动物生理学实验指导教案
动物生理学研究性实验的程序与基本要求
《动物生理学》不仅是一门理论性很强的基础性学科，而且是实验性很强的学科，它的许多理论都来自科学实验结果。因此，在学生经过了一段时间的《动物生理学》理论的学习和一定的实验基本技术操作训练及经典性实验实践之后，进一步进行有关的《动物生理学》研究性实验的基本训练是非常必要的。通过实验设计、探索性实验过程，能使学生充分认识实验在科学理论产生和发展中的作用；培养学生的创新精神及观察和发现问题的能力；解决实际问题和分析、综合实验结果的能力；通过撰写研究性论文使学生学会用逻辑性语言表达研究结果的能力；为今后独立进行科学研究打下良好的基础。
实验一实验技术与实验仪器
一、动物生理学实验课程的教学目的
本课程旨在通过实验教学训练学生基本操作技能，培养其动手能力，并使学生通过该课程的学习与理论知识融会贯通；培养学生实事求是、严谨的科学作风和严密的科学逻辑思维方法，以及观察、分析、解决问题的综合能力。同时，通过学习实验课程中的新技术、新方法，使学生了解和掌握机能学科实验方法的更新和发展方向，启发学生在机能学科实验研究中的创新性思维。为培养学生的科学研究思维和科学研究能力奠定良好基础。
二、学习动物生理学实验课程的要求
1．做好实验前理论与操作准备
(1)熟悉相关理论知识，以明确相关实验的设计目的、实验原理以及正确的实验结果。
(2)预习实验教材中拟进行的实验内容，掌握实验目的与原理，了解实验步骤及操作要点、注意事项等。
2．以严谨的科学态度进行实验
(1)实验中严格按操作程序进行。实验小组各成员合理分工并密切合作，
注意培养自己的动手能力与独立解决实验过程中的问题的能力。
(2)仔细、耐心观察实验现象，认真做好记录。主动联系理论思考、分析实验结果和各种实验现象。认真总结实验成败原因。培养实事求是的科学作风。
(3)所进行的实验结果均应完整记录。整理分析其结果后书写出实验报告。
三、实验结果的记录方法与实验报告的书写要求
1．实验结果表示方法
(1)图形表示法：实验结果如以图形记录在实验仪器上的，可通过输出设备打印，再附在实验报告上。如神经肌肉的电活动记录，心肌、肠肌收缩曲线，血压曲线等。某些数据亦可经统计学处理后做成图形表示。如不同血药浓度与相应时间的对应关系，此时血药浓度为纵坐标、时间为横坐标，描记出药时曲线图形。
(2)数据表示法：实验结果以测定数据记录的，也可以统计数据表格形式表示，
如：各组动物不同情况下的血液、体液电解质浓度，PC0
2、P0
2
等数据。
2．实验报告的书写要求
在实验报告封页上应写上姓名、学号、年级、班次和实验组别。字迹清楚，工整。按格式要求逐一书写
（1）实验题目：一般将实验题目放在实验报告纸的第一行或第一行正中。（2）实验目的：字数不宜繁多。一般用1～2句话阐明实验所要证实的论点或要研究的内容即可。
（3）实验方法：应注明实验动物名称，麻醉方法。其余实验操作如实验仪器、实验药物或试剂、实验步骤与过程等，可用“按XX章XX实验项下的实验方法进行”等字样表示。
（4）实验结果：根据实验结果真实、完整地以图形、表格或文字方式表示出来。如因操作失误或实验动物发生意外未能完成所需观察的实验结果，应在实验报告中如实说明。
（5）讨论和结论：讨论应结合实验结果进行，宜简明扼要。主要是分析解释所观察到的实验结果和现象，如为预期结果，应结合理论知识进行其作用、作用机制的阐述。如未达预期结果，应找出原因，总结其经验教训。
结论放在实验讨论后，作为结尾完成。结论应以实验结果为依据，在讨论的基础上概括、总结具有代表性的实验结果的论点或推论。
四、实验室规则和操作规程
1．按时进入实验室，不得迟到早退或随意缺席。
2．养成良好的学习和工作作风，保持实验室安静。严禁在实验室里高声喧哗、打闹。
3．爱护实验室设施。实验中严格按实验步骤和方法进行。未经教师同意不得随意动用实验室仪器或器械。切忌违规操作或粗暴使用精密仪器。如微机操作应掌握如何正确开机、如何进入实验程序、如何启动记录、如何存储与输出、如何打印实验结果及关机等。严禁在微机上玩游戏、作个人文件、随意启动其他程序，甚至损坏实验程序等与实验无关甚至非法的活动。
4．实验前认真按教材清点实验桌上的实验器材，如有实验器械缺少或损坏应及时向教师报告。实验完毕后应将器械清洗干净，摆放整齐。如在实验过程中意外损坏实验器械，应向教师报告说明，以及时检修或更换。故意损坏实验仪器或器械者，除照价赔偿外，学校将给予行政处罚。
5．养成节约用物的良好习惯，不得随意浪费动物标本、器材、药品和试剂。能重复利用的器材如纱布、缝合针、试管、插管、针头等，应洗净再用。实验中不得图个人方便而随意移走公用物品。实验废物不得乱倒、乱扔，尤其是强酸、强碱试剂或具放射性的液体或污物，动物皮毛，组织器官，纸屑等不得倒入水槽内，应统一放置在指定地点。
6．实验完成后，应及时关闭微机。离开实验室以前应安排值日小组打扫实验室清洁，整理桌面物品，关闭总电源及稳压器开关、水开关、门窗等。最后请实验室管理人员检查验收后方能离开。
五、动物生理实验常用手术器械
1 常用手术器械
动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同,但也有一些专用器械.现仅介绍常规的手术器械。
(1)手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
(2)手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。其尖端有直、弯之分。主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。一般
说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
(3)手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
(4)血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。正确持钳和持剪方法相同（图 3.1-6）。开放血管钳的方法是利用右手已
套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
(5) 骨钳在打开颅腔和骨髓腔时，用于咬切骨质。
(6)颅骨钻用于开颅时钻孔。
(7)气管插管急性动物实验时，插入气管，以保证呼吸通畅，或做人工呼吸。将一端接气鼓或换能器，可记录呼吸运动。
(8)血管插管有动脉插管和静脉插管。一些小型动物的动脉插管可用16号输血针头磨平来替代。在急性实验时插入动脉，另一端接压力换能器或水银检压计，以记录血压。静脉插管插入静脉后固定，以便在实验过程中随时用注射器向静脉血管中注入药物和溶液。
(9)金属探针专门用来毁坏蛙类脑和脊髓。
(10)玻璃分针专用于分离神经与血管等组织。
(11)蛙心夹使用时将夹的前端在蛙心室舒张时夹住心室尖，尾端用线系在换能器（或扛杆）上。
(12)动脉夹用于阻断动脉血流。
(13)蛙板一块20 cm×15 cm的木板，用于固定蛙类。
各种手术器械使用后，都应及时清洗，齿间、轴间的血迹也应用小刷刷洗干净。洗净后用干布擦拭干，忌用火烤烘干或重击。久置不用的金属器械应檫油保护。
2. 实验动物
六、计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用
生物信号采集、处理系统是应用大规模集成电路、计算机硬件和软件技术开发的一种集生物信号的放大、采集、显示、处理、存储和分析的电机一体化仪器。该系统可替代传统的刺激器、放大器、示波器、记录仪，一机多用，功能强大。广泛地被应用于生理学、病理学、药理学实验。
1 计算机生物信号采、集处理系统的基本组成和工作原理
目前我国的生物信号采集处理系统多达十余种,因各制造商开发的年代和使用风格不同,相互之间存在着一定的差异。早期的产品基于DOS操作系统，而近期产品多以Windows操作系统，虽然产品有不同的特点，但基本的结构和工作原理具有一定的共性,现做一简要的介绍。
该系统由硬件和软件两大部分组成。硬件主要完成对各种生物电信号(如：心电、肌电、脑电)与非电生物信号(如：血压、张力、呼吸)的采集。并对采集到的信号进行调理、放大，进而对信号进行模／数(A／D)转换，使之进入计算机。软件主要用来对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话(图2.5-1)。
（1）传感器和放大器
生物所产生的信息，其形式多种多样，除生物电信号可直接检取外，其它形式的生物信号必须先转换成电信号，对微弱的电信号还需经过放大，才能作进一步的处理。生物信号采集处理系统中的刺激器和放大器都是由计算机程控的,其工作原理和一般的刺激器、放大器完全一样。主要的区别在于一般仪器是机械触点式切换，而生物信号采集系统是电子模拟开关，由电压高低的变化控制，是程序化管理，提高了仪器的可靠性，延长了仪器的寿命。
（2）生物信号的采集
计算机在采集生物信号时，通常按照一定的时间间隔对生物信号取样，
并将其转换成数字信号后放入内存。这个过程称为采样。
(1)A/D转换器
生物信号通常是一种连续的时间函数，必需转换为离散函数，再将这离散的函数按照计算机的“标准尺度”数字化，以二进制表达，才能被计算机所接受。A/D转换设备能提供多路模/数转化和数/模转换化。A/D转换需要一定时间，这个时间的长短决定着系统的最高采样速度。A/D转换的结果是以一定精度的数字量表示，精度愈高，（曲线的）幅度的连续性愈好。对一般的生物信号采样精度不应低于12位数字。转换速度和转换精度是衡量A/D转换器性能的重要指标。
(2)采样
与采样有关的参数包括：通道选择、采样间隔、触发方式和采样长度等方面。
①通道选择：一个实验往往要记录多路信号，如心电、心音、血压等。计算机对多路信号进行同步采样，是通过一个“多选一”的模拟开关完成的。在一个很短暂的时间内，计算机通过模拟开关对各路信号分别选通、采样。这样，尽管对各路信号的采样有先有后，但由于这个“时间差”极短暂，因此，仍可以认为对各路信号的采样是“同步”的。
