·?综述?·
胰腺癌循环肿瘤细胞检测及临床应用进展
徐小永1，姜维民1，于楠2，杨捷1，李春民1，周丁华1
1.中国人民解放军第二炮兵总医院肝胆外科（北京 100088）；
2.中国人民解放军第二炮兵总医院中心实验室（北京 100088）
【摘要】?目的 总结循环肿瘤细胞(CTCs)的检测方法及其在胰腺癌诊治中的临床应用。方法 对国内外相关文献进行综述分析。结果 胰腺癌是世界上最常见的恶性肿瘤之一，早期诊断率低，局部浸润和转移发生率高，预后不良。CTCs 是胰腺癌术后复发和转移的重要原因，其检测方法主要基于免疫细胞化学法和逆转录聚合酶链式反应。结论 CTCs 检测作为“实时液体活检”，在胰腺癌的早期诊断、治疗效果评估、预后分析等方面有较高的应用价值。
【关键词】 胰腺癌；循环肿瘤细胞；检测；应用
Circulating Tumor Cells in Pancreatic Cancer Patients: Methods of Detection and Clinical
Implications
XU Xiao-yong 1, JIANG Wei-min 1, YU Nan 2, YANG Jie 1, LI Chun-min 1, ZHOU Ding-hua 1.
1.Department of Hepatobiliary Surgery, The Second Artillery General Hospital, Beijing 100088, China;
2.Department of Central Lab, The Second Artillery General Hospital, Beijing 100088, China
Corresponding Author: Z HOU Ding-hua, E-mail: zhoudh@https://www.doczj.com/doc/7d6949818.html,
【Abstract 】 Objective To summary the detection methods of circulating tumor cells (CTCs) in pancreatic cancer patients and its clinical application. Methods Related domestic and foreign literatures were reviewed. Results Pancreatic cancer is one of the common malignant tumors in the world. The early diagnosis rate is low, the incidence of local invasion and metastasis is high, and the prognosis is very poor. The CTCs is one of the important causes of postoperative recurrence and metastasis, its detection methods based on immunocytochemistry (ICC) and reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Conclusions Detection of CTCs, regarding as a “real-time liquid biopsy ”, it has a high application value in the early diagnosis, treatment, prognosis and effect evaluation of pancreatic cancer, and it has become research frontier and focus.
【Key words 】 Pancreatic cancer; Circulating tumor cell; Detection; Application
DOI ：10.7507/1007-9424.20150232
作者简介：徐小永（1981年-），男，江苏省苏州市人，在读博士生，主治医师，研究方向为肝胆胰疾病的治疗，E-mail ：xxyong1234@https://www.doczj.com/doc/7d6949818.html,
通信作者：周丁华，主任医师，博士生导师， E-mail ：zhoudh@https://www.doczj.com/doc/7d6949818.html,
胰腺癌是一种常见的消化道恶性肿瘤，其发病率和死亡率近年来明显上升，1年生存率<10%，5年生存率<5% [1-3]，
是预后最差的恶性肿瘤之一。近年来，循环肿瘤细胞(circulating tumor cell ，CTCs)在恶性肿瘤复发和转移过程中的作用越来越得到重视。CTCs 能定位于远处器官并形成转移灶。随着细胞分离和鉴定技术的发展，外周血中CTCs 的检测成为可能，为胰腺癌的早期诊断、个体化治疗方案的选择及预后评估提供了一种新的方法。现就近年来胰腺癌CTCs 的检测及临床应用进展进行综述。
1 CTCs 概述
1869年，Ashworth [4]在1例因癌症死亡患者外周血中发现与原发肿瘤细胞相似的细胞，并首次提出CTCs 的概念。CTCs 是指自发或因诊疗操作由实体瘤或转移灶释放进入外周血循环的肿瘤细胞。进入循环的肿瘤细胞绝大多数在短期内死亡，而部分细胞则经上皮细胞向间充质细胞转化（epithelial
mesenchymal transition, EMT ），EMT 是一个复杂的分子生物学过程，在此过程中，上皮细胞逐渐失去分化能力，取而代之的是细胞运动能力、侵袭力和抵抗凋亡的能力[5]。近年来，
随着现代检测技术的广泛应用，CTCs 在胰腺癌的基础和临床领域的研究取得一定的进展，成为评估肿瘤生物侵袭性及治疗有效性的重要指标。
2CTCs的富集
由于肿瘤患者外周血中CTCs数量稀少，大约每106个单核细胞中才有1个CTCs，为了提高CTCs检测的敏感性，在检测之前，CTCs富集是一个必不可少的步骤，细胞富集技术可分为非特异性和特异性两种，前者根据CTCs物理化学属性（密度、大小等），如密度梯度离心法（density gradient centrifugation）、滤过富集法（isolation by size of epithelial tumor cells） 等，后者则依据细胞表面抗原或特定标志物分离富集CTCs，如免疫磁珠分离法（immunomagnetic separation）。
2.1密度梯度离心法
密度梯度离心法是一种传统的细胞富集技术，是基于血液中各种细胞密度不同的特点富集肿瘤细胞的技术，该方法的优点是细胞分离效果较好，可以后续进行细胞病理学、免疫细胞化学、细胞涂片计数、RT-PCR等CTCs检测；缺点是特异性较低，易导致缺乏相应密度的肿瘤细胞丢失。在此基础上建立的OncoQuick分离法，能更好地富集肿瘤细胞，特异性更高，进一步提高了CTCs的检出率[6-7]。
2.2滤过富集法
Vona等[8]基于肿瘤细胞体积大于外周血细胞的原理建立的一种简单、经济的细胞分离方法，大多数研究报道滤过膜孔径在8 μm大小时，滤过效果较好，但是由于并非所有肿瘤细胞直径均大于8 μm，也并非所有外周血细胞直径均小于8 μm，所以该法缺乏特异性，易导致肿瘤细胞丢失或假阳性的发生。滤过富集法的优点是不破坏细胞形态，保留细胞表面抗原及特定标志物，方便后续的细胞形态学观察和分子生物学检测[9]。
2.3免疫磁珠分离法
免疫磁珠分离法的原理是基于细胞表面抗原能与连接有磁珠的单克隆抗体相结合，形成“抗原-抗体-磁珠”的免疫复合物，在外加磁场中，该复合物在磁力作用下产生定向位移，从而使目的细胞分离。上皮细胞黏附分子（EpCAM）作为上皮细胞来源肿瘤表面抗原得到了最为频繁的使用[10]。纳米磁珠不会破坏细胞的功能和活力，能大大提高样本中细胞富集效率，Xu等[11]在肝细胞肝癌中利用特异性的去唾液酸糖蛋白受体作为细胞表面抗原进行免疫磁珠分选，使细胞平均回收率大于61%，敏感性和特异性均高于其他分离方法。
3CTCs的检测
常用的CTCs检测技术主要有两种方法：免疫细胞化学法（immunocytochemistry，ICC）和逆转录聚合酶链式反应（reverse transcription polymerase chain reaction，RT-PCR）。随着科学研究技术的发展，在此两种方法的基础上，进一步发展出许多灵敏度和特异性均有相对提高的技术，主要有：Cellsearch系统、纤维光学阵列扫描技术（fiber-optic array scanning technology，FAST）、微流体芯片技术（CTC-chip）等。
3.1ICC
ICC基于肿瘤相关抗原或特异的标志物与单克隆抗体结合,通过显色反应来判断目的细胞，常用的肿瘤标志物分3类：①上皮细胞角蛋白（CK）；②上皮细胞膜特异性抗原；③肿瘤相关糖蛋白。该检测方法简便快捷，检测试剂敏感性和特异性较高。但由于一些良性上皮增殖性疾病、手术、炎症和组织创伤，造成一些上皮细胞进入外周血，这些细胞表面存在同样的特异性抗原，易致假阳性的发生；同时，在上皮间质转化过程中，一小部分CTCs表面特异性标志物减弱甚至丢失，导致假阴性的发生[12]。
3.2Cellsearch系统
Cellsearch系统是一种半自动化的CTCs检测系统，基于免疫磁珠富集法结合ICC检测CTCs的技术。其基本流程为：固定上述免疫磁珠分离法富集的上皮细胞，使用CD45、CK8、CK18及CK19荧光抗体标记细胞，半自动四色荧光显微镜细胞监测分析仪进行分析，CK+/CD45-即为CTCs。目前Cell-search系统已被美国FDA批准应用于转移性乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌的临床检测[13]，在评估患者的预后及治疗方案的有效性方面已取得显著成果。同样，该系统在胰腺癌CTCs的检测研究中也取得了一定的进展[14-18]。
3.3微流体芯片技术
