实验六果蔬呼吸强度测定（静置法）班级姓名学号
一、实验原理
呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出
来的CO2，再用草酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度，其单位为mg co2 / k g·h。
反应如下：2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2O
Na2CO3 + BaCl2→BaCO3↓ + 2NaCl
2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O
二、材料及用具
1、实验材料：水果
2、试剂：0.4M氢氧化钠、0.3M草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂。
3、仪器：玻璃干燥器、滴定管架、铁夹、滴定管、三角瓶、烧杯、培养皿、10mL移液管、洗耳球。
三、实验步骤
1、将装有0.4M NaOH的培养皿置于玻璃干燥器底
部，放置隔板，放入水果，封盖，静置1小时左右（每
kg水果需40mLNaOH）。
2、取出培养皿把NaOH溶液移入试剂瓶中（冲洗
3~5次），每组吸取10mL至锥形瓶中，加饱和BaCl22.5mL
和酚酞指示剂1滴，用0.3M草酸滴定，记录消耗的草酸体积。每组2瓶。
3、另吸取0.4M NaOH溶液10mL至锥形瓶中，加饱和BaCl22.5mL和酚酞指示剂1滴，做空白滴定，记录消耗的草酸体积。每组1瓶。
四、结果与计算
1、将消耗的草酸体积（mL）填入下表
2、计算公式：
呼吸强度（mg co2/k g·h）= ()
h
M
C
V
V
?
?
?
-44 0
V0 ——空白滴定消耗草酸体积V——测定管消耗草酸体积均值C ——草酸溶液摩尔浓度M——样品质量（Kg）
h ——测定时间（小时）。
44 —— CO2摩尔质量
创作编号：BG7531400019813488897SX 创作者：别如克* 家兔呼吸运动的调节实验 [目的要求] 1学习记录家兔呼吸运动的方法。 2 观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。 [基本原理] 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。 [动物与器材] 家兔、兔体手术台，手术器械、张力传感与滑轮或动物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN 装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。 [方法与步骤] 急性动物实验时，记录呼吸运动的方法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管连接记录；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有压力传感器的呼吸带记录；第三种是通过张力传感器记录隔肌运动。 先将动物麻醉、固定、进行颈部气管、动脉及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。 1、剑突软骨分离术 切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨于胸骨完全分离，但必须保留附于其下方的隔肌片，并使之完好无损。此时隔肌的运动可牵动剑突软骨。
2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上。 3、开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。 4、实验观察 （1）记录呼吸运动曲线，并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。 （2）增加无效腔对呼吸运动的影响 将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔。观察并记录呼吸运动曲线的改变。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管待呼吸正常。 （3）CO2对呼吸的影响 将气管插管的一个侧管接通装有CO2的气袋，同时夹闭另一侧管，使家兔对着CO2气袋呼吸，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除CO2气袋，待呼吸恢复正常。 （4）缺氧对呼吸运动的影响将气管插管的一个侧管接通装有纳石灰的气袋，同时夹闭另一侧管，观察并记录呼吸运动的变化。一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除气袋，待呼吸恢复正常。 （5）增加气道阻力对呼吸运动的影响 待呼吸运动恢复正常后，将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒钟，观察呼吸变化。 （6）KCN对呼吸运动的影响 由耳缘静脉注射1mlKCN溶液，观察并记录呼吸运动的变化。 （7）肺牵帐反射 待呼吸恢复正常后，在气管插管的一个侧管上连同一个20ml注射器，并吸入20ml空气。待呼吸运动平稳后，用相当正常呼吸时的三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml，与此同时夹闭另一侧管。注意观察呼吸节律的变化及运动的状态。实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。同法，于呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何区别（注意：注气与抽气时间仅限于三个呼吸节律的时间，然后立即打开夹闭的侧管）。 （8）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎双侧迷走神经（二人同时操作，第一结一定