②采样间隔：原始信号是连续的，而采样是间断进行的。对某一路信号而言，两个相邻采样之间的时间间隔称为采样间隔。间隔愈短，单位时间内的采样次数愈多。采样间隔的选取与生理信号的频率也有关，采样速率过低，就会使信号的高频成分丢失。但采样速率过高会产生大量不必要的数据，给处理、存储带来麻烦。根据采样定律，采样频率应大于信号最高频率的2倍。实际应用时，常取信号最高频率的3～5倍来作为采样速率。
③采样方式：采样通常有连续采样和触发采样两种方式。在记录自发生理信号(如心电、血压)时，采用连续采样的方式。而在记录诱发生理信号(如皮层诱发电位)时，常采用触发采样的方式。后者又可根据触发信号的来源分为外触发和内触发。
④采样长度：在触发采样方式中．启动采样后，采样持续的时间称为采样长度。它一般应略长于一次生理反应所持续的时间。这样既记录到了有用的波形，又不会采集太多无用的数据造成内存的浪费。
（3 ）生物信号的处理
计算机生物信号采集处理系统因其强大的计算功能，可起到滤波器的功能，而且性能远远超过模拟电路，恢复被噪音所淹没的重复性生理信号。人们可以测量信号的大小、数量、变化程度和变化规律，如波形的宽度、幅度、斜率、零交点数等参数。做进一步的分类统计、分析给出各频率分能量（如脑电、肌电及心率变异信号）在信号总能量中所占的比重、对信号源进行定位。对实验结果可以用计数或图形方式输出。对来自摄像机或扫描仪的图像信息经转换后，也可输入计算机进行分析。所以计算机生物信号采集处理系统，不仅具备了刺激器、放大器、示波器、记录仪和照相机等仪器的记录功能外，而且还兼有微分仪、积分仪、触发积分仪、频谱分析仪等信号分析仪器的信息处理功能。为节省存储空间，计算机可对其获得的数据可按一定的算法进行压缩。
2 计算机生物信号采集、处理系统的基本操作
计算机生物信号采集、处理系统种类繁多，用其进行实验操作方法各有所异,这里只能做一般的、原则性介绍。掌握实验的一般流程、配置实验和刺激参数设置方法是我们用好生物信号采集系统的关键。
(1)进入系统，选择通道：确定信号输入到哪个通道，以打“对勾”表示。
(2)刺激方式的选择:根据实验的需要确定是否需要刺激。一般可有7种刺激方式可被选择（见刺激参数设置）
(3)选择输入方式：根据生物信号的性质：是非电信号（如骨骼肌张力、血压、呼吸道压力、心肌收缩力、肠肌张力等）还是电的信号（如神经干动作电位、心电、神经放电、脑电等），确定是否需要换能器。
(4)交/直流的选择根据生物信号是快信号（如神经干动作电位、心室肌动作电位、神经放电等）还是慢信号（如血压、呼吸、心电、平滑肌张力等）确定以何种电流输入。一般电信号选择交流输入，非电信号经换能后选择直流输入。来自另外的前置放大器的输入信号，采用直流输入的方式（如经微电极放大器后的心室肌动作电位信号）。可用放大器的时间常数进行选择（或有专门的开关）。
(5)放大器放大倍数的选择：采样卡的有效采样电压一般位+/-5V。所以输入信号的强度一般不能超过 5 V，根据信号的强弱选择适当的放大倍数,在不溢出的前提下,放大倍数选大一些为好。
(6)滤波选择：根据是否需要滤波确定高频滤波和时间常数，使采样在
最好的波段中进行（见2.3.1）。
(7)选择显示模式：用计算机生物信号采集、处理系统进行实验时有两种显示模式的选择：一类为快捷（或标准）方式，系统内提供了许多常规的生理、病理、药理专项实验方法，所配置及标定的参数都已提供在每一专项实验选项中。因此只要进入系统，激活实验菜单，选择具体的实验项目，即可按照标准实验内容做好各项配置、标定而进行实验。另一类是一般性（或通用）方式，适用于科研与特殊教学实验，可根据需要不断改变系统参数（进行显示设置），使采集的波形更好，更适合于观察及符合实验结果。
①“连续记录”方式：用来记录变化较慢，频率较低的生物信号。如电生理实验中的血压，呼吸，心电、张力等，扫描线的方向是由右向左，连续滚动，与传统仪器的二导记录仪相一致。它的采样间隔从最慢50 ms至最快25 μs，有11档可选。在上述经典实验中一般选l ms～ 10 ms之间即可。
②“记忆示波”方式：用来记录变化快，频率高的生物信号。如：电生理实验中的神经干动作电位，动作电位传导速度，心室肌动作电位等。扫描线的方向是由左至右，一屏一屏地记录，与传统示波器相一致。它的采样间隔选项从最快每次1 ms～10 μs,有8档可选。(注意：在10 μs档即100 KHz采样频率只允许单窗口运行)在经典型实验一般选25 μs或50 μs即可。
③刺激触发显示方式是一种单帧波形显示方式。表示发出一个刺激信号，采集一帧生物信号数据，并把它显示在屏幕上。如果选择了“记忆示波”显示方式则应考虑选择“刺激器触发显示”，要求刺激与采样同步工作。
还有其它显示方式，此处不再列举。
(8)采样间隔选择：注意采样间隔与所采信号相匹配。采样间隔调控的合适值应多试几次，以求最好。
(9)采样进入实验项目（通道采样内容）从1～4通道输入生理信号并选择希望进行的实验项目，点击开始按钮，系统开始采样，采样窗中即有扫描线出现，并随外部信号变化，显示起伏波形。
注意：如果在触发方式中选定了刺激器触发，则应当在主界面中点击“刺激”按钮启动刺激器，即可开始同步采样。
(10)实时调整采样参数：为使采样波形达到最好——即最有利于观察的
状态，可以在采样过程中,时实按以下步骤调节各部分：
①如感信号太大或太小,可实时点击各通道放大器增益按钮，改变放大倍数,将信号幅度放大至适当程度。
②调节各通道的时间常数和高频滤波值
③调节各通道的扫描速度。
④如感到图形显示太大或太小, 可实时在Y轴上进行压缩或扩展，使图形大小适中。注意此时输入的信号并没有改变，仅是图形的变形。
⑤如果感到图形X轴压缩比不合适,可实时点击X轴压缩或扩展按钮，使扫描线滚动速度适合观察。
⑥在需要刺激时，可在刺激器参数调整栏中，逐个调整刺激参数，形成最佳参数。
⑦如果出现50 Hz的干扰,可启动50 Hz抑制,将50 Hz电源的干扰信号消除掉。该命令只能对当前通道起作用。
(11)结束采样点击采样结束按钮结束采样，全部结果数据以图形方式显示在各自的窗口，可移动X方向棍条从头到尾观察所有的图形。并可拖选图形进行观测量、进入表格、打印等后处理。
(12) 设置存盘如果本次实验成功，所选的设置参数合理，可将本设置以自定义文件名存盘。
实验二呼吸运动的调节
【实验原理】
呼吸运动能够有节律地进行，并能适应机体代谢的需要，是由于体内呼吸中枢调节的缘故。体内、外各种刺激可以作用于中枢或经不同的感受器反射性地通过膈神经和肋间神经影响呼吸肌尤其是膈肌的活动。
【实验目的】
本实验的目的是观察某些因素对呼吸运动的影响及膈肌活动时的生物电现象。
【实验材料】 1.实验对象家兔
2.实验器材哺乳类动物手术器械，兔手术台、MS4000U生物机能实验系统、气管插管、50cm长的乳胶管、保护电极、20ml、5ml注射器、250ml抽滤瓶、纱布、棉线。
3.药品生理盐水、20%氨基甲酸乙酯、3%乳酸、CaCO
稀盐酸、
3、
【实验步骤及观察项目】
1. 麻醉及气管插管用20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg体重）由耳缘静脉注入，待动物麻醉后仰卧固定于手术台上，沿颈部正中切开皮肤，分离气管，并插入气管插管。分离出颈部双侧迷走神经穿线备用。在剑突下剪一小口，暴露剑突下的膈肌，注意切勿导致气胸。
具体步骤：
抓兔方法、称重、麻醉、手术等
静脉注射法：家兔静脉注射一般采用耳缘静脉。耳缘静脉沿耳背后缘走行，较粗，剪除其表面皮肤上的毛并用水湿润局部，血管即显现出来。注射前可先轻弹或揉擦耳尖部并用手指轻压耳根部，刺入静脉(第一次进针点要尽可能靠远心端，以便为以后的进针留有余地)后顺着血管平行方向深入1cm，放松对耳根处血管的压迫，左手拇指和食部指移至针头刺入部位，将针头与兔耳固定。进行药物注射。若注射阻力较大或出现局部肿胀，说明针头没有刺入静脉，应立即拔出针头，在原注射点的近心段重新刺入。注射完毕，拔出针头，用棉球压住针刺孔，以免出血。若实验过程中需补充麻药或静脉给药，也可不拔出针头，而用动脉夹将针头与兔耳固定，只拔下注射器筒，用一根与针头内径吻合且长短适宜的针芯(可用针灸针代替)插入针头小管内，防止血液流失，以备下次注射时使用(见图
2-11中)。
2-11 兔耳静脉注静
乌拉坦：又名氨甲乙酸乙酯(urethane)，与氯醛糖类似，可导致较持久的浅
麻醉，对呼吸无明显影响。乌拉坦对兔的麻醉作用较强，是家兔急性实验常用的麻醉药。对猫和狗则奏效较慢，在大鼠和兔能诱发肿瘤，需长期存活的慢性实验动物最好不用它麻醉。本药易溶于水，使用时配成10～25%的溶液。
颈部手术颈部手术主要以免、狗、猫、大白鼠、豚鼠为实验对象。将动物仰卧位固定于手术台上，然后进行实验。
1．颈部切开
剪去颈前皮肤上的毛。用手术刀在喉头与胸骨上缘之间沿颈腹正中线作一切口。切口的长度：大白鼠或豚鼠为2.5-4cm，兔、猫为5-7Cm，狗为10cm。用止血钳分离皮下结缔组织，然后将切开的皮肤向两侧拉开，可见到颈部有3条浅层肌肉：
(1)胸骨乳突肌起自胸骨，斜向外侧方头部颞骨的乳突处，在狗称为胸头肌。左右胸骨乳突肌呈“V”型斜向分布。
(2)胸骨舌骨肌起自胸骨，止于舌骨体，位于颈腹正中线，左右两条平行排列，覆盖于气管腹侧面。
(3)胸骨甲状肌起自胸骨和第一肋软骨，止于甲状软骨后缘正中处。
2．气管切开及气管插管术
气管切开术是哺乳类动物急性实验中常作的手术。一方面切开气管和插入气管插管可保证呼吸通畅；另一方面为实验要求做准备。
气管位于颈部正中位，全部被胸骨舌骨肌与胸骨甲状肌所覆盖。用止血钳分开左右胸骨舌骨肌，在正中线沿其中缝插入并向前后两端扩张创口。注意止血钳不能插入过深，以免损伤气管或其他小血管。也可用两食指沿左右胸骨舌骨肌中缝轻轻向上下拉开，此时即可见到气管。
