姓名：薛桂凤学号：132015200300 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于0.1ml （麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针）（3）腹腔注射0.01-0.02ml/g（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为 1.26ml，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构
局部解剖学实验总结周振东 经过一个学期的局解实验课学习，以下是我对每次实验课的总结 第一次实验课主要是腋窝的解剖。 1. 解剖浅层找到肋间臂神经 剔除浅筋膜和腋筋膜后。 。 从喙突向下修洁肱二头肌短头和喙肱肌；2）在喙肱肌内部剖出肌皮神经、正中神经；3）再循正中神经向上找出位于其二根之间的腋动脉；4）剖出位于腋动静脉之间较粗的尺神经和前臂内侧皮神经及位于腋静脉内侧的臂内侧皮神经；5）观察腋动脉的分段，剖出各段的分支；6）在腋动脉的后方，找出桡神经。 （5）解剖腋窝后壁穿三边空、四边孔的结构：剖出穿三边空的旋肩胛动脉和传四边孔的腋神经、旋肱后动脉。 （6）解剖胸背神经，肩胛下神经上支和下支，位于腋中线附近的胸长神经。 （二）臂、肘、前臂前区，肩胛区，臂、肘、前臂后区 Ⅰ臂、肘、前臂前区. 1.解剖浅层结构： （1）寻认头静脉及前臂外侧皮神经，贵要静脉及前臂内侧皮神经。 （2）寻找臂内侧皮神经、肘正中静脉、肘淋巴结。 2.臂部剔除浅筋膜和深筋膜： 3观察肱二头肌内、外侧沟及有关的血管神经：正中神经、尺神经、肱动脉及桡神经，观察它们的走行、分布范围。 4解剖肘窝： （1）清理肘窝的边界:观察肘窝的境界，显露肘窝的内容。 （2）解剖肘窝内的结构：修洁肱二头肌腱，在其内侧剖出和修洁肱动脉的末端至分为桡、尺动脉，在肱动脉的内侧修洁正中神经。 5解剖前臂前肌群、血管和神经： （1）观察前臂肌前群浅层。 （2）剖查桡血管神经束：将肱桡肌拉向外侧，修洁桡动脉和桡神经前支，并寻找其分支。 （3）剖查尺血管神经束：将尺侧腕屈肌拉向外侧，找出尺神经和尺动脉，并寻找其分支。 （4）剖查正中神经：在旋前圆肌两头之间找出已剖出的正中神经，观察其分支分布。 （5）剖查前臂肌前群深层。 6 剖出骨间总动脉、骨间前动脉、骨间后动脉和前臂屈肌后间隙。 Ⅱ肩胛区，臂、肘、前臂后区 1. 解剖浅筋膜及浅筋膜内的结构：找出臂外侧皮神经、臂后皮神经、贵要静脉、头静
姓名：薛桂凤学号： 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于（麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针） （3）腹腔注射（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构
人体解剖学肌肉起止点及 作用 This model paper was revised by the Standardization Office on December 10, 2020
咬肌 起止点：起自颧弓的下缘和内面，止于咬肌粗隆 作用：上提下颚骨 颞肌 起止点：起自颞窝，止于下颌骨冠突 作用：使下颌骨上提和向后移 翼内肌 起止点：起自翼突，止于下颌角内面的翼肌粗隆 作用：使下颌骨上提并使其向前运动 翼外肌 起止点：起自蝶骨大翼的下面和翼突的外侧，止于下颌颈 作用：做张口运动 胸锁乳突肌 起止点：起自胸骨柄和锁骨内侧端，止于颞骨乳突 作用：单侧收缩颈向同侧底，面转向对侧，两侧同时收缩使头后仰前斜角肌、中斜角肌、后斜角肌
起止点：起止于第一肋后斜角肌起止于第二肋骨 作用：一侧斜角肌收缩，使颈侧屈，两侧同时收缩可上提第一二肋助深吸气 斜方肌 起止点：从枕外粗隆直达12胸椎棘突上部肌束斜向外下，下部肌束斜向外上，中部横行，汇聚于肩胛冈锁骨外侧端和肩峰 作用：一侧斜方肌收缩使颈向同侧屈，两侧同时收缩使头后仰 背阔肌 起止点：起自第六胸椎以下的全部棘突和髂脊后份，肌束向外上集中，止于肱骨小结节脊 作用：收缩使臂内收、旋内和后伸 竖脊肌（骶棘肌） 起止点：起自骶骨脊背面和髂脊后部，向上分出三群肌束，沿途于椎骨和肋骨，向上可达颞骨乳突 作用：止肌单侧收缩使脊柱侧屈，两侧同时收缩使脊柱后伸和仰头 胸大肌 起止点：起自锁骨的内侧半，胸骨和第1~6节肋软骨，肌束向外侧集中，以扁腱止于肱骨大结节脊 作用：使肩关节内收、旋内和前屈