果蔬呼吸记录仪研究果蔬产品呼吸速率影响的几个因素 果品蔬菜在贮藏中仍然是有生命的活着的机体。果品蔬菜采收后，同化作用基本停止，呼吸作用成为新陈代谢的主导方面。呼吸作用直接、间接地联系着各种生理生化过程，因此也影响着耐贮性、抗病性的发展变化。呼吸作用越旺盛，各种过程和变化越快，生命终止也就越早。这说明了在果品蔬菜贮藏运输中，有效控制呼吸作用和各种代谢强度是非常必要的。 很多人认为果蔬产品，在被采摘下来之后，就没有了生命活动，但是实际上无论是新采摘下来的果蔬产品，还是经过预处理加工的产品，都是有生命的，生命周期中一直伴随有呼吸过程。而果蔬的呼吸作用，现在可以利用专业的仪器果蔬呼吸记录仪来进行测定。利用该仪器，可以帮助我们研究果蔬产品的呼吸过程与影响呼吸的因素等，从而为寻找更好更有效的果树产品保鲜方法找到答案。 一般来说，果蔬产品的呼吸速率直接影响其保质期，呼吸速率越高，腐蚀速度越快，其保质期就越短，反之亦然。应用果蔬呼吸记录仪研究之后发现，影响果蔬产品呼吸速率的因素主要有以下几点： 1、采摘时果蔬的成熟度;采摘时果蔬的成熟度也会影响采摘之后果蔬产品呼吸速率，往往过生或过老的产品，呼吸速率都会很快。 2、果蔬产品的损伤程度; 受损伤的果蔬，往往呼吸速率要快于完整的果蔬产品，这是因为切断、碰伤等，都会加快果蔬产品本身的呼吸速率。 3、果蔬种类不同的果蔬，其呼吸速率是完全不同的，如叶菜的呼吸速率明显高于胡萝卜等根茎类蔬菜的呼吸速率。而且果蔬种类是影响果蔬产品呼吸速率的最大因素。 4、果蔬所处的环境; 温度、氧气、二氧化碳等环境因素对于果蔬产品呼吸速率的影响也是十分明显的，温度升高，果蔬产品呼吸速率会加快；环境中氧气含量高，果蔬产品的呼吸速率快，反之亦然；而二氧化碳，则对果蔬产品的呼吸速率具有抑制作用。
中国海洋大学实验报告 2015年11月17号姓名：白洁专业年级： 2014级生物科学学号：同组者：高远高学雨 课程：植物生理学实验题目：呼吸酶的简易测定法 一、实验目的 学习植物呼吸作用的另一种测定方法,掌握用小篮子法测定植物的呼吸作用速率. 二、实验原理 植物进行呼吸时放出CO2 ，测定一定的植物材料在单位时间内放出的的量CO2 ，即可测知该植物材料的呼吸强度。测定植物释放CO2的量，可利用Ba(OH) 2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2 ，然后再用草酸溶液滴定剩余的Ba(OH)2 ，从空白和样品二者消耗草酸溶液之差，既可算出呼吸过程释放的CO2量。 三、仪器试剂 1.器材：广口瓶呼吸测定装置、托盘天平、碱式滴定管、温度计。 2. 试剂： 1）草酸溶液 2）饱和氢氧化钡溶液 3）酚酞指示剂 3. 实验材料：刚萌发的小麦种子 四、实验步骤 1、取250mL广口瓶4个，用橡皮塞密封，塞下挂一尼龙窗纱制作的小篮，用于盛实验材料。装置如右图： 2、称取刚萌发的小麦种子5克两份，分别装入小篮内，将小篮子分别挂在已加有饱和Ba（OH）2溶液10mL的广口瓶内，立即塞紧瓶塞，防止漏气。每隔10分钟轻
轻地摇动广口瓶，破坏溶液表面的BaCO3 薄膜，以利于CO2 的吸收，反应半小时。小心打开瓶塞迅速取出小篮,加入1～2滴酚酞指示剂,用草酸溶液滴定.直到红色消失为止,记录滴定用去的草酸溶液的体积。 3、另称取刚萌发的小麦5g两份，分别装入小篮内，放入加有一定体积水的250mL 烧杯中，在电炉上加热煮沸10分钟，冷却后，将小篮子分别挂在已加有饱和的Ba（OH） 2 溶液10mL的广口瓶内，按上述步骤进行测定，以此作为空白对照。 五、数据处理 六、思考题 1.为什么要用煮死的幼苗来做空白试验 用煮死的种子做空白对照试验是为了减小环境误差 2.请列举出其他的植物呼吸速率的测定方法并评价它们的优缺点 水生植物可利用溶解氧浓度测定判断呼吸速率，这是因为水中CO2浓度测定不易，而水中氧浓度测定较简单。 陆生植物多采用测定密闭容器中CO2浓度的变化来确定植物呼吸速率，这是因浓度的测定较为简单。 为空气中CO 2 七、注意事项 1.将小篮挂在瓶盖下时，应避免与瓶中液体接触，否则会造成液体的损失，使所得值下降。 2.注意滴定过程的终点控制，不应滴过，以免数据过大。 3.打开瓶盖取出小篮时，动作要迅速。 4.在将活的小麦种子放入瓶中时，应尽量快，以避免漏气。并且，应每10分钟的摇动瓶子，以利于二氧化碳的吸收。
家兔呼吸运动得调节 一、实验目得 1.观察血液中化学因素(PCＯ2、PＯ2、[H+])改变对家兔呼吸频率、节律、通气量得影响及机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中得作用及机制。 2.学习气管插管术与神经血管分离术。 二、实验原理 呼吸运动指在中枢神经系统控制下,通过呼吸肌节律性得运动造成胸廓节律性地扩大或缩小。呼吸运动除了受中枢神经系统控制外，一些理化因素(包括代谢产物、药物以及肺得扩大与缩小等）可通过如化学感受性呼吸反射、肺牵张反射直接或间接作用于中枢神经系统来调节呼吸运动,表现为呼吸运动及隔肌放电得频率与幅度等改变。 化学因素(包括代谢产物、药物等）可直接作用于中枢或通过化学感受器作用于中枢后,再经传出神经纤维,如膈神经、肋间神经将控制信号传至呼吸肌,引起呼吸运动发生改变。肺牵张反射指肺扩张时引起吸气抑制得反射,其传入神经就是迷走神经。 三、实验结果 1、通入CＯ２
吸入CＯ2后呼吸明显加深，频率明显加快。 2、通入N2 吸入N2后呼吸加深,频率加快,但其幅度较CO2小。
3、增大无效腔 增大无效腔后呼吸显著加深,频率显著加快。 4、剪断一侧迷走神经
剪断一侧迷走神经后,呼吸深度与频率均变化不明显。５、剪断双侧迷走神经
剪断双侧迷走神经后,呼吸深度基本不变,呼吸频率大幅度减慢。 四、讨论 1.通入ＣO2 CO2就是调节呼吸运动最主要得体液因素。当外周血液中CO2浓度适度增多时,呼吸表现为加深加快。CO2就是脂溶性小分子,能迅速透过血脑屏障进入脑脊液,与其中得水结合成碳酸,碳酸迅速解离出氢离子,从而以氢离子得形式刺激中枢化学感受器（分布在延髓腹外侧浅表区),兴奋呼吸。其次,一小部分ＣＯ2也能直接刺激外周化学感受器，兴奋呼吸。 2.通入N２ 通入Ｎ2后,因吸入气体中缺乏O2,动脉血中PO２下降,反射性使呼吸运动加深加快,肺通气量增加。并且轻度缺氧时,对外周化学感受器得兴奋作用强于对呼吸中枢得直接抑制作用,故表现为呼吸兴奋。 3.增大无效腔 肺泡通气量=（潮气量-无效腔气量)*呼吸频率。增大无效腔时，肺泡通气量减少,故气体交换效率降低,导致血液缺氧与ＣO2增多,从而兴奋呼吸。 4.剪断一侧迷走神经
呼吸作用与果蔬贮藏的关系