在喉头以下气管处，分离一段气管与食管之间的结缔组织，并穿一根浸过生理盐水的棉线备用。于甲状软骨下1-2cm处的两个软骨环之间，用手术刀或剪刀将气管横向切开，再向头端作一小纵向切口，使呈“⊥”形，将口径适当的气管插管由切口向胸端插入气管腔内，用备用线结扎，并再在插管的侧管上打结固定，以防插管滑出。
插入插管后需仔细检查，若管内有血液，必须拔出插管，经止血处理后再插入。
3. 颈部神经、血管分离的基本方法
神经和血管都是比较娇嫩的组织，因此在剥离的过程中应细心，动作要轻柔，切不可用带齿的镊子进行剥离，也不可用止血钳或镊子夹持，以免其结构和机能受损。
剥离颈部较粗大神经和血管时，先用止血钳将神经或血管周围的结缔组织稍加分离，然后在神经或血管附近结缔组织中插入大小适合的止血钳，顺着神经或血管走行方向扩张止血钳，逐渐使其周围结缔组织剥离。分离细小神经或血管时，要特别注意保持局部的自然解剖位置，不要把结构关系弄乱，同时需用玻璃分针轻轻地进行分离。剥离组织时的用力方向应与神经或血管的走行方向一致。
分离完毕，在神经或血管的下面穿过浸有生理盐水的细线(根据需要穿一根或两根)，以备刺激时提起或结扎之用。然后用一块浸有温热生理盐水的纱布或
棉花盖在切口
组织上，经常
保持组织湿润
(见图2-22)。
图2-22 兔颈、胸部的神经和血管示意图
(2)兔气管插管动物（以家兔为例）暴露、游离出气管，并在气管下穿一较粗的线。用剪刀或专用电热丝于喉头下2～3 cm处的两软骨环之间，横向切开气管前壁约1/3的气管直径，再于切口上缘向头侧剪开约0.5 cm长的纵向切口，整个切口呈”┴”。若气管内有分泌物或血液要用小干棉球拭净。然后一手提起气管下面的缚线，一手将一适当口径的“Y”气管插管斜口朝下,由切口向肺插入气管腔内，再转动插管使其斜口面朝上，用线镈结于套管的分叉处,加以固定
（图3.7-2）。
2. 仪器连接将压力传感器与气管插管连接，并将侧孔夹闭。将信号线接
CH
2输入座。将两引导探针插入膈肌，接入CH
1
输入座。
依次选择“输入信号”、“CH
1
通道→肌电”、“CH
2
通道→呼吸”
依次选择设刺激器方式：“连续单刺激”、波宽“5ms”、延时“30ms”，强度
6V，波间隔20ms
3.实验项目
3.1观察正常的呼吸曲线适当调节气管插管另一开口大小，使呼吸曲线幅度适中，便于观察。通道1可见膈肌活动时的生物电现象。通道2可见呼吸曲线，上升相为呼气，下降相为吸气。
3.2增加二氧化碳当呼吸平稳后，将装有碳酸钙的三角瓶加入盐酸后，迅速与套在气管侧管上的橡皮管相连，观察呼吸效应。
3.3缺氧当呼吸恢复后，将缺氧装置接气管插管侧管，观察呼吸效应。
3.4增大无效腔（长管呼吸）当呼吸恢复后，将一段长橡皮管接气管侧管，观察呼吸效应。
3.5注射乳酸抽取3%乳酸1ml，于耳缘静脉注射观察呼吸效应。
3.6剪断迷走神经剪断一侧迷走神经时，观察呼吸效应，稍后，剪断另一侧迷神经时，观察呼吸效应。
【注意事项】
1.气管插管前注意止血并清理气管内容物。
2.注射乳酸时不要刺破静脉，以免乳酸外漏，引起动物躁动。
3.气管插管侧管的夹子在实验全过程中不得更动，以免影响振幅前后比较。【思考题】
1. 迷走神经在节律性呼吸中起什么作用？
2. 如何排除本实验中出现的干扰？
实验四神经干动作电位引导、兴奋传导速度的测定
【实验原理】
各种可兴奋细胞处于兴奋状态时，都有一个共同的、最先出现的反应——动作电位，即细胞膜受刺激后在原有静息电位基础上发生的一次膜两侧电位的快速倒转和复原。动作电位是细胞兴奋的标志，它只是在外加刺激达到一定强度时方可出现。该实验中神经干动作电位的引导采用的是细胞外记录，当冲动传来，神经的兴奋部位对于静止部位来说呈负电位，两者之间出现的电位差可被摆放在神经纤维外的记录电极和参考电极引导出来，显示在荧光屏上。由于本实验所用的坐骨神经标本包括许多种类的神经纤维成分，其各自的兴奋阈值不同，传导速度各异，所引导的动作电位为各峰电位之总和，为复合动作电位，因而其幅值在一定范围内随刺激强度增加而增大。
可兴奋细胞任何一个部位的膜受刺激产生动作电位后，该处已除极的膜电位和邻近仍处于安静极化状态的膜电位之间出现一电位差并引起局部电流，流动的结果是未兴奋部位的膜内电位升高，而膜外电位降低，膜除极达阈电位，邻近的膜也产生动作电位。
动作电位同样依局部电流的形式沿神经纤维传导，其速度取决于神经纤维的直径、内阻、有髓或无髓等。坐骨神经为混合神经，通过测定该复合动作电位经过的距离和时间，即可计算出神经干兴奋传导的速度。
【实验目的】
1．通过学习神经干动作电位细胞外引导记录方法，了解电生理实验的基本方法和基本仪器的使用。
2．观察神经干动作电位的波形、幅度、潜伏期，探讨其机制。
3．了解神经干动作电位传导速度的原理和方法。
【实验材料】
1.实验对象: 蟾蜍(或蛙)。
2.实验器材:MS4000U生物机能实验系统、蛙手术器械1套、神经标本屏蔽盒。
3.药品:任氏液。
【实验步骤及观察项目】
1.坐骨神经—腓神经标本制备
1.1坐骨神经-腓神经
所用动物多为蟾蜍或蛙。
(1)破坏脑脊髓常用金属探针插入枕骨大孔破坏脑、脊髓的方法处死。左手握蛙，用拇指按压背部，食指按压头部前端，使头前俯；用右手食指的指甲由头端沿正中线向下滑动，至耳鼓膜后缘连线前约3mm处可触及一横沟，其中点相当于枕骨大孔位置(图2-14)。用探针由此处垂直刺入枕骨大孔，折入颅腔，左右捻转探针，以破坏脑组织；其后，将探针退至枕骨大孔，将针头转向后，刺入椎管，以破坏脊髓。此时，如蛙四肢松软，呼吸消失，表明脑和脊髓已完全破坏。
图2-14 蛙脑脊髓破坏方法
(2)除去躯干上部及内脏用粗剪刀在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱，左手捏住脊柱下方断端，注意不要损伤腹侧面两侧的坐骨神经干，使蛙头和内脏自然下垂，右手持粗剪刀沿脊柱两侧剪除一切内脏及头胸部，留下后肢、骶骨、部分脊柱及紧贴于脊柱两钡，J的坐骨神经。
(3)剥皮、分离两腿先剪去肛周一圈皮肤，然后一手捏住脊柱断端，另一只手捏住断端边缘皮肤，向下剥掉全部后肢皮肤。再用粗剪刀将脊柱沿正中线剪开分为两半，标本放在盛有任氏液的培养皿中。洗净手及用过的器械。
(4)游离坐骨神经—腓神经将一腿标本腹面朝上置于蛙板上，用玻璃分针沿脊柱旁游离坐骨神经，并于近脊柱处穿线结扎。再将标本背面朝上放置，把梨状肌及附近的结缔组织剪去。循神经沟找出坐骨神经的大腿部分(图2-15)，用玻璃分针仔细剥离，然后从脊柱根部将坐骨神经剪断，手持结扎线将神经轻轻提起，剪断坐骨神经的所有分支，游离神经至腘窝处。坐骨神经在腘窝上方分为胫
神经和腓神经两支。在分叉下剪断内侧的胫神经。腓神经于腓肠肌沟内下行至足部；在踝关节水平用线结扎腓神经，并剪断。也可剪断腓神经而分离胫神经，制成坐骨神经—胫神经标本。
图2-15 坐骨神经标本背面示意图 图2-16 坐骨神经腓肠肌标本制备法
标本制成后，浸于任氏液中10-20分钟，使其兴奋性相对稳定后即可用于实验。
注意事项：①制备坐骨神经干标本时应作钝性分离，避免过度牵拉或用金属器械、手捏碰神经干；②制备标本时应随时对神经干滴加任氏液，以保持神经湿润，并将暂不用的神经置于任氏液培养皿中保存。
2.仪器连接和调试
2.1 神经屏蔽盒的安装：一对刺激电极相互尽量靠近，两对记录电极尽可能分开，神经槽的所有电极都需要用小刀刮亮除去锈蚀和氧化膜并使各电极处于同一水平，以免接触不良。用镊子夹住神经标本一端的结扎线，将标本放置于电极上，方向是标本的近中端接触刺激电极，远中端接触引导电极。
2.2 连接：刺激电极与计算机程控刺激器的输出端相连；距离刺激电极近的一对记录电极与计算机一通道相连，距离刺激电极远的一对记录电极与另一通道相连；两对记录电极引导的生物电信号输入计算机电位通道接口，经程控生物放大器放大，A/D 转换，计算机处理，显示器显示。（见图2-25-1）
3.实验项目 打开计算机电源开关，点击桌面上MS4000U 生物机能实
验系统软件标志，选择实验项目动作电位，进行观察实验。
3.1 双相动作电位
用单脉冲电刺激，调节程控刺激器的
地 刺激输出 CH 1 CH 2
图2-25-1
波宽和幅度，逐渐增加刺激强度，观察动作电位的大小。扫描时，可在屏幕上见到一个双相动作电位，即前面一个大的向上的波，后面—个向下的波(图2-5-2)。每次显示动作电位的同时，系统可立即计算出动作电位的幅值、波宽、潜伏期。
3.2．神经干动作电位传导速度的测定 调节两对记录电极的位置使其尽量分开，并与
神经干紧密接触；调节刺激器强度以产生最大动作电位；量出两记录电极之间的距离(d)；给神经纤维单脉冲刺激，该刺激经历时间t 1后，传至距刺激电极较近的记录电极r 1，引导出第一个动作电位，同样，该刺激经历时间t 2后，传至距刺激电极较远的记录电极r 2，引导出第二个动作电位；分别测出刺激传到引导电极r 1（<近)和引导电极r 2 (远)的时间(潜伏期t 1和t 2)，二者之差(t 2-t 1)就是动作电位传导距离(d)所消耗的时间，所以，传导速度v=d/(t 2-t 1)，单位是m/s 。
【注意事项】
1．神经标本尽量分离长，分离干净，但不能损伤神经干。
2．要避免标本干燥，但同时注意电极间不要有过多的任氏液，以免造成短路。
1.常用生理溶液的成分及配制方法
各种生理盐溶液的用途 ：
生理盐水：即与血清等渗之NaCl 溶液，在冷血动物应用0.6%-0.65%，在温血动物应用0.85%-0.9%。
任氏溶液：用于青蛙及其他冷血动物。
图2-25-2
乐氏溶液：用于温血动物之心脏、子宫及其它离体脏器。用作灌注液者须于用前通入氧气泡15分钟。低钙乐氏液（含无水氯化钙0.05g）用于离体小肠及豚鼠的离体支气管灌注。
台氏溶液：用于温血动物之离体小肠。
实验四蛙心起博点
【实验原理】
哺乳类动的心脏特殊传导系统都具有自动节律性，但各部分的自律性高低不同，以窦房结的自律性为最高，所以窦房结被称为哺乳动物的正常起搏点。蛙和其它两栖类动物的正常起搏点是静脉窦。正常情况下，蛙静脉窦起博细胞发出的冲动通过特殊传导系统依次传到心房和心室引起兴奋。