胸小肌： 起止点：起自第3~5肋，止于肩胛骨喙突 作用：拉肩胛骨向前下方，当肩胛骨固定时，还可以提肋助吸气 前踞肌： 起止点：以肌齿起自第1~8肋外面，肌束斜向后上，止于肩胛骨内侧缘和前面下角作用：收缩时拉肩胛骨向前做推送动作，下部肌束使肩胛下角旋内，助臂上举，当肩胛骨固定时，还可以提肋助深吸气 肋间外肌： 起止点：起自上位肋骨上缘，肌书斜向前下，止于下一肋的下缘 作用：提肋助吸气 肋间内肌 起止点：起自下位肋骨上缘，肌束行向前上方，止于上位肋的下缘 作用：降肋助呼气 肋间最内肌: 起止点:位于肋间隙中份，肋间内肌的深面，肌束方向和作用与肋间内肌相同 作用:降肋助呼气、 隔肌:
局部解剖学实验指导参考答案 第一章胸部 一、选择题 A 型题: 1-5 E A A D D 6-10 D D A E B 11-15 D D D C B 16-20 D B E A C 21-25 E E C D C 26-30 B D E C E 31-35 C A C A D 36-40 B C C A C 41-45 C C D C E 46-48 B D D B 型题: 49-50 B A 51-55 A D C A B 56-60 E C D D C 61-65 B A A E D 66-70 B E E D C 71-75 B A B C A 76-77 D E C 型题: 78-80 A B D 81-85 A A C D A 86-90 C C A D D 91-95 A B C D B 96-100 A C A B D X 型题:
101-105 ABCE ACD ABCD ABDE CD 106-110 ACDE BDE ABCDE ACDE ABCE 111-115 ABC ABCDE ABE BDE CE 116-120 ADE ACE BC AB ABCD 121-125 ABC BCDE ABCD AC DE 126-130 BD AB ABCDE BC AD 131-133 BCDE ACE ABCDE 注:第 123题 C 选择项“弓”去掉。 二、填空题 1.皮肤、浅筋膜、深筋膜、胸廓外肌层、肋骨、胸内筋膜、壁胸膜 2.肋弓、剑胸结合 3.乳房、胸肌筋膜、乳房悬韧带 4.胸肌淋巴结、中央淋巴结、尖淋巴结、锁骨上淋巴结、胸骨旁淋巴结、对侧乳房淋巴管、腹前外侧壁上部的淋巴管、膈下间隙、肝、胸肌间淋巴结、尖淋巴结。 5.胸长神经、前锯肌、翼状肩;胸背神经、背阔肌 6.肋胸膜、膈胸膜、纵隔胸膜、胸膜顶;胸膜隐窝、肋胸膜、膈胸膜、肋膈隐窝 7.肺静脉、肺动脉、支气管;肺动脉、支气管、肺静脉;上叶支气管、肺动脉、中下叶支
实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,
. 解剖操作简介 局部解剖学是研究人体各个局部层次结构及各器官之间的位置与毗邻关系的科学。它是临床医学课程尤其是外科学的重要基础课程。局部解剖学的学习方法与系统解剖学不同，系统解剖学是通过理论大课的讲授和实验小课的示教见习进行学习；而局部解剖学主要是通过学生自己大量的实地解剖操作和少量的阶段总结性大课进行学习的。因此，实地解剖操作学习局部解剖学的主要方法，是掌握人体解剖学知识的重要实践过程。通过解剖、观察和辨认，不仅能巩固已获得的系统解剖学知识，而且将进一步熟悉和掌握人体各局部的层次结构和各器官之间的毗邻关系，为学习临床医学课程奠定良好的基础。百闻不如一见，百看不如实践，在实地解剖过程中，要充分利用有限的尸体标本，在教员指导下，严格按照解剖操作步骤和要求，认真细致地进行解剖，细心观察和辨认各层次结构，并作阶段性的归纳总结，真正按教学大纲的目的和要求，掌握局部解剖学知识。 为了更好地进行实地解剖操作，在解剖尸体之前，先简要介绍一下解剖操作的方法和要求。 一、解剖操作前准备 1、每次课前应预习《局部解剖学》和《局部操作指导》，明确本次课的目的要求、解剖部位的层次结构和毗邻关系以及操作步骤和过程中的注意事项。 2、第一次进实验室前学员要进行分组，每个实验室分成若干个组，每组分成4个小组解剖1具标本，每个小组由3～5名学员组成。 3、小组成员要进行分工，要安排主刀、助手、阅读教材和指导者。每个角色要定期交换，使每个学员都有解剖操作的机会。 4、准备好各种操作器械，如刀、镊、止血钳，此外还有咬骨钳、肋骨剪等。 5、放置好尸体的位置。 二、常用的解剖器械及其使用方法 在实地解剖过程中，常用的器械有刀、剪、镊、止血钳和组织钳，此外还有咬骨钳、肋骨剪、锯子、骨凿和锤子等。 1、刀有解剖刀和手术刀两种，现一般使用手术刀。通常用于切开皮肤、翻起皮瓣以及切割各种组织。持刀的方式有执笔式持刀法和指压式持刀法之分。前者与持钢笔的姿势相同，解剖操作时多用此法。后者则将刀柄握于拇指与中指、环指及小指之间，食指压在刀背上，此法除用于作较长的皮肤切口外，一般均不采用。 2、止血钳有各种不同形式的止血钳，其用途亦不尽相同，一般用于钳夹各种组织，亦可借助止血钳分离各种组织结构。持止血钳的方法是将止血钳柄套在拇指和环指上，食指紧贴于止血钳背，起导向和稳定作用。 3、镊含有各种不同形式的镊，用于固定各种组织器官，以免滑动，便于解剖。亦可借助镊剥除各种组织。除固定皮肤采用有齿镊外，固定其它各种组织器官均宜用无齿镊。持镊法与握笔姿势相同。 除上述常用的解剖器械外，还有剪、组织钳、咬骨钳和肋骨剪等器械，将在使用时逐一介
