根据DIC的发病机制和临床特点，典型的DIC病程可分为以下三期。
1、高凝期：此期系发病之初，机体的凝血活性增高，各脏器微循环可有严重程度不同的微血栓形成。部分患者可无明显临床症状，尤其在急性DIC该期极短，不易发现。该期实验室检查的特点为凝血时间和复钙时间缩短，血小板的粘附性增高。
2、消耗性低凝期：该期患者已有严重程度不等的出血症状，也可能有休克或某脏器功能障碍的临床表现。机体的凝血功能障碍主要由于大量凝血因子的消耗和血小板减少引起，也可与继发性纤溶功能增强有关。实验室检查可见血小板明显减少，血浆Fbg含量明显减少，凝血和复钙时间明显延长。部分病人有纤溶功能指标的异常。
3、继发性纤溶功能亢进期：该期大多有严重程度不同的临床出血症状，严重病人有休克及MSOF的临床症状。该期除仍有前一期实验室指标变化的特征外，继发性纤溶功能亢进相关指标的变化十分明显，主要表现为以下方面：
(1)凝血块或优球蛋白溶解时间缩短：血浆中部分t-PA、u-PA和PLg可被吸附在Fbg上。因DIC患者血浆中PA活性增高，取全血制成的凝血块(含Fbn)或优球蛋白(含Fbg)内可形成较多PLn而使纤溶活性增强，自发性溶解所需时间可比正常者明显减少；分别称为凝血块溶解时间缩短与优球蛋白溶解时间(euglobulin lysis time，ELT)缩短。
(2)凝血酶时间延长：DIC患者在继发性纤溶亢进期其血浆中存在大量具抗凝作用的FgDP／FDP成分。所以，以正常血浆为对照，用一定量凝血酶使患者血浆凝固所需的时间明显延长，称为凝血酶时间(thrombin time，TT)延长。
(3)3P试验阳性：凝血酶使Fbg先形成FM，FM相互自动交联并在FⅧa作用下才形成不溶性纤维蛋白。继发性纤溶亢进期DIC患者血浆中存在大量FgDP成分如X、Y、D、E等片段，其中X片段能与FM形成SFMC，从而阻断FM间的交联。换言之，患者血浆内有较多X-FM构成的SFMC，这种血浆在体外试验时当加入硫酸鱼精蛋白后可以使X-FM解离，游
离出的FM可交联形成大分子蛋白质聚合物，实验中可见血浆自动凝固，这一试验叫做血浆鱼精蛋白副凝固试验(plasma protamine paracoagulation test)，也称为3P试验。根据血浆絮状沉淀多少，可记做3P试验“+—++++”，表明X-FM的多少和继发性纤溶的亢进程度。但是，当纤溶活性过强而血浆中FsDP的大分子成分如X片段被完全分解为小分子片段时，X-PM 就明显减少，3P试验反可转阴。
(4)血浆中出现Fbn的特异降解产物：继发性纤溶是指在凝血活化(形成Fbn)的同时或相继发生的纤溶系统激活。因此，所形成的纤溶酶(PLn)不但水解Fbg，而且水解Fbn(如DIC 时微血栓的溶解)。由PLn水解Fbn产生的FDP组分是以多聚体形式存在的，如D-二聚体，其抗原性与PLn水解Fbg所形成的单体FgDP成分中的D片段有所不同。可以用特定的免疫学方法测定DIC患者血浆中存在的D-二聚体或它的含量，从而特异地证明病人存在继发性纤溶，或定量地估计继发性纤溶的亢进程度。此外，Fbn的特异降解产物还包括纤维蛋白水解片段Bβl5-42。
数字图像相关法（DIC）是一种非接触式的高精度位移、用于全场形状、变形、运动测量的方法，也是现代光测量力学领域内最有应用前景的测量方法。其应用研究方向，正朝着从常规材料到新型材料的测量，从弹性问题测量到强塑性问题的测量，从常温到高温的测量，从宏观测量到微观测量的趋势发展。DIC 方法在上世纪80年代初被提出，经过30多年众多学者的研究，技术上已经非常成熟。这种方法又被称为数字散斑相关法，它直接处理的对象是具有一定灰度分布的数字图像（散斑图），通过对比材料或者结构表面在变形前后的散斑图运用相关算法得到. 运用数字图像关联法开发的应变解析软件系统。通过比较分析样本变形前后的图像，可以对变形和弯曲的量、方向、分布等进行解析。通过使用本系统，能够以非接触的方式获取物体变形弯曲的数据并将其分布可视化。对于高速测量、微米单位测量等特殊环境下的测量需要，我们可以在包括软件、相机、照明、专用光学仪器等各个方面提供综合性的解决方案。 产品特点： ●能够测量坐标，位移，速度，应变，形状和变形 ●能够显示矢量图，轮廓图 ●支持的图像格式：FIFF等 ●易于使用的直观界面
●进程树结构 ●丰富的后处理功能 ●支持各种高速相机和高分辨率相机 ●系统支持日/英双语 ●对应各种情况（离线/在线分析，3D分析等） 应用： 1.张力、压缩、扭转测试 2.破坏、冲击、掉落测试 3.热膨胀、热变形 4.显微镜下的微测试 图例如下：
武汉中创联达科技有限公司，专业从事光电子影像产品（低照度相机、高速摄像机，超高速摄像机，高分辨率相机及其图像分析软件）的销售、研发，提供特殊环境下的拍摄、成像服务。在以下应用领域提供产品：1、高速摄影（弹道学、碰撞实验、高速粒子运动实验PIV 、材料学、气囊膨胀实验、燃烧实验、电弧运动、离子束运动、流体力学、喷射实验、爆炸分析以及其他超高速运动领域）2、高分辨率成像（弹道学、粒子运动实验PIV 、工业质量检测、喷射实验、电泳现象、火焰分析）3、显微成像（微生物光学成像、分子细胞成像）4、低照度成像（燃烧实验、弹道学、碰撞实验、爆炸分析、天文学领域、微光成像、工业检测监视）5、光谱成像（红外感应范围应用、光源波谱分析）6、高速运动分析软件及PIV系统分析软件。
