细胞凋亡-Hoechst染色试剂盒
产品简介：
碧云天生产的细胞凋亡－Hoechst染色试剂盒(Hoechst Staining Kit)为您提供了一种经典而又快速简便的细胞凋亡检测方法。细胞发生凋亡时，染色质会固缩。所以Hoechst 33258染色后，在荧光显微镜下观察，正常细胞的细胞核呈正常的蓝色，而凋亡细胞的细胞核会呈致密浓染，或呈碎块状致密浓染，颜色有些发白。
只需25分钟即可完成细胞凋亡检测的整个过程。
本试剂盒提供了固定液，染色液，及抗荧光淬灭封片液。
本试剂盒对贴壁细胞，悬浮细胞和组织切片均适用。
足够检测100个样品。
保存条件：
4℃保存，Hoechst 33258染色液需4℃避光保存。本试剂盒自订购之日起六个月内有效。
注意事项：
需可以观察蓝色荧光的荧光显微镜或激光共聚焦显微镜。
需PBS或0.9%NaCl溶液。
需自备盖玻片与载玻片。盖玻片与载玻片可以向碧云天订购。
荧光物质均易发生淬灭，染色后的样品宜避光保存。可以向碧云天选购各种型号的载玻片存储盒。
在使用抗淬灭封片液的情况下可以减缓淬灭，但仍宜尽量避光。
为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
使用说明：
1．贴壁细胞
A. 取洁净盖玻片在70%乙醇中浸泡5分钟或更长时间，无菌超净台内吹干或用无菌的PBS或0.9%NaCl等溶液洗涤三遍，再
用细胞培养液洗涤一遍。将盖玻片置于六孔板内，种入细胞培养过夜，使约为50%-80%满。
B. 刺激细胞发生凋亡后，吸尽培养液，加入0.5ml 固定液，固定10分钟或更长时间(可4℃过夜)。
C. 去固定液，用PBS或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟，吸尽液体。洗涤时宜用摇床，或手动晃动。
D. 加入0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分钟。也宜用摇床，或手动晃动数次。
E. 去染色液，用PBS或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟，吸尽液体。洗涤时宜用摇床，或手动晃动。
F. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于载玻片上，盖上贴有细胞的盖玻片，让细胞接触封片液，尽量避免气泡。
G. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。激发波长350nm左右，发射波长460nm左右，图谱请参考下图。
2. 悬浮细胞
A. 离心收集细胞样品于1.5ml离心管内，加入0.5ml 固定液，缓缓悬起细胞，固定10分钟或更长时间(可4℃过夜)。
B. 离心去固定液，用PBS或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟。洗涤期间手动晃动数次。
C. 离心后吸去大部分液体保留约50 l液体，再缓缓悬起细胞，滴加至载玻片上，尽量使细胞分布均匀。
D. 稍晾干，使细胞贴在载玻片上不易随液体流动。
E. 均匀滴上0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分钟。用吸水纸从边缘吸去液体，微晾干。
F. 去染色液，用PBS或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟，吸尽液体。洗涤时宜用摇床，或手动晃动。
G. 滴一滴抗荧光淬灭封片液于载玻片上，盖上一洁净的盖玻片，尽量避免气泡。
H. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。激发波长350nm左右，发射波长460nm左右，图谱请参考下图。
3. 组织切片
A. 常规包埋切片后，根据切片的不同类型，处理至可以用于免
疫组化染色。
B. PBS 或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟，吸尽液体。洗涤时宜
用摇床，或手动晃动。可在六孔板中操作。
C. 加入0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分钟。也宜用摇床，
或手动晃动数次。
D. 去染色液，用PBS 或0.9%NaCl 洗两遍，每次3分钟，吸尽液
体。洗涤时宜用摇床，或手动晃动。
E. 小心将切片置于载玻片上，滴一滴抗淬灭封片液，盖上一洁
净的盖玻片，尽量避免气泡。
F. 荧光显微镜可检测到呈蓝色的细胞核。激发波长350nm 左
右，发射波长460nm 左右，图谱请参考右图。
使用本产品的文献：
1. Li-Xin Zhu, Jing Liu, You-Hua Xie, Yu-Ying Kong, Ye Ye, Chun-Lin Wang, Guang-
Di Li, Yuan Wang.
Expression of hepatitis C virus envelope protein 2 induces apoptosis in cultured mammalian cells.
World J Gastroenterol, 2004;10(20):2972-2978.
2. Xin-xin Zhao, Li-juan Zhao, Wei-guo Xiao, Jing Lu, Pin-ting Yang and Qing-hong Yu.
C-myc antisense oligodexoynucleotides inhibite synoviocytes proliferation and induce synoviocytes apoptosis.
Chin J Rheumatol; 2004, 8(2): 67-72.
3. Guiyun Wang and Xinming Guo.
Effects of radizx astragali on the nitric oxides, free radicals and apoptosis of thymus in aging mice.
J Mudanjiang Med College; 2004, 25(4): 14-15.
4. Meishu Shen and Wangxi Li.
Effect of angelica on apoptosis in brain cell and thymus index of aging mice.
J Mudanjiang Med College; 2004, 25(6): 9-10.
5. Zhu Chunlei, Zhang Chaodong and Wang Yunjie.
The study of apoptosis induced by methylene blue (MB) on C6 cell and MB enhances BCNU therapy of experimental rat C6 glioma.
Zhongliu. 2004;24(1): 21-24.
6. Wang JH, Wu Y , Ren F, Lü L, Zhao BC.
Cloning and characterization of Adinbitor, a novel disintegrin from the snake venom of Agkistrodon halys brevicaudus stejneger.
Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2004 Jun;36(6):425-9.
7. Yao G , Yang L, Hu Y , Liang J, Liang J, Hou Y .
Nonylphenol-induced thymocyte apoptosis involved caspase-3 activation and mitochondrial depolarization
Mol Immunol. 2005 Jul 23;
8.Zhao ZG, Shen WL.
Heat shock protein 70 antisense oligonucleotide inhibits cell growth and induces apoptosis in human gastric cancer cell line SGC-7901.
World J Gastroenterol. 2005 Jan 7;11(1):73-8
9. Yingchao Nie, Qian Wang, Changyong Liang, Minggang Fang, Zehua Yu, Xinwen Chen.
Characterization of ORF2 and its encoded protein of the Helicoverpa armigera nucleopolyhedrovirus.
Virus Res. 2005 Oct 21;
10. Ye J, Li A, Liu Q, Wang X, Zhou J.
Inhibition of mitogen-activated protein kinase kinase enhances apoptosis induced by arsenic trioxide in human breast cancer MCF-7 cells.
Clin Exp Pharmacol Physiol. 2005 Dec;32(12):1042-8.
11.Tang W, Jiang MD, Li XA.
Effects of sp600125 on acetaldehydeinduced apoptosis of hepatic stellate cells and expression of Caspase-3 protein in rats.
Shijie Huaren Xiaohua Zazhi.2005;13(18):2263-2265
12.Li X, Li G , Yu M, Yang Z, Sun J.
The effect of whole body low dose radiation on apoptosis of mice leukemia cell.
Acta Acad Med Weifang. 2005; 27(6):407-9.
13.Wang J, Miao J, Sheng W, Yang J.
Construction of pcDNA3.0-ING4 eukaryotic expression vector and study on its function.
Chinese Journal of Anatomy. 2005; 28(4):383-6.
14.Jiang P, Yan PK, Chen JX, Zhu BY , Lei XY , Yin WD, Liao DF.
High density lipoprotein 3 inhibits oxidized low density lipoprotein-induced apoptosis via promoting cholesterol efflux in RAW264.7 cells.
Acta Pharmacol Sin. 2006 Feb;27(2):151-7.
15.Li HG , Liao AH, Ding XF, Zhou H, Xiong CL.
The expression and significance of CATSPER1 in human testis and ejaculated spermatozoa.
Hoechst 33258的吸收光谱和发射光谱
左侧峰为吸收光谱，右侧峰为发射光谱。
Asian J Androl. 2006 May;8(3):301-6.
16.Xiong XL, Jia RH, Yang DP, Ding GH.
Irbesartan attenuates contrast media-induced NRK-52E cells apoptosis.
Pharmacol Res. 2006 Oct;54(4):253-60.
17.Zhao Y, Shen S, Guo J, Chen H, Greenblatt DY, Kleeff J, Liao Q, Chen G, Friess H, LeungPS.
Mitogen-activated protein kinases and chemoresistance in pancreatic cancer cells.
J Surg Res. 2006 Dec;136(2):325-35.
18.Bao W, Pan H, Lu M, Ni Y, Zhang R, Gong X.
The apoptotic effect of Sarsasapogenin from Anemarrhena asphodeloides on HepG2 human hepatoma cells
Cell Biology International (2007), doi: 10.1016/j.cellbi.2007.02.001.
19.Lin X, Chen X, Wei Y, Zhao J, Fan L, Wen Y, Wu H, Zhao X
Efficient inhibition of intraperitoneal human ovarian cancer growth and prolonged survival by gene transfer of vesicular stomatitis virus matrix protein in nude mice.
Gynecol Oncol. 2007 Mar;104(3):540-546.
20.Yao G, Ling L, Luan J, Ye D, Zhu P.
Nonylphenol induces apoptosis of Jurkat cells by a caspase-8 dependent mechanism.
Int Immunopharmacol. 2007 Apr;7(4):444-53.
21.Ye CL, Jin YL, Ye KH, Qin L.
Effects of EGb 761 on the Cell Apoptosis Induced by H2O2 in R IN2m Beta Cells.
Journal of ChineseMedicinalMaterials.2007 Apr;V ol.30 No.4.
22.Li JL, Liu N, Chen XH, Sun M, Wang CB.
Inhibition of UV A-induced apoptotic signaling pathway by polypeptide from Chlamys farreri in human HaCaT keratinocytes.
Radiat Environ Biophys. 2007 Aug;46(3):263-8.
23.Li GY, Yu MM, Li XJ, Liu ZX.
Apop tosis of BoneMarrow Leukemia Cells in Mice after Low Dose Radiation at Different Time.
Chin J Radiol Health.Sep 2007,V ol.16,No.3.
24.Ren SH, Ye CL, Jin YL, Lv YQ, Feng J.
Effects of chlor ide channel blockers on H2O2 induced apoptosis in pancrea s RIN2m beta cells.
Chinese Pharm acological B u lletin. 2007 Sep;23(9):1202～6.
25.Bao W, Pan H, Lu M, Ni Y, Zhang R, Gong X.
The apoptotic effect of sarsasapogenin from Anemarrhena asphodeloides on HepG2 human hepatoma cells.
Cell Biol Int. 2007 Sep;31(9):887-92.
26.Yan XB, Yang DS, Gao X, Feng J, Shi ZL, Ye Z.
Caspase-8 dependent osteosarcoma cell apoptosis induced by proteasome inhibitor MG132.
