免疫荧光法、亲和组织化学法、免疫铁蛋白法、免疫金法及放射免疫自影法等。
其中前三种最常用。
实验原理
根据聚合酶技术把辣根过氧化物酶抗鼠或/和抗兔 IgG 分子结合在多聚酶上形成多聚物分子,其与待检的抗原特异性的结合后,加入底物显色。
实验步骤
1. 石蜡切片置于67 ℃ 烘箱中,烘片 2 小时,脱蜡至水,用 pH 7.4 的 PBS 冲洗三次,每次 3 分钟(3 × 3')。
2. 取一定量 pH = 6.0 柠檬酸盐缓冲液,加入微波盒中,微波加热至沸腾,将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架上,放入已沸腾的缓冲液中,中档微波处理 10 分钟,取出微波盒流水自然泠却,从缓冲液中取出玻片,先用蒸馏水冲洗两次,之后用 PBS 冲洗2 × 3'(注:不是所有的抗体都需要微波修复的,视具体情况而定)。
实验二十一石蜡切片法(四)——染色、封藏
仪器设备:显微镜
器具:盖玻片、载玻片、滤纸、镊子、吸水纸、剪刀、解剖盘、棕色滴瓶、染色缸、一次性针筒、培养皿。
材料:石蜡切片
试剂及其配置:各级乙醇(50%、70%、85%、95%、100%)、1/2二甲苯+1/2无水乙醇、二甲苯、埃利希氏苏木精染液、0.2%曙红水溶液、中性树胶
附:埃利希氏苏木精配方
苏木精 1克
纯乙醇(或95%乙醇) 50毫升
冰醋酸 5毫升
钾矾(硫酸铝钾)约5克(饱和量)
甘油 50毫升
蒸馏水 50毫升
配法:
①将苏木精溶与约15毫升的纯乙醇中,再加冰醋酸后搅拌。
②当苏木精溶解后即将甘油倒入并摇动容器,同时加入其余的乙醇。
③将钾矾在研钵中研细并加热,然后将它溶解于水中。
④将温热的钾矾溶液一滴一滴地加入上述染液中,并随时搅动。
⑤此液混合完毕,将瓶口用一层纱布包着小块棉花塞起来,放在暗处通风的地方,并经
常摇动以促进它的成熟。
成熟时间约3-4周。
若加入0.2克碘酸钠,可立刻成熟。
此液稳定而染色均匀,染核效果良好,不会发生沉淀,长期储备无妨。
此液可分别与伊红(Enosin 曙红)、橙黄G、番红进行三重染色。
石蜡切片和HE染色石蜡切片& HE染色组织石蜡切片(常规)1、取材:8*6*2mm2、固定:PFA固定过夜(12-24h)3、梯度脱水:50%酒精1h,75%酒精1h(可长期保存),85%酒精1h,95%酒精1h,100%酒精30min两次。
4、透明:100%酒精+二甲苯(1:1)30-45min,二甲苯ⅰ30min,二甲苯ⅱ30min,观察到透明为止。
5、浸蜡:二甲苯+石蜡(1:1)1h,石蜡ⅰ1h,石蜡ⅱ1h(过夜)。
6、包埋:将组织取出并放入盒内调整好位置,将组织完全平放于盒中,用针头将组织上浸蜡时残留的蜡剔除,使它可以完全被包埋,最后将蜡块于室温慢慢冷却后放入4℃冰箱中保存备用。
7、切片:用刀片将包有组织的蜡块进行修切,切成5-4μm厚的连续薄片,仔细观察薄片中央的组织,取较为完整的组织薄片。
8、展片与烤片:将蜡片黏贴在载玻片上,放于展片机中42℃展片1-2分钟。
最终后放入60℃烤片机中烤片1-2h.9、脱蜡与复水:将切片依次经过二甲苯,两次,各20min。
无水酒精(5min)95%酒精(5min)80%酒精(3min)70%酒精(3min)蒸馏水(5min)。
HE染色1、组织切片脱蜡至蒸馏水2、苏木素染色5min,自来水冲洗3、0.5%盐酸乙醇(0.5ml HCl + 100ml 70%乙醇)分化30s (提插数下)4、自来水浸泡15min或温水(约50℃)5min5、置伊红液2min6、常规脱水,透明,封片:95%乙醇(I)1min→95%乙醇(Ⅱ)5min→100%乙醇(I)5min→100%乙醇(Ⅱ)5min→二甲苯乙醇(1:1)5min→二甲苯(I)5min→二甲苯(Ⅱ)5min→二甲苯(Ⅲ)5min→中性树脂封固HE染色注意事项:1. 染色时调节pH值很重要。