实验2 急性DIC 实验时间：5月23日 【实验目的】 1、学习复制急性DIC 动物模型的方法。 2、了解实验室诊断DIC 的常用方法及其意义。 3、结合实验和血液学指标测定结果，联系理论知识加深理解DIC 的病因及发生机制。 【实验对象】 家兔1只，雌（未孕）雄均可。体重 1.5～2.0 kg 。 【药品和试剂】 1%普鲁卡因、3.8%枸椽酸钠液、2%兔脑粉浸出液（临用时配制）、饱和氯化钠液、生理盐水、1%鱼精蛋白液。 【实验器材】 兔台、哺乳动物手术器械一套（包括手术刀、普通剪刀、眼科剪刀、止血钳）、电热恒温水浴箱、台式离心机、721分光光度计、秒表、刻度离心管（10ml ）、试管（13×75mm 、15×100mm ）、刻度吸管（2ml 、5ml ）、试管架、微量定量移液器（10μl 、50μl 、500μl ）、橡皮吸球、乳胶滴管、玻片、棉球、纱布、颈动脉插管（硅胶管）2根、动脉夹，注射器。 【实验方法】 1、将家兔仰位固定兔台、颈部剪毛、皮下1%普鲁卡因局部浸润麻醉，作正中纵切口（约3~4cm 左右），常规暴露一侧颈总动脉，结扎其远心端，近心端用动脉夹夹闭；在结扎线下方剪口插入硅胶管并固定，松夹放血7ml 至盛有3.8%枸椽酸钠液2ml 的10ml 刻度离心管中，立即混匀离心（3000rpm ，5分钟），分离血浆，备作纤维蛋白原定量与3P 试验。再松动动脉夹放血2~3滴于洁净玻片上，作凝血时间测定。 2、复制DIC 模型：用10ml 注射器吸取2%兔脑粉浸液，按3ml/kg 的量缓慢（以每分钟2ml 的速度为宜）注入家兔耳缘静脉内，同时观察其反应，如出现呼吸急促、躁动不安，即停止注射，速行第二次采血（方法同1），如未出现反应可注射毕后采血。重复上述各项指标测定。 4、整理并分析实验结果。 【附 录】 1、凝血时间测定（玻片法）：放血2~3滴于洁净玻片上，同时按动秒表，用清洁废针头挑拨血滴，见有明显血丝出现，迅即停表，记录时间。 2、纤维蛋白原含量测定（饱和盐水法）：取15×100mm 试管一支，置0.5ml 样本血浆，加入饱和氯化钠溶液4.5ml ，立即混匀，于37℃水浴中孵育3分钟取出，再混匀后以721分光光度计，520nm 滤光板比浊，读取光密度值；以生理盐水替代饱和氯化钠液作同样操作后为空白对照管调零，测出光密度，按下式计算； )/(10005 .0dl mg 纤维蛋白原测定管光密度值=? 3、3P 试验：取13×75mm 试管一支，置0.5ml 血浆，加入1%鱼精蛋白液0.05ml ，轻轻摇匀，于37℃水浴中15分钟后取出，于黑色背景下观察，如见絮状沉淀或胶冻状即为阳性，清澈则为阴性。
家兔呼吸运动得调节 一、实验目得 1.观察血液中化学因素(PCＯ2、PＯ2、[H+])改变对家兔呼吸频率、节律、通气量得影响及机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中得作用及机制。 2.学习气管插管术与神经血管分离术。 二、实验原理 呼吸运动指在中枢神经系统控制下,通过呼吸肌节律性得运动造成胸廓节律性地扩大或缩小。呼吸运动除了受中枢神经系统控制外，一些理化因素(包括代谢产物、药物以及肺得扩大与缩小等）可通过如化学感受性呼吸反射、肺牵张反射直接或间接作用于中枢神经系统来调节呼吸运动,表现为呼吸运动及隔肌放电得频率与幅度等改变。 化学因素(包括代谢产物、药物等）可直接作用于中枢或通过化学感受器作用于中枢后,再经传出神经纤维,如膈神经、肋间神经将控制信号传至呼吸肌,引起呼吸运动发生改变。肺牵张反射指肺扩张时引起吸气抑制得反射,其传入神经就是迷走神经。 三、实验结果 1、通入CＯ２
吸入CＯ2后呼吸明显加深，频率明显加快。 2、通入N2 吸入N2后呼吸加深,频率加快,但其幅度较CO2小。
3、增大无效腔 增大无效腔后呼吸显著加深,频率显著加快。 4、剪断一侧迷走神经
剪断一侧迷走神经后,呼吸深度与频率均变化不明显。５、剪断双侧迷走神经
剪断双侧迷走神经后,呼吸深度基本不变,呼吸频率大幅度减慢。 四、讨论 1.通入ＣO2 CO2就是调节呼吸运动最主要得体液因素。当外周血液中CO2浓度适度增多时,呼吸表现为加深加快。CO2就是脂溶性小分子,能迅速透过血脑屏障进入脑脊液,与其中得水结合成碳酸,碳酸迅速解离出氢离子,从而以氢离子得形式刺激中枢化学感受器（分布在延髓腹外侧浅表区),兴奋呼吸。其次,一小部分ＣＯ2也能直接刺激外周化学感受器，兴奋呼吸。 2.通入N２ 通入Ｎ2后,因吸入气体中缺乏O2,动脉血中PO２下降,反射性使呼吸运动加深加快,肺通气量增加。并且轻度缺氧时,对外周化学感受器得兴奋作用强于对呼吸中枢得直接抑制作用,故表现为呼吸兴奋。 3.增大无效腔 肺泡通气量=（潮气量-无效腔气量)*呼吸频率。增大无效腔时，肺泡通气量减少,故气体交换效率降低,导致血液缺氧与ＣO2增多,从而兴奋呼吸。 4.剪断一侧迷走神经
家兔dic实验报告 篇一：功能学实验家兔弥散性血管内凝血 功能学实验家兔实验性弥散性血管内凝血实验报告 一．实验目的 应用静脉注射兔脑浸液方法，复制家兔实验性DIC。通过实验和几项血液学指标的测定及结果分析，了解实验室诊断DIC 的常用方法。并且联系理论知识加深理解DIC 的病因及发病机理。 二．实验动物 未知性别家兔（实验室提供）一只。 三．实验过程 1.家兔于仰卧位固定，颈部剪毛，在颈部皮下注射局麻药1%普鲁卡因约5ml，行局部麻醉。 2. 用剪刀颈部切开皮肤，钝性分离皮下组织，暴露气管后往外侧拉开切口边缘的皮肤及下方的肌肉组织，找到颈
动脉并用玻璃分针分离，行颈动脉插管。 3. 第一次采集血标本：预先向10ml 离心管中注入％枸橼酸钠溶液。再打开血管夹，从颈动脉插管放血，立即反复颠倒混匀（切忌振荡混匀），待离心。向动脉插管中回推生理盐水，夹好血管夹。 4. 复制DIC 模型：抽取2％兔脑浸出液10ml于注射器中，经耳缘静脉缓慢推注，注入速度为每分钟2ml以下。同时密切观察家兔反应，如出现呼吸急促，烦动不安，当即停止注射，迅速进行第二次采血。若注射完后家兔未挣扎，则在注射后计时2min，2min后进行第二次采血。采血方式与第一次采血相同。 5. 将前后两次所得的抗凝血，经3000rpm离心5min，将上层血浆清液分别吸至两支清洁试管中，切忌吸入细胞成分，并作好标记备用。其中一支试管吸入血浆，另一只试管尽量吸取剩下的血浆。 6. 血浆鱼精蛋白副凝固试验（3P实验）：向吸取血浆的两支试管中加入1%