Cell Biol Int. 2007 Oct;31(10):1136-43.
27.Liu Y, Zhang S, Cai Y.
Cytoprotective effects of selenium on cadmium-induced LLC-PK1 cells apoptosis by activating JNK pathway.
Toxicol in Vitro. (2007), doi: 10.1016/j.tiv.2007.01.015.
28.Wang Q, Wang Y, Liang C, Song J, Chen X.
Identification of a hydrophobic domain of HA2 essential to morphogenesis of Helicoverpa armigera nucleopolyhedrovirus.
J Virol. 2008 Apr;82(8):4072-81. Epub 2008 Jan 30.
29.Yang X, Zhang Y, Zhang L, Zhang L, Mao J.
Silencing alpha-fetoprotein expression induces growth arrest and apoptosis in humanhepatocellular cancer cell.
Cancer Lett. 2008;271(2):281-93. Epub 2008 Jul 26.
30.Hou S, Zhao Z, Yan F, Chen X, Deng H, Chen X, Wang Y, Wei Y.
Genetic transfer of PNAS-4 induces apoptosis and enhances sensitivity to gemcitabine in lung cancer.
Cell Biol Int. 2009 Mar;33(3):276-82.
31.Li WB, Feng J, Geng SM, Zhang PY, Yan XN, Hu G, Zhang CQ, Shi BJ.
Induction of apoptosis by Hax-1 siRNA in melanoma cells.
Cell Biol Int. 2009 Apr;33(4):548-54.
32.Deng T, Zhang Y.
5-Aza-2'-deoxycytidine reactivates expression of RUNX3 by deletion of DNA methyltransferases leading to caspase independent apoptosis in colorectal cancer Lovo cells.
Biomed Pharmacother. 2009 Aug;63(7):492-500. Epub 2008 Sep 17.
33.Zhang JJ, Zhang RF, Meng XK.
Protective effect of pyrroloquinoline quinone against Abeta-induced neurotoxicity in human neuroblastoma SH-SY5Y cells.
Neurosci Lett. 2009 Oct 30;464(3):165-9.
34.Deng X, Cheng J, Zhang Y, Li N, Chen L.
Effects of caloric restriction on SIRT1 expression and apoptosis of islet beta cells in type 2 diabetic rats.
Acta Diabetol. 2009.
35.Liu XJ, Wang WC, Wang HJ, Zhang LL, Liu LQ, Wang YJ, Wang CB.
A polypeptide from Chlamys farreri inhibits UVB-induced HaCaT cells apoptosis via the Apaf-1/caspase-9 and Smac/XIAP signaling pathway.
Chinese Journal of Oceanology and Limnology.V ol. 27 No. 3, P. 587-593, 2009.
36.Wang H, Xu Y, Yan J, Zhao X, Sun X, Zhang Y, Guo J, Zhu C.
Acteoside protects human neuroblastoma SH-SY5Y cells against beta-amyloid-induced cell injury.
Brain Res. 2009;1283:139-47. Epub 2009 Jun 9.
37.Zhuo L, Gong J, Yang R, Sheng Y, Zhou L, Kong X, Cao K.
Inhibition of proliferation and differentiation and promotion of apoptosis by cyclin L2 in mouse embryonic carcinoma P19 cells.
Biochem Biophys Res Commun. 2009;390(3):451-7. Epub 2009 Sep 26.
38.Wang H, Xu Y, Yan J, Zhao X, Sun X, Zhang Y, Guo J, Zhu C.
Acteoside protects human neuroblastoma SH-SY5Y cells against beta-amyloid-induced cell injury.
Brain Res. 2009;1283:139-47. Epub 2009 Jun 9.
39.Liu J,Zhuang QY,Zhang WZ,Wang YH,Chen XG,Peng EJ,Liu F.
Role of survivin in apoptosis induced by grape seed procyanidin extract in human bladder cancer BIU87 cells.
Chinese-German Journal of Clinical Oncology.2009, V ol. 8, No. 7, P420–P425.
40.Zhang S, Wang J, Song N, Xie J, Jiang H.
Up-regulation of divalent metal transporter 1 is involved in 1-methyl-4-phenylpyridinium (MPP(+))-induced apoptosis in MES23.5 cells.
Neurobiol Aging. 2009;30(9):1466-76. Epub 2008 Jan 8.
41.Deng XQ, Cheng JL, Zhang YP, Li NX, Chen LL.
Effects of caloric restriction on SIRT1 expression and apoptosis of islet beta cells in type 2 diabetic rats.
Springer Verlag. 2009.
42.Chen Z, Liu S, Sumida T, Sun S, Wei Y, Liu M, Dong Z, Zhang F, Hamakawa H, Wei F.
Silencing Id-1 with RNA Interference Inhibits Adenoid Cystic Carcinoma in Mice.
J Surg Res. 2010. [Epub ahead of print].
43.Bao XQ, Liu GT.
Bicyclol protects HepG2 cells against D-galactosamine-induced apoptosis through inducing heat shock protein 27 and mitochondria associated pathway. Acta Pharmacol Sin. 2010;31(2):219-26.
44.Wang X, Xu J, Ju S, Ni H, Zhu J, Wang H.
Livin gene plays a role in drug resistance of colon cancer cells.
Clin Biochem. 2010;43(7-8):655-60. Epub 2010 Feb 18.
45.Luo S, Chen P, Luo ZC, Zhang P, Sun P, Shi W, Li ZY, Zhang XL, Wang LQ, Chen X, Wei YQ, Wen YJ.