【实验目的】
1.学习和掌握蛙类手术的操作过程。
2.观察蛙心起博点及各部分自律性的高低。
【实验材料】
1.实验动物蟾蜍或蛙。
2.实验器材蛙类手术器械、计时器等。
3.药品任氏液。
【实验步骤及观察项目】
1. 取蟾蜍一只，用探针捣毁其大脑脊髓，将其仰卧固定于蛙板上，用镊子提起腹部皮肤，剪一小口，然后向左右两侧锁骨外侧方向剪开并剪去皮肤，使成为一个倒三角形，并将肌肉、胸骨等剪掉，再用眼科剪剪开心包膜，暴露心脏。
2. 从心脏的腹面可以看到一个心室，左右两个心房，动脉园锥和左右主动脉干（图2-3-1甲）。房室之间有一房室沟。用玻璃针将心室翻向头端，就可以看到两心房的下端有与两心房相连的静脉窦（图2-3-1 乙、丙）。心房和静脉窦之间有一个半月形白色条纹称窦房沟。静脉窦与前后腔静脉相连。
生理学实验指导 广州中医药大学生理教研室
目录 编写说明 (2) 总论 (3) 一、绪言 (3) 二、常用仪器介绍 (4) 三、生理学实验常用溶液及配制方法 (17) 四、动物实验的基本操作技术 (19) 实验一反射弧分析 (30) 刺激与反应，兴奋与兴奋性 实验二 (30) 实验三 (31) 神经干动作电位的引导 实验四红细胞渗透脆性试验 (34) 实验五红细胞沉降率（血沉）试验 (34) 实验六影响血液凝固的因素 (35) 实验七 ABO血型鉴定 (36) 实验八蛙心兴奋传导系统分析 (37) 期前收缩和代偿间歇 实验九 (38) 实验十蛙心灌流 (41) 实验十一人体心电图、心音图、动脉搏动图同步描记 (43) 实验十二兔减压神经放电 (44) 实验十三蛙肠系膜微循环的观察 (45) 实验十四动脉血压的神经和体液调节 (46) 实验十五呼吸运动的调节 (47) (49) 实验十六、胸内负压的测定 实验十七兔膈肌放电 (49) 实验十八胃肠运动的观察 (51) 实验十九尿生成的影响因素 (52) 实验二十损毁小鼠小脑的观察 (54) 实验二十一小白鼠脊髓半横切的观察 (55) 实验二十二人体脑电观察 (55) 实验二十三自行设计实验 (56)
编写说明 生理学是一门实验性科学。生理实验课是生理学教学中的重要部分。生理 学实验教学除验证课堂讲授的理论内容外，着重培养学生的实验技能，并通过实 验培养学生科学的思维方法和科学的工作态度，提高学生的科学素质。 《生理学实验指导》是根据普通高等教育中医药类规划教材《生理学教学 大纲》而编写的。编写中既注意突出中医特色，也注意遵循科学性、系统性、逻 辑性及内容的先进性等基本原则。实验内容既有人体功能的检测，也有各种动物 实验。实验项目包括了细胞、分子水平；器官、系统水平；整体水平。既有微观 分析，又有宏观综合。实验技术既保留传统的研究方法，更加强电生理技术，尤 其是注重计算机在实验中的应用。为了提高学生综合分析的能力，《指导》还增 加了学生自行设计实验项目。 《指导》的实验项目共23项，教师应根据七年制和五年制本科生理教学计 划，尽量安排实施。 由于时间仓促和水平有限，《指导》若有不足之处，亟盼教师们和同学们提 出宝贵意见。 广州中医药大学生理教研室 2001.12
动物生理学复习题 第一章绪论 一、名词解释： 新陈代谢适应性正反馈负反馈 二、问答： 1．人体及动物生理学的研究从那几个水平进行的，它们之间有何联系？ 2．生命现象的基本生理特征有哪些？ 3．人体及动物的生理机能的调节方式如何？其各自的特点如何？ 4．简述人体及动物生理学生理学研究的实验方法。 第二章神经肌肉生理 一、名词解释： 时值、超射、阈值、阈电位、动作电位、静息电位、兴奋性、兴奋和抑制、局部反应、易化扩散、终板电位、刺激和反应、强直收缩 二、问答题 1．简述刺激的特征？ 2．阈电位的实质是什么？ 3．电刺激神经时，为什么兴奋首先发生在阴极下？ 4．电刺激神经干时，引发动作电位前，神经纤维膜先要产生局部反应，这种局部反应有何生理意义？其特点有哪些？ 5．神经纤维兴奋后兴奋性的变化是怎样的？ 6．静息电位、动作电位及其离子基础是什么？ 7．简述易化扩散及其特点。 8．在神经纤维膜产生动作电位时，怎样理解Na+呈现再生式内流？ 9．动作电位的组成，各组分持续时间及产生原理是什么？ 10．怎样理解动作产生和传导的“全或无”性质？ 11．神经冲动传导的局部电流学说是什么？ 12．神经冲动传导的局部电流学说是什么？ 13．跳跃式传导是怎样发生的？ 14．怎样利用神经干复合动作电位来将神经纤维进行分类？这种方法一般将神经纤维分为几类？ 15．神经干双动作电位是如何纪录到的？为什么一般情况下纪录到的动作电位波形是不对称的？ 16．如何区别局部电位和动作电位？ 17．神经肌肉接点的结构如何？兴奋在神经肌肉接点上是怎样传递的？ 18．怎样理解兴奋神经肌肉接点的传递过程中，乙酰胆碱是量子性释放的？ 19．在神经肌肉接点中，胆碱酯酶的生理作用是什么？去极阻滞是如何引起的？ 20．三联体的结构和机能是什么？ 21．简述兴奋—收缩耦联过程？
动物生理学实验设计 班级：09级生物技术本一班 小组成员：李水琴姚燕兵罗泉清龙伟雄 实验设计内容 一、课题名称：静脉注射和口服等量生理盐水对小白鼠尿量的影响 二、实验目的：通过对小白鼠注射和口服等量生理盐水，了解尿液生 成过程，进一步熟悉掌握肾小管的功能。 三、基本原理： 生理盐水对尿液的影响：加大了血液中水的含量,冲淡了血 液,增加人体的排尿量.肾脏为了维持体内水的平衡,通过生 成尿液来实现.尿的生成来源于血浆,通过肾小球的滤过,肾 小管的吸收,肾小管的徘汇和分泌这三个过程来完成.在这 三个过程中,除了生成尿液外,肾脏同时根据体内水分的多 少对尿量进行调节,而保持水的平衡,维持人的正常生活.
四、材料与用品：小白鼠数只、生理盐水200ml、25%氨基甲酸乙酯 溶液、纱布、棉线、注射器、试管、试管夹等五、注意事项： 1．实验前给小白鼠多喂些食物，或用导尿管向小白鼠胃中灌入40—50ml 清水，以增加其基础尿流量； 2．实验中需多次进行耳缘静脉注射，注射时应从耳缘静脉远端开始，逐步移近耳根。手术的创口不宜过大，防止动物的体温下 降，影响实验； 3．输尿管手术的难度较大，应注意防止导管被血凝块堵塞，或被扭曲而阻断尿液的流通。 六、方法与步骤： 1、小白鼠抓取、称重、麻醉：抓取3只体型相近、健康指数大致 一致的小白鼠称重，然后用25%氨基甲酸乙酯溶液（按1g/kg 或4ml/kg用量），从耳缘静脉注入，小白鼠麻醉成功后，使其仰卧并用绳固定在兔台上备用，并标号、记录数据； 2、分别对上述上三只小白鼠进行注射、口服30ml等量生理盐水 和空白对照处理；
3、在胱底部找到并分离两侧输尿管，在输尿管靠近膀胱处用细线 结扎，另穿一细线打松结备用，略等片刻，待输尿管充盈后，提起结扎细线，在管壁上用眼科剪剪一小斜口，从斜口向肾脏方向插入口径适当的预先充满生理盐水的输尿管插管，结扎固定，用试管收集尿液。 4、三小时后，每隔半小时，观察小白鼠尿量变化（滴/分），做 好记录，并绘制成曲线图观察。
人体及动物生理学练习题（作业） 第一章绪论 一、填空题： 1正反馈是指反馈信息对起。 2反射弧是由，，，，和五个部分组成。 3体液包括和。 4反射活动包括和两大类。 5体液调节的特点是反应速度慢、作用时间。 6自身调节的特点是：调节作用较，对刺激的敏感性。 二、选择题： 1．下列各种实验中，何种属于急性实验方法。（） A离体蛙心灌流实验 B狗食管瘘假饲实验 C临床胃液分析实验 D血液常规检查 2．维持机体稳态的重要途径是：（） A正反馈调节 B负反馈调节 C神经调节 D 体液调节 三、名词解释： 1可兴奋组织 2稳态 3反馈 【参考答案】 一、填空题 1、控制信息加强作用 2、感受器传入神经中枢传出神经效应器 3、细胞内液细胞外液 4、条件反射非条件反射 5、持久 6、局限较小 二、选择题 1、A 2、B 三、名词解释 1可兴奋组织在接受刺激后迅速产生特殊生物电反应的组织 被称作可兴奋组织。 2稳态内环境理化性质维持相对恒定的状态，称为稳态。 3反馈：在人体生理功能自动控制原理中，受控部分不断的将 信息回输到控制部分，以纠正或调节控制部分对受控部分的 影响，从而实现自动而精确的调节，这一过程称之为反馈。 反馈有正反馈与负反馈之分。受控部分的反馈信息，对控制 部分的控制信息起促进或增强作用者称正反馈，与此相反， 反馈信息对控制信息起减弱作用者，称为负反馈。 第二章细胞的基本功能 一、填空题： 1．静息电位是外流形成的电-化学平衡电位，静息电位绝对值称超极化。 2．冲动达到神经-肌肉接头处，使突触前膜释放，使终板膜主要对的通透性增加。3．骨骼肌收缩时，胞浆内的钙离子升高，其主要来源于。4．横桥具有ATP酶的作用，当它与蛋白结合后才被激活。5．骨骼肌收缩和舒张过程中，胞浆内钙离子浓度的升高主要是由于钙离子由中释放，而钙离子浓度的降低，主要是由于肌浆网结构中活动的结果。 6．细胞去极化后向原来的极化状态恢复的过程称为。7．肌肉收缩是肌丝向肌丝滑行的结果。 8．骨骼肌细胞兴奋-收缩耦联的中介物质是。 9．钠离子泵是一种酶，它能分ATP解释出能量以形成和维持细胞内外的正常分布状态。 10．终板膜上乙酰胆碱受体通道开放时，可允许和同时通过，结果造成终板膜去极化，形成终板电位。 11．第二信使物质主要通过两条途径影响细胞功能：一是通过直接激活各种，引起磷酸化反应，二是提高胞浆中浓度。 12．如果化学信号与膜受体结合后激活了膜内的促速G 蛋白（Gs），则Gs与GTP的复合物可以增强的活性，后者可使胞浆中的ATP 迅速转化为。 13.细胞内的cAMP 可以激活一种依赖于cAMP 的，后者进而使多种功能蛋白质发生反应。 14．与cAMP 生成相关的G 蛋白有两种：一种是，它和cAMP 的复合物可增强腺苷酸环化酶的活性，一种是，它和cAMP 的复合物可减弱腺苷酸环化酶的活性。 二、选择题： 1．当静息电位的数值向膜内负值加大的方向变化时，称作膜的：（）A极化 B去极化 C复极化 D反极化 E超极化2．神经-肌肉接头信息传递的主要方式是：（） A化学性突触传递 B局部电流 C非典型化学性突触传递 D 非突性传递 E电传递 3．神经-肌肉接头兴奋传递的递质是：（） A．NE B. Ach C.5-HT D.多巴胺 E.血管活性肠肽4.骨骼肌的肌质网终末池可储存：（） A钠离子 B钾离子 C钙离子D镁离子E、Ach 5．肌细胞兴奋-收缩耦联的耦联因子是：（） A钙离子B钠离子C镁离子D钾离子EＮＥ 6．与单纯扩散相比，易化扩散的特点是：（） A顺浓度梯度差转运B不消耗生物能 C需要膜蛋白的帮助 D是水溶性物质跨膜扩散的主要方式E是离子扩散的主要方式 7．常用的钠通道阻断剂是：（） A同箭毒碱 B阿托品 C 四乙胺 D异搏定 E 河豚毒素8．常用的钾通道阻断剂是：（） A河豚毒素 B 四乙胺 C 哇巴因 D 锰离子 E 异搏定 9．判断组织兴奋性的高低的常用指标是：（）