鱼精蛋白溶液50μl，轻轻摇匀后，在37℃水浴15min。取出试管，在灯光下对黑色背景一边晃动试管一边观察，溶液清澈者为阴性，出现絮状沉淀或胶冻状物为阳性。 7. KPTT, PT, TT, FIB实验：剩余两支试管使用凝血仪测定KPTT, PT, TT和FIB，并记录数据。 四．实验药物及器材 实验药物：2％兔脑浸出液（临用前配，并在37℃保存），1％普鲁卡因溶液，％枸橼酸钠溶液。生理盐水，1％鱼精蛋白溶液。 实验器材：兔手术台，手术器械，37℃电热恒温水浴箱，离心机，刻度离心管（2 支），试管（5支），移液器（100μl，1000μl），纱布。 五．实验结果 1、实验现象记录 家兔皮下注射局麻药后，在皮下形成鼓包，经按摩揉动数分钟后，鼓包仍存在，局麻药未完全吸收。经家兔耳缘
竭诚为您提供优质文档/双击可除 家兔dic实验报告 篇一：功能学实验家兔弥散性血管内凝血(DIc) 功能学实验家兔实验性弥散性血管内凝血实验报告 一．实验目的 应用静脉注射兔脑浸液方法，复制家兔实验性DIc。通过实验和几项血液学指标的测定及结果分析，了解实验室诊断DIc的常用方法。并且联系理论知识加深理解DIc的病因及发病机理。 二．实验动物 未知性别家兔（实验室提供）一只。 三．实验过程 1.家兔于仰卧位固定，颈部剪毛，在颈部皮下注射局麻药1%普鲁卡因约5ml，行局部麻醉。 2.用剪刀颈部切开皮肤，钝性分离皮下组织，暴露气管后往外侧拉开切口边缘的皮肤及下方的肌肉组织，找到颈动脉并用玻璃分针分离，行颈动脉插管。 3.第一次采集血标本：预先向10ml离心管中注入
0.5ml3.8％枸橼酸钠溶液。再打开血管夹，从颈动脉插管放血4.5ml，立即反复颠倒混匀（切忌振荡混匀），待离心。向动脉插管中回推生理盐水，夹好血管夹。 4.复制DIc模型：抽取2％兔脑浸出液10ml于注射器中，经耳缘静脉缓慢推注，注入速度为每分钟2ml以下。同时密切观察家兔反应，如出现呼吸急促，烦动不安，当即停止注射，迅速进行第二次采血。若注射完后家兔未挣扎，则在注射后计时2min，2min后进行第二次采血。采血方式与第一 次采血相同。 5.将前后两次所得的抗凝血，经3000rpm离心5min，将上层血浆清液分别吸至两支清洁试管中，切忌吸入细胞成分，并作好标记备用。其中一支试管吸入0.5ml血浆，另一只试管尽量吸取剩下的血浆。 6.血浆鱼精蛋白副凝固试验（3p实验）：向吸取0.5ml 血浆的两支试管中加入1%鱼精蛋白溶液50μl，轻轻摇匀后，在37℃水浴15min。取出试管，在灯光下对黑色背景一边晃动试管一边观察，溶液清澈者为阴性，出现絮状沉淀或胶冻状物为阳性。 7.KpTT,pT,TT,FIb实验：剩余两支试管使用凝血仪测定KpTT,pT,TT和FIb，并记录数据。 四．实验药物及器材 实验药物：2％兔脑浸出液（临用前配，并在37℃保存），
生理兔子实验报告 主题：血压测量、呼吸运动调节 实验班级：151541 实验小组：第三组 实验日期：2016年5月31日 具体分工：主刀：李睿哲 副手：朱梦洁、周紫星 麻醉：陈海芹、谢明思 器械管理：李部 实验数据记录整理：毕长鹏 一、实验目的： 通过对兔子的观察、研究和分析，更好地了解兔子与人类一些相似的生命活动过程，更好地认识生物机体活动规律。 二、实验原理： 正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显着影响各组织、器官的正常活动。动脉血压是心血管功能活动的综合指标。通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化情况，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。 呼吸运动能够有节律地进行，并与机体代谢水平相适
应，主要是由于体内外各种刺激，可以通过外周或中枢化学感受器或者直接作用于呼吸中枢，反射性地调节呼吸运动的结果。 三、实验器材： 实验动物：一只健康兔子（ 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素? 实验设备：兔箱、电子称、手术灯、兔解剖台、压力换能器、呼吸流量换能器、金属碗、纱布、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子、输液夹、皮剪、眼科剪、托盘金属、托盘陶瓷、一次性静脉输液针 四、实验步骤 1.实验仪器的准备 首先打开计算机采集系统，通道1接通压力换能器，通道2接通呼吸流量换能器，从系统的“生理学实验”中找出“血压-呼吸的（学生)实验”，使显示器显示压力和呼吸的读数，并调节至合适比率。 2.连接压力传感器和液体传递系统 用注射器向连接动脉插管的导管内推注含有肝素的生理盐水，使之充满液体。 3.动物准备 1)术前准备
功能学实验家兔实验性弥散性血管内凝血实验报告 一．实验目的 应用静脉注射兔脑浸液方法，复制家兔实验性DIC。通过实验和几项血液学指标的测定及结果分析，了解实验室诊断DIC 的常用方法。并且联系理论知识加深理解DIC 的病因及发病机理。 二．实验动物 未知性别家兔（实验室提供）一只。 三．实验过程 1.家兔于仰卧位固定，颈部剪毛，在颈部皮下注射局麻药1%普鲁卡因约5ml，行局部麻醉。 2. 用剪刀颈部切开皮肤，钝性分离皮下组织，暴露气管后往外侧拉开切口边缘的皮肤及下方的肌肉组织，找到颈动脉并用玻璃分针分离，行颈动脉插管。 3. 第一次采集血标本：预先向10ml离心管中注入0.5ml3.8％枸橼酸钠溶液。再打开血管夹，从颈动脉插管放血 4.5ml，立即反复颠倒混匀（切忌振荡混匀），待离心。向动脉插管中回推生理盐水，夹好血管夹。 4. 复制DIC 模型：抽取2％兔脑浸出液10ml于注射器中，经耳缘静脉缓慢推注，注入速度为每分钟2ml以下。同时密切观察家兔反应，如出现呼吸急促，烦动不安，当即停止注射，迅速进行第二次采血。若注射完后家兔未挣扎，则在注射后计时2min，2min后进行第二次采血。采血方式与第一次采血相同。 5. 将前后两次所得的抗凝血，经3000rpm离心5min，将上层血浆清液分别吸至两支清洁试管中，切忌吸入细胞成分，并作好标记备用。其中一支试管吸入0.5ml血浆，另一只试管尽量吸取剩下的血浆。 6. 