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呼吸作用与果蔬贮藏的关系 呼吸作用是采后果蔬的一个最基本的生理过程,它与果蔬的成熟、品质的变化以及贮藏寿命有密切的关系。 （一)呼吸强度与贮藏寿命 呼吸强度(resｐiｒａtion rate)是评价呼吸强弱常用的生理指标,它是指在一定的温度条件下,单位时间、单位重量果蔬放出的CO2量或吸收Ｏ２的量。呼吸强度是评价果蔬新陈代谢快慢的重要指标之一,根据呼吸强度可估计果蔬的贮藏潜力。产品的贮藏寿命与呼吸强度成反比,呼吸强度越大,表明呼吸代谢越旺盛，营养物质消耗越快。呼吸强度大的果蔬，一般其成熟衰老较快,贮藏寿命也较短。例如，不耐贮藏的菠菜在20-21℃下，其呼吸强度约是耐贮藏的马铃薯呼吸强度的２0倍。常见的果蔬呼吸强度见表2-4。?测定果蔬呼吸强度的方法有多种，常用的方法有气流法、红外线气体分析仪、气相色谱法等。 (二）呼吸热 前面已提到果蔬呼吸中,氧化有机物释放的能量，一部分转移到ATP和NADH分子中,供生命活动之用。一部分能量以热的形式散发出来，这种释放的热量称为呼吸热（ｒesｐir ａｔion ｈeat）。已知每摩尔葡萄糖通过呼吸作用彻底氧化分解为CO２和水,放出自由能2867.5ＫJ;在这过程中形成3６moｌＡTP,每形成1ｍoｌＡＴP需自由能30５.1KJ，形成36ｍolＡTＰ共消耗10９9.3KJ,约占葡萄糖氧化放出自由能的３8%。这就是说,其余6２％（17６8.1ＫＪ）的自由能直接以热能的形式释放。?由于果蔬采后呼吸作用旺盛,释放出大量的呼吸热。因此，在果蔬采收后贮运期间必须及时散热和降温，以避免贮藏库温度升高，而温度升高又会使呼吸增强，放出更多的热，形成恶性循环，缩短贮藏寿命。为了有效降低库温和运输车船的温度,首先要算出呼吸热,以便配置适当功率的制冷机，控制适当的贮运温度。
生理学-呼吸运动调节实验报告范文 实验且的： 学习呼吸运动的记录方法，观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响。 实验原理： 肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的，而呼吸运动是由于呼吸中枢不断地发放节律性冲动所致。呼吸中枢的紧张性活动，随着机体代谢需要，受许多因素影响。 本实验是向家兔气管插管，使呼出气的一部分经换能器连于记录仪记录呼吸运动，切断迷走神经和施给各种因素，观察呼吸曲线的变化。 实验对象：兔 实验器材和药品：哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、刺激器。20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等。 实验步骤和观察项目 一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯(1g／kg)，待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。沿颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管。分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。 二、记录呼吸运动插入的气管插管的主管接机械—电换能器，输入到生理记录仪，侧管暴露于大气。通过改变侧管的口径，
使主管的输入信号适宜。 三、观察项目 (一)正常呼吸曲线 (二)增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细塑料或玻璃管插入气管插管的侧管，松开球胆的夹子，使部分CO2随吸气进入气管。气体流速不宜过急，以免明显影响呼吸运动。此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响。去掉球胆，观察呼吸恢复正常的过程。 (三)缺氧：将一空球胆吸进少量空气，中间经一钠石灰瓶连至气管插管的侧管，让动物呼吸球胆内的少量空气。观察此时呼吸运动有何变化?去掉上述条件，观察呼吸恢复正常的过程。 (四)增大无效腔：将50 cm长的橡皮管连接于气管插管的侧管上，观察此时呼吸运动的变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸恢复过程。 (五)血液中酸性物质增多时的效应：用5ml注射器，由耳缘静脉较快地注入3％乳酸2 ml，观察此时呼吸运动的变化及恢复过程。 (六)迷走神经在呼吸运动中的作用：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化。再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。在此基础上，观察对一侧迷走神经向中端低频，较弱的电刺激所至的呼吸运动的变化。 注意事项 一、手术过程中，应避免伤及主要血管(如：颈总动脉、颈
《果蔬贮运与加工》练习题 第一章果蔬贮藏基本知识 一、名词解释 1. 必需氨基酸 2. 水溶性色素 3. 芳香物质 4. 酶 5. 耐藏性 6. 呼吸作用 7. 有氧呼吸 8. 无氧呼吸 9. 呼吸强度 10. 呼吸热 11. 温度系数（Q10） 12. 田间热 13. 呼吸跃变现象14.跃变型果实15. 非跃变型果实16.冷害17.冻害 二、填空 1.果蔬中的水分含量大约是70-95%，一般果品含水量为（ 70%-90% ），蔬菜含水量为（ 75%-95% ）。干物质含量为5-30%。含水量的多少是衡量果蔬的（）、（）、（）、（）的重要指标。 2.碳水化合物主要包括：（单糖）、（双糖）、（淀粉）、（维素和半纤维素）和果胶物质等。 3.果蔬中的单糖和双糖主要是：（.葡萄糖）、（果糖）和（蔗糖）。 4.果胶物质以原果胶、（果胶、）、（果胶酸）等三种主要形式存在于果品的（果皮）、（果肉）、果心、种子中；蔬菜的根、（）、（）中。 5.果品中的有机酸主要有（苹果酸）、（酒石酸）和（柠檬酸）；蔬菜中（草酸）含量较多。 6.必需氨基酸（aa）包括（赖氨酸）、（苏氨酸）、（亮氨酸）、（异亮氨酸）、（苯丙氨酸）、（缬氨酸）、（色氨酸）、（甲硫氨酸）。 7.水溶性色素主要包括：（花青色素）、（花黄色素）；脂溶性色素主要包括：（叶绿素）、（类胡萝卜素）。 8.水溶性维生素主要有：（.维生素C ）（.维生素B ）（.维生素H ）（ .维生素P ）等；脂溶性维生素主要有：（.维生素A ）、（.维生素D ）、（. .维生素E ）、（.维生素K ）。 9.影响果蔬贮藏性状的采前因素主要包括（.遗传因素、。）、（环境因素）、（和农业技术因素）等。 10.遗传因素主要包括：（种类和品种、）、（果蔬器官的组织结构和理化特性）；环境因素主要包括：（温度、、）、（光照、）、（降水量和空气湿度）、（地理因素）；农