实验二：坐骨神经标本的制作 1、毁坏脑颅----单毁随。保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。 2、脑颅+脊髓----双毁随。排除中枢神经对腓肠肌的m 影响。 3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。 维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。 5、注意事项：用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。如果神经干结扎不好， 通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液，最好先泡一会. 实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细胞不产生任何影响。 最适刺激强度 有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从而形成局部电位 因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强 活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小的刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。因此，对于多细胞的组织来说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。坐骨神经和腓肠肌是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。以后随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度也相应增大，这种刺激强度超过阈值的刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉的收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度的刺激称为最大刺激。最大刺激引起的肌肉收缩称最大收缩（所有的肌纤维都收缩）。由此可见，在一定范围内，骨骼肌收缩的大小取决于刺激的强度，这是刺激与组织反应之间的一个普遍规律。 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 3两个刺激：刺激间隔小于单收缩的时程而大于不应期，则出现两个收缩反应的重叠，称为收缩的总和。 4串刺激：当后一收缩发生在前一收缩的收缩期，各自的收缩则完全融合肌肉出现持续的收缩状态，称为完全强直收缩。
竭诚为您提供优质文档/双击可除动物生理学实验报告思考题答案 篇一：动物生理学实验报告 实验日期：年月日室温：大气压： 实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍 一、实验目的 掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。 二、实验原理 生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。 三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼
科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等2、生理仪器：生物信 息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等 四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途 五、实验结果及数据处理 六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地？生理学实验有什么 具体的要求和规则？ 答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么？ 答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。
人体解剖及动物生理学实验报告 神经干复合动作电位 【实验题目】 神经复合动作电位 1、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）阈值和最大幅度的测定 2、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）传导速度的测定 3、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）不应期的测定 【实验目的】 确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的 1、临界值和最大值 2、传导速度 3、不应期（包括绝对不应期和相对不应期） 【实验原理】 神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号。多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经经外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。刺激强度越大，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP的幅度也就越大。与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。 阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。 动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。
神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。不应期的产生依赖于细胞膜上特定离子通道的特点，如钠、钾离子通道。 【实验方法】 1、制作蟾蜍坐骨神经干标本 （1）双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。注意保持神经湿润。 （2）将神经搭于标本盒内，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2，外周端接触记录电极R1-R5，之间接触接地电极。 （3）刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道A、蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定 （1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。 （2）检查装置链接正确，确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。采用刺激强度1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为单刺激。选择“同步触发”，按下“开始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。 （3）降低刺激强度，确定CAP的阈电位。记录刺激阈值及CAP幅度（波峰与波谷之间的差值）。 （4）以0.05V或更小的间隔，逐渐增大刺激强度，观察CAP幅度的变化，同时，记录刺激电位及对应的CAP幅度，直到CAP达到稳定，即最大值（神经标本在正常生理活性时，1V 以内的刺激强度即可引起最大的CAP）。
专业班级：学号：姓名：同组人： 实验日期：年月日室温：大气压： 实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍 一、实验目的 掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。 二、实验原理 生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。 三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等 2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等 3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等 四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途 五、实验结果及数据处理 六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地生理学实验有什么具体的要求和规则 答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么 答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。 3、举例5种常用手术器械的名称、持握方法和用途。 4、举例3种生理学实验常用仪器设备的性能和主要用途。