血浆鱼精蛋白副凝固试验（3P实验）：向吸取0.5ml血浆的两支试管中加入1%鱼精蛋白溶液50μl，轻轻摇匀后，在37℃水浴15min。取出试管，在灯光下对黑色背景一边晃动试管一边观察，溶液清澈者为阴性，出现絮状沉淀或胶冻状物为阳性。 7. KPTT, PT, TT, FIB实验：剩余两支试管使用凝血仪测定KPTT, PT, TT和FIB，并记录数据。 四．实验药物及器材 实验药物：2％兔脑浸出液（临用前配，并在37℃保存），1％普鲁卡因溶液，3.8％枸橼酸钠溶液。生理盐水，1％鱼精蛋白溶液。 实验器材：兔手术台，手术器械，37℃电热恒温水浴箱，离心机，刻度离心管（2 支），试管（5支），移液器（100μl，1000μl），纱布。 五．实验结果 1、实验现象记录 家兔皮下注射局麻药后，在皮下形成鼓包，经按摩揉动数分钟后，鼓包仍存在，局麻药未完全吸收。经家兔耳缘静脉缓慢推注兔脑浸出液后，家兔表现较平静。推注完成后计时2min27s时家兔出现呼吸急促，燥动不安，欲挣脱动作，此时进行第二次采血，并离心，进行各项指标测定。家兔在第二次采血后，又重新恢复平静，呼吸正常。一小时后家兔仍未死亡。
实验时间：5月23日 【实验目的】 1、学习复制急性DIC动物模型的方法。 2、了解实验室诊断DIC的常用方法及其意义。 3、结合实验和血液学指标测定结果，联系理论知识加深理解DIC的病因及发生机制。【实验对象】 家兔1只，雌（未孕）雄均可。体重～ kg。 【药品和试剂】 1%普鲁卡因、%枸椽酸钠液、2%兔脑粉浸出液（临用时配制）、饱和氯化钠液、生理盐水、1%鱼精蛋白液。 【实验器材】 兔台、哺乳动物手术器械一套（包括手术刀、普通剪刀、眼科剪刀、止血钳）、电热恒温水浴箱、台式离心机、721分光光度计、秒表、刻度离心管（10ml）、试管（13×75mm、15×100mm）、刻度吸管（2ml、5ml）、试管架、微量定量移液器（10μl、50μl、500μl）、橡皮吸球、乳胶滴管、玻片、棉球、纱布、颈动脉插管（硅胶管）2根、动脉夹，注射器。 【实验方法】 1、将家兔仰位固定兔台、颈部剪毛、皮下1%普鲁卡因局部浸润麻醉，作正中纵切口（约3~4cm左右），常规暴露一侧颈总动脉，结扎其远心端，近心端用动脉夹夹闭；在结扎线下方剪口插入硅胶管并固定，松夹放血7ml至盛有%枸椽酸钠液2ml的10ml刻度离心管中，立即混匀离心（3000rpm，5分钟），分离血浆，备作纤维蛋白原定量与3P试验。再松动动脉夹放血2~3滴于洁净玻片上，作凝血时间测定。 2、复制DIC模型：用10ml注射器吸取2%兔脑粉浸液，按3ml/kg的量缓慢（以每分钟2ml的速度为宜）注入家兔耳缘静脉内，同时观察其反应，如出现呼吸急促、躁动不安，即停止注射，速行第二次采血（方法同1），如未出现反应可注射毕后采血。重复上述各项指标测定。 4、整理并分析实验结果。 【附录】 1、凝血时间测定（玻片法）：放血2~3滴于洁净玻片上，同时按动秒表，用清洁废针头挑拨血滴，见有明显血丝出现，迅即停表，记录时间。
实验题目：传出神经系统药物对家兔心血管系统的影响 班级：12级临七3班姓名：廖梦宇学号：2012021320 一、实验原理： 1.传出神经系统药物通过作用于心脏和血管平滑肌上相应的受体而产生心血管效应， 导致血压变化。 2.本实验通过观察麻醉家兔动脉血压的变化，分析肾上腺素受体激动剂与拮抗剂之间 的相互作用。 二、实验目的： 1.掌握测定麻醉动物动脉血压及心电图的实验方法. 2.观察三个肾上腺素受体激动剂和两个拮抗剂对动脉血压及心率的影响 三、实验步骤： 1.麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉, 4ml/kg, 耳缘静脉注射； 2. 备皮：麻醉后，将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部的毛，正中切开颈部皮肤； 3. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒“T”型切口，插入气管插管并以粗线固定。 4. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉 1.5到2cm，动脉下穿两根丝线。结扎远心 端，近心端以动脉夹夹闭。用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。松开动脉夹。 5. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验 系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。 6. 稳定5~10min，记录正常血压和心率。 7. 给药：按下列顺序静脉给药 肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 8. 给药：按下列顺序静脉给药 酚妥拉明 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 9. 给药：按下列顺序静脉给药 普萘洛尔 0.2ml/kg, 5min 肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 去甲肾上腺素 0.2ml/kg, 5min 异丙肾上腺素 0.2ml/kg, 10min 四、实验结果： 1.正常心率和血压：260次/分，115mmHg。