微流体芯片技术是一种基于微流体学和免疫学的CTCs 检测技术，2007年由Nagrath等[19]首先报道，该芯片表层上包被有EpCAM抗体，当外周血样本（平均体积2.7 mL）流过芯片时，因抗原抗体反应，肿瘤细胞被芯片捕获。该技术操作步骤简单，样本无需处理，具有较高的敏感性（可检出108个血细胞中的1个靶细胞）和特异性，细胞回收率>65%。在此基础上改进的V型芯片（herringbone-chip，HB-Chip）技术[20]，可以处理更大容量的血液样本，进一步提高了肿瘤细胞的分离效率。
3.4RT-PCR
RT-PCR是在PCR的基础上扩增由肿瘤特异性mRNA序列逆转录的DNA片段，从而识别肿瘤细胞特异性的mRNA。该技术灵敏度高,可在107～108
个外周血单核细胞中检测出单个肿瘤细胞，但是由于核酸起源不明确（正常细胞表达靶基因、肿瘤细胞坏死或伪基因扩增等），RT-PCR检测CTCs时，结果可能会出现假阳性，影响检测的特异性。为了提高检测的特异性和灵敏度，近几年又开发出实时定量RT-PCR、荧光定量RT-PCR、巢氏RT-PCR等新方法，扩增效率高，特异性好，已被广泛应用于实体肿瘤CTCs的检测，如乳腺癌[21]、肝癌[22]、结直肠癌[23]、胰腺癌[24]等。
4CTCs在胰腺癌中的应用
CTCs的检测取样方便，被誉为“实时液体活检”，随着时间的推移，重复检测，可用来评估肿瘤的生物学功能和肿瘤细胞的传播。同样，在胰腺癌中，CTCs计数和分子特性的检测有助于早期诊断、监测术后复发、评估化疗效果及预后、选择个体化的治疗方案等。
4.1CTCs与胰腺癌的诊断
CTCs在肿瘤形成的早期阶段，就可以从原发灶脱落、经EMT转化并进入外周血，鉴于此，很多学者认为CTCs可以提高肿瘤早期诊断效率，甚至在癌前病变期，预测肿瘤的发生：Hüsemann等[25]在乳腺癌早期小鼠模型和导管内原位癌患者的外周血中成功分离检测到CTCs；Rhim等[26]在小鼠胰腺上皮内瘤变模型中也成功检测出CTCs。在临床上，CA19-9作为常用的胰腺癌肿瘤标志物，其特异性并不高，对胰腺囊性疾病、胰腺导管腺癌、胰腺神经内分泌瘤、胰腺上皮内瘤变等病变的鉴别困难，活检组织病理学检查作为诊断的金标准，由于其假阴性率高，常需反复多次穿刺，增加了额外的损伤和并发症的发生，还可能造成肿瘤细胞的种植转移，有时为了明确诊断，不得不开腹探查。刘艳辉等[27]采用免疫磁珠负性富集结合免疫荧光方法对69例胰腺癌患者进行CTCs检测，CTCs的检出率为88.41%，且CTCs的检出情况和血清CA19-9升高水平具有密切相关性，认为CTCs是胰腺癌诊断的敏感指标，联合CA19-9 与CTCs检测可提高胰腺癌的诊断水平。Thege等[28]利用微流体技术平台联合使用EpCAM抗体及黏蛋白1 （MUC1）抗体检测CTCs，能实现高效的捕获，同时能提高早期胰腺癌的诊断效率。手术切除是早期胰腺癌的主要治疗手段，复发和转移是手术治疗失败的主要原因，也是影响患者生存期的重要因素，监测术后早期复发和转移成为临床上亟待解决的问题。研究[29-32]表明， CTCs的检测有助于早期微转移癌的诊断，尤其是对于那些肿瘤较小，在影像学上不能清晰显示的微转移瘤。
4.2CTCs与胰腺癌化疗
CTCs可以用来识别促进转移和化学抗性的特定分子，从而有利于实施有针对性的干预新辅助和辅助治疗，新辅助治疗可以降低原发肿瘤分期，提高肿瘤的切除率；同时，能揭示肿瘤生物学的不同，以避免因为微转移而导致胰十二指肠切除术后的死亡率。化疗是胰腺癌除手术之外的主要治疗手段之一，在化疗前后CTCs检测计数能够有效地揭示肿瘤对化疗药物的抗性及预测化疗效果。Torphy等[33]建立胰腺导管腺癌小鼠模型，随机分为2组，分别使用BKM120和空白载体治疗28 d，并于治疗前后分别检测CTCs，BKM120组CTCs计数治疗后明显减少（26.61个/250 μL比2.21个/250 μL，P=0.020 7），而空白载体组治疗前后CTCs计数的差异无统计学意义（23.26个/250 μL比 11.89个/250 μL，P=0.808 1），该结果表明，CTCs计数分析是一种非侵入性的、可以预测和监测治疗效果的有效方法。
4.3CTCs与胰腺癌的预后
目前众多研究表明，CTCs可以预测肿瘤的侵袭性，其存在提示预后较差：Sergeant等[34]对10例胰腺导管腺癌术后患者CTCs、血细胞、胰腺癌组织及正常胰腺组织进行基因组学分析，发现CTCs表达细胞活性基因信号P38 MAPK，且高表达者无进展生存期（P=0.041）和总生存期（P=0.047）相对较长，认为CTCs表达细胞活性基因信号可以评估胰腺癌术后生存期；de Albuquerque等[35]利用免疫磁珠富集法联合RT-PCR（KRT19、 MUC1、 EPCAM、CEACAM5 及BIRC5）法检测34例胰腺癌患者外周血CTCs，并分析CTCs与无进展生存期的相关性，结果显示16例CTCs阳性患者的中位无进展生存期为66 d，CTCs阴性患者的中位无进展生存期为138 d，其差异有统计学意义（P=0.01）；Han等[36]检索PUBMED、MEDLINE等多个数据库共9个群组，对623例胰腺癌患者进行研究，其中268例CTCs阳性、355例CTCs阴性，CTCs阳性组有较短的无进展生存期（HR=1.89，95%CI=1.25～4.00，P<0.001），总生存期短（HR=1.23， 95%CI=0.88～2.08，P<0.001），种族亚群分析同样显示在亚洲人和白种人中，CTCs 阳性患者总生存期较短（P<0.05），结果表明CTCs阳性的胰腺癌患者无进展生存期和总生存期较阴性患者短，外周血CTCs的检测可作为胰腺癌预后的标志。以上研究说明，CTCs在胰腺癌中是一个独立的预后指标，外周血CTCs阳性的胰腺癌患者，无进展生存期及总生存期均较阴性患者短。
5小结
CTCs的相关研究在肿瘤微转移生物学方面有着重要意义,早期识别和控制转移对胰腺癌的治疗是至关重要的。CTCs的研究分析不仅可代表所有从原发胰腺肿瘤和转移瘤脱落的肿瘤细胞,而且允许在临床过程中多个时间点重复抽样(动态抽样)，从而能够早期诊断肿瘤的复发和转移；此外，胰腺CTCs能够应用于癌细胞基因组,研究微小RNA和蛋白质表达,检测耐药克隆及以CTCs为目标的靶向治疗。与乳腺癌、肺癌等其他恶性肿瘤不同,胰腺癌缺乏特异性的肿瘤标志物，目前尚没有大规模、前瞻性的CTCs的研究能够用来指导胰腺癌临床治疗。随着现代生物学技术的发展，CTCs的研究将有利于深入了解胰腺癌播散、侵袭及转移的确切分子机理，为胰腺癌个体化综合治疗以及新治疗策略的探索提供更为有力的理论基础。
参考文献
1 Vulfovich M, Rocha-Lima C. Novel advances in pancreatic cancer
treatment. Expert Rev Anticancer Ther, 2008, 8(6): 993-1002.
2 Michl P, Pauls S, Gress TM. Evidence-based diagnosis and staging
of pancreatic cancer. Best Pract Res Clin Gastroenterol, 2006, 20(2): 227-251.
3 Wolfgang CL, Herman JM, Laheru DA, et al. Recent progress in
pancreatic pancer. CA Cancer J Clin, 2013, 63(5): 318-348.
4 Ashworth TR. A case of cancer in which cells similar to those in
the tumors were seen in the blood after death. Aust Med J, 1869, 14: 146-147.
5 Polyak K, Weinberg RA. Transitions between epithelial and mesen-
chymal states: acquisition of malignant and stem cell traits. Nat Rev Cancer, 2009, 9(4): 265-273.
6 K?nigsberg R, Obermayr E, Bises G, et al. Detection of EpCAM
positive and negative circulating tumor cells in metastatic breast cancer patients. Acta Oncol, 2011, 50(5): 700-710.
7 Clawson GA, Kimchi E, Patrick SD, et al. Circulating tumor cells in
melanoma patients. PLoS One, 2012, 7(7): e41052.
8 Vona G, Sabile A, Louha M, et al. Isolation by size of epithelial
tumor cells: a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulating tumor cells. Am J Pathol, 2000, 156(1): 57-63.
9 Ma YC, Wang L, Yu FL. Recent advances and prospects in the
isolation by size of epithelial tumor cells (ISET) methodology.
Technol Cancer Res Treat, 2013, 12(4): 295-309.
10 Parkinson DR, Dracopoli N, Petty BG, et al. Considerations in the
development of circulating tumour cell technology for clinical use. J Transl Med, 2012, 10: 138..
11 Xu W, Cao L, Chen L, et al. Isolation of Circulating tumor cells in
patients with hepatocellular carcinoma using a novel cell separation strategy. Clin Cancer Res, 2011, 17(11): 3783-3793.