Combination of vesicular stomatitis virus matrix protein gene therapy with low-dose cisplatinimproves therapeutic efficacy against murine melonoma. Cancer Sci. 2010 May;101(5):1219-25.
46.Zhong N, Chen HK, Zhao QL, Wang HW, Yu X, Ashley M Eaves, Sheng WH, Miao JC,Cui FM, Wang JZ
Effects of griseofulvin on apoptosis through caspase-3-and caspase-9-dependent pathways in K562 leukemia cells: An in vitro study
Current Therapeutic Research,2010 Dec,71(6),384-397
47.Liu Y, Cui B, Qiao Y, Zhang Y, Tian Y, Jiang J, Ma D, Kong B
Phosphoinositide-3-kinase inhibition enhances radiosensitization of cervical cancer in vivo
Int J Gynecol Cancer. 2011 Jan;21(1):100-5.
48.Li J, Cheng Y, Qu W, Sun Y, Wang Z, Wang H, Tian B
Fisetin,a dietary flavonoid, induces cell cycle arrest and apoptosis through activation of p53 andinhibition of NF-kappa B pathways in bladder cancer cells. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2011 Feb;108(2):84-93.
49.Lu Yan, Shu Zhang, Chao Zeng, Yu Hua Xue, Zhong Lou Zhou, Fan Lu, Hao Chen, Jia Qu,Li Ming Dai, Yong Liu
Cytotoxicity of Single-Walled Carbon Nanotubes with Human Ocular Cells
Advanced Materials Research,2011,July (V olumes 287 - 290),32-36
50.Wan Q, Liu Z, Peng W, Wang J, Li X, Yang Y.
BnRCH gene inhibits cell growth of Hela cells through increasing the G2 phase of cell cycle.
Hum Cell. 2011 Dec;24(4):150-60.
51.Ma K, Liu Y, Zhu Q, Liu CH, Duan JL, Tan BK, Zhu YZ
H2S donor, S-propargyl-cysteine, increases CSE in SGC-7901 and cancer-induced mice:evidencefor a novel anti-cancer effect of endogenous H2S? PLoS One. 2011;6(6):e20525.
52.Wu LX, Gu XF, Zhu YC, Zhu YZ
Protective effects of novel single compound, Hirsutine on hypoxic neonatal rat cardiomyocytes.
Eur J Pharmacol. 2011 Jan 10;650(1):290-7.
53.Zhou Q, Xiong Y, Cheng Y, Du Y, Zhang J, Mu J, Guo Q, Wang H, Ma D, Li X
Effects of Tissue Factor Pathway Inhibitor-2 Expression on Biological Behavior of BeWoand JEG-3Cell Lines.
Clin Appl Thromb Hemost. 2011 Dec 26. [Epub ahead of print]
54.Guo LL, Pan Y, Zhu XJ, Tan LY, Xu QJ, Jin HM.
Conventional, but not high-purity, dialysate-induced monocyte apoptosis is mediated by activation of PKC-delta and inflammatory factors release. Nephrol Dial Transplant. 2011 May;26(5):1516-22.
55.Chen Z, Liu S, Sumida T, Sun S, Wei Y, Liu M, Dong Z, Zhang F, Hamakawa H, Wei F
Silencing Id-1 with RNA interference inhibits adenoid cystic carcinoma in mice.
J Surg Res. 2011 Jul;169(1):57-66.
56.Zhang YS, He L, Liu B, Li NS, Luo XJ, Hu CP, Ma QL, Zhang GG, Li YJ, Peng J.
A novel pathway of NADPH oxidase/vascular peroxidase 1 in mediating oxidative injury followingischemia-reperfusion.
Basic Res Cardiol. 2012 May;107(3):1-19.
57.Lu Yan , Mimi Lin , Chao Zeng , Zhi Chen , Shu Zhang , Xinmei Zhao , Aiguo Wu , Yaping Wang , Liming Dai , Jia Qu , Mingming Guo and Yong Liu Electroactive and biocompatible hydroxyl- functionalized graphene by ball milling
J. Mater. Chem., 2012,22, 8367-8371
58.Yang ZR, Dong WG, Lei XF, Liu M, Liu QS.
Overexpression of Dickkopf-3 induces apoptosis through mitochondrial pathway in human coloncancer.
World J Gastroenterol. 2012 Apr 14;18(14):1590-601
59.Yan L, Wang Y, Xu X, Zeng C, Hou J, Lin M, Xu J, Sun F, Huang X, Dai L, Lu F, Liu Y
Can graphene oxide cause damage to eyesight?
Chem Res Toxicol. 2012 Jun 18;25(6):1265-70.
60.Zhao D, Lin F, Wu X, Zhao Q, Zhao B, Lin P, Zhang Y, Yu X.
Pseudolaric acid B induces apoptosis via proteasome-mediated Bcl-2 degradation in hormone-refractory prostate cancer DU145 cells.
Toxicol In Vitro. 2012 Jun;26(4):595-602.
61.Wang YB, Wang JJ, Wang SH, Liu SS, Cao JY, Li XM, Qiu S, Luo JH.
Adaptor protein APPL1 couples synaptic NMDA receptor with neuronal prosurvival phosphatidylinositol 3-kinase/Akt pathway.
J Neurosci. 2012 Aug 29;32(35):11919-29. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3852-11.2012.
62.Huang WT, Liu J, Liu JF, Hui L, Ding YL, Chen SW.
Synthesis and biological evaluation of conjugates of deoxypodophyllotoxin and 5-FU as inducer of caspase-3and -7.