实验九家兔凝血功能和急性DIC的观察 一、实验目的 1．学习建立急性实验性DIC动物模型的方法。 2．测定DIC模型凝血时间、血压，了解凝血功能。 二、实验内容 1．家兔急性DIC模型的复制； 2．家兔急性DIC的判定、观察。 三、实验准备 【实验动物】成年家兔一只，重2～2.5kg。 【仪器设备】颈部手术器械一套、小试管、气管插管、5cm长塑料插管、5ml注射器，计时钟、BL-410生物信号采集系统、压力换能器、兔解剖台、干净玻片、干净纱布【药品试剂】3%戊巴比妥钠、0.1%肝素、兔脑粉溶液、生理盐水 四、实验方法 1．实验兔一只，称重。用3%戊巴比妥钠按1.0ml/kg由耳缘静脉缓慢注入麻醉(每分钟不超过1毫升)。麻醉后将动物仰卧固定于兔解剖台上，必要时将实验台底面灯开亮作保温用,剪去颈部手术视野的皮毛，常规暴露一侧颈总动脉，在靠近远心端处用眼科剪剪一个“V”字形的切口，将充满生理盐水的动脉插管插入颈总动脉内连接压力换能器，并牢固结扎，备用。 2．连接装置放开动脉夹，降压力换能器来连接到BL-420生物信号采集系统的通道1，设定输入信号为“血压”。 3．模型复制耳缘静脉缓慢注入兔脑粉溶液2ml，复制DIC模型。 4．测定凝血时间在注入兔脑粉溶液前5min，注入兔脑粉后5 min、15min、30min及45min测凝血时间。方法为：在三通管处用注射器吸取适量血液放于载玻片上，血滴直径约5cm，同时开始计时。每隔10s用大头针朝一个方向挑拨载玻片上的血滴，待有血丝出现时停止时间，记录凝血时间。注意吸取血液后推入生理盐水避免血液凝固于插管内。 5．观察血压的变化。 五、注意事项 1．本实验中,兔脑粉溶液的制备及注射速度对实验成败影响很大。在注入兔脑粉浸液的过程中，密切观察动物的呼吸情况，必要时酌情调整注射速度。
基于dic的非接触式全场应变测量系统设计设计
本科毕业设计（论文） 基于dic的非接触式全场应变测 量系统设计
毕业设计（论文）原创性声明和使用授权说明 原创性声明 本人郑重承诺：所呈交的毕业设计（论文），是我个人在指导教师的指导下进行的研究工作及取得的成果。尽我所知，除文中特别加以标注和致谢的地方外，不包含其他人或组织已经发表或公布过的研究成果，也不包含我为获得及其它教育机构的学位或学历而使用过的材料。对本研究提供过帮助和做出过贡献的个人或集体，均已在文中作了明确的说明并表示了谢意。 作者签名：日期： 指导教师签名：日期： 使用授权说明 本人完全了解大学关于收集、保存、使用毕业设计（论文）的规定，即：按照学校要求提交毕业设计（论文）的印刷本和电子版本；学校有权保存毕业设计（论文）的印刷本和电子版，并提供目录检索与阅览服务；学校可以采用影印、缩印、数字化或其它复制手段保存论文；在不以赢利为目的前提下，学校可以公布论文的部分或全部内容。
作者签名：日期：
学位论文原创性声明 本人郑重声明：所呈交的论文是本人在导师的指导下独立进行研究所取得的研究成果。除了文中特别加以标注引用的内容外，本论文不包含任何其他个人或集体已经发表或撰写的成果作品。对本文的研究做出重要贡献的个人和集体，均已在文中以明确方式标明。本人完全意识到本声明的法律后果由本人承担。 作者签名：日期：年月日 学位论文版权使用授权书 本学位论文作者完全了解学校有关保留、使用学位论文的规定，同意学校保留并向国家有关部门或机构送交论文的复印件和电子版，允许论文被查阅和借阅。本人授权大学可以将本学位论文的全部或部分内容编入有关数据库进行检索，可以采用影印、缩印或扫描等复制手段保存和汇编本学位论文。 涉密论文按学校规定处理。 作者签名：日期：年月日 导师签名：日期：年月日
竭诚为您提供优质文档/双击可除 家兔缺氧实验报告 篇一：家兔缺氧实验 家兔低张性缺氧(hypotonichypoxiaofRabbit) [实验目的]：缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。 [实验动物]：家兔 [实验药品及器材]： bL-410生物机能实验系统，动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。 [实验步骤]： 1.称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1ml/kg）,固定，剪毛。 2.气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3.描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。 4.将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。 〔实验结果〕 血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色 正常 缺氧5min 缺氧10min 缺氧20min 〔讨论〕： 1.缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。机制如下： 本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的co2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致pao2下降，当pao2＜60mmhg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，pao2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl，故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。 2．缺氧晚期：pao2越来越低，过低的pao2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓，心率↓此时pao2↓↓，cao2↓↓。脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀（cyanosis）。