12 Gorges TM, Tinhofer I, Drosch M, et al. Circulating tumour
cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition. BMC Cancer, 2012, 12: 178.
13 Miller MC, Doyle GV, Terstappen LW. Significance of circulating
tumor cells detected by the cellsearch system in patients with metas-tatic breast colorectal and prostate cancer. J Oncol, 2010, 2010: 617421.
14 Khoja L, Backen A, Sloane R, et al. A pilot study to explore circula-
ting tumour cells in pancreatic cancer as a novel biomarker. Br J Cancer, 2012, 106(3): 508-516.15 Marrinucci D, Bethel K, Kolatkar A, et al. Fluid biopsy in patients
with metastatic prostate, pancreatic and breast cancers. Phys Biol, 2012, 9(1): 016003.
16 Cen P, Ni X, Yang J, et al. Circulating tumor cells in the diagnosis
and management of pancreatic cancer. Biochim Biophys Acta, 2012, 1826(2): 350-356.
17 Kamande JW, Hupert ML, Witek MA, et al. Modular microsystem
for the isolation, enumeration, and phenotyping of circulating tumor cells in patients with pancreatic cancer. Anal Chem, 2013, 85(19): 9092-9100.
18 Bobek V, Gurlich R, Eliasova P, et al. Circulating tumor cells in
pancreatic cancer patients: enrichment and cultivation. World J Gastroenterol, 2014, 20(45): 17163-17170.
19 Nagrath S, Sequist LV, Maheswaran S, et al. Isolation of rare
circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology.
Nature, 2007, 450(7173): 1235-1239.
20 Stott SL, Hsu CH, Tsukrov DI, et al. Isolation of circulating tumor
cells using a microvortex-generating herringbone-chip. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010, 107(43): 18392-18397.
21 Wang HY, Ahn S, Kim S, et al. Detection of circulating tumor cells
in patients with breast cancer using the quantitative RT-PCR assay for monitoring of therapy efficacy. Exp Mol Pathol, 2014, 97(3): 445-452.
22 Guo W, Yang XR, Sun YF, et al. Clinical significance of EpCAM
mRNA-positive circulating tumor cells in hepatocellular carcinoma by an optimized negative enrichment and qRT-PCR-based platform. Clin Cancer Res, 2014, 20(18): 4794-4805.
23 Barbazán J, Vieito M, Abalo A, et al. A logistic model for the
detection of circulating tumour cells in human metastatic colorectal cancer. J Cell Mol Med, 2012, 16(10): 2342-2349.
24 Sergeant G, Roskams T, van Pelt J, et al. Perioperative cancer
cell dissemination detected with a real-time RT-PCR assay for EpCAM is not associated with worse prognosis in pancreatic ductal adenocarcinoma. BMC Cancer, 2011, 11: 47.
25 Hüsemann Y, Geigl JB, Schubert F, et al. Systemic spread is an early
step in breast cancer. Cancer Cell, 2008, 13(1): 58-68.
26 Rhim AD, Mirek ET, Aiello NM, et al. EMT and dissemination
precede pancreatic tumor formation. Cell, 2012, 48(1-2): 349-361.
27 刘艳辉, 唐甜甜, 孙丽丽. 肿瘤外周血循环细胞对胰腺癌的诊断
价值. 解放军医学院学报, 2013, 34(10)：1045-1047.
28 Thege FI, Lannin TB, Saha TN, et al. Microfluidic immunocapture
of circulating pancreatic cells using parallel EpCAM and MUC1 capture: characterization, optimization and downstream analysis.
Lab Chip, 2014 , 14(10): 1775-1784.
29 Barradas AM, Terstappen LW. Towards the biological understanding
of CTC: capture technologies, definitions and potential to create metastasis. Cancers (Basel), 2013, 5(4): 1619-1642.
30 Joosse SA, Gorges TM, Pantel K. Biology, detection, and clinical
implications of circulating tumor cells. EMBO Mol Med, 2014, 7(1): 1-11.
31 Franken B, de Groot MR, Mastboom WJ, et al. Circulating tumor
cells, disease recurrence and survival in newly diagnosed breast cancer. Breast Cancer Res, 2012, 14(5): R133.
32 Zhang L, Ridgway LD, Wetzel MD, et al. The identification and
characterization of breast cancer CTCs competent for brain metastasis. Sci Transl Med, 2013, 5(180): 189er5.
33 Torphy RJ, Tignanelli CJ, Kamande JW. et al. Circulating tumor
cells as a biomarker of response to treatment in patient-derived xenograft mouse models of pancreatic adenocarcinoma. PLoS One, 2014, 9(2): e89474.
34 Sergeant G, van Eijsden R, Roskams T, et al. Pancreatic cancer