实验报告 专业班级：康复2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年10月27日星期五 （一）实验项目：呼吸系统综合实验 （二）实验目的： 1、记录正常呼吸运动曲线； 2、CO2对呼吸运动的影响； 3、缺氧对呼吸运动的影响； 4、增大无效腔对呼吸运动的影响； 5、体液的PH值对呼吸运动的影响； 6、剪断迷走神经对呼吸运动的影响； （三）基本原理：（要求对写出关键点） 正常节律性呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。在不同生理状态下呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射调节，其中较为重要的呼吸中枢的直接调节和肺的牵张反射、化学感受器反射调节。1、在正常麻醉状态下、实验动物保持平稳的呼吸节律，其中上升之为吸气，下降支为呼吸；曲线疏密反映呼吸频率，曲线高度反映呼吸幅度。动物节律性呼吸的基本中枢位于延髓，在肺牵张反射和呼吸调整中枢的共同作用下，保持平稳的节律性呼吸。 2、CO2对呼吸运动的调节：①.CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它对呼吸有很强的刺激 作用，是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多。②CO2十H2O→??H2CO3??→??HCO3-＋?H+??CO2通过它产生的?H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸肌的作用使呼吸运动加强。PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。 3、缺氧对呼吸运动的影响：吸入气中缺O2，肺泡气PO2下降，导致动脉血中PO2下降，而PCO2 （扩散速度快）基本不变。随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周
实验一果蔬呼吸强度测定 一、目的及原理 呼吸作用是果蔬采收后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。测定呼吸强度可衡量呼吸作用的强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要的数据。因此，在研究或处理果蔬贮藏问题时，测定呼吸强度是经常采用的手段。 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度。其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。 反应如下： 2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2O Na2CO3 + BaCl2→BaCO3↓+ 2NaCl 2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O 测定可分为气流法和静置法两种。气流法设备较复杂，结果准确。静置法简便，但准确性较差。 二、药品与器材 苹果、梨、柑橘、番茄、黄瓜、青菜等。 钠石灰、20%氢氧化钠、0.4mol/l氢氧化钠、0.1mol/l草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂、正丁醇、凡士林。 真空干燥器、大气采样器、吸收管、滴定管架、铁夹、25ml滴定管、15ml三角瓶、500ml烧杯、φ8cm培养皿、小漏斗、10ml移液量管、洗耳球、100ml容量瓶、万用试纸、天平。 三、操作与步骤 气流法： 气流法的特点是果蔬处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态，因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。测定时使不含CO2的气流通过果蔬呼吸室，将果蔬呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液所吸收，经一定时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定，由碱量差值计算出CO2量。 1.按图（暂不连接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气，开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20%NaOH溶液的净化瓶中有连续不断的气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。
呼吸运动的调节 一、实验目的 1.学习呼吸运动的记录方法 2.观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响 3.了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用 二、实验对象 家兔 三、实验器材和药品 哺乳动物手术器械，兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器或压力换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，2%乳酸溶液，N2气囊，CO2气囊等 四、实验方法 1.由兔耳缘静脉缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg体重），待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。 2.剪去颈前部兔毛，颈前正中切开皮肤5~7cm，分离气管并做气管插管。分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术野。 3.实验装置 （1）将呼吸换能器（或压力换能器）与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器或压力换能器。 （2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统。点击“实验模块”，选择“呼吸运动的调节”实验项目。 4.观察 （1）正常呼吸运动记录一段正常呼吸运动曲线作为对照，观察吸气相、呼气相、呼吸幅度和频率。 （2）CO2对呼吸运动的影响将CO2气囊管口与气管插管的通气管用小烧杯罩住，打开气囊呼吸运动的变化。移开气囊和烧杯，待呼吸恢复正常后再进行下一步实验。 （3）缺氧对呼吸运动的影响方法同上，将N2气囊打开，使吸入气中含较多的N2，造成缺氧，观察呼吸运动的变化。移开气囊和烧杯，观察呼吸运动的恢复过