1. 外观大鼠外观与小鼠相似,但个体较大。一般成年大鼠体长不小于18-20cm。尾上覆有短毛和环状角质鳞片，数量多于200片。上下颌各有两个切齿和六个臼齿，共16颗牙齿。齿式为（1003/1003）×2。 2. 大鼠骨骼约105-108块，大鼠的生长发育期长,长骨长期有骨骺存在，不骨化。切齿终生不断生长，大鼠需不断啃咬磨牙以维持其长度恒定，故垫料中应有部分小木块供其啃咬。 3. 大鼠唾液腺包括腮腺、颌下腺和舌下腺。分别位于下颌骨后缘至锁骨的腹外侧、下颌骨后缘和胸腔入口的腹侧、颌下腺口侧。颈区肩胛部间沉积的脂肪组织呈腺体状，称为冬眠腺，在产热中起着重要作用。 4. 胃由前后两部分组成，前胃为无腺区，后胃为有腺区，前后两部分由一个界限嵴分开，食管通过界限嵴的一个褶进入胃小弯，此褶是大鼠不能呕吐的原因。 5. 肠道分为十二指肠、空肠、回肠、盲肠、结肠、直肠。其中小肠最长，约114cm（102-126），盲肠较长，约6-8cm。 6. 肝脏呈紫红色，占体重的比例大，约为体重的1/25，由四叶组成（右侧叶、中叶、左叶和尾叶）。肝脏的再生能力强,经部分肝切除术后仍可再生。成年大鼠切除肝2/3，在一周内肝脏生长最快，三周内肝脏重量可恢复到接近正常。大鼠无胆囊，各肝叶的胆管会合成胆总管，开口于十二指肠。胰脏位于胃和十二指肠的弯曲处，呈淡粉色，形状不规则，似脂肪。 7. 心脏重量约占体重的1/30-1/20，由左心房、左心室、右心房、
右心室组成。左心室发出主动脉弓，由此分出无名动脉、左颈总动脉、左锁骨下动脉。无名动脉又分出右颈总动脉和右锁骨下动脉。主动脉弓到心脏背侧沿脊柱下行，形成背主动脉，背主动脉再分支到髂部和四肢。 8. 肺脏为海绵状，淡粉色,位于胸腔中部,分为左、右两部分。左肺为一个大叶，右肺分为4叶（前叶、中叶、副叶、后叶）。 9. 肾脏呈暗红色、蚕豆状，位于腹腔背侧脊柱两侧。每侧肾都和一条白色细长的输尿管相连，输尿管下接膀胱。 10. 大鼠的神经系统与人类相似，亦包括中枢神经系统和周围神经系统两部分。中枢神经包括脑和脊髓，周围神经包括脑神经、脊神经、植物神经。脑分为大脑、间脑、中脑、小脑和延脑，大鼠的大脑很发达，中脑较小。由脑发出的神经叫脑神经，共12对。脊神经和植物神经和其它动物相似。 实验用大鼠解剖生理学 一、概述 每年约使用3千5百万只鼠应用于研究和测试。使用实验大鼠进行的研究包括老化，肿瘤neoplasia，药效与毒性，含特定菌之动物gnotobiology，龋齿的研究，脂质新陈代谢，维他命之作用，行为，酒精中毒和肝脏硬化，关节炎，苯酮尿症(phenylketonuria)，黄疸，果糖不耐症，高血压、胚胎学，畸胎畸形学，肾性尿崩症及传染性疾病等皆可使用大鼠进行研究。 二、解剖构造
人体解剖学--骨、关节、肌肉试题整理
————————————————————————————————作者：————————————————————————————————日期：
人解知识竞赛----骨、关节、肌肉部分一．名词解释： 1.黄韧带（ligamenta flava）：位于椎管内，连接相邻两椎弓板间的韧带，由黄色的弹性纤维构成。 2.板障（diploe）：颅盖各骨内、外板间的骨松质，内有板障静脉通过。 3.斜角肌间隙（scalene space）：前、中斜角肌与第一肋之间形成一呈三角形的间隙，内有锁骨下动脉和臂丛通过。 4. 三边孔(trilateral foramen)：其上界为小圆肌、肩胛下肌，下界为大圆肌，外侧界为肱三头肌长头，其内有旋肩胛血管通过。 5. 四边孔(quadrilateral foramen)：其上界为小圆肌、肩胛下肌，下界为大圆肌，内侧界为肱三头肌长头，外侧界为肱骨外科颈，内有腋神经和旋肱后血管通过。 6. 肘窝（cubital fossa）：位于肘关节的前面，呈三角形。内界为旋前圆肌，外界为肱桡肌，上界为肱骨内、外上髁之间的连线。窝内主要有肱二头肌腱、肱动脉及其分支和正中神经。 7.腕管（carpal canal）：位于腕掌侧，由屈肌支持带和腕骨沟围成。