circulating tumour cells express a cell motility gene signature that predicts survival after surgery. BMC Cancer, 2012, 12: 527.
35 de Albuquerque A, Kubisch I, Breier G, et al. Multimarker gene
analysis of circulating tumor cells in pancreatic cancer patients: a feasibility study. Oncology, 2012, 82(1): 3-10.
36 Han L, Chen W, Zhao Q, et al. Prognostic value of circulating tumor
cells in patients with pancreatic cancer: a meta-analysis. Tumour Biol, 2014, 35(3): 2473-2480.
收稿： 2014-12-05 第二次修回：2015-05-07
本文编辑：李缨来
循环肿瘤细胞研究进展 任文君，孙国平 (安徽医科大学第一附属医院肿瘤内科，安徽合肥230022) 摘要：循环肿瘤细胞（CTCs）存在于患者外周血中，是造成肿瘤转移和复发的主要原因。外周血中的CTC是非常罕见的，要求检测方法具有高敏感性及高特异性，成为临床常规检测的巨大挑战，但是检测CTC在协助诊断、早期发现肿瘤的微转移、指导个体化治疗、评价治疗效果及预后方面上具有重要的临床意义。该文将对其检测方法及临床应用进行探讨。 关键词：循环肿瘤细胞；检测；治疗 Ashworth曾在1986年首次发现并提出循环肿瘤细胞（CTCs）的概念［1］。CTC定义为自发或因诊疗操作由实体瘤或转移灶释放进入外周血循环的肿瘤细胞［2］。肿瘤转移是一个涉及多步骤多因素的复杂过程，肿瘤细胞由原发灶脱落，侵入循环系统，大部分由于机体的免疫识别、机械杀伤及自身凋亡在短期内死亡，只有极少数存活下来，在远隔脏器或原发脏器中定居，发展为转移灶［3-4］。有些播散的肿瘤细胞和微小转移灶在切除原发灶后可以保持休眠状态并在若干年后形成转移灶［5］。因此，在外周血中检测到CTC提示可能有早期转移存在，尤其是临床尚未发现的微转移病灶。 CTC的检测包括以下2个步骤：（1）富集，方法包括形态学或免疫学为基础的技术。（2）检测，方法包括细胞计数和核酸检测技术。因为CTC在外周血中是非常罕见的（1个CTC/106 107个单核细胞），富集细胞可提高检测的敏感性，富集之后则通过细胞计数或核酸检测技术利用肿瘤特异性标志物对CTC进行检测及分析。 1富集 1．1以形态学为基础的富集膜滤过分离肿瘤细胞技术（ISET）通过肿瘤细胞体积大小进行富集［6］，就像一个微孔过滤器根据CTC的大小差异使其分离，其隔离灵敏度阈值接近每毫升全血一个癌细胞［7］，其优势在于不破坏CTC的形态，利于后续对单个CTC进行形态学、免疫细胞学及遗传学特征的研究，但只适合部分肿瘤，不适合那些体积小于2倍粒细胞大小的肿瘤细胞。 基于密度梯度分离，单核细胞较其他血液成分密度低，因此可依据密度梯度差异将肿瘤细胞和单核细胞从其他血液细胞中分离出来，如Ficoll-Hypaque和Oncoquick。与传统的Ficoll 通信作者：孙国平，男，主任医师，博士生导师，研究方向：消化系统肿瘤，E-mail：sunguoping@anhmu．edu．cn 程序相比较，Oncoquick增加了多孔屏障，使得分离出的细胞更加纯化，检出率更高［8］。 由于这两种富集方法是借助细胞的物理特性，因此缺乏特异性，易导致缺乏相应体积大小及密度梯度的肿瘤细胞的丢失，同时所富集的细胞不仅含有肿瘤细胞，还存在不同种类的其他细胞（特别是单核细胞），在后续检测过程中可能会因为肿瘤细胞的异质性和基因标志物的非特异性，造成假阳性结果。 1．2以免疫学为基础的富集免疫磁性分离技术（IMS），基于特异性免疫识别原理的富集技术，是目前应用最广泛的方法，通过特异性抗体包被的磁珠与细胞表面抗原特异性结合，形成细胞抗原-抗体-磁珠免疫复合物，在外加磁场作用下，将CTC从血细胞中分离出来。免疫磁性分离方式有2种：阳性分选和阴性分选。阳性筛选获得目的细胞，阴性筛选去除无关细胞使目的细胞得以纯化，也可将两种模式结合，提高富集效率。这项技术最大的优势在于可保证分离靶细胞的形态和功能的完整，有利于下一步CTC的计数、免疫细胞化学、PCR 等检测。目前，免疫磁珠可达纳米级，结合时间短，灵敏度高10－7 10－6。 CellSearch系统是目前FDA唯一批准用于临床富集及检测分析的技术，是一种半自动技术，集合了免疫磁分选技术和免疫细胞化学法的分离检测技术。涂有抗EpCAM抗体的磁珠与靶细胞结合，在外加磁场作用下被保留下来，接着采用荧光标记（CK8/18/19，DAPI，CD45）来区别CTC与血细胞，CTC 标记为CK8/18/19、DAPI（+），CD45（－），随后采用半自动荧光显微镜Cell-Spotter Analyzer检测分析细胞大小和形态，最终确定CTC，只需要7．5mL血液样本，即可从400多亿血细胞中检测到一个CTC。这种半自动系统能快速分析样本，并有良好的重复性。一个多中心研究，有学者提出Cell Search系统有82%的高富集率，且在乳腺癌CTC检测上有极 ［34］Ikeda T．Stem cells and neonatal brain injury［J］．Cell Tissue Res，2008，331（1）：263－269． ［35］尹国才，张长征，张淼涛，等．人胎脑神经干细胞在年幼大鼠脑内的成神经元分化［J］．中国组织工程研究与临床康复，2008，12（12）：2281－2284． ［36］Toda H，Takahashi J，Iwakami N，et al．Grafting neural stem cells improved the impaired spatial recognition in ischemic rats［J］．Neu- rosci Lett，2001，316（1）：9－12． ［37］吴芳，杨佳勇，张敏，等．脐血间充质干细胞移植对脑性瘫 痪儿童神经系统功能的影响：20例分析［J］．中国组织工程研究 与临床康复，2008，12（16）：3198－3200． ［38］张敏，杨万章，吴芳，等．神经生长因子配合脐血源神经干细胞移植对脑瘫患儿运动功能的影响［J］．中国误诊学杂志，2008，8（23）：5596－5597． ［39］杨万章，吴芳，张敏，等．脐血源神经干细胞移植治疗神经系统疾病临床总结和分析［J］．中西医结合心脑血管病杂志，2009，7（3）：287－290． （收稿日期：2012－05－25，修回日期：2012－10－26） · 9 · 安徽医药Anhui Medical and Pharmaceutical Journal2013Jan;17(1)
C an c e r r e s e ar ch Cir c u la t in g T um o r C e l ls D e cisi o n T r ee 内部使用 肿瘤研究 循环肿瘤细胞 起始样品– 外周血/骨髓 您富集 CTC s ? 您直接分选 CTCs? M i cro be a d s Human : CD326 (E p C A M ) M i c r o B e a d s Anti-ErbB-2 M i c r obe ads Anti-Melanoma (MCSP) M i c r obead s I nd irec t M i cro B e a d s 您去除非 CTC s ? C D 45M i cro B e a d s 您做CTC 的分析吗? 您想做先富集再分析吗? H um an CD326 (E p C A M ) tumor c e ll E n r i c h m en t a nd Detection kit ErbB-2 tumor cell E n r i c h m en t a nd Detection kit A n t i -M e l a no ma (MCSP) cell E n r i c h m en t a nd Detection kit MACSQuant 您用流式细胞仪吗? E p C A M a n t i bod i e s , a n t i - E r b B -2 a n t i bod i e s , anti-Melanoma (MCSP) an t i bo di e s , CD45 an t i bo di e s , Available c on j ug a t ed to up to 8 f l uo r o c h r o m e s MACSQuant 您做免疫组化吗 (I H C )? Carcinoma Cell Detection K i t , I n s i de Stain K i t , A n ti -C y t o k e r a ti n Alkaline P h os ph a t a s e ; Anti-Cytokeratin (C K 3-3E 4), A n ti -C y t o k e r a ti n (CK3-6H5), C D 45, 您做分子分析吗? 您做基因表达谱分析吗? mRNA isolation k i t , cDNA isolation k i t , MultiMACS M96 T he rmo M i c r o a rr ay : labeling k i t s , s e rv i c e s , b i o i n f o r ma t i cs , superAMP