Eur J Med Chem. 2012 Mar;49:48-54. doi: 10.1016/j.ejmech.2011.12.005. Epub 2011 Dec 9.
63.Shen A, Chen Y, Hong F, Lin J, Wei L, Hong Z, Sferra TJ, Peng J.
Pien Tze Huang suppresses IL-6-inducible STAT3 activation in human colon carcinoma cells through induction ofSOCS3.
Oncol Rep. 2012 Dec;28(6):2125-30. doi: 10.3892/or.2012.2067. Epub 2012 Oct 1.
64.Fang Y, Mo X, Luo Y, Lu Y.
BAX gene over-expression via nucleofection to induce apoptosis in human lens epithelial cells.
Exp Biol Med (Maywood). 2012 Sep 1;237(9):1000-6. Epub 2012 Sep 3.
65.Wang J, Bai X, Chen Y, Zhao Y, Liu X.
Homocysteine induces apoptosis of rat hippocampal neurons by inhibiting 14-3-3ε expression and activatingcalcineurin.
PLoS One. 2012;7(11):e48247. doi: 10.1371/journal.pone.0048247. Epub 2012 Nov 6.
66.Hu B, An HM, Shen KP, Xu L, DU Q, Deng S, Wu Y.
Liver Yin deficiency tonifying herbal extract induces apoptosis and cell senescence in Bel-7402 humanhepatocarcinoma cells.
Exp Ther Med. 2012 Jan;3(1):80-86. Epub 2011 Oct 12.
67.Zhou Q, Xiong Y, Chen Y, Du Y, Zhang J, Mu J, Guo Q, Wang H, Ma D, Li X.
Effects of tissue factor pathway inhibitor-2 expression on biological behavior of BeWo and JEG-3 cell lines.
Clin Appl Thromb Hemost. 2012 Sep;18(5):526-33.
68.Jin M, Wang J, Xiao R, Liu X, Wu F, Pang Y, Feng B, Yang D, Li Q.
Effects of the recombinant toxin protein rLj-RGD3 in multidrug-resistant human breast carcinoma cells.
Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2012 May;44(5):455-61.
69.Xu Y, Yang S, Huang J, Ruan S, Zheng Z, Lin J.
Tgf-β1 induces autophagy and promotes apoptosis in renal tubular epithelial cells.
Int J Mol Med. 2012 May;29(5):781-90. doi: 10.3892/ijmm.2012.911. Epub 2012 Feb 9.
70.Hu Z, Bian X, Liu X, Zhu Y, Zhang X, Chen S, Wang K, Wang Y.
Honokiol protects brain against ischemia-reperfusion injury in rats through disrupting PSD95-nNOS interaction.
Brain Res. 2013 Jan 23;1491:204-12.
71.Kang J, Zhao G, Lin T, Tang S, Xu G, Hu S, Bi Q, Guo C, Sun L, Han S, Xu Q, Nie Y, Wang B, Liang S, Ding J, Wu K.
A peptide derived from phage display library exhibits anti-tumor activity by targeting GRP78 in gastric cancermultidrug resistance cells.
Cancer Lett. 2013 Jun 20. pii: S0304-3835(13)00466-7.
72.Li C, Zhang X, Cheng L, Dai L, Xu F, Zhang J, Tian H, Chen X, Shi G, Li Y, Du T, Zhang S, Wei Y, Deng H.
RNA interference targeting human FAK and EGFR suppresses human non-small-cell lung cancer xenograftgrowth in nude mice.
Cancer Gene Ther. 2013 Feb;20(2):101-8. doi: 10.1038/cgt.2012.91. Epub 2013 Jan 18.
73.Liu L, Shen A, Chen Y, Wei L, Lin J, Sferra TJ, Hong Z, Peng J.
Patrinia scabiosaefolia induces mitochondrial-dependent apoptosis in a mouse model of colorectal cancer.
Oncol Rep. 2013 Aug;30(2):897-903. doi: 10.3892/or.2013.2528. Epub 2013 Jun 7.
74.Lu XL, Zeng J, Chen YL, He PM, Wen MX, Ren MD, Hu YN, Lu GF, He SΧ.
Sinomenine hydrochloride inhibits human hepatocellular carcinoma cell growth in vitro and in vivo: involvementof cell cycle arrest and apoptosis induction. Int J Oncol. 2013 Jan;42(1):229-38. doi: 10.3892/ijo.2012.1704. Epub 2012 Nov 16.
75.Yu W，Sheng M, Xu R, Yu J, Cui K, Tong J,Shi L,Ren H.
Berberine protects human renal proximal tubular cells from hypoxia/reoxygenation injury via inhibiting endoplasmic reticulum and mitochondrial stress pathways.
Journal of Translational Medicine 2013, 11:24.
76.Xu Y, Ruan S, Wu X, Chen H, Zheng K, Fu B.
Autophagy and apoptosis in tubular cells following unilateral ureteral obstruction are associated withmitochondrial oxidative stress.
Int J Mol Med. 2013 Mar;31(3):628-36. doi: 10.3892/ijmm.2013.1232. Epub 2013 Jan 8.
77.Zhang B, Xie QY, Quan Y, Pan XM, Liao DF.
Reactive oxygen species induce cell death via Akt signaling in rat osteoblast-like cell line ROS 17/2.8.
Toxicol Ind Health. 2013 Jun 20. [Epub ahead of print].
78.Ni Z, Dai X, Wang B, Ding W, Cheng P, Xu L, Lian J, He F.