管内有指浅屈肌腱、指深屈肌腱、拇长屈肌腱和正中神经通过。 8. 腹股沟管(inguinal canal)：腹股沟管位于腹股沟韧带内侧半的上方，外口为腹股沟浅环，内口为腹股沟深环，位于腹股沟韧带正中线上方约1.5CM处。对于男性，内有精索穿过；对于女性，内有子宫圆韧带穿过。 9. 收肌管(adductor canal)：位于股内侧肌、缝匠肌、大收肌及其腱板之间的管道，上口为股三角下端，下口为收肌腱裂孔。管内有股动、静脉及隐神经穿行。 10.股三角（femoral triangle）：在大腿前面的上部，上界为腹股沟韧带，内侧界为长收肌内侧缘，外侧界为缝匠肌内侧缘。三角内有股神经、股血管和淋巴结等。 11.锁胸筋膜（clavipectoral fascia）：是位于喙突、锁骨下肌和胸小肌上缘之间的深筋膜，有头静脉、胸肩峰动脉、静脉和胸外侧神经穿过。
《动物解剖学》实验教学大纲 课程名称：动物解剖学 课程编号：0311002 课程性质：独立设课课程属性：专业基础 学时学分：65学时总学分 3.25 实验学时30 应开实验学期：一年级一～二学期 适用专业：动物医学、动物科学、动物检疫、食品质量与安全、植物检疫 先修课程：动物学 大纲主撰人：张书松李奎大纲审核人：张玉龙张书松 一、实验课程简介 动物解剖学是研究正常畜禽有机体形态结构的科学，是动物医学专业、动物科学专业、动物检疫专业、食品质量与安全专业的专业基础课之一，与其他专业基础课和专业课如动物组织学与胚胎学、动物生理学、病理学、外科学、产科学、诊断学、动物繁殖学等有着密切的关系，它是学好上述课程必不可少的基础。通过本课程的学习，让学生系统地掌握动物有机体各器官的正常形态、结构、位置，初步了解各系统和各器官的生理功能，从而为本专业的后期相关课程的学习打下坚实的理论基础和直观的形态学基础。 二、实验教学目的与基本要求 在理论教学的基础上，结合动物解剖学的学科特点，借助标本、模型、幻灯、录像以及教学实习等教学手段，通过示教和教学实习等方式，理论联系实际，使学生掌握动物各系统各器官正常的形态、位置、色泽、质地、结构特征和功能，在实验教学的基础上加深对理论知识的理解，建立起完整的动物有机体的形态结构知识体系，从而达到拓宽基础知识的目的。 1、了解动物体各系统各器官基本的形态、位置和结构特征； 2、掌握内脏器官的形态、位置、结构和体表定位； 3、熟悉动物解剖的实践技能。 0311002+01躯干骨、头骨及其连结2必做基础性7 0311002+02四肢骨及其连结2必做基础性7
动物实验报告 集团文件发布号：（9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-
实验动物学实验报告学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠
尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血
咬肌 起止点：起自颧弓的下缘和内面，止于咬肌粗隆 作用：上提下颚骨 颞肌 起止点：起自颞窝，止于下颌骨冠突 作用：使下颌骨上提和向后移 翼内肌 起止点：起自翼突，止于下颌角内面的翼肌粗隆 作用：使下颌骨上提并使其向前运动 翼外肌 起止点：起自蝶骨大翼的下面和翼突的外侧，止于下颌颈 作用：做张口运动 胸锁乳突肌 起止点：起自胸骨柄和锁骨内侧端，止于颞骨乳突 作用：单侧收缩颈向同侧底，面转向对侧，两侧同时收缩使头后仰前斜角肌、中斜角肌、后斜角肌 起止点：起止于第一肋后斜角肌起止于第二肋骨
作用：一侧斜角肌收缩，使颈侧屈，两侧同时收缩可上提第一二肋助深吸气 斜方肌 起止点：从枕外粗隆直达12胸椎棘突上部肌束斜向外下，下部肌束斜向外上，中部横行，汇聚于肩胛冈锁骨外侧端和肩峰 作用：一侧斜方肌收缩使颈向同侧屈，两侧同时收缩使头后仰 背阔肌 起止点：起自第六胸椎以下的全部棘突和髂脊后份，肌束向外上集中，止于肱骨小结节脊作用：收缩使臂内收、旋内和后伸 竖脊肌（骶棘肌） 起止点：起自骶骨脊背面和髂脊后部，向上分出三群肌束，沿途于椎骨和肋骨，向上可达颞骨乳突 作用：止肌单侧收缩使脊柱侧屈，两侧同时收缩使脊柱后伸和仰头 胸大肌 起止点：起自锁骨的内侧半，胸骨和第1~6节肋软骨，肌束向外侧集中，以扁腱止于肱骨大结节脊 作用：使肩关节内收、旋内和前屈 胸小肌： 起止点：起自第3~5肋，止于肩胛骨喙突