关于循环肿瘤细胞（CTC）的一些认识 摘要：通常把进入人体外周血的肿瘤细胞称为循环肿瘤细胞（circulating tumor cell）。随着人们对循环肿瘤细胞研究的深入，尤其是伴随现代检测技术的广泛应用，CTC逐渐被人们所重视。循环肿瘤细胞的检测可有效地应用于体外早期诊断，化疗药物的快速评估，个体化治疗包括临川筛药、耐药性的检测，肿瘤复发的监测以及肿瘤新药物的开发等。检测CTC 有着良好的应用前景，随着这一研究领域的不断发展，必将产生新的诊疗手段，从而使肿瘤的治疗提高到一个崭新的阶段。 关键词：循环肿瘤细胞；CTC；检测方法；临床意义 早在1896年，Ashworth曾报道1例因癌症死亡的患者外周血中发现了类似肿瘤的细胞，并首次提出循环肿瘤细胞（circulating tumor cell, CTC）的概念[1]。随着人们对循环肿瘤细胞研究的深入，尤其是伴随现代检测技术的广泛应用，CTC逐渐被人们所重视。 1、概述 CTC指自发或因诊疗操作进入外周血循环的肿瘤细胞。随着肿瘤细胞的不断增殖,部分细胞可以通过分泌一种抑制黏附因子表达的物质,增加其运动能力并使之与肿瘤母体脱离。这些脱落的肿瘤细胞再分泌一种蛋白溶解酶，以破坏周边宿主结缔组织并进入脉管系统。诊疗操作也可使肿瘤细胞扩散进入外周血循环。 2、检测方法 2.1免疫细胞化学（immunocytochemistry, ICC） 这一检测方法基于抗原抗体结合反应的原理，利用单克隆抗体（McAb）与特异的肿瘤标记物结合，并通过酶与底物反应显色来判断肿瘤细胞的存在。检测的肿瘤标志物主要分三类：①上皮细胞角蛋白（CK），如CK19；②上皮细胞膜特异性抗原，如黏蛋白类，包括EMA、HMFG、HEA125等；③肿瘤相关糖蛋白（TAG），如TAG12。1980年，Sloane等首次 采用ICC的方法检测乳腺癌患者骨髓中的肿瘤细胞。该方法可以进行形态学分析，但是检 测的细胞量少，敏感性只有10－4～10－5（即在1万~10万个单核细胞中发现一个肿瘤细胞），而且许多分化差的肿瘤不能表达目标抗原，而非上皮细胞中细胞角蛋白和上皮细胞抗原亦可能阳性,故特异性不高。Braun等[2]认为由于CTC不表达白细胞共同抗原CD45，采用CD45－/CK＋双标技术可以提高ICC检测的特异性。 2.2多聚酶链反应（polymerase chain reaction，PCR） 该方法的原理是特异性扩增出肿瘤细胞中因癌基因、抑癌基因突变或染色体重排而产生 的DNA异常。这类基因的改变应满足以下条件：①该基因的突变在待检肿瘤中发生率较高，至少应达50％左右；②基因内发生碱基突变的部位应相对集中，如果过分分散，目前临床 应用有困难。这一方法检测肿瘤细胞的敏感性约1×10－6左右，比Southern印迹杂交法约提高10 000倍。应用PCR技术检测CTC受到缺乏肿瘤特异性和高表达标记的限制，该方法敏感度高，易出现假阳性，同时由于癌细胞的异质性亦可出现假阴性。目前多应用突变等位基因扩增（mutant allelie specific amplification, MASA）的PCR技术，检测大肠癌和胰 腺癌患者外周血中具有K-ras癌基因突变的肿瘤细胞。 2.3逆转录聚合酶链反应（RT-PCR）
循环肿瘤细胞（CTC）检测 一、什么是循环肿瘤细胞（CTC）？ 循环肿瘤细胞（Circulating Tumor Cell，CTC）是存在于外周血中的各类肿瘤细胞的统称，因自发或诊疗操作从实体瘤病灶（原发灶、转移灶）脱落，进入外周血循环的肿瘤细胞。 CTC非常稀少，每毫升血液中109血细胞只有几个CTC。大部分CTC在进入外周血后会发生凋亡或被吞噬，少数能够逃逸并发展成为转移灶，增加恶性肿瘤患者的死亡风险。 二、肿瘤的发生及检测诊断 全国肿瘤登记中心发布的2015年年报显示，2011年我国新增癌症病例约337万例，比2010年增加28万例——这相当于每分钟有6人被诊断为癌症。然而，令人担忧的是这样的情势似乎仍未到达峰顶，未来可能还会不断增加。 美国约翰-霍普金斯大学Kinmel 癌症中心的Bert-Vogelstein 等专家在2013年3月份的一篇综述文章中写道：在今年将死于癌症的一百万人里，绝大部分是因为他们的癌症没有在发生、发展的前90%的时间内被发现。因此，我们需要明确一点：癌症是一种慢性病，它只是被突然发现，并非是突然发生的。我们需要尽可能早的发现它，从而提高治愈率。 伴随肿瘤的发生过程，肿瘤细胞的大小也随之增大。传统方法诊断出癌症的时候，大部分已经是晚期。晚期癌症的治愈率极低，其五年生存率也很低。在肿瘤的发生过程中，早期到中期之间是最佳治疗期，因此，如果在早期就可以发现肿瘤的存在，必然可以提高治愈率。临床癌症研究（Clinical Cancer Research）杂志上发表的荟萃分析（Meta-analysis）证实CTC
在乳腺癌预测中的价值，结果表明早期和转移性乳腺癌患者的循环肿瘤细胞CTC检测是一个稳定的预测和预后工具。 如果将肿瘤易感性基因检测和循环肿瘤细胞检测完美结合，那么能够将肿瘤的早期发现率提高数倍。肿瘤易感性检测是对未来可能患有癌症的一种风险预测。如果风险等级高，除了改变生活方式外，还可以定期做循环肿瘤细胞检测，即CTC检测，而且检查频率可以适当增加，每2-3个月检查一次，从而达到实时监控的目的。 三、CTC 检测临床意义有哪些？ CTC 检查的临床意义主要表现在体外早期诊断，血液中肿瘤在1mm时，即可检出CTC，抓住最佳治疗期；另外还可以进行预后判断，根据治疗前后CTC个数判断预后与存活时间，制定最佳治疗方案；此外，还有肿瘤复发检测、耐药性检测、化疗药物的疗效评价以及新药的研发等。 四、哪些人需要做CTC检测？ 1. 普通健康人：通过检查血液中是否存在循环肿瘤细胞来早期检测肿瘤的发生，建议每年检测一次，以期在肿瘤萌芽阶段就能检测到，从而保证早期治愈率。 2. 肿瘤易感人群：有癌症家族史人群，患有HPV阳性、慢性肝炎、慢性胃炎、慢性肠炎等人群，长期吸烟者，经常接触有毒有害物质者，生活压力大、精神高度紧张的亚健康人群，以及基因检测肿瘤易感性风险等级高者，建议每3个月或者半年检测一次。 3. 癌症患者：已经确诊的癌症患者，通过CTC计数，用于预后判断、疗效评价、复发检测等；通过CTC单细胞基因组分析，选择精准治疗方案，实现真正的液体活检。
7900001 16人份试剂盒 Cell Search 循环肿瘤细胞检测试剂盒 （上皮细胞） IVD 使用须知 本试剂盒仅用于体外诊断 CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒用于外周血中循环肿瘤细胞（CTC）的计数，这些细胞来源于上皮细胞，即表现为CD45阴性（CD45-），EpCAM阳性（EpCAM+），细胞角蛋白8,18阳性（CK8,18+）和（或者）CK19阳性(CK19+)的细胞。 用CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒检测的CTC，存在于外周血中，这类细胞与乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌*转移患者的无进展生存期和总生存期相关。因此，CTC可以用来监控乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌患者的肿瘤细胞是否发生转移。CTC应该进行持续检测，并与其他临床诊断方式联合起来监控上述肿瘤细胞的转移。在肿瘤发生过程中的任何时间段，对CTC数量进行评估，可以预估肿瘤患者治疗后的无进展生存期和总生存期。 *在该研究中，转移性前列腺癌患者定义为血清标志物PSA在标准激素基准上，高于参考水平具有两次连续增加。这些患者通常描述为具有非雄激素依赖性，激素抗性，或去势抗性的前列腺癌。 摘要说明 肿瘤转移是指当肿瘤细胞从原发灶或转移灶剥落后，这些肿瘤细胞进入循环系统并在机体的远端定植生长的情况。血液循环中的肿瘤细胞源自于上皮细胞，而这
类细胞在血液循环系统中是极罕见的。基于此，本公司推出的细胞自动化捕获仪(CELLTRACKS○R AUTOPREP○R System)通过预设程序并配合使用CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒(CELLSEARCH○R Kit)可以对样本进行标准化和自动化检测。用CELLTRACKS II分析仪或者CellSpotter分析仪，一种半自动荧光显微镜，可以对肿瘤细胞进行分析和计数。这种方法只计具有上皮细胞特性（EpCAM+, CK8,18+，和/或者CK19+）的细胞数量。 检测原理 CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒包括磁流体捕获试剂和荧光免疫试剂。磁流体试剂是一种具有磁芯的颗粒。其表面包被识别EpCAM抗原的抗体，EpCAM是CTC特异性抗原。因此，该磁微粒可以捕获CTC。经过免疫捕获和富集后，荧光试剂用来鉴定CTC和CTC计数。荧光试剂包括以下组成：抗CK-藻红蛋白（PE）的特异于细胞内蛋白质的细胞角蛋白抗体（上皮细胞特性）；DAPI，用于细胞核染色；和抗CD45-别藻蓝蛋白（APC）白细胞特异性抗体。 试剂/样品混合物被CELLTRACKS○R AUTOPREP○R系统分配到一个插入在MAGNEST?细胞呈现装置的暗盒中。所述MAGNEST?装置具有强磁场，能吸引磁微粒标记的上皮细胞在暗盒的表面上。CELLTRACKS ANALYZERII?分析仪，或者CellSpotter?分析仪自动扫描暗盒的整个表面，获取图像并向用户显示所有事件，其中CK-PE和DAPI荧光染料进行共定位。图像进行最终分类，并以画廊格式呈现给用户。所检测分析的事件当其形态学特征与肿瘤细胞一致并表现出EpCAM+，CK+，DAPI+和CD45-表型时，才被分类为肿瘤细胞。 试剂盒提供的材料 试剂说明 1. 3ml 包被抗EpCAM抗体的磁流体：含有浓度为0.022%的磁微粒，这些磁微