Natural Bcl-2 inhibitor (-)- gossypol induces protective autophagy via reactive oxygen species-high mobility groupbox 1 pathway in Burkitt lymphoma. Leuk Lymphoma. 2013 Mar 13. [Epub ahead of print].
79.Jin M, Xiao R, Wang J, Liu X, Liu Y, Xue Z, Lv L, Zheng Y, Li Q.
Low concentrations of the recombinant toxin protein rLj-RGD3 suppress TNF-α-induced human renal carcinomacell invasion.
Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2013 May;45(5):377-82. doi: 10.1093/abbs/gmt015. Epub 2013 Feb 21.
80.Feng C, Xu Z, Li Z, Zhang D, Liu Q, Lu L.
Down-regulation of Wnt10a by RNA interference inhibits proliferation and promotes apoptosis in mouse embryonic palatal mesenchymal cells through Wnt/β-catenin signaling pathway.
J Physiol Biochem. 2013 May 28. [Epub ahead of print].
罗氏tunel检测细胞凋亡试剂盒说明书 注意：Label溶液含有甲次砷酸盐和二氯化钴，严禁吸入和食入。 反应悬浮物收集于密闭、不易碎、有明确标识的容器中，按有毒废物处理。 需要自己配置的其他物品： 除上表所列试剂外，还需准备以下溶液。下表列出每步所需物品概览：
产品概述： 特异性：TUNEL 反应优先标记凋亡产生的DNA 链断裂，从而辨别凋亡与坏死、以及由抑 制细胞生长的药物或放射线产生的primary DNA 链断裂 实验干扰：假阴性：在某些型式的凋亡细胞中DNA 链断裂可能缺失或不完全。空间位阻， 如细胞外元件可能阻止TdT 到达DNA 断裂处。两种情况均能产生假阴性。 假阳性：在坏死晚期，可能产生大量的DNA 片段 DNA 链断裂也可能在具有高增殖和代谢活动的细胞中出现。两种情况均能产生 假阳性。为确认细胞死亡的凋亡型式，应认真进行每种细胞的形态学检查 凋亡过程中产生的形态学改变尤其特征形式，因此，对于可以结果进行解释时， 细胞形态评估是一项重要的参数 样本：细胞离心涂片和细胞涂片 在chamber slides 上培养的黏附细胞 冰冻或福尔马林固定、石蜡包埋样本 分析时间：2-3小时，除外培养、固定和渗透 检测次数：一个试剂盒50T
步骤和所需材料： 1 流程图： 2 样品准备 黏附细胞、细胞涂片和细胞离心涂片 需准备的其他试剂：Washing buffer：磷酸盐缓冲液（PBS） Blocking buffer封闭溶液：甲醇稀释的3% H2O2 Fixation solution固定溶液：PBS配制的4%多聚甲醛，ph ，新鲜配制 Permeabilisation solution 渗透液：%Triton1）X-100溶于%柠檬酸钠溶液 中，新鲜配制 步骤：下表描述了细胞固定、内源性过氧化物酶封闭和细胞渗透过程。 组织部分 福尔马林-包埋组织 福尔马林包埋组织的预处理：可按4种不同的方式预处理。如用蛋白酶K，不含核酸酶，浓 度、孵育时间和温度应按组织类型优化 注意：只用罗氏应用科学的蛋白酶K，因其经检测不含核酸酶， 核酸酶可导致假阳性。 另外3中替代方法在下表中描述（step 2） 需准备的其他试剂：二甲苯和乙醇（浓度：95%，90%，80%，70%，溶于双蒸水中）
普鲁士蓝染色试剂盒（核固红法）使用说明 货号:G1422 有效期：12个月 产品内容： 产品名称2×50ml2×100ml Storage Perls stain A25ml50ml RT避光 Perls stain B25ml50ml RT 临用前，取A1、A2等量混合，即为试剂(A)Perls stain，不宜提前配制。 试剂(B):核固红染色液50ml100ml RT避光 产品说明： 含铁血黄素（Hemosiderin）是一种血红蛋白源性色素，为金黄色或棕黄色颗粒，因其含铁、金黄色，故称为含铁血黄素。当红细胞被巨噬细胞吞噬后，在溶酶体酶的作用下，血红蛋白被分解为不含铁的橙色血质和含铁的含铁血黄素。 Perls普鲁士蓝反应（Prussian blue reaction）又称为含铁血黄素染色，即经过亚铁氰化钾和稀酸处理后可以产生蓝色，常见于吞噬细胞内会间质内，主要显示三价铁盐。Perls普鲁士蓝是非常经典的组织化学反应，是显示组织内三价铁的一种敏感、传统优良的方法，其染色原理为：亚铁氰化钾溶液使三价铁离子从蛋白质中被稀盐酸分离出来，三价铁与亚铁氰化钾反应，生成一种不溶解的蓝色化合物即三价铁的亚铁氰化物普鲁士蓝，所以该反应被称为普鲁士蓝反应。三价铁的亚铁氰化物是一种很稳定的化合物，在反应后可用红色染色剂进行复染，如核固红、伊红、中性红等。 Perls stain常用于显示局部组织内各种出血性病变，常见于吞噬细胞内。在判断含铁血黄素沉积时，用Perls反应可以得到证实，该染色方法可以很好的区分含铁血黄素和其他色素。
该染色液稳定性好、可以长期保存、不易产生沉淀、应用范围广、可以进行复染。该染色液的复染液采用核固红，是最经典、最常用的复染液。 自备材料： 1.10%的中性福尔马林 2.系列乙醇 3.蒸馏水 4.4%的多聚甲醛 操作步骤（仅供参考）： （一）石蜡切片染色 1、组织固定于10%中性福尔马林，常规脱水包埋。 2、切片厚度4um，常规脱蜡至水。 3、蒸馏水水洗1min。 4、切片入Perls stain（见注意事项4），浸染15-30min。 5、蒸馏水充分冲洗2-5min。 6、入核固红染色液，淡染细胞核5-10min。 7、自来水冲洗1-5s。 8、常规脱水透明，中性树胶封固。 （二）冰冻切片染色 1、无需脱蜡，直接迅速用蒸馏水冲洗2～3min。 2、染色、水洗、透明、封固步骤同石蜡切片的染色步骤。 （三）细胞染色 1、4%多聚甲醛固定10～20min。