dic应力应变检测仪应用于钙质砂剪切特性变形测量 随着我国基建技术的飞速发展，许多超级工程都让世界感到震撼。公路、桥梁、铁路等建设工程不断推进，重型车辆、飞机等交通工具的使用，对于公路的承载特性提出了更高要求。长周期交通荷载，易造成路基的变形沉降和损坏，在轮胎轧压、飞机在起飞、降落过程中，对路基产生冲剪效应。 在路基工程设计时，要考虑路基沉降变形，路基内部土层的受力和变形特点。另外，岛礁特殊的地理条件，路基的填筑需考虑钙质砂砾在路基受荷条件下的变形和颗粒破碎问题，水位升降、雨水淋滤蒸发等对路基结构性的影响。 复杂多变的交通荷载是工程设计时考虑的难题，设计不当会对道路路基产生影响，影响交通工具行驶安全。山东某大学进行钙质砂剪切特性实验研究，采用新拓三维DIC技术实时采集数据，分析钙质砂在常压和高压下的位移、应力、应变等特性，研究成果可为交通、岛礁工程建设提供借鉴，也可为路基结构的研究提供参考。 钙质砂剪切特性实验 剪切特性试验是研究土力学性质最常用的试验手段之一，所获得的应力-应变曲线是建立本构模型的基础。以下左图为直剪试验仪器，右图为岛礁附近海域选取的试验用钙质砂。
钙质砂试样 试验之前在试验机中放入少量砂石，利用DIC技术采集计算一组静态实验，分析砂石原色在玻璃平面下的图案能不能用系统计算出来。通过计算数据反馈，确定砂石不需要着色处理即可计算分析。 本次研究开展了多组室内直剪试验，包括了不同剪切应力、不同砂石颗粒度和不同法相加载方式环境下实验。通过在直剪过程中的数据采集，对影响钙质砂抗剪强度的各种因素如应力、饱和度、密度等进行了总结，分析出钙质砂试样的剪切特征。
家兔急性弥漫性血管内凝血（DIC） 摘要目的：掌握动物实验常用技术，学习复制弥漫性血管内凝血（DIC）动物模型，通过血小板计数、纤维蛋白原含量的测定、血浆鱼精蛋白副凝试验（3P试验）等血液学指标的实验结果，进一步探讨DIC的发病机制。方法：通过给家兔颈静脉缓慢注射4%兔脑粉溶液制作DIC动物模型，使用PcLab数据采集系统采集家兔DIC前后的动脉压、静脉压和脉压等生理指标。DIC前后分时段采血进行血小板计数、纤维蛋白原含量测定和3P试验等血液学指标的测定。结果：通过注射4%兔脑粉溶液制作DIC模型后，家兔的血压、呼吸等生理指标明显下降，血小板的数量和纤维蛋白原含量等血液学指标逐渐降低，3P试验由阴性转化为阳性。 关键词：家兔DIC模型；血小板计数；纤维蛋白原含量测定；3P试验 前言：DIC是在某些严重疾病基础上，由特定诱因引发的复杂病理过程。致病因子引起人体凝血系统激活、血小板活化、纤维蛋白沉积，导致弥散性血管内微血栓形成；继之消耗性降低多种凝血因子和血小板；在凝血系统激活的同时，纤溶系统亦可激活，或因凝血启动而致纤溶激活，导致纤溶亢进。临床上多以出血、休克、多器官功能衰竭（MODS）以及血管病性溶血等为突出表现[1]。 实验用兔脑浸液经耳缘静脉注入家兔体内，能复制成家兔实验性DIC，将在动物身上获得的资料和结果与人类疾病表现进行比较与分析，从而阐明DIC的发生机理, 揭示疾病发生发展的规律，为临床疾病诊断和治疗提供理论依据[2]。我们小组通过静注兔脑粉溶液复制DIC 动物模型，并在DIC前后分时段采血进行血小板计数、纤维蛋白原含量测定和3P试验等血液学指标的测定，以观察DIC前后家兔的血液学变化，从而进一步了解DIC的发病机制。1.实验材料： 1.1动物：家兔1只，体重 2.0kg。 1.2一般器械：粗剪刀、止血钳8把、组织剪、眼科剪、眼科颞（弯、直各1把）、组织镊、手术线2条、培养皿、50ml注射器、25ml注射器、10ml注射器、5ml注射器、EP管6个、血细胞计数版、试管8个、注射针头2个、加样枪、枪头若干。 1.3药品和试剂：20%乌拉坦、0.1%肝素、4%兔脑粉、37℃生理盐水、37℃饱和氯化钠溶液、1%硫酸鱼精蛋白、血小板稀释液。 1.4仪器设备：PcLab计算机生物信号采集处理系统、压力换能器、动静脉插管、三通管、37℃水浴箱、离心机、分光光度仪。 2.实验步骤： 2.1家兔的捉拿、称重、麻醉与固定：捉拿家兔，称量体重，用10.0ml20%乌拉坦（5ml/kg）由耳缘静脉缓慢注射，注射期间注意观察呼吸频率、肌张力、疼痛反射和角膜发射的变化，待家兔四肢呼吸平稳，肌肉松弛，疼痛反射和角膜反射消失后，将其仰面固定于手术台上后颈部剪毛备皮。 2.2颈动脉的分离与插管：沿甲状软骨下正中剪开皮肤，分离左侧颈动脉，经左侧颈动脉插入动脉管，观察并通过PcLab计算机生物信号采集处理系统记录家兔此时的血压和呼吸。 2.3取血样本：通过动脉插管取4ml动脉血（动脉血①）置于有肝素的注射器中，以测定3P试验、纤维蛋白原、血小板计数并记录。 2.4颈静脉的分离与插管：分离右侧颈静脉，经右侧颈静脉插入静脉管，以备补液和复制DIC模型。 2.5复制DIC模型：将4.0ml4%兔脑粉溶液（2ml/kg）与16ml生理盐水混匀，沿家兔的耳缘静脉缓慢注射兔脑粉溶液，时间控制在10min以内。以备血液学指标的测定
家兔血压实验报告文件排版存档编号：[UYTR-OUPT28-KBNTL98-UYNN208]
家兔血压实验报告 家兔血压实验报告 实验报告 实验次序:一实验项目:家兔血压调节 班级:11临本姓名:符宏展学号:112号 实验类型: 二、实验操作原始记录及实验结果的分析 实验时间:2016年4月11日 马健明符宏展朱佛妹叶超群黄小花张鹏黄锦霞 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲 反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器 连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器, 由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照 明灯,纱布,棉球,丝线,注射器,生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素,肾上腺素,已酰胆碱 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器