实验题目：骨骼肌生理姓名：王超杰 合作者: 唐用 组别：第一组 日期：5月8日 室温：24.5℃
【实验目的】： 确定肌肉收缩的 A、阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系 B、三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期 C、刺激频率与收缩之间的关系 【实验方法】： 1、双毁髓法处死蟾蜍，剥离神经干保留腓肠肌和膝关节。结扎，保持湿润。将标本放入标 本盒内，连接张力换能器。在试验过程中注意标本休息，连接RM6240生物信号采集系统。 2、选择菜单栏刺激强度对骨骼肌的收缩的影响，更改相应数据，测量肌肉收缩的阈水平、 最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系 1)连接通道一，检查神经的活性，测试仪器是否正常工作 2)开始记录，可适当调零，开始刺激 3)当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录 4)应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩和其对应的最小刺激强度，记录下收 缩幅度，刺激和放大器的参数设置，绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线3、测量肌肉收缩的三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期 1)展开上一实验最大刺激强度对应的收缩，测量三个时期 2)复至少三次 3)计算平均值和标准差 4、测量刺激频率与收缩之间的关系 1)打开信号采集软件，关闭通道3 和4，保留通道1 和2，分别对应肌肉收缩信号和肌 肉动作电位信号。示波状态下修改参数设置：采集频率20kHz；通道1：通道模式为 张力，扫描速度400ms/div，灵敏度7.5g (可根据收缩幅度合理选择)，放大器时间常数 设为直流，滤波频率100Hz；通道2：通道模式为生物电，扫描速度400ms/div，灵敏 度2mv，放大器时间常数0.001s，滤波频率1kHz。刺激模式为串单单刺激，波宽1ms， 延时20ms，选择一定的刺激脉冲个数(10-60 个，避免让肌肉受到过多的刺激)和刺激 强度（阈上刺激强度即可，不必达到最大刺逐渐减小刺激间隔，直到第二个CAP开始 减小，进入相对不应期 2)开始记录，开始刺激 3)观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位 与收缩的关系，测量并记录不同频率引起肌肉收缩的幅度 【实验结果与讨论】：见附图一：Physiology Lab #4 Skeletal Muscle Physiology 实验A：测量肌肉收缩的阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系
第一章绪论 判断： 1.只要刺激达到一定强度，组织一定会发生反应。 2.组织兴奋性越高，其所需的刺激阈值越大。 3.组织对刺激反应越快，其兴奋性越高。 选择：1 以下关于兴奋性的概念，哪一项正确？ A 兴奋性可分为兴奋和抑制 B 兴奋性是组织细胞对刺激发生反应的特性。 C 兴奋性是组织细胞能兴奋的特性。 D 兴奋性是组织细胞受刺激发生兴奋的能力。 2 . 衡量组织兴奋性的高低指标是 A 引起动作电位所需刺激的强度 B 动作电位的大小 C 动作电位的传导速度 3 . 组织器官的活动加强称为： A 兴奋性 B 兴奋 C 紧张 4. 阈刺激是：A 能引起反应的刺激 B能引起反应的最大刺激强度 C能引起反应的最小刺激强度 填空：1.刺激必须具备以下三个条件，即（）、（）和（），才能引起反应。 2.生命活动的基本特征包括（）。 3.引起细胞兴奋的刺激阈值越小，其兴奋性（）。 4.动物生理学的基本研究方法是（）方法，归纳起来可分为（）和（）两类。 5.急性实验可分为（）和（）两类。 6.一次刺激后，细胞兴奋性变化的四个阶段依次为（）、（）、（）和（）。 思考题：1、*简述细胞兴奋性的变化。 2、简述刺激与反应的关系。试述神经细胞兴奋时兴奋性变化的过程及其生理意义. (1)过程： 兴奋性发生周期性变化，依次为：绝对不应期，相对不应期，超常期和低常期。①绝对不应期：兴奋性为零，阈刺激无限大，钠通道失活。②相对不应期：兴奋性从无到有，阈上刺激可再次兴奋，钠通道部分复活。③超常期：兴奋性高于正常，阈下刺激即可引起兴奋，膜电位接近阈电位水平，钠通道基本复活。④低常期：兴奋性低于正常，钠泵活动增强，膜电位低于静息电位水平。 (2)生理意义：由于绝对不应期的存在，动作电位不会融合。 作业： 判断：1. 与体液调节相比，神经调节的特点是迅速而精细。 2.机体机能的稳定状态是正反馈的调节结果。 3. 机体最重要最完善的调节方式是神经--体液调节。 填空：1．凡是反馈信息抑制神经调节或体液调节的称为（）反馈；反之，称为（）反馈。2.机体功能的调节有（）、（）和（）三种方式，其中（）是最重要最完善的
?麻醉注意事项 ?1、麻醉前应正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。 ?2、密切观察动物麻醉状态及反应，以便准确判断麻醉深度。 ?3、如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量不宜超过原总用药量的五分之一。 ?4、麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意保温。 ?5、在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。 ?6、实验中注意液体的输入量及排出量，维持体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。 实验一血液的组成 [实验原理] 血液是由液态的血浆和悬浮于血浆中的血细胞组 成。血细胞占全血的体积比称为红细胞 压积，又叫红细胞比容。 要求与思考题 1.血浆与血清有哪些区别？ 血浆与血清的区别是不含纤维蛋白原，某些凝血因子以及血小板释放因子 实验二血红蛋白的测定 [实验原理] 由于血红蛋白的颜色，常随结合的氧量多少而改变，因而不利于比 色，但血红蛋白与稀盐酸作用后，能使亚铁血红素变成不易变色的棕色
的高铁血红蛋白，用水稀释后可与标准比色板比色，从而测得血红蛋白含量。 [注意事项] 1.血液和盐酸作用的时间不可少于10分钟，否则，血红蛋白 不能充分转变成高铁血红蛋白，使结果偏低。 2.加蒸馏水时，开始可以稍多加几滴，随后则不能过快，以 防稀释过头。 3.比色时最好在自然光下，而不应在黄色光下进行，以免影 响结果。 4.整个实验过程中均应注意避免起泡 实验三红细胞的脆性试验 [实验原理] 如环境渗透压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂， 释放血红蛋白，称之为溶血。红细胞膜对低渗溶液具有一 定的抵抗力，红细胞膜对低渗溶液的抵抗力越大，红细胞在 低渗溶液中越不容易发生溶血，即红细胞渗透脆性越小。 凡上层溶液开始微呈淡红色，而极大部分红细胞下沉，称开始溶血或最小抗力（红细胞的最小抵抗力）。 凡液体呈均匀红色，管底无红细胞下沉，则称完全溶血或最大抗力（红细胞的最大抵抗力） [注意事项]
实验二:坐骨神经标本得制作 1、毁坏脑颅－－-—单毁随.保持静止,麻醉蟾蜍，减少痛苦. 2、脑颅+脊髓-—－－双毁随。排除中枢神经对腓肠肌得m 影响。 3、完整得标本:坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液得作用:它包括钾离子,钙离子、钠离子,氯离子,碳酸氢根与磷酸二氢根等等.维 持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定,保持内环境稳态，相当于机体中得组织液。 5、注意事项:用锌铜弓刺激时神经干要悬空,切勿接触其她物体。如果神经干结扎不好,通 电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。剥过皮得保本不可与皮肤，赃物接触 6、如何保持机能正常:1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液,最好先泡一会、 实验三四：骨骼肌单收缩与收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需得最小刺激强度,作为衡量组织兴奋性高低得指标. 强度小于阈值得刺激，称为阈下刺激;阈下刺激不能引起兴奋或动作电位,但并非对组织细胞不产生任何影响。? 最适刺激强度 有了阈刺激也就就是刺激导致得电位变化已经达到了阈电位，这样就会有动作电位得产生，从而形成局部电位 因为骨骼肌收缩就是许多神经纤维共同作用得结果，当刺激在一定范围内增大时,兴奋得神经纤维增多,多支配得骨骼肌肌纤维也会随之增多,收缩增强 活得神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小得刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示,阈值就是指在刺激作用时间与强度—时间变化率固定不变得条件下,能引起组织细胞兴奋所需得最小刺激强度，达到这种强度得刺激称为阈刺激。