循环肿瘤细胞C T C检测及 临床应用 Prepared on 22 November 2020
循环肿瘤细胞检测及临床应用 中文摘要：循环肿瘤细胞是从原发肿瘤扩散，进入到血液或淋巴系统的肿瘤细胞。循环肿瘤细胞在血液中含量稀少，一般先将循环肿瘤细胞富集，然后再进行检测，现在已经开发了多种细胞富集和检测技术。本文主要对CTCs的富集和检测技术研究进展，以及CTCs在临床分析和研究上的应用进行了综述。 关键词：循环肿瘤细胞富集检测临床 Abstract:Circulatingtumorcellscomefromtheprimarytumorproliferation,andprolife ration,癌症转移的过程是循环肿瘤细胞(CirculatingTumorCells，CTCs)从原发肿瘤分离，通过循环系统扩散，进入血液或者淋巴系统，在远处形成新的肿瘤，最终导致大多数的癌症病人死亡。1869年，Ashworth在一例癌症死亡患者的外周血中发现了类似肿瘤的细胞，并首次提出了CTCs的概念。从此，越来越多的研究表明，CTCs的出现与癌症密切相关。通过上皮-间质转化(EMT)，实体瘤的上皮细胞进行细胞的变化，使他们通过增加流动性和侵袭性脱离组织，进入到血液中，附着，、发展成远端转移。由于CTCs能够代表原发肿瘤的表型和遗传组成，并能够作为任何转移性肿瘤的”液体活检”，CTCs的富集分离和特征研究，十分具有吸引力。CTCs的富集和计数技术已经建立，其中CTCs的计数可以成为预测指标，当其大于已知的阈值时，就预示着病人就患有转移性乳腺癌，、前列腺癌，、结直肠癌等。 基于临床试验，美国FDA批准了一种临床检测CTCs的CellSearch技术，用于上述癌症的CTCs的富集和计数。CellSearch技术成功的证明了CTCs确实表征了疾病的活跃，CTCs数量的增加预示着病情的恶化，可以通过CTCs了解原发性和转移性肿瘤，以CTCs为基础的分析，可以帮助人们实时诊断和预测，对病情做出决定，并取样检测耐药性。大多数常规的癌症治疗方法在治疗转移性癌症方面难以成功，CTCs的可能促进肿瘤的临床研究。 CTCs在血液中极其稀少，数十亿的外周血细胞也阻碍了对CTCs的分离和分子鉴定。现在已经开发了大量的技术用于富集和检测CTCs，其中有些已经成功的用于测试或者临床评估。本文主要综述CTCs的富集和检测技术的研究进展，以及对CTCs的在临床分析和研究上应用。 1CTCs富集技术 为了从大量血液细胞中捕获数量稀少的CTCs，富集分离技术必须足够敏感性，可重复性，可靠，、快速，、便宜，并且所需获取血液量要尽量少，方便实现过程自动化，方便下游分析。此外，富集分离的CTCs要能够保持他们的活性，在富集分离的过程受到的干扰要尽量小，因为这可能改变CTCs的状态和表型。 CTCs富集的技术有很多种，这些技术使用多个性能参数评估(即捕获效率，纯度，细胞活力，富集速度，血液样本容量等)，然后通过检测临床样本进行验证。最佳的富集分离方法可能需要之间的性能参数的折衷，而且可能依赖于下游的应用。CTCs的富集技术主要根据免疫亲和性，物理性质和直接分析分为三类。 1.1免疫亲和性(Immunoaffinity)
7900001 16 人份试剂盒 Cell Search 循环肿瘤细胞检测试剂盒（上皮细胞） IVD
使用须知 本试剂盒仅用于体外诊断 Cellsearch 循环肿瘤细胞检测试剂盒用于外周血中循环肿瘤细胞（ CTC ）的计数，这些细 胞来源 于上皮细胞，即表现为 CD45 阴性（ CD45- ）， EpCAM 阳性（ EpCAM+ ），细胞角 蛋白 8,18 阳性（ CK8,18+ ）和（或者） CK19 阳性 （CK19+） 的细胞。 用CellSearch 循环肿瘤细胞检测试剂盒检测的 CTC ，存在于外周血中，这类细胞与乳腺癌、 结直肠癌和前列腺癌 *转移患者的无进展生存期和总生存期相关。因此， CTC 可以用来监控 乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌患者的肿瘤细胞是否发生转移。 CTC 应该进行持续检测，并 与其他临床诊断方式联合起来监控上述肿瘤细胞的转移。在肿瘤发生过程中的任何时间段， 对 CTC 数量进行评估，可以预估肿瘤患者治疗后的无进展生存期和总生存期。 *在该研究中， 转移性前列腺癌患者定义为血清标志物 PSA 在标准激素基准上， 高于参考水 平具有 两次连续增加。 这些患者通常描述为具有非雄激素依赖性， 激素抗性， 或去势抗性的 前列腺癌。 摘要说明 肿瘤转移是指当肿瘤细胞从原发灶或转移灶剥落后， 这些肿瘤细胞进入循环系统并在机体的 远端定植生长的情况。 血液循环中的肿瘤细胞源自于上皮细胞， 而这类细胞在血液循环系统 中是极罕见的。基于此，本公司推出的细胞自动化捕获仪 （CELLTRACKS R? AUTOPREP System ） 通过预设程序并配合使用 CellSearch 循环肿瘤细胞检测试剂盒 （CELLSEARCH Kit ） 可以对样本进行标准化和自动化检测。 用 CELLTRACKS II 分析仪或者 CellSpotter 分析 仪，一种半自动荧光显微镜， 可以对肿瘤细胞进行分析和计数。 这种方法只计具有上皮细胞 特性（ EpCAM+, CK8,18+ ，和/或者 CK19+ ）的细胞数量。 检测原理 CellSearch 循环肿瘤细胞检测试剂盒 包括磁流体捕获试剂和荧光免疫试剂。磁流体试剂是 一种具有磁芯的颗粒。其表面包被识别 因此，该磁微粒可以捕获 CTC 。经过免疫捕获和富集后，荧光试剂用来鉴定 计数。荧光试剂包 括以下组成：抗 白抗体（上皮细胞特性）； DAPI ， 胞特异性抗体。 试剂 /样品混合物被 CELLTRACKS 呈现装置的暗盒中。所述 MAGNEST ? 装置具有强磁场，能吸引磁微粒标记的上皮细胞在暗 盒的表面上。 CELLTRACKS ANALYZERII ? 分 析仪，或者 CellSpotter ? 分析仪自动扫描暗盒 的整个表面， 获取图像并向用户显示所有事件， 图像进行最终分类， 并以画廊格式呈现给用户。 胞一致并表现出 EpCAM+ ， CK+， DAPI+ 和 试剂盒提供的材料 试剂说明 1. 3ml 包被抗 EpCAM 抗体的磁流体： 含有浓度为 0.022% 的磁微粒，这些磁微粒表面偶 联有抗表 皮细胞表面标志物 EpCAM 的鼠源单克隆抗体。缓冲溶液中含有 0.03% 的 BSA 和 0.05% ProClin 300 作为保护剂。（棕色瓶盖） EpCAM 抗原的抗体， EpCAM 是 CTC 特异性抗原。 CTC 和 CTC CK-藻红蛋白（PE ）的特异于细胞内蛋白质的细胞角蛋 用于细胞核染色；和抗 CD45-别藻蓝蛋白（APC ）白细 ?AUTOPREP ?系统分配到一个插入在 MAGNEST ?细胞 其中 CK-PE 和 DAPI 荧光染料进行共定位。 所检测分析的事件当其形态学特征与肿瘤细 CD45- 表型时，才被分类为肿瘤细胞。
循环肿瘤细胞检测系统（CTC）设备购置 可行性报告 一、制造商基本情况 美国强生(Johnson & Johnson)成立于1886年，是世界上规模最大，产品多元化的医疗卫生保健品及消费者护理产品公司。1999年全球营业额高达275亿美元。强生在全球60个国家建立了250多家分公司，拥有约11万5千余名员工, 产品销售于175个国家和地区。 强生公司是世界上最具综合性、分布范围最广的卫生保健产品制造商、健康服务提供商，产品畅销于175个国家地区，生产及销售产品涉及护理产品、医药产品和医疗器材及诊断产品市场等多个领域。 美国强生公司研发的循环肿瘤细胞检测系统（CTC）2012年进入中国市场，立即被运用于肿瘤科研和临床检测，并受到业界好评。二、项目意义 随着循环肿瘤细胞检测技术的不断发展，循环肿瘤细胞（CTC）在肿瘤临床实践以及肿瘤基础科学研究领域得到了越来越多的重视。CTC数目已经被证实与晚期转移性乳腺癌，结直肠癌，前列腺癌等各种患者的无进展生存期和总生存期密切相关，CTC已经成为转移性乳腺癌等癌种的一种全新的，独立的预后因子，并被作为一种新的肿瘤生物标志物而广泛应用于新药开发，癌症机制研究等不同的领域。三、国内外研究 CTC是指存在于外周血循环中的肿瘤细胞，其含量非常稀少（1ml血液中可能只能检出1个CTC）。CellSearch系统是目前为止唯一获得FDA批准的可以应用于病人管理的自动化循环肿瘤细胞检测系统。检测技术的不断进步CTC越来越成为国内外癌症领域研究的热点。2004年，Cristofanilli等完成的前瞻性多中心临床研究表明治疗前