家兔实验性肺水肿实验 实验名称： 家兔急性肺水肿实验探讨 实验目的： 通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿发病机制。 实验原理： 水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内，称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正常增加2~3倍。 1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增加和水肿的形成。 2.当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿 3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤出，于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降，组织液胶体渗透压上升，导致水肿。 4.肺系数=肺重量（g）/体重（kg） 实验对象： 家兔 实验器材： 家兔，体重2～3kg；兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
实验试剂：25%乌拉坦、 0."9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液实验步骤： 1.麻醉动物： 取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入，将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口，注意先横剪一刀，再向上方剪开，将气管插管向心脏方向插入，用棉线结扎固定于“U”型管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉： 剪毛，切开颈部中正皮肤，钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉，各在其下穿线备用 4.动脉插管： 结扎颈总动脉远心端，在其近心端夹动脉夹，在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口，由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管，并用棉线结扎固定，打开动脉夹，记录血压 5.颈总静脉插管： 分离颈总静脉1-2厘米，远心端用线打活结，在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口，将输液管排空气后向心脏方向插入，此时打开输液器，如果有液体滴下，则表明插管成功，用棉线结扎固定 实验观察 1.观察正常的呼吸、血压、呼吸。 2.按100ml/kg，180-200滴/分的速度大量快速的输入生理盐水。 3.观察呼吸、血压。 4.液体快输完时，加入
微分干涉差显微镜(differential interference contrast )又称Nomarski相差显微镜，其优点是能显示结构的三维立体投影影像。与相差显微镜相比，标本可略厚一点，折射率差别更大，故影像的立体感更强。 微分干涉差显微镜利用的是偏振光，这些光经棱镜折射后分成两束，在不同时间经过样品的相邻部位，然后在经过另一棱镜将这两束光汇合，从样品中厚度上的微小区别就会转化成明暗区别，增加了样品反差并且具有很强的立体感。 微分干涉显微镜能使细胞核及较大的细胞器如线粒体等具有较强的立体感，比较适合于显微操作。目前多用于基因注入、核移植、转基因动物等生物工程的显微操作。将微分干涉差显微镜接上录象机，可以观察活细胞中的颗粒及细胞器的运动。 这些薄膜与周围的水介质之间的折射率差异非常小，用普通的光学显微镜来成像显得捉襟见肘；然而DIC利用的是偏振光，这些光经棱镜折射后分成两束，在不同时间经过样品的相邻部位，然后在经过另一棱镜将这两束光汇合，从样品中厚度上的微小区别就会转化成明暗区别，增加了样品反差并且具有很强的立体感，从而实现清晰的成像。 德国物理学家Sauerbrey通过大量的研究发现厚度剪切压电石英晶体的谐振频率变化Δf与在晶体表面均匀吸附的刚性物的质量Δm之间存在着比例关系，他在1959年给出了Sauerbrey 方程： 式中f为晶体的固有谐振频率，又叫基频率, ( Hz), m 为晶体表面涂层质量(g), △ f 为晶体谐振频率的变化量，A为涂层面积(cm2)。 流式细胞仪： 粒子折射激光产生光信号。散射光不依赖任何细胞样品的制备技术，因此被称为细胞的物理特性，即细胞的大小和内部结构。散射光与细胞膜，核膜以及细胞结构的折射性、颗粒性密切相关，细胞形状和表面形貌也对其产生影响。前向角散射（FSC）光宇被测细胞的大小和面积有关，检测的是激光束照射方向宇手机散射光信号的光电倍增轴向方向的散射光信号。FSC不受细胞荧光染色的影响，常用于免疫表型分析的信号处理。侧向角散射（SSC）光宇被测细胞的颗粒密度和内部结构有关，对细胞膜、胞质和核膜的折射率更为敏感。SSC收集与激光束正交90度方向的散射光信号。图3-21细胞的光散射特性上述两种信号都是来自于激光源光束，目前采用这两个参数组合，可区分不同种类的细胞亚群，同时可获得细胞相关的重要信息，下图（图3-2）为FSC和SSc组成的二维散点图，从图中可以很容易的把全