程。 （4）增大无效腔对呼吸运动的影响将40cm长的橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动恢复过程。 （5）迷走神经在呼吸运动调节中的作用先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。 五、实验结果 （1）CO2对呼吸运动的影响 通CO2后，呼吸表现为加深加快 （2）缺氧对呼吸运动的影响 轻度缺氧时，呼吸表现为加深加快
果蔬呼吸强度测定（气流法） 一、目的及原理 呼吸作用是果蔬采收后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。测定呼吸强度可衡量呼吸作用的强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要的数据。因此，在研究或处理果蔬贮藏问题时，测定呼吸强度是经常采用的手段。 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度。其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。 反应如下： 2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2O Na2CO3 + BaCl2→BaCO3↓ + 2NaCl 2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O 测定可分为气流法和静置法两种。气流法设备较复杂，结果准确。静置法简便，但准确性较差。 二、药品与器材 苹果、梨、柑橘、番茄、黄瓜、青菜等。 钠石灰、20%氢氧化钠、0.4N氢氧化钠、0.2N草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂、正丁醇、凡士林。 真空干燥器、大气采样器、吸收管、滴定管架、铁夹、25ml滴定管、15ml三角瓶、500ml烧杯、φ8cm 培养皿、小漏斗、10ml移液量管、洗耳球、100ml容量瓶、万用试纸、台平。 三、操作与步骤 气流法： 气流法的特点是果蔬处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态，因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。测定时使不含CO2的气流通过果蔬呼吸室，将果蔬呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液所吸收，经一定时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定，由碱量差值计算出CO2量。 1.按图（暂不连接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气，开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20%NaOH溶液的净化瓶中有连续不断的气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。 2.用台平称取果蔬材料1公斤，放入呼吸室，先将呼吸室与安全瓶连接，拨动开关，将空气流量调节在0.4升/分；将定时钟旋钮反时钟方向转到30分钟处，先使呼吸室抽空平衡半小时，然后连接吸收管
实验二：果蔬呼吸强度测定（静置法）一、目的及原理 呼吸作用是果蔬采收后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。测定呼吸强度可衡量呼吸作用的强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要的数据。因此，在研究或处理果蔬贮藏问题时，测定呼吸强度是经常采用的手段。 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度。其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。 反应如下： 2NaOH + CO2→N a2CO3 + H2O Na2CO3 + BaCl2→BaCO3↓ + 2NaCl 2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O 测定可分为气流法和静置法两种。气流法设备较复杂，结果准确。静置法简便，但准确性较差。由于实验条件限制，本实验采用静置法。 二、材料及用具 苹果、梨、柑橘、番茄、黄瓜、青菜等。 0.4N氢氧化钠、0.3N草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂、凡士林。 干燥器、滴定管架、铁夹、25ml滴定管、150ml三角瓶、500ml烧杯、φ8cm培养皿、小漏斗、10ml移液量管、洗耳球、100ml容量瓶、万用试纸、台平。 三、操作步骤 用移液管吸取0.4N的NaOH20ml放入培养皿中，将培养皿放进呼吸室，放置隔板，放入1斤左右果蔬，封盖，测定1小时左右（要记录测量具体时间，放置到快要下课为止）取出培养皿把碱液移入锥心瓶中（冲洗3—5次），加饱和BaCl25ml和酚酞指示剂2滴，用0.3N草酸滴定，用同样方法作空白滴定。
四、结果与计算 1. 计算公式： (V1-V2)X N X 44 呼吸强度（CO2mg/kg.h）= ―――――――――― W·h N = H2C2O4摩尔浓度 W = 样品重量（Kg） h = 测定时间（小时）。 44 = CO2摩尔质量 2．填写下表