单一细胞得兴奋性就是恒定得，但就是不同细胞得兴奋性并不相同。因此,对于多细胞得组织来说,在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无"得关系.坐骨神经与腓肠肌就是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时,才能引起肌肉发生最微弱得收缩，这时引起得肌肉收缩称阈收缩(只有兴奋性高得肌纤维收缩).以后随着刺激强度得增加，肌肉收缩幅度也相应增大，这种刺激强度超过阈值得刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉得收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生最大收缩反应得最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度得刺激称为最大刺激.最大刺激引起得肌肉收缩称最大收缩（所有得肌纤维都收缩)。由此可见，在一定范围内,骨骼肌收缩得大小取决于刺激得强度,这就是刺激与组织反应之间得一个普遍规律. 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 ３两个刺激：刺激间隔小于单收缩得时程而大于不应期,则出现两个收缩反应得重叠，称为收缩得总与。 4串刺激:当后一收缩发生在前一收缩得收缩期，各自得收缩则完全融合肌肉出现持续得收缩状态，称为完全强直收缩。 5注意事项：为保持机能稳定，制作好标本后要在任氏液中浸泡１0分钟,试验过程中要不断滴加任氏液为避免肌肉过度疲劳，刺激要有间隔时间。
动物生理学课后习题 第一章绪论判断：1.只要刺激达到一定强度，组织一定会发生反应。 2.组织兴奋性越高，其所需的刺激阈值越大。3.组织对刺激反应越快，其兴奋性越高。选择：1 以下关于兴奋性的概念，哪一项正确？ A 兴奋性可分为兴奋和抑制 B 兴奋性是组织细胞对刺激发生反应的特性。 C 兴奋性是组织细胞能兴奋的特性。 D 兴奋性是组织细胞受刺激发生兴奋的能力。 2 . 衡量组织兴奋性的高低指标是 A 引起动作电位所需刺激的强度 B 动作电位的大小C 动作电位的传导速度 3 . 组织器官的活动加强称为： A 兴奋性B 兴奋 C 紧张4. 阈刺激是：A 能引起反应的刺激 B 能引起反应的最大刺激强度 C 能引起反应的最小刺激强度填空：1.刺激必
须具备以下三个条件，即、和，才能引起反应。2.生命活动的基本特征包括。3.引起细胞兴奋的刺激阈值越小，其兴奋性。 4.动物生理学的基本研究方法是方法，归纳起来可分为和两类。 5.急性实验可分为和两类。 6.一次刺激后，细胞兴奋性变化的四个阶段依次为、、和。思考题：1、*简述细胞兴奋性的变化。2、简述刺激与反应的关系。试述神经细胞兴奋时兴奋性变化的过程及其生理意义. (1) 过程：兴奋性发生周期性变化，依次为：绝对不应期，相对不应期，超常期和低常期。 ①绝对不应期：兴奋性为零，阈刺激无限大，钠通道失活。②相对不应期：兴奋性从无到有，阈上刺激可再次兴奋，钠通道部分复活。③超常期：兴奋性高于正常，阈下刺激即可引起兴奋，膜电位接近阈电位水平，钠通道基本复活。 ④低常期：兴奋性低于正常，钠泵活动增强，膜电位低于静息电位水平。(2)生理意义：于绝对不应期的存在，动作
动物生理学实验指导 张素华编 动物科技学院生理实验室
第一部分实验总论 第一节绪论 一、实验目标与要求 通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强对事物进行观察、比较、分析和综合的能力。为此要求： 1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。 2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果，并联系讲授内容进行思考。 3.实验后须及时整理实验记录，分析实验结果，按照规定格式书写实验报告，按时交负责教师评阅。 二、实验报告书写要求 因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。书写要整洁，文字应简练、通顺。首先注明班级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨论。并要求： 1.实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实验报告上。 2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。如果出现非预期的结果时，应分析其可能的原因。实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的理论概要。
三、生理实验室规则 1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。 2.遵守学习纪律，保持实验室安静；严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。 3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。 4.各组应用的实验器材、物品，在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换；如遇机件不灵或损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。 5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。损坏物品应赔偿。 6.保持实验室整洁。公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。 7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。各小组轮流搞好实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开。
人体解剖及动物生理学实验报告 实验名称神经干复合动作电位 姓名 学号 系别 组别 同组姓名 实验室温度 实验日期2015年4月23日
一、实验题目 蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP） A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定 B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定 C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定 二、实验目的 确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的 （1）临界值和最大值 （2）传导速度 （3）不应期（相对不应期、绝对不应期） 三、实验方法 蟾蜍坐骨神经标本的制作 1.双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经 干及其下行到小腿的两个分支：胫神经和腓神经，三段结扎，剪去无关分支后离体。注意保持神经湿润。 2.将神经搭于标本盒内，保证神经与电极充分接触，中枢端接触刺激电极S1和S2， 外周端接触记录电极R1-R2，之间接触接地电极。 3.刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接生物信号采集系 统RM6240的刺激输出插口；信号输入倒显得红色和绿色夹子分别连接记录电极（绿色夹子在前，引导出正向波形，即出现的第一个波峰向上），黑色夹子连接接地电极，插头接通道1. A.蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）临界和最大幅度的确定 （1）打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“神经干动作电位”，出现自动设置的界面，各项参数已设置好，界面中只有一个采集通道，对应仪器面板上 的通道1（因此信号输入线应连接在通道1）。 （2）确定装置是否正常工作，以及神经是否具有活性。采用较大的刺激强度，1V，刺激时程0.2ms，延时5ms，刺激模式为但刺激。选择“同步触发”，按下“开 始刺激”后，正常情况下屏幕上会出现一个双相电位即CAP。
生理学实验指导
目录 实验一神经生理实验 1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备 1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验 2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性 3.1 蛙心起搏点 3.2 心肌特性 实验四循环生理实验之蛙心灌流 4.1 蛙心灌流 实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素 5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素 实验六消化生理实验 7.1 胃肠运动的直接观察 7.2 小肠吸收和渗透压的关系 7.3 离体肠段运动描记 实验七泌尿生理实验 8.1 尿的分泌及其影响与调节 实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验（综合计划 07级）实验九肌肉生理实验 9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 9.2 肌肉的单收缩 9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和