常用细胞凋亡检测方法（图） 转载请注明来自丁香园 发布日期：2012-02-16 13:41 文章来源：丁香通 关键词：丁香园生物专题义翘神州细胞培养点击次数：951 一、细胞凋亡的形态学检测 1、光学显微镜和倒置显微镜 ①未染色细胞：凋亡细胞的体积变小、变形，细胞膜完整但出现发泡现象，细胞凋亡晚期可见凋亡小体。贴壁细胞出现皱缩、变圆、脱落。 ②染色细胞：常用姬姆萨染色、瑞氏染色等。凋亡细胞的染色质浓缩、边缘化，核膜裂解、染色质分割成块状和凋亡小体等典型的凋亡形态。 2、荧光显微镜和共聚焦激光扫描显微镜 一般以细胞核染色质的形态学改变为指标来评判细胞凋亡的进展情况。常用的DNA 特异性染料有：HO 33342 (Hoechst 33342)，HO 33258 (Hoechst 33258), DAPI。三种种染料与DNA的结合是非嵌入式的，主要结合在DNA的A-T碱基区。紫外光激发时发射明亮的蓝色荧光。Hoechst是与DNA特异结合的活性染料，储存液用蒸馏水配成1mg/ml的浓度，使用时用PBS稀释，终浓度为10 ug/ml。DAPI为半通透性，用于常规固定细胞的染色。储存液用蒸馏水配成1mg/ml的浓度，使用终浓度一般为10 ug/ml。结果评判：细胞凋亡过程中细胞核染色质的形态学改变分为三期：Ⅰ期的细胞核呈波纹状（rippled）或呈折缝样（creased），部分染色质出现浓缩状态；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚、边缘化；Ⅱb期的细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体(图1)。 3、透射电子显微镜观察 结果评判：凋亡细胞体积变小，细胞质浓缩。凋亡Ⅰ期（pro-apoptosis nuclei）的细胞核内染色质高度盘绕，出现许多称为气穴现象（cavitations）的空泡结构(图2)；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚、边缘化；细胞凋亡的晚期，细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体。 二、磷脂酰丝氨酸外翻分析（Annexin V法） 磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine, PS）正常位于细胞膜的内侧，但在细胞凋亡的早期，PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中(图3)。Annexin-V是一种分子量为35~36KD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS高亲和力特异性结合。将Annexin-V进行荧光素（FITC、PE）或biotin标记，以标记了的Annexin-V作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生。 碘化丙啶(propidine iodide, PI)是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细核红染。因此将Annexin-V 与PI匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。 方法
Annexin V-FITC/PI 细胞凋亡检测试剂盒 Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit 一、试剂盒说明 在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS ）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS ）由脂膜内侧翻向外侧。Annexin V 是一种分子量为35~36kD 的Ca 2+依赖性磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。因此Annexin V 被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。将Annexin V 进行荧光素FITC 标记，以标记了的Annexin V 作为荧光探针，利用荧光显微镜或流式细胞仪可检测细胞凋亡的发生。 碘化丙啶（Propidium Iodide, PI ）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但对凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI 能够透过细胞膜而使细胞核染红。因此将Annexin V 与PI 匹配使用，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。 本试剂盒可应用于培养细胞凋亡检测（不推荐用于检测组织样本）。 二、试剂盒组份 组份 (20 assays) (50 assays) (100 assays) 储存条件 AnnexinV-FITC 100 μL 250μL 500 μL Propidium Iodide 100 μL 250μL 500 μL Binding Buffer 10.0 mL 25 mL 50 mL 注：1、Annexin V-FITC 组份建议按需分装小份冻存于-20 ℃，避免反复冻融； 2、Propidium Iodide 和Binding Buffer 组份不用时可放置于4℃保存，Propidium Iodide 需要避光。 3、Store at -20℃ for 12 months 三、试剂盒以外自备仪器和试剂 流式细胞仪或荧光显微镜、低速离心机、微量移液器 1.5m L Microtube 、载玻片、盖玻片（荧光显微镜观察需用）、PBS 、不含EDTA 的胰酶消化液 四、使用注意事项 1. 