实验一呼吸强度的测定（气流法） 一、目的与原理 呼吸作用是农产品收获后进行的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。测定呼吸强度可衡量呼吸作用强弱，了解农产品收获后生理状态，为低温和气调贮运以及呼吸热计算提供必要数据。因此，在研究或处理农产品贮藏问题时，呼吸强度是经常测定的指标。 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收农产品在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出来的CO2量，求出其呼吸强度。单位通常用每公斤每小时释放CO2毫克数（CO2mg/kg·h）表示。 反应如下： 2NaOH+CO2 Na2CO3+H2O Na2CO3+BaCl2 BaCO3 +2NaCl 2NaOH+H2C2O4 Na2C2O4+2H2O 测定分为气流法和静置法两种。气流法虽然设备较复杂，但结果准确，在科研和生产中比较常用。气流法的测定装置如图1。 二、材料与用具 苹果，梨，柑桔，番茄，马铃薯，青菜。 钠石灰，20%氢氧化钠，0.4mol/L氢氧化钠，0.1mol/L草酸，饱和氯化钡溶液，酚酞指标剂，正丁醇，凡士林。 真空干燥中，大气采样器，吸收管，滴定管架，铁夹，25ml滴定管，150ml三角瓶，500ml烧杯，10ml 移液管，洗耳球，100ml容量瓶，万用试纸，台秤。 三、操作方法 气流法的特点是产品处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态。因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。测定时使不含CO2的气流通过呼吸室，将产品呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液吸收。经一时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定剩余的碱液，由碱量差值计算出CO2量。 1、按图6（暂不串接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气。开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20%NaOH 溶液的净化瓶中不断有气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。 2、用台秤称取材料1kg，放入呼吸室，先将呼吸室与安全瓶连接，拨动开关，将空气流量调至400ml/分左右，将定时钟旋钮按反时钟方向转到30min处，先使呼吸室抽空平衡半小时，然后连接吸收管开始正式测定。 3、空白滴定用移液管吸收0.4mol/L的NaOH10ml，放入1支吸收管中，加一滴正丁醇，稍加摇后再将其中
呼吸运动调节实验报告 课程：机能学实验临床医学系2017 级01 班组员： 【实验目的】 掌握理论： 1.缺O2、CO2增多、增大无效腔、不完全窒息、切断迷走神经、刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响。 2.肺牵反射的生理意义。 掌握操作： 1.家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、气管插管、分离神经等）。 2.呼吸运动生物信号采集与处理系统的使用。 【实验原理】 呼吸，是指机体与外界环境之间的气体交换过程，机体摄取02，排出代过程中产生的CO2。呼吸运动，是指呼吸肌收缩和舒引起胸廓的节律性扩和缩小，是在中枢神经系统的调节下，呼吸中枢节律活动的反应。 呼吸运动是保证血液中气体分压稳定的重要机制。机体外环境改变的刺激可以直接或通过感受器反射性地作用于呼吸中枢，影响呼吸运动的深度和频率，以适应机体代的需要。机体通过呼吸运动调节血液中的O2，CO2和H+水平，血液中的PaO2，PaCO2和[H+]的变化又可以通过中枢化学感受器/外周化学感受器反射性调节呼吸运动，从而维持环境中PaO2，PaCO2和[H+]的相对稳定。 肺牵反射是保证呼吸运动节律的机制之一。肺牵反射是其感应器主要分布于支气管和细支气管平滑肌。吸气时，肺扩，当肺气量达一定容积时，肺牵感受器兴奋，发放冲动沿迷走神经传入至延髓，抑制吸气中枢活动，停止吸气而呼气。呼气时，肺缩小，感受器刺激减弱，使传入冲动减少，吸气中枢再次兴奋，使呼气停止，再次产生吸气，开始一个新的呼吸周期。 在正常麻醉状态下、实验动物保持平稳的呼吸节律，其中上升之为吸气，下降支为呼吸；曲线疏密反映呼吸频率，曲线高度反映呼吸幅度。动物节律性呼吸的基本中枢位于延髓，在肺牵反射和呼吸调整中枢的共同作用下，保持平稳的节律性呼吸。 【实验动物】 家兔 【实验步骤】 1.动物称重，麻醉，固定 2.颈部手术，气管插管，分离两侧迷走神经(穿线备用) 3.减去胸部的皮毛，在胸廓呼吸肌上连接力换能器，记录家兔呼吸的节律和幅度 4.给予各种刺激，观察呼吸的变化： a)吸入N2 b)吸入CO2 c)50cm胶管（增大无效腔） d)将气管插管上端侧管半夹闭，造成动物不完全窒息5-10min 解除夹闭，待动物呼吸正常后进行后续实验 e)剪断一侧迷走神经 f)剪断双侧迷走神经
实验三十一果蔬呼吸强度测定 1.目的及原理 呼吸作用是果蔬采收后的重要生理活动，是影响贮运效果的重要因素。测定呼吸强度可衡量呼吸作用强弱，了解果蔬采后生理状态，为低温和气调贮运及呼吸热计算提供必要数据。 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出呼吸强度，其单位为每公斤每小时释放出CO2毫克数。反应如下： 2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2O Na2CO3 + BaCl2→BaCO2↓+ 2NaCl 2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O 测定可分为气流法和静置法两种。气流法设备较复杂，结果准确。静置法简便，但准确性较差。本实验学习和掌握测定方法。 2 材料试剂及仪器 苹果，梨，柑桔，蕃茄，黄瓜，青菜等。 钠石灰，20%氢氧化钠，0.4 mol/L氢氧化钠，0.1 mol/L草酸，饱和氯化钡溶液，酚酞指示剂，正丁醇，凡士林。 真空干燥器，大气采样器，吸收管，滴定管架，铁夹，25ml滴定管，15ml三角瓶，500ml烧杯，φ8cm培养皿，小漏斗，10ml移液管，洗耳球，100ml容量瓶，万用试纸，台称。 3.操作方法 3.1 气流法 气流法的特点是果蔬处在气流畅通的环境中进行呼吸，比较接近自然状态，因此，可以在恒定的条件下进行较长时间的多次连续测定。测定时使不含CO2的气流通过果蔬呼吸室，将果蔬呼吸时释放的CO2带入吸收管，被管中定量的碱液所吸收，经一定时间的吸收后，取出碱液，用酸滴定，由碱量差值计算出CO2量。 （1）按图（暂不串接吸收管）连接好大气采样器，同时检查不使有漏气，开动大气采样器中的空气泵，如果在装有20% NaOH溶液的净化瓶中有连续不断的气泡产生，说明整个系统气密性良好，否则应检查各接口是否漏气。