作用：拉肩胛骨向前下方，当肩胛骨固定时，还可以提肋助吸气 前踞肌： 起止点：以肌齿起自第1~8肋外面，肌束斜向后上，止于肩胛骨内侧缘和前面下角 作用：收缩时拉肩胛骨向前做推送动作，下部肌束使肩胛下角旋内，助臂上举，当肩胛骨固定时，还可以提肋助深吸气 肋间外肌： 起止点：起自上位肋骨上缘，肌书斜向前下，止于下一肋的下缘 作用：提肋助吸气 肋间内肌 起止点：起自下位肋骨上缘，肌束行向前上方，止于上位肋的下缘 作用：降肋助呼气 肋间最内肌: 起止点:位于肋间隙中份，肋间内肌的深面，肌束方向和作用与肋间内肌相同 作用:降肋助呼气、 隔肌: 起止点:是分隔胸腹腔的一块阔肌，向上膨隆，呈穹隆状，周围部为肌质，肌纤维起自胸廓下口的周缘和腰椎前面，向中央移行为腱膜称中心腱
【关键词】局部解剖学；三角区；临床应用 在人体内有许多三角区，它们是局部解剖学的重要内容，也是人体结构的重要组成部份。有的三角区是手术中寻找血管的标志，有的是穿刺部位，有的用作鉴别疾病，有的为危险区等。因此掌握三角区对系统学习局部解剖学，指导临床有极其重要的意义。 1 头部三角 (1)危险三角为两侧口角至鼻根连线所形成的三角形区。面静脉可经内眦静脉、眼静脉与海绵窦交通，也可经面深静脉、翼丛等与海绵窦交通。口角平面以上的面静脉常无静脉瓣，当面部感染引起疖、痈时，可经上述途径至海绵窦，引起化脓性海绵状静脉窦炎、脑膜炎等，故该处感染应避免挤压。 (2)磨牙后三角由下颌骨内斜线和外斜线向上延伸相交而成。其基底部是最后磨牙的远中面，为下牙槽神经传导麻醉时穿刺点的重要标志之一。 (3)颊脂体三角位于颊粘膜下，底位于颊部，尖端靠近翼下颌韧带，相当于下颌孔平面。亦为下牙槽神经传导麻醉时穿刺点的重要标志之一。 (4)外耳道上三角(Macewen三角)位于外耳道上棘(Henle棘)的后方。上界为颧突后根的水平延长线(颞线)，前界是骨性外耳道后缘的切线，后下界为自颧突后根的延长线引至外耳道下缘之斜线。乳突凿开术时应以此三角和Henle棘为标志，开放鼓窦和乳突小房。但应注意勿向上误入颅中窝或伤及硬脑膜，向后易伤及乙状窦。 (5)脑桥小脑三角脑桥臂、延髓与小脑交界的三角形区域。前庭蜗神经根和面神经根恰连于此，在其上方有三叉神经根，下方与舌咽神经根和迷走神经根邻近，后方为小脑。因此，当此处有炎症或肿瘤时，会出现一系列症状和体征，称为脑桥小脑角综合征。最常见的是听神经瘤和蛛网膜炎等，随着病灶的扩大逐渐影响周围结构，从而产生相应的症状。此三角的血管、神经走行较为复杂，在其内手术时应注意避免伤及上述结构［13］。 2 颈部三角 (1)颏下三角为左、右二腹肌前腹与舌骨体围成的三角区，此区内有1～3个颏下淋巴结，为颏下恶性肿瘤、颏下区结节性筋膜炎的好发处［1］。 (2)下颌下三角（二腹肌三角）由二腹肌前、后腹与下颌体下缘围成，内有下颌下腺、面动脉、舌动脉、舌神经、舌下神经和下颌下神经节以及4～6个下颌下淋巴结。为颌下腺炎、颌下淋巴结炎的病变处。此区手术要保护舌神经、舌下神经以及下颌下神经节，以免引起舌前2/3感觉障碍、舌肌瘫痪和唾液分泌障碍。 (3)颈动脉三角由胸锁乳突肌上份前缘、肩胛舌骨肌上腹和二腹肌后腹围成。内有颈内静脉及属支、颈总动脉及分支、舌下神经及降支、迷走神经及分支、副神经及部分颈深淋巴结。由于颈总动脉位置表浅、在活体可摸到其搏动。当头面部出血时，可在平环状软骨高度向后内将颈总动脉压向第六颈椎的颈动脉结节进行止血。针刺“人迎”穴治疗高血压、低血压、哮喘等病时，应向深部触压颈总动脉，避开颈总动脉直刺。 1/4 (4)肌三角位于颈前正中线、胸锁乳突肌前缘、肩胛舌骨肌上腹之间。三角内有舌骨下肌群、甲状腺、甲状旁腺、气管颈部和食管颈部等器官。当甲状腺肿大时，如向后内侧压迫喉、气管可出现呼吸、吞咽困难或声音嘶哑；若向后外方压迫颈交感干可出现Horner综合征。在行甲状腺次全切术，结扎甲状腺下动脉时，应远离甲状腺下极，靠近颈动脉鞘处结扎，以免损伤喉返神经引起声音嘶哑；而结扎甲状腺上动脉时，应紧贴甲状腺上极，以免损伤喉上神经外支而出现声音低钝或呛咳等。部份病人在行低位气管切开或甲状腺手术时，还要注意勿伤甲状腺最下动脉。此外甲状腺手术时，还应尽量保留甲状旁腺，以免引起钙、磷代谢紊乱。(5椎动脉三角内侧界为颈长肌、外侧界为前斜角肌，下界为锁骨下动脉第1段，尖为第6
大鼠生物学特性和解剖生理特点 1．大鼠性哺乳钢，啮齿目，鼠科，大鼠属动物。 2．繁殖快。大鼠2月龄时性成熟，性周期4天左右，妊娠期20 天（19～22天），哺乳期21天，每天产仔平均8只，为全年、多发情性动物。 3．喜啃咬、夜间活动、肉食，白天喜欢挤在一起休息，晚上活动大，吃食多，因此白天除实验必须抓取外，一般不要抓弄它。食性广泛，喜吃各种煮熟的动物肉。对光照较敏感。 4．性情较凶猛、抗病力强。大鼠门齿较长，激恕、袭击抓捕时易咬手，尤其是哺乳期的母鼠更凶些，常会主动咬工作人员喂饲时伸入鼠笼的手。对外环境适应性强，成年鼠很少患病。一般情况下侵袭性不强，可在一笼内大批饲养，也不会咬人。 5．无胆囊：大鼠、鸽、鹿、马、驴、象等动物没有胆囊，它们的总胆肝管括约肌的阻力很少，肝分泌的胆汁通过总胆管进入十二指肠，受十二指肠端括约肌的控制。 6．不能呕吐：因此药理实验时应予注意。 7．垂体一肾上腺系统功能发达，应激反应灵敏。行为表现多样，情绪敏感。 8．视觉、嗅觉较灵敏，做条件反射等实验反应良好，但对许多药物易产生耐药性。 9．大鼠血压和血管阻力对药物反应敏感，但对强心甙的作用较猫敏感性低671倍。