(基线期)和首次随访时的CTC水平对于转移性乳腺癌患者的无进展生存期和总生存期都是独立的预测指标。在177例转移性乳腺癌患者中，CTC水平较高者(≥5个/7.5ml全血)的平均无进展生存期只有2.7个月，总生存期只有10.1个月；CTC水平较低者则分别为7.0个月(P<0.001)和超过18个月(P<0.001)。随后又有多个研究证明治疗期间任何时间点CTC水平的升高都提示着疾病的快速进展和较差的预后。同时也出现了越来越多的不同癌种的关于CTC的研究，其结果也提示了CTC在前列腺癌，结直肠癌中也发挥了相同的预后作用。由于FDA 的批准，在美国CTC已经可以与传统肿瘤诊断检测方法相结合用于临床实践。国外也有较多的研究集中在了CTC的生物特性上，例如研究CTC表面的Her2抗体表达情况，进行CTC与原发肿瘤的抗体表达对照研究等。 此前，国内也有一些实验室开展了关于CTC的研究，但局限于手工磁珠法，PCR法等方法学问题，并没有取得国际认可的结果。不过随着CellSearch方法逐渐进入中国，越来越多的学者已经开始了关于CTC的研究。国内正在进行CellSearch的注册临床研究，将会验证CellSearch系统在中国人群中的有效性及安全性。同时一些国内的实验室也已经开始在CellSearch这一平台上进行不同的基础科学研究，包括CTC表面多重生物标志物分析，CTC分子生物学分析，CTC细胞FISH检测等，希望通过CTC这个全新的肿瘤标志物得到更多关于癌症发病机制，癌症转移机制等问题的答案。 四、国内开展现状 基于CellSearch平台的CTC检测技术是一种安全可靠的被美国FDA批准的癌症临床辅助诊断技术，随着中国注册临床试验的进行，CTC检测将会在中国得到越来越多的重视并迎来更加广阔的临床及科研应用前景。目前国内已有解放军307医院，复旦大学附属肿瘤医院，
循环肿瘤细胞检测的现状及发展 作者：上海市第一人民医院检验科李莉教授 https://https://www.doczj.com/doc/7d6949818.html,/news/9/2802534.htm 恶性肿瘤远处转移是临床上实体恶性肿瘤治疗失败或复发的主要原因之一。而循环肿瘤细胞的存在正是实体恶性肿瘤远处转移的根源。肿瘤远处转移的最经典依据是1889年Paget[1]提出的“种子和土壤”学说，该学说认为肿瘤转移的发生和发展，是处于活跃或活化状态的肿瘤细胞作为“种子”，当遇到适合的器官、组织的基质环境，即“土壤”时，就会在此定居、生长即发生肿瘤的转移，从而部分解释了肿瘤原发灶与转移灶之间的关系。但原发部位的肿瘤（种子）是如何到达远处器官或组织（土壤）的这一问题一直困扰着人们。直到1869年，托马斯?阿什沃思（Thomas Ashworth）[2]在1例转移性癌症患者血液中观察到了外周血循环肿瘤细胞（Circulating Tumor Cells，CTCs）—从实体瘤中脱离出来并进入血液循环的肿 瘤细胞。他推测，这些细胞在癌症转移过程中发挥了非常重要的作用，并可能提供疾病进展的相关信息，CTCs的概念初步形成。据统计，90%以上的肿瘤病人死于肿瘤的转移和复发，实体肿瘤或转移灶的肿瘤细胞在特定条件下，通过上皮-间质转化（epithelial-mesenchymal transition，EMT），从形态上发生向间充质细胞表型的转变并获得迁移的能力。间充质细 胞与上皮细胞相邻，只是其结构松散，缺乏细胞连接（cell adhesion）和细胞极性，并且具有转移和侵袭能力。因此，脱落的CTCs得以进入外周血液循环，这是肿瘤发生转移的必要前提。脱离原发灶入血的CTCs至少面临着血流剪应力、失巢凋亡、免疫细胞识别杀伤等三重致命考验，进入循环的大部分肿瘤细胞都会失去活性，只有不足0.01%可到达远端器官，通过迁移、粘附、相互聚集形成微小癌栓，并在适合的微环境条件下，CTCs又发生间质- 上皮转化（mesenchymal-epithelial transition，MET），生成新的肿瘤，从而导至肿瘤转移的发生。 从提出CTCs概念近一个多世纪的时间里，由于初期实验条件、技术的限制以及学者对CTCs 的认识的局限性，CTCs检测及临床应用进展不大。直至上世纪末尤其是本世纪初，随着分 子生物学、计算机技术的发展，免疫标记技术以及分子生物学技术的突飞猛进，CTCs分离 及分析鉴定技术得以迅速发展，CTCs检测和临床应用取得了重大进步，为早期发现肿瘤的 复发转移、评估手术、放疗、化学等疗效、判断预后、确定肿瘤分子特征、选择合适的个体化治疗等方面提供了重要的实验室依据。目前，学者所共识的循环肿瘤细胞的概念是：自发或受外界因素作用（如诊疗操作等）由原发灶或转移灶进入外周血循环的肿瘤细胞。肿瘤细胞的脱落、侵袭并进入血液循环是肿瘤转移的最初阶段，并为最终形成肿瘤转移灶提供了可能。进入循环系统的肿瘤细胞大部分在机体免疫识别及杀伤等作用下发生凋亡，有极少数肿瘤细胞在循环系统中存活下来，在一定条件下，进入血液循环而未被清除的肿瘤细胞通过迁移、黏附、相互聚集形成微小癌栓，并在一定条件下发展为转移灶[3]。本文拟就CTCs分离技术、分析鉴定技术、临床应用、CTCs主要分析仪器作一介绍。 1 循环肿瘤细胞分离富集技术 越来越多的分子生物学和临床研究结果表明，肿瘤转移很可能在肿瘤发生的早期就已经出现，在外周血中检到CTCs是预示肿瘤转移最直接、重要的方法，在肿瘤早期转移的临床诊断、预后判断、监测疗效等方面具有重要意义。CTCs的发现有望改变临床上仍依赖于影像学检
?４５０?肿瘤２００８年５月第２８卷第５期ＴｕｍｏｒＶ０１．２８，Ｎｏ．５，Ｍａｙ，２００８ ＤＯＩ：１０．３７８１／ｊ．ｉｓｓｎ．１０００－７４３１．２００８．０５．０２１ 循环肿瘤细胞检测及临床应用的研究进展 Ｒｅｖｉｅｗ?综述 黄同海１，王正‘，李富荣２ （暨南大学第二临床医学院深圳市人民医院１．胸外科；２．临床医学研究中心，深圳５１８０２０） ［摘要］研究发现，实体瘤患者外周血中存在循环肿瘤细胞。循环肿瘤细胞的检测有助于发现早期肿瘤患者的微转移，重新确定临床分期，监测患者术后肿瘤是否复发与转移，评估预后，选择个体化的治疗策略。由于存在循环肿瘤细胞检测方法、原发肿瘤细胞的不连续脱落、基因组的不稳定性及无效转移等诸多问题，循环肿瘤细胞检测的生物学意义和临床意义仍存在很大争议。本文综述了对实体瘤患者循环肿瘤细胞检测的方法和结果，并探讨当前肿瘤研究领域面临的问题和潜在的进展。【关键词］肿瘤循环细胞；肿瘤转移；诊断技术和方法 ［中图分类号］Ｒ７３－３７；Ｒ７３０．４３［文献标志码］Ａ［文章编号］１０００－７４３１（２００８）０５－０４５０－０３ 肿瘤转移是一个涉及多步骤多因素的复杂过程。肿瘤细胞的脱落、侵袭并进入血液循环是实现肿瘤转移的最初阶段，并为最终形成肿瘤转移灶提供了可能。深入研究循环肿瘤细胞（ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇｔｕｍｏｒｃｅｌｌｓ，ＣＴＣｓ）有助于对肿瘤转移机制的了解，为抗转移治疗提供依据。随着检测技术的小断改进，研究者们对ＣＴＣｓ的生物学特性的认识得到不断更新和完善。这可能为肿瘤患者的预后评估、抗肿瘤药物的开发和肿瘤的个体化治疗提供强有力的工具。 ＣＴＣｓ是指自发或因诊疗操作进入外周血循环的肿瘤细胞。由于宿主的免疫识别和机械杀伤作用以及肿瘤细胞自身因素，进入循环的肿瘤细胞很大一部分发生凋亡，不能形成转移灶，这种现象称之为“无效转移”¨ｏ。只有极少数具有高度转移潜能的肿瘤细胞在循环系统中存活下来，相互聚集形成微小癌栓，并在一定条件下发展为转移灶。因此，在外周血中检测到肿瘤细胞预示着有可能发生肿瘤转移。 １ＣＴＣｓ的检测方法 １．１细胞计数法细胞计数法是最早应用于检测外周血ＣＴＣｓ的方法并且是当前鉴定骨髓中微转移的标准方法。细胞计数法的优点是，可在形态学上鉴别恶性表型并在单个细胞水平上进一步检测特定分子，但标准的光学显微镜和免疫细胞化学法存在敏感性低、检测繁琐、费时、易误诊等缺点。随着细胞自动成像和细胞富集方法等的产生，重新激起了研究者对应用细胞汁数法检测ＣＴＣｓ的兴趣。…。数字显微镜能自动扫描以核特征和细胞表面特征为摹础的血标本，而操作者只需确定分选的细胞即可。新近应用的上皮肿瘤细胞容量分离法（ｉｓｏｌａｔｉｏｎｂｙｓｉｚｅｏｆｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｔｕｍｏｒｃｅｌｌｓ，ＩＳＥＴ），不仅能计数肿瘤细胞，而且能进行免疫形态学和分子特征的分析¨Ｊ。ＦＣＭ广泛应用于血液领域，不仅能鉴定特定标本中细胞抗原性和形态学特征，还能使富集的目的细胞维持细胞形态并保持细胞活力，进一步扩大在体外的功能研究。 ［基金项目］国家科技攻关计划项目（编号：２００３ＢＡ３１０Ａ２３） ［作者简介】黄同海（１９８２一），男（汉族），硕士，住院医师 Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅｔｏ：ＷＡＮＧＺｈｅｎｇ（王正） Ｅ—ｍａｉｌ：Ｗａｎｇｚｎ０５０３＠１６３．ｔｏｍ１．２ＰＣＲ方法ＰＣＲ方法是检测ＣＴＣｓ最普遍的一种方法。该方法通过设汁获得与目的基因特异性互补的寡核苷酸引物而具有较高的特异性。应用ＰＣＲ方法可在１０６一ｌＯ７个正常细胞中检测出１个肿瘤细胞，相当于１～１０ｍＬ血中可发现１个肿瘤细胞，与光学显微镜检测（１０２一１０３个正常细胞中发现１个肿瘤细胞）和免疫组织化学方法（１０４—１０５个正常细胞中发现１个肿瘤细胞）相比具有更高的敏感性“。然而，由于该方法的高度敏感性，极易产生假阳性的结果。这是冈为外周血白细胞的非法转录、静脉穿刺时血标本的污染及假基因的干扰等造成，但随着实时定量ＰＣＲ技术的出现，使精确定量靶序列成为可能。 