家兔呼吸运动神经的调节 【实验目的】 1.学习测定兔呼吸运动的方法。 2.进一步掌握测定动脉血压的相关技术。 3.学习哺乳类动物的手术操作，掌握气管插管和神经血管分离术 4.探讨血液中PCO2、PO2和[H+]对家兔呼吸运动的影响及机制 5.探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机理 【实验器材】 1.1 动物体重 2.5 kg家兔(rabbit)，雌雄不拘。 1.2 器材BL420E+生物信号处理系统，呼吸换能器（pressure-gradient transducer） 1.3 药品试剂20%乌来糖（urethane)，12%磷酸二氢钠(Sodium dihydrogen phosphate)，5%碳酸氢钠（Sodium bicarbonate)，N2，CO2。 【实验步骤】 1. 家兔称重，按1 g/kg 体重耳缘静脉20%乌来糖麻醉家兔，家兔麻醉后将其仰卧，固定四肢和头。 2. 颈部手术颈正中切口5～7 cm左右皮肤。用血管钳钝性分离出气管穿线备用，用玻璃分针分离出两侧的迷走神经穿线备用、分离出一侧颈总动脉3 cm备用。 3.气管插管用手术剪在甲状软骨下1 cm处剪一“⊥”切口,插入气管插管，结扎固定。 4.将气管插管一端连接呼吸换能器。
5观察记录（observations) 1.记录家兔正常的呼吸频率和通气量 2.记录增加气道长度前后家兔呼吸运动的变化 3.按5ml/kg体重剂量静脉注射12%磷酸二氢钠溶液，注射速度5-6 ml/min，观察家兔呼吸运动的变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 4.. 按bm nnnBE×0.5×体重计算出50 g/L碳酸氢钠剂量，按4 ml/min速度静脉注射，观察呼吸变化。10 min后，颈总动脉采血0.5 ml，作血气分析 5. 记录切断一侧、两侧迷走神经前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 6. 记录用强度5 V、频率20 Hz、波宽2 ms的连续电脉冲刺激一侧迷走神经中枢端前后家兔的呼吸频率和幅度的变化。 【实验结果】 图1.正常呼吸曲线
果蔬采后呼吸类型与贮藏保鲜 果蔬在整个生长发育过程中，其呼吸作用的强弱不是始终不变的，而是高低起伏的。 各种果蔬采后呼吸强度高低起伏的变化趋势称为呼吸漂移。 各种果蔬呼吸漂移的趋势是不同的。 一、有一类果蔬呼吸强度在生长发育过程中逐渐下降，达到一定的成熟度时又显著上升，上升到一个顶峰时又再度下降，直至果实衰老死亡，这种现象称为呼吸跃变。 一般认为这是果实在成熟，即最佳食用状态前发生贮藏物质的强烈水解，不管在植株上还是在采收后，都会表现出相似的呼吸高峰。习惯上把开始成熟时出现呼吸上升的果实称为跃变型果实。 跃变型果实 如：苹果、梨、油梨、香蕉、杏、李子、猕猴桃、柿子、桃、无花果、番石榴、芒果、面包果、番木瓜、菠萝蜜、蓝莓、甜瓜、木瓜、番茄等 二、而将另一类果实呼吸强度在采后一直下降，不会出现呼吸高峰的称之为非跃变型果实。 非跃变型果实 如：甜橙、葡萄、草莓、荔枝、石榴、柠檬、柚、枇杷、凤梨、可可、龙眼、西瓜、杨桃、黑莓、樱桃、枣等 不同种类跃变型果实呼吸高峰出现的时间和峰值不完全相同，一般原产于热带、亚热带的果实，例如油梨和香蕉，跃变顶峰的呼吸强度分别为跃变前的3-5倍和10倍，且跃变时间维持很短，很快完成成熟并衰老。 原产于温带的果实，例如苹果、梨等跃变顶峰的呼吸强度仅比其跃变前的呼吸强度增加1倍左右，但维持跃变时间很多，这类果实比前一类果实更慢成熟，因而更耐贮藏。 有些果实，如苹果，留在树上也可以出现呼吸跃变，但与采摘果实相比，呼吸跃变出现较晚，峰值较高，另外一些果实，如油梨，只有采后才能成熟和出现呼吸跃变，如果留在植株上可以维持不断的生长而不能成熟，当然也不出现呼吸跃 变。 呼吸跃变是果实发育进程中的一个关键时期，对果实贮藏寿命有重要影响。它既是成熟的后期，同时也是衰老的开始，此后产品将不宜继续贮藏。生产中要采取各种手段来推迟跃变型果实的呼吸高峰以延长贮藏期。现在主要有两种方法，一个是化学保鲜方法，就是我们经常见到的防潮剂以及在果品表面喷液态石蜡或者使用一些化学药剂。另一种就是物理保鲜，万果保鲜就采用的这种
呼吸运动得调节 一、实验目得 1、学习呼吸运动得记录方法 2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动得影响 3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中得作用 二、实验对象 家兔 三、实验器材与药品 哺乳动物手术器械，兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器或压力换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，2%乳酸溶液，N2气囊，CO2气囊等 四、实验方法 1、由兔耳缘静脉缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg体重），待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。 2、剪去颈前部兔毛，颈前正中切开皮肤5~7cm，分离气管并做气管插管。分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术野。 3、实验装置 （1）将呼吸换能器（或压力换能器）与生物信号采集处理系统得相应通道相连接，橡皮管连接气管插管与呼吸换能器或压力换能器。 （2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统。点击“实验模块”，选择“呼吸运动得调节”实验项目。 4、观察 （1）正常呼吸运动记录一段正常呼吸运动曲线作为对照，观察吸气相、呼气相、呼吸幅度与频率。 （2）CO2对呼吸运动得影响将CO2气囊管口与气管插管得通气管用小烧杯罩住，打开气囊呼吸运动得变化。移开气囊与烧杯，待呼吸恢复正常后再进行下一步实验。 （3）缺氧对呼吸运动得影响方法同上，将N2气囊打开，使吸入气中含较多得N2，造成缺氧，观察呼吸运动得变化。移开气囊与烧杯，观察呼吸运动得恢复过