如果组织块在福尔马林中固定时间长,组织酸化而影响细胞核着色。
因此,要在自来水中冲洗时间长一些或在饱和碳酸锂水溶液中处理10-30min,这样可以使细胞核着色较深。
石蜡切片技术实验
实验目的
掌握动植物材料石蜡切片的方法及要求。
实验材料
小白鼠各种器官组织
实验方法
• 石蜡切片技术(一)取材与固定
• 石蜡切片技术(二)渗透与包埋
• 石蜡切片技术(三)切片
• 石蜡切片技术(四)染色
• 石蜡切片技术(五)观察总结
一、取材与固定
1 准备工作:工具、药品、计划等
2 动物的麻醉:氯仿麻醉
3 解剖取材
4 材料分割:保持样品的完整性与代表性,考虑切片方向,实心组织大小5*5*2mm,空心细长组织10mm长。
5 固定:布温氏固定液固定24h。
6 漂洗:70%乙醇换洗3次,每次20~60min。
7 保存:70%乙醇0~4 ℃。
二、脱水、渗透与包埋
1 脱水:85%乙醇→95%乙醇→100%乙醇→100%乙醇,每步30min~60min
2透明:1/2乙醇+1/2二甲苯→二甲苯→二甲苯,每步30min~60min
3 渗透: 1/2二甲苯+ ½石蜡→石蜡→石蜡,每步20min~60min,温度62℃
4 包埋:将材料放入盛有石蜡的纸盒中,摆好位置(要考虑下一步的修快与切片方向),在水中冷却5~10min.
三、切片
1 修块用单面刀片在玻璃板上修快使达到以下要求:
(1)一个蜡块含一个材料,蜡块呈正方形或长方形,材料位于蜡块正中央。
(2)材料边缘与蜡块边缘平行,各面要平直,材料边缘与蜡块边缘的距离约3mm。
2 固着将修好块的蜡块用烧热的解剖刀固着在样品台上。
3 切片按以下顺序进行
(1)将样品台固定在切片机样品臂上,使切面竖直;
(2)调切片厚度5~10um;
(3)将切片刀用纱布蘸少许二甲苯擦净后装到切片机上,调刀角15~20,将刀固定好;(4)调刀距使样品与刀口尽可能靠近;
(5)切片顺时针摇动切片机速度40-60r/min;
(6)将切好的蜡带光面向下用毛笔放到台纸上
4 贴片
(1)清洗载波片;
(2)加粘片剂,要求薄、匀;
(3)放切片,光面向下;
(4)加水于切片下面;
(5)展片将载波片放于50℃的温台上至切片完全展平;
(6)烤干吸掉多余水,继续放于温台上至水完全干燥;
5 贴标签临时标签,用铅笔写明组号、姓名。
四、染色
1 脱蜡二甲苯(2)→二甲苯(1),每步510min;
2 复水 1/2乙醇+1/2二甲苯→100%乙醇(2)→ 100%乙醇(1)→ 85%乙醇→ 70%乙醇→ 50%乙醇→ 30%乙醇→
蒸馏水,每步2min;
3 初染代氏苏木精染色15min;
4 分化 0.1%HCl脱色至变红→0.1%NaOH至变蓝;
5 脱水蒸馏水(3-5s)→ 30%乙醇→ 50%乙醇→70%乙醇→ 85%乙醇,每步2min;
6 复染 0.5%伊红(溶于95%乙醇)染色10~15min;
7 脱水透明95%乙醇(1020s)→100%乙醇(1) →100%乙醇(2)→ 1/2乙醇+1/2二甲苯→二甲苯(1) →二甲苯(2)(≥3min),每步2~3min;
8 封片将材料周围擦干净(注意在擦的过程中材料上的二甲苯必须保证不能干,可随时补加),加1~2滴中性树胶,加盖玻片(需提前洗净擦干备用);
9 贴标签注明样品名称、染色方法、组号、姓名和日期;
10 镜检检查样品取材、切片及染色情况,熟悉样品为下次样品观察做好准备;
11 干燥平放于展片盘中,于37℃温箱中或自然干燥;
12 预习下次实验:样品的观察,需提前做好预习,并准备纸、铅笔。
五、观察
1 样品观察
• 小白鼠脑;
• 小白鼠心肌;
• 小白鼠肝脏;
• 小白鼠肾脏;
• 小白鼠肺;
• 小白鼠小肠;
• 小白鼠肌肉;
• 小白鼠精巢;
• 小白鼠卵巢等。
2 绘图
• 任选一种样品将结构完整地绘于实验报告上。
3 样品结构显微照片如下:。