以ＤＮＡ作为ＰＣＲ的模板，其优势是它的稳定性和肿瘤细胞异常转录的独立性。但是它的缺点是敏感性低，并且不能鉴别目的基因ＤＮＡ来源于活细胞还是死细胞。 以ｍＲＮＡ作为模板进行ＲＴ—ＰＣＲ也是ＣＴＣｓ检测最常用的一种方法。首先将ｍＲＮＡ反转录为ｃＤＮＡ，随后用特异性的引物扩增获得日的基因。引物设计时可以跨越２个不同的外显子，为避免整个基因组的扩增，有利于消除假阳性结果。ＲＴ—ＰＣＲ的优点是可以检测原代活细胞，缺点是在某个特定肿瘤细胞内一个基因ｍＲＮＡ的拷贝数量在细胞周期中是不断变化的，并且存在去分化的现象，这可能影响标准ＰＣＲ的阳性率和实时定量ＰＣＲ检测的标志物水平，从而较难区别肿瘤细胞数量与ｍＲＮＡ表达水平之Ｉ’日Ｊ的变化。然而用多位点ＰＣＲ分别检测来自不同基因家族的ｍＲＮＡ标志物即可解决这个问题一－。 １．３细胞富集方法密度梯度离心法足目前实验室常用的一种收集肿瘤细胞的方法，但该方法缺乏特异性，因而易导致缺乏相应密度的肿瘤细胞丢失。新近发展起来的免疫磁性细胞富集法则具有较高的特异性和富集效率。其基本原理即采用均匀、球形具有超顺磁性及保护壳的纳米微粒制备成免疫磁珠，使之成为既能被磁铁所吸引，又能结合抗体的载体。磁珠上的抗体与含有特异性抗原物质的细胞结合后，则形成细胞抗原．抗体一磁珠免疫复合物，在磁力作用下发生力学移动，使复合物与其他物质分离，达到分离特异性细胞的目的。目前商业化的磁珠包括阳性分选磁珠和阴性分选 万方数据
(19)中华人民共和国国家知识产权局 (12)发明专利申请 (10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201910313986.0 (22)申请日 2019.04.18 (71)申请人 山东师范大学 地址 250014 山东省济南市历下区文化东 路88号 (72)发明人 张鸿雁 贾敏 毛艺霏 逄淑雪 (74)专利代理机构 济南圣达知识产权代理有限 公司 37221 代理人 张晓鹏 (51)Int.Cl. G01N 33/574(2006.01) (54)发明名称 一种循环肿瘤细胞捕获装置及方法 (57)摘要 本公开涉及肿瘤细胞捕获技术领域，具体涉 及一种循环肿瘤细胞捕获装置及方法。本公开提 供了一种循环肿瘤细胞的捕获装置，将上皮细胞 粘附分子(EpCAM)、表皮因子生长受体(EGFR )的 抗体修饰在包被有PDMS胶状物的留置针上进行 肿瘤细胞的捕获。本公开通过血液循环泵中模拟 体内环境，EGFR抗体捕获循环肿瘤细胞数在60左 右，EpCAM捕获的循环肿瘤细胞数在55左右，而 EGFR+EpCAM混合抗体捕获的细胞数约为130，大 于两种抗体单独使用的捕获数量之和。多抗体联 用技术可远远提高循环肿瘤细胞的捕获效率，减 少循环肿瘤细胞的损失，为循环肿瘤细胞的捕获 与检测奠定了基础。权利要求书1页 说明书7页 附图3页CN 109991418 A 2019.07.09 C N 109991418 A
权 利 要 求 书1/1页CN 109991418 A 1.一种用于循环肿瘤细胞检测的捕获探针，其特征在于，所述捕获探针置于样本中能够特异性吸附样本中的肿瘤细胞，所述捕获探针表面具有特异性识别肿瘤细胞表面抗原EpCAM及EGFR的抗体。 2.如权利要求1所述的捕获探针，其特征在于，所述捕获探针为表面覆盖特异性识别抗体的留置针。 3.如权利要求1所述的捕获探针，其特征在于，捕获探针表面包覆可吸附蛋白材料，所述可吸附蛋白材料表面包覆所述特异性识别肿瘤细胞表面抗原EpCAM及EGFR的抗体；优选的，所述可吸附蛋白材料为聚二甲基硅氧烷。 4.权利要求1-3任一项所述肿瘤细胞捕获探针的制备方法，其特征在于，所述制备方法包括如下步骤：在留置针表面制备可吸附蛋白层获得功能化留置针，将功能化留置针分别置于一定浓度的EpCAM及EGFR抗体溶液中得到所述肿瘤细胞捕获探针。 5.如权利要求4所述的制备方法，其特征在于，所述可吸附蛋白层为聚二甲基硅氧烷，所述聚二甲基硅氧烷的制备方法如下：按比例称取预聚物和固化剂后混合连续搅拌一段时间获取胶状物，将胶状物减压干燥排尽其中的气泡后保持真空一段时间；将留置针蘸取真空后的胶状物并在一定温度下干燥。 6.如权利要求5所述的制备方法，其特征在于，所述预聚物为SYLGUARD-184A；和所述固化剂为SYLGUARD-184B；所述预聚物和固化剂的比例为9～11:0.5～1.5；和/或所述胶状物在真空状态下干燥0.5-1h。 7.如权利要求5所述的制备方法，其特征在于，所述特异性识别抗体EpCAM及EGFR浓度分别为50～100μg/mL、50～100μg/mL；优选的，所述EpCAM及EGFR的比例为4～6：3～5；优选的，所述功能化的留置针置于EpCAM及EGFR抗体溶液中，4℃孵育过夜制备所述捕获探针。 8.一种肿瘤细胞的捕获方法，其特征在于，所述方法包括采用权利要求1-3任一项所述的捕获探针放置于样品中一段时间捕捉样品中的肿瘤细胞，取出捕获探针后用洗脱液将肿瘤细胞洗脱并收集。 9.一种非诊断治疗目的的肿瘤细胞检测方法，其特征在于，所述检测方法采用权利要求8所述肿瘤细胞捕获方法将样本中的肿瘤细胞收集后，通过免疫细胞化学法、流式细胞术法、PCR方法及荧光检测方法对收集的肿瘤细胞数量进行检测；优选的，收集到的肿瘤细胞经DAPI染色后检测。 10.一种肿瘤细胞检测试剂盒，其特征在于，所述试剂盒中包括权利要求1-3任一项所述的肿瘤细胞捕获探针；优选的，所述肿瘤细胞检测试剂盒中还包括洗脱液、酶标板及检测试剂；进一步优选的，所述检测试剂包括固定液、透膜液及清洗液。 2
16人份试剂盒 Cell Search 循环肿瘤细胞检测试剂盒（上皮细胞） IVD
本试剂盒仅用于体外诊断 CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒用于外周血中循环肿瘤细胞（CTC）的计数，这些细胞来源于上皮细胞，即表现为CD45阴性（CD45-），EpCAM阳性（EpCAM+），细胞角蛋白8,18阳性（CK8,18+）和（或者）CK19阳性(CK19+)的细胞。 用CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒检测的CTC，存在于外周血中，这类细胞与乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌*转移患者的无进展生存期和总生存期相关。因此，CTC可以用来监控乳腺癌、结直肠癌和前列腺癌患者的肿瘤细胞是否发生转移。CTC应该进行持续检测，并与其他临床诊断方式联合起来监控上述肿瘤细胞的转移。在肿瘤发生过程中的任何时间段，对CTC数量进行评估，可以预估肿瘤患者治疗后的无进展生存期和总生存期。 *在该研究中，转移性前列腺癌患者定义为血清标志物PSA在标准激素基准上，高于参考水平具有两次连续增加。这些患者通常描述为具有非雄激素依赖性，激素抗性，或去势抗性的前列腺癌。 摘要说明 肿瘤转移是指当肿瘤细胞从原发灶或转移灶剥落后，这些肿瘤细胞进入循环系统并在机体的远端定植生长的情况。血液循环中的肿瘤细胞源自于上皮细胞，而这类细胞在血液循环系统中是极罕见的。基于此，本公司推出的细胞自动化捕获仪(CELLTRACKS○R AUTOPREP○R System)通过预设程序并配合使用CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒(CELLSEARCH○R Kit)可以对样本进行标准化和自动化检测。用CELLTRACKS II分析仪或者CellSpotter分析仪，一种半自动荧光显微镜，可以对肿瘤细胞进行分析和计数。这种方法只计具有上皮细胞特性（EpCAM+, CK8,18+，和/或者CK19+）的细胞数量。 检测原理 CellSearch循环肿瘤细胞检测试剂盒包括磁流体捕获试剂和荧光免疫试剂。磁流体试剂是一种具有磁芯的颗粒。其表面包被识别EpCAM抗原的抗体，EpCAM是CTC特异性抗原。因此，该磁微粒可以捕获CTC。经过免疫捕获和富集后，荧光试剂用来鉴定CTC和CTC 计数。荧光试剂包括以下组成：抗CK-藻红蛋白（PE）的特异于细胞内蛋白质的细胞角蛋白抗体（上皮细胞特性）；DAPI，用于细胞核染色；和抗CD45-别藻蓝蛋白（APC）白细胞特异性抗体。 试剂/样品混合物被CELLTRACKS○R AUTOPREP○R系统分配到一个插入在MAGNEST?细胞呈现装置的暗盒中。所述MAGNEST?装置具有强磁场，能吸引磁微粒标记的上皮细胞在暗盒的表面上。CELLTRACKS ANALYZERII?分析仪，或者CellSpotter?分析仪自动扫描暗盒的整个表面，获取图像并向用户显示所有事件，其中CK-PE和DAPI荧光染料进行共定位。图像进行最终分类，并以画廊格式呈现给用户。所检测分析的事件当其形态学特征与肿瘤细胞一致并表现出EpCAM+，CK+，DAPI+和CD45-表型时，才被分类为肿瘤细胞。 试剂盒提供的材料 试剂说明 1. 3ml 包被抗EpCAM抗体的磁流体：含有浓度为0.022%的磁微粒，这些磁微粒表面偶联有抗表皮细胞表面标志物EpCAM的鼠源单克隆抗体。缓冲溶液中含有0.03%的BSA和0.05% ProClin 300作为保护剂。（棕色瓶盖） 2. 3ml染色试剂：包含细胞角蛋白特异性鼠源单克隆抗体，该偶联藻红蛋白（PE），浓度为0.0006%和浓度为0.0012%的鼠源抗CD45分子的单克隆抗体，该抗体偶联别藻蓝蛋白