程。 （4）增大无效腔对呼吸运动得影响将40cm长得橡皮管连接于气管插管得一个侧管上，观察此时呼吸运动得变化。变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动恢复过程。 （5）迷走神经在呼吸运动调节中得作用先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。 五、实验结果 （1）CO2对呼吸运动得影响 通CO2后，呼吸表现为加深加快 （2）缺氧对呼吸运动得影响 轻度缺氧时，呼吸表现为加深加快
实验六果蔬呼吸强度测定（静置法）班级姓名学号 一、实验原理 呼吸强度的测定通常是采用定量碱液吸收果蔬在一定时间内呼吸所释放出来的CO2，再用草酸滴定剩余的碱，即可计算出呼吸所释放出的CO2量，求出其呼吸强度，其单位为mg co2 / kg·h。 反应如下：2NaOH + CO2→Na2CO3 + H2O Na2CO3 + BaCl2→BaCO3↓ + 2NaCl 2NaOH + H2C2O4→Na2C2O4 + 2H2O 二、材料及用具 1、实验材料：水果 2、试剂：0.4M氢氧化钠、0.3M草酸、饱和氯化钡溶液、酚酞指示剂。
3、仪器：玻璃干燥器、滴定管架、铁夹、滴定管、三角瓶、烧杯、培养皿、10mL移液管、洗耳球。 三、实验步骤 1、将装有0.4M NaOH的培养皿置于玻璃干燥 器底部，放置隔板，放入水果，封盖，静置1 小时左右（每kg水果需40mLNaOH）。 2、取出培养皿把NaOH溶液移入试剂瓶中（冲洗3~5次），每组吸取10mL至锥形瓶中，加饱和和酚酞指示剂1滴，用0.3M草酸滴定，记录消耗的草酸体积。每组2瓶。 3、另吸取0.4M NaOH溶液10mL至锥形瓶中，加饱和和酚酞指示剂1滴，做空白滴定，记录消耗的草酸体积。每组1瓶。 四、结果与计算 1、将消耗的草酸体积（mL）填入下表 测定管均试管空白测定1测定2 值
2、计算公式： 呼吸强 度（mg co2/kg·h） = () h M C V V ? ? ? -44 0 V0 ——空白滴定消耗草酸体积 V——测定管消耗草酸体积均值 C ——草酸溶液摩尔浓度 M——样品质量（Kg） h ——测定时间（小时）。 44 —— CO2摩尔质量
土壤呼吸强度的测定 土壤空气的变化过程主要是氧的消耗和二氧化碳的累积。土壤空气中二氧化碳浓度大，对作物根系是不利的，若排出二氧化碳，不仅可消除其不利影响，而且可促进作物光合作用。因此，反映土壤排出二氧化碳能力的土壤呼吸强度是—个重要的土壤性质。 土壤中的生物活动，包括根系呼吸及微生物活动，是产生二氧化碳的主要来源，因此测定土壤呼吸强度还可反映土壤中生物活性，作为土壤肥力的一项指标。 (一)测定原理 用Na0H吸收土壤呼吸放出的CO2，生成Na2CO3： 2Na0H+C02——→Na2CO3+H20 (1) 先以酚酞作指示剂，用HCl滴定，中和剩余的Na0H，并使(1)式生成的Na2CO3转变为NaHCO3： Na0H + HCl——→NaCl+H20 (2) Na2CO3+ HCl——→NaHCO3十NaCl (3) 再以甲基橙作指示剂，用HCl滴定，这时所有的NaHC03均变为NaCl： NaHCO3+ HCl——→ NaCl+H20+CO2 (4) 从(3)、(4)式可见，用甲基橙作指示剂时所消耗HCl量的2倍，即为中和Na2CO3的用量，从而可计算出吸收CO2的数量。 (二)测定方法 方法(一) 1、称取相当于干土重20克的新鲜土样，置于150毫升烧杯或铝盒中(也可用容重圈采取原状土)； 2、准确吸取2molL-1NaOH l0毫升于另一150毫升烧杯中； 3、将两只烧杯同时放入无干燥剂的干燥器中，加盖密闭，放置1—2天； 4、取出盛Na0H的烧杯，洗入250毫升容量瓶中，稀释至刻度； 5、吸取稀释液25毫升，加酚酞1滴，用标准0.05molL-1HCl滴定至无色，再加甲基橙1滴，继续用0.05 molL-1 HCl滴定至溶液由橙黄色变为桔红色，记录后者所用HCl的毫升数(或用溴酚兰代替甲基橙，滴定颜色由兰变黄)； 6、再在另一干燥器中，只放NaOH，不放土壤，用同法测定，作为空白。 7、计算：
植物呼吸强度的测定（小篮子法） 一、实验目的：掌握小篮子法测定呼吸强度的方法及其原理。 二、实验原理： 测定呼吸作用，一般测定呼吸过程消耗的O2量，或放出的CO2量。本实验用小篮子法测定呼吸过程中释放的CO2。植物进行呼吸时放出CO2，计算一定的植物样品在单位时间内放出CO2的数量，即为该样品的呼吸速率。 利用Ba(OH)2溶液吸收呼吸过程中释放的CO2，试验结束后，用草酸溶液滴定残留的Ba(OH)2，从空白和样品两者消耗草酸溶液之差，即可计算出呼吸过程中释放的CO2量。 三、仪器药品 广口瓶 酸式滴定管 尼龙网制小篮 0.05mol/L Ba(OH)2 指示剂：0.1%麝香草酚酞酒精溶液 1/44mol/L 草酸溶液 四、操作步骤 取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。 称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入 0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。每十分钟 左右,轻轻摇动广口瓶,破坏溶液表面BaCO3薄膜,以利对CO2的吸收。 1小时后,小心打开瓶塞,迅速取出小篮,加入2滴指示剂,立即重新塞紧瓶塞。然后拔出小橡皮塞,将滴定管插入小孔中,用1/44mol/L草酸滴定,直到紫红色转变成无色为止。记录滴定所耗用草酸溶液的ml数。 另取用沸水煮死的种子为材料,做同样测定,以此作为对照。 取500ml广口瓶一个, 瓶塞下面挂一网状小篮,用以盛实验材料。 称取萌发的小麦种子15g装于小篮内,将小篮挂在广口瓶内,同时加入 0.05mol/LBa(OH)2溶液15ml于广口瓶内,立即塞紧瓶塞,防止漏气。每十分钟