家兔实验性肺水肿实验 实验名称：家兔急性肺水肿实验探讨 实验目的：通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺 水肿发病机制。 实验原理：水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过量液体积聚和/或溢 入肺泡腔内，称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正常增加2~3倍。 1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增 加和水肿的形成。 2.当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿 3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微 静脉壁滤出，于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降， 组织液胶体渗透压上升，导致水肿。 4.肺系数=肺重量（g）/体重（kg） 实验对象：家兔 实验器材：家兔，体重2～3kg；兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型 气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液 实验步骤： 1.麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入，将动物麻醉后仰卧位固定于手术台 2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口，注意先横剪一刀，再向上方剪开，将气管插管向心脏方向插入，用棉线结扎固定于“U”型管上 3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉：剪毛，切开颈部中正皮肤，钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉，各在其下穿线备用 4.动脉插管：结扎颈总动脉远心端，在其近心端夹动脉夹，在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口，由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管，并用棉线结扎固定，打开动脉夹，记录血压 5.颈总静脉插管：分离颈总静脉1-2厘米，远心端用线打活结，在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口，将输液管排空气后向心脏方向插入，此时打开输液器，如果有液体滴下，则表明插管成功，用棉线结扎固定
实验报告 专业班级：康复治疗技术2班实验小组：第四组姓名：卢锦锟实验日期：2015年11月10日（一）实验项目：家兔动脉血压调节 （二）实验目的： 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术（静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等）。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用。 （三）基本原理：（要求对写出关键点） 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等；3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品 1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素：去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素：异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管（在全身血管中比例较大）持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素：肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明：α受体阻断剂，α受体的作用：α受体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管)，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。
实验 2 急性 DIC 实验时间： 5 月 23 日 实验目的】 1、学习复制急性 DIC 动物模型的方法。 2、了解实验室诊断 DIC 的常用方法及其意义。 3、结合实验和血液学指标测定结果，联系理论知识加深理解 实验对象】 药品和试剂】 1%普鲁卡因、 %枸椽酸钠液、 2%兔脑粉浸出液（临用时配制）、饱和氯化钠液、生理盐 水、 1%鱼精蛋白液。 实验器材】 兔台、哺乳动物手术器械一套（包括手术刀、普通剪刀、眼科剪刀、止血钳）、电热恒 温水浴箱、台式离心机、 721分光光度计、秒表、刻度离心管（10ml ）、试管（13X 75mm 、 15 X 100mm ）、刻度吸管（2ml 、5ml ）、试管架、微量定量移液器（10卩、1 50卩、1 500卩）1、 橡皮吸球、乳胶 滴管、玻片、棉球、纱布、颈动脉插管（硅胶管） 2 根、动脉夹，注射器。 实验方法】 1、将家兔仰位固定兔台、 颈部剪毛、 皮下 1%普鲁卡因局部浸润麻醉， 作正中纵切口 （约 3~4cm 左右），常规暴露一侧颈总动脉，结扎其远心端，近心端用动脉夹夹闭；在结扎线下 方剪口插入硅胶管并固定，松 夹放血 7ml 至盛有 %枸椽酸钠液 2ml 的 10ml 刻度离心管中， 立即混匀离心（ 3000rpm ， 5分钟），分离血浆，备作纤维蛋白原定量与 3P 试验。再松动动 脉夹放血 2~3 滴于洁净玻片上，作凝血时间测定。 2、复制Die 模型：用10ml 注射器吸取2%兔脑粉浸液，按3ml/kg 的量缓慢（以每分钟 2ml 的速度为宜）注入家 兔耳缘静脉内，同时观察其反应，如出现呼吸急促、躁动不安，即 停止注射，速行第二次采血（方法同 1），如未出现反应可注射毕后采血。重复上述各项指 标测定。 4、整理并分析实验结果。 附 录】 Die 的病因及发生机制。 家兔 1 只，雌（未孕）雄均可。体重 kg 。