10．肝脏再生能力强，切除60～70%的肝叶仍有再生能力。 11．对营养、维生素、氨基酸缺乏敏感，可发生典型的缺乏症状。体内可以合成维生素Ｃ。 12．对炎症反应灵敏。它的眼角膜无血管。 13．生长发育期长，长骨长期有骨骺线存在，不骨化。 14．成年雌鼠在动情周期不同阶段，阴道粘膜可发生典型变化，采用阴道涂片法（Yaginal Smear Test）来观察性周期中阴道上皮细胞的变化，可推知性周期各个时期中卵巢、子宫状态与垂体激素的变动。15．大鼠（包括小鼠）心电图中没有S-T段，甚至有的导联也不见T波，如有T波也是与S波紧挨着，或在R波降支上即开始，以致看不到等电线的S-T段。但心电图其他成分稳定，重复性好。豚鼠以上较大的动物均有明显的S-T段，在选择动物品种时应以注意。16．大鼠垂体较脆弱地附着在漏斗下部，不需要很大的吸力就可以除去而不破坏鞍膈和脑膜，适宜于制作去垂体模型。大鼠也很适于作肾上腺和卵巢等内分泌腺切除手术。 17．大鼠肠道较短，盲肠较大，但盲肠功能不发达。不耐饥饿，肠内能合成维生素C。双子宫。胸部和鼠蹊部各有三对乳头。胰腺十分分散，位于胃和十二指肠弯曲处。染色体为21对，寿命3～4年。18．大鼠的体温39℃（38.5～39.5℃），心跳频率475次/分（370～580次/分），呼吸频率85.5次/分(66～114次/分)，通气量7.3 ml/分(5～10.1ml/分)，潮气量0.86 ml (0.6～1.25ml)，耗氧量2000mm3/g 体重，麻醉时收缩压116（88～138）mmHg红细胞总数8.9百万mm3
人解知识竞赛----骨、关节、肌肉部分一．名词解释： 1.黄韧带（ligamenta flava）：位于椎管内，连接相邻两椎弓板间的韧带，由黄色的弹性纤维构成。 2.板障（diploe）：颅盖各骨内、外板间的骨松质，内有板障静脉通过。 3.斜角肌间隙（scalene space）：前、中斜角肌与第一肋之间形成一呈三角形的间隙，内有锁骨下动脉和臂丛通过。 4. 三边孔(trilateral foramen)：其上界为小圆肌、肩胛下肌，下界为大圆肌，外侧界为肱三头肌长头，其内有旋肩胛血管通过。 5. 四边孔(quadrilateral foramen)：其上界为小圆肌、肩胛下肌，下界为大圆肌，内侧界为肱三头肌长头，外侧界为肱骨外科颈，内有腋神经和旋肱后血管通过。 6. 肘窝（cubital fossa）：位于肘关节的前面，呈三角形。内界为旋前圆肌，外界为肱桡肌，上界为肱骨内、外上髁之间的连线。窝内主要有肱二头肌腱、肱动脉及其分支和正中神经。 7.腕管（carpal canal）：位于腕掌侧，由屈肌支持带和腕骨沟围成。管内有指浅屈肌腱、指深屈肌腱、拇长屈肌腱和正中神经通过。 8. 腹股沟管(inguinal canal)：腹股沟管位于腹股沟韧带内侧半的上方，外口为腹股沟浅环，内口为腹股沟深环，位于腹股沟韧带正中线上方约1.5CM处。对于男性，内有精索穿过；对于女性，内有子宫圆韧带穿过。 9. 收肌管(adductor canal)：位于股内侧肌、缝匠肌、大收肌及其腱板之间的管道，上口为股三角下端，下口为收肌腱裂孔。管内有股动、静脉及隐神经穿行。 10.股三角（femoral triangle）：在大腿前面的上部，上界为腹股沟韧带，内侧界为长收肌内侧缘，外侧界为缝匠肌内侧缘。三角内有股神经、股血管和淋巴结等。 11.锁胸筋膜（clavipectoral fascia）：是位于喙突、锁骨下肌和胸小肌上缘之间的深筋膜，有头静脉、胸肩峰动脉、静脉和胸外侧神经穿过。 12. 股鞘(femoral sheath)：为腹横筋膜及髂腰筋膜向下延续包绕股动脉、股静脉上段形成的筋膜鞘。 二、填空题 1.骨的构造：骨由骨质、骨膜、骨髓及骨的血管淋巴管和神经组成。 2.骨膜含有丰富的神经血管，对骨的营养、再生和感觉有重要作用。骨膜内层有成骨细胞和