实验一神经生理实验 年月日星期 1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备 目的和原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，它的离体组织所需要的生活条件又比较简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理，如：神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。 实验对象：蟾蜍或蛙 实验器材和药品：中式剪子，眼科剪，眼科镊，蛙板，玻璃分针（玻璃勾），探针，锌铜弓，培养皿，大头针，棉花，线，任氏液，纱布等。 实验方法： 1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙，用自来水冲洗干净。保定好，用探针从枕骨大孔垂直刺入，然后向前刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织，再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。此时蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表示脑脊髓破坏完全。 2、剪除躯干上部及内脏，提起蟾蜍的背部，在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱（见图），用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持中式剪刀，沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏（注意勿损伤坐骨神经），仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。
动物生理学实验讲义 陈海燕 樊晓丽编 10-407 丽水学院生态学院 二○一七年二月
目录 第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制 1 1 手术器械及活体解剖技术 1 2 生理学常用实验仪器及用品 15 3 常用生理溶液的配制 22 第二部分 必做实验内容 第一章 人体的运动系统 实验1 人体全身骨骼和骨骼肌系统（基础性） 23 第二章 细胞的兴奋性与生物电现象 实验2 牛蛙坐骨神经腓肠肌标本制备（基础性） 25 第三章 神经系统与肌肉系统 实验3 不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响（基础性） 28 第四章 感觉器官 实验4 瞳孔反射和视野盲点测定 31 第五章血液与循环系统 实验5血型鉴定；血涂片的制作（基础性）34 实验6 蛙心搏动观察、心室期前收缩和代偿间歇实验（基础性） 36 第五章 呼吸系统 实验7 家兔呼吸运动的调节（综合性）39 第六章 循环系统 实验8 家兔动脉血压的神经-体液调节（综合性）42 附录 主要参考文献 46
第一部分 解剖生理学实验常用器械及溶液配制 第一节 手术器械及活体解剖技术 生理学实验是以活的动物或人体作为观察对象和实验材料的。在动物实验中，活体解剖技术对生理学实验的成败起着至关重要的作用。在实验过程中，学生应着重于学习、掌握些操作技术，以提高自己的动手能力。 生理学实验方法虽然多种多样，但一般可分为离体实验法和在体实验法两类。离体实验法是将要研究的器官或组织从活的或刚处死的动物体上取出，置于接近正常生理条件的人工环境中，以观察、研究其生理机能。如离体心脏的灌流、离体肠段的活动以及用坐骨神经-腓肠肌标本等实验。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。急性在体实验法是动物在麻醉或毁坏脑或脊髓的状态下，用手术的方法暴露某一器官，观察、研究其机能及变化规律。如在体心脏活动的观察、肾脏泌尿机能的研究等。只能在一定时间内进行观察研究，而且实验后动物不能存活。慢性实验法是在特定条件下，以完整而清醒的动物为对象的实验方法，可以在较长的时间内，连续地反复观察动物的某一生理机能。此法常需要先在动物体上施行某种无菌外科手术，如胃肠道瘘管术，或在机体的一定部位埋藏电极、或切除某一器官等，须待动物恢复健康后方可进行实验。这种实验花费时间较长，动物需要特殊的护理，在基础生理学实验中较少安排。 一、手术器械及其用途 （一）常用手术器械 根据生理学实验的需要，常用手术器械包括手术刀、手术剪、金冠剪、手术镊、眼科剪、蛙类毁髓针、玻璃分针等。 1．手术刀 主要用于切开皮肤或脏器。常用手术刀为刀柄和刀片组合式，也有刀柄和刀片相连的。根据手术的部位与性质，可以选用大小、形状不同的手术刀片。常用的执刀方法有 4 种（1）执弓式这是一种常用的执刀方法，动作范围广而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。 （2）执笔式此法用力轻柔而操作精巧，用于切割短小而精确的切口，如解剖神经、血管，作腹膜小切口等。 （3）握持式常用于切割范围较广、用力较大的切口，如切开较长的皮肤、截肢等。 （4）反挑式此法多使用刀口向弯曲面的手术刀片，常用于向上挑开组织，以免损伤
实验二：坐骨神经标本的制作 1、毁坏脑颅 ----单毁随。保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。 2、脑颅+脊髓----双毁随。排除中枢神经对腓肠肌的m 影响。 3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头 4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。 维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。 5、注意事项：@用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。@如果神经干结扎不好， 通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。@剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触 6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏 液，最好先泡一会. 实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性 1定义： 阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。 强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细 胞不产生任何影响。 最适刺激强度 有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从 而形成局部电位 因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经 纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强 活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。标志单一细胞兴奋性大小的 刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定 不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。 单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。因此，对于多细胞的组织来 说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。坐骨神经和腓肠肌是多细 胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌 肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收 缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。以后随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度也相 应增大，这种刺激强度超过阈值的刺激称为阈上刺激。当刺激强度增大到某一数值时，肌肉 出现最大收缩反应。如再继续增大刺激强度，肌肉的收缩幅度不再增大。这种能使肌肉发生 最大收缩反应的最小刺激强度称为最适强度，具有最适强度的刺激称为最大刺激。最大刺激 引起的肌肉收缩称最大收缩（所有的肌纤维都收缩）。由此可见，在一定范围内，骨骼肌收 缩的大小取决于刺激的强度，这是刺激与组织反应之间的一个普遍规律。 2单收缩 潜伏期、动作电位产生及传导至神经肌肉接头，再到肌纤维 收缩期、 舒张期 3两个刺激：刺激间隔小于单收缩的时程而大于不应期，则出现两个收缩反应的重叠，称为 收缩的总和。 4串刺激：当后一收缩发生在前一收缩的收缩期，各自的收缩则完全融合肌肉出现持续的收 缩状态，称为完全强直收缩。