1、细胞：由细胞膜、细胞质、细胞核构成，细胞是有机体 代谢与执行功能的基本单位，具有独立的、有序的自控 代谢体系。具有生物合成的能力，是遗传的基本单位。 以细胞的分裂、增殖、分化与凋亡来实现有机体的生长 与发育。 2、细胞分裂有有丝分裂、无丝分裂、减数分裂。细胞从前 一次分裂结束到下一次分裂完成，称为一个细胞周期。 3、动物体可分为头部、躯干和四肢三部分。 4、头部：包括颅部和面部，颅部位于颅腔周围可分为：枕 部、顶部、额部、颞部、耳部和眼部。面部位于口腔和 鼻腔周围，可分为眶下部、鼻部、咬肌部、颊部、唇部、 颌部和下颌间隙部。 5、躯干：分为颈部（颈背侧部、颈侧部、颈腹侧部）；背 胸部：背部（耆甲部、背部）、胸侧部（肋部）和胸腹 侧部（胸前部和胸骨部）；腰腹部（腰部和腹部）；荐臀 部；尾部。 6、前肢部：包括肩部、臂部、前臂部（脘部、掌部和指部） 和前脚部。 7、后肢部：臀部、股部、膝部、小腿部、和后脚部（跗部、 跖部和趾部） 8、基本切面：矢状面、横断面、额面（水平面） 9、掌侧：前肢后面。跖侧：后肢的后面。背侧：四肢的前 面。 10、骨由骨膜、骨质、骨髓构成，其基本物理特性是具有硬 度和弹性，化学成分包括：无机物（磷酸钙和碳酸钙） 和有机物（骨胶原）。11、全身骨骼包括中轴骨骼、四肢骨骼、内脏骨。 中轴骨骼包括头骨和躯干骨。四肢骨骼包括前肢骨和后肢骨。 12、头骨包括颅骨和面骨，由扁骨和不规则骨构成。 13、颅骨由成对的额骨、顶骨、颞骨和不成对的枕骨、顶间 骨、蝶骨、筛骨构成。 14、面骨由成对的鼻骨、泪骨、颧骨、上颌骨、颌前骨、颚 骨、翼骨、鼻甲骨和不成对的犁骨、下颌骨、舌骨构成。 15、鼻旁窦包括上颌窦、额窦、蝶腭窦和筛窦。因其直接或 间接与鼻腔相通，故称鼻旁窦。 16、动物头骨特征：马的呈长锥状、猪呈锥状，牛比马短。 马、兔的面骨较长，狗、猫的较短。牛的额骨上有角突， 猪有吻骨。 17、躯干骨包括椎骨、肋骨、胸骨。 18、椎骨按位置分为颈骨、胸椎、腰椎、荐椎、尾椎。 19、颈椎一般有7个，胸椎：牛羊狗猫有13个，猪14或 15个，马18个。腰椎：牛和马6个、驴、骡5个， 猪羊6或7个，狗和猫7个。荐椎：牛和马5个、猪羊 4个，狗猫3个。尾椎：牛18—20个，马14—21个， 羊3—24个，猪20—23个，狗20—30个。 20、肋骨：牛羊13对、马18对、猪14和15对，狗猫13 对。经肋软骨与胸骨直接相连的肋骨叫真肋，肋软骨不 与胸骨相连，而是连于前一肋软骨上的叫假肋。肋软骨 不与胸骨直接相连的叫浮肋。 21、胸骨:有6—8个胸骨节片。 22、前肢骨包括肩胛骨、肱骨、前臂骨、前脚骨（腕骨、掌
实验一小鼠大体解剖 注意事项：请按教师的指令进行操作，谨防被小鼠咬伤； 如发生意外，请立即报告老师！ 一、实验目的 1. 掌握小鼠的抓取和固定方法； 2. 掌握小鼠的解剖方法； 3. 熟悉脏器系数的测定方法 4. 了解一般实验动物的抓取和固定方法 5. 了解一般实验动物的生物样本的采集方法 二、实验内容 1. 小鼠的抓取和固定 正确的抓取固定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷，确实达到正确抓取固定动物的目的。 （1）单手抓取固定法 小鼠性情较温顺，挣扎力小，比较容易抓取和保定。抓取时，用左手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部（图1）放在格板或铁笼上。趁着小鼠试图挣脱的瞬间，迅速用另外三个手指压住小鼠的尾巴根部握入手掌（图2）；放松拇指和食指，用另外三个手指控制小鼠，然后用食指和拇指捏住小鼠头部两边疏松的皮肤提起小鼠（图3），完成抓取保定。注意，抓小鼠尾巴应抓住尾巴中部或根部，不能仅捏住小鼠尾巴的尾端，因为这时小鼠的重量全部集中到尾端，如果小鼠挣扎，有可能弄破尾端。 在进行解剖、手术、心脏采血、尾静脉注射时，可将小鼠用线绳捆绑在木版上，或固定在尾静脉注射架及粗试管中。 图1 图2 图3 （2）双手抓取固定法
抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤（图4），将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可（图5）。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。尾静脉注射时，可用小鼠尾静脉注射架固定（图6），先根据动物大小选择好合适的固定架，并打开鼠筒盖，手提鼠尾巴，让动物头对准鼠筒口并送入筒内，调节鼠筒长短合适后，露出尾巴，固定筒盖即可进行尾静脉注射或尾静脉采血等操作。 图4 图 5 2. 小鼠的处死方法 （1）颈椎脱臼处死法 此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为小鼠最常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。 （2）断头处死法 此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时，实验人员用左手按住实验动物的背部，拇指夹住实验动物右腋窝，食指和中指夹住左前肢，右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断，使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。 3 .小鼠解剖步骤 （1）处死小鼠 将小鼠采用颈椎脱臼法处死后，置台秤上称重。 图6
实验动物学实验报告 学院: 学号: 姓名 时间:
精品文库 实验一：小鼠实验 、实验目的 掌握小鼠的常用给药方法； 掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置; 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠; 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖 刀；1ml 注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液； 2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时， 用左手拇指 和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉 直，以无名指按住鼠尾， 小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验 动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以 及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生 殖器与肛门的 距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有 无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口， 左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠; 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 1、 掌握小鼠抓取、固定的基本方法; 2、 掌握小鼠的雌雄鉴别方法; 3、 掌握小鼠的标记方法; 4、 掌握小鼠的基本采血技术; 5、 6、
4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45 C温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交 替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2?0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2?3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后, 拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2?0.3ml 0 3）心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3?4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4?5号针头的注射器, 选择心搏最强处穿刺，当针刺入心脏时，血液由于心脏跳动的力量自动进人注射器。此法要求实验者掌握以下要点：要迅速而直接插入心脏，否则，心脏将从针尖处滑脱；如第一次没刺准，将针头抽出重刺，不要在心脏周围乱探，以免损伤心、肺；要缓慢而稳定的抽吸，否则，太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时，也可麻醉后切开动物胸部，将注射器直接刺人心脏抽吸血液。 5、小鼠的常用给药方法1）经口给药：小鼠灌胃 左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持灌胃针，将灌胃针插入动物口中，沿咽后