微量试剂取用前请离心集液。 2. Annexin V-FITC ，Propidium Iodide （PI ）避光保存及使用。对于Annexin V-FITC 这个组份，建议您在收到产品之后，分装为小份避光保存于-20℃，即用即取。 3. Propidium Iodide （PI ）有毒，操作时要戴手套。 4. 本试剂盒适用于检测活细胞，流式细胞仪检测时，细胞数量不以应低于1×105，不推荐用于检测组织样本。 5. 推荐使用悬浮培养细胞。如果是贴壁细胞，需用不含EDTA 的胰酶消化，如消化不当，可能引起假阳性，而 用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA 的PBS 中，防止进一步的损伤。 6. 细胞固定后可能导致荧光的淬灭，请不要固定样品。 7. 因检测细胞的类型、凋亡诱导剂种类、使用的检测仪器不同，因而流式检测的荧光补偿也不同，因此建议每 次检测均需使用未经凋亡诱导处理的细胞作为对照，进行荧光补偿的调节。 五、 操作方法 1. 悬浮细胞离心（2000rpm 离心5min ）收集；贴壁细胞用不含EDTA 的胰酶消化收集（注：胰酶消化时间不 易过长，否则容易引起假阳性）； -20℃避光 4℃避光 4℃
HE（苏木素-伊红）染色试剂盒使用说明书 货号：L9406 规格：10ml/100ml 保存：本试剂盒常温保存，复检期至少1年。 注意：环境温度低时，分化液可能会结晶析出，将分化液37℃水浴融化后即可，不影响使用。 产品说明： 苏木精-伊红染色法( Hematoxylin-Eosin staining )，简称HE染色法，切片技术里常用的染色法之一。苏木精染液为碱性，主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色；伊红为酸性染料，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。 染色过程需要优化，着色情况与组织或细胞的种类有关，也随其生活周期及病理变化而改变。例如，很多 细胞在新生时期胞浆对伊红着色较淡或轻度嗜碱，当其衰老时或发生退行性变则呈现嗜伊红浓染。胶原纤维在 老化和出现透明变性时，伊红着色由浅变深。 本产品所包含试剂均为工作液，可直接使用。 操作说明： 石蜡组织切片的HE染色（以下步骤仅供参考）。 1．取材组织块，经固定后，常规石蜡包埋，切片。 2．切片用二甲苯脱蜡，经各级乙醇至水洗：二甲苯（I）5min→二甲苯（Ⅱ）5min→100％乙醇2min→95％乙 醇1min→80％乙醇1min→75％乙醇1min→蒸馏水洗2min。 3．苏木素染液染色5-20min(可以根据染色结果和要求调整时间)，自来水冲洗。 4．分化液分化30s。 5．自来水浸泡15min或温水（约50℃）5min。 6．置伊红染液2min。 7．自来水冲洗。 8．常规脱水，透明，封片：95％乙醇（I）1min→95％乙醇（Ⅱ）1min→100％乙醇（I）1min→100％乙醇（Ⅱ）1min→二甲苯石碳酸（3：1）1min→二甲苯（I）1min→二甲苯（Ⅱ）1min →中性树脂封固，镜下观察。 冰冻切片不用脱蜡，可固定后直接染色，其方法与石蜡切片相同。
流式细胞仪检测细胞凋亡——Annexin V/PI 双染色法 基本原理 细胞凋亡早期改变发生在细胞膜表面，目早期识别仍有困难些细胞膜表面的改变之是磷脂酰丝氨酸（PS）从细胞膜内转移到细胞膜外，使PS暴露在细胞膜外表面。PS是一带负电荷的磷脂，正常主要存在于细胞膜的内面，在细胞发生凋亡时细胞膜上的这种磷脂分布的不对称性被破坏而使PS暴露在细胞膜外。Annexin V是一种Ca+依赖的磷脂结合蛋白，最初发现是一种具有很强的抗凝血特性的血管蛋白，Annexin V具有易于结合到磷脂类如PS的特性。对PS有高度的亲和性。因此，该蛋白可充当一敏感的探针检测暴露在细胞膜表面的PS。PS转移到细胞膜外不是凋亡所独特的，也可发生在细胞坏死中。两种细胞死亡方式间的差别是在凋亡的初始阶段细胞膜是完好的，而细胞坏死在其早期阶段细胞膜的完整性就破坏了。因此，可以建立一种用Annexin V结合在细胞膜表面作凋亡的指示并结合一种染料排除试验以检测细胞膜的完整性的检测方法。 试剂与仪器 l孵育缓冲液：10mmol/L HEPES/NaOH，PH 7.4，140mmol/L NaCl，5mmol/L CaCl2 l标记液：将FITC- Annexin V（宝灵曼公司产品）和PI加入到孵育缓冲液中，终浓度均为1ug/ml l流式细胞仪 实验步骤 1. 细胞收集：悬浮细胞直接收集到10ml的离心管中，每样本细胞为（1~5）×106，/mL 500~1000r/min离心5min，弃去培养液。 2. 用孵育缓冲液洗涤1次，500~1000r/min离心5min。 3. 用100ul的标记溶液重悬细胞，室温下避光孵育10~15min。 4. 500~1000r/min离心5min沉淀细胞孵育缓冲液洗1次。 5. 加入荧光（SA-FLOUS）溶液4℃下孵育20min，避光并不时振动。 6. 流式细胞仪分析：流式细胞仪激发光波长用488nm，用一波长为515nm的通带滤器检测FITC荧光，另一波长于560nm的滤器检测PI。 7. 结果判断：凋亡细胞对所有用于细胞活性鉴定的染料如PI有抗染性，坏死细胞则不能。细胞膜有损伤的细胞的DNA可被PI着染产生红色荧光，而细胞膜保持完好的细胞则不会有红色荧光产生。因此，在细胞凋亡的早期PI不会着染而没有红色荧光信号。正常活细胞与此相似。在
一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒说明书 货号：T2190 规格：20次 保存：-20oC保存，荧光标记液需避光保存。 产品简介： 细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。细胞凋亡时抽提DNA进行电泳检测，可以发现180-200bp的DNA ladder。基因组DNA断裂时，暴露的3’-OH可以在末端脱氧核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase,TdT)的催化下加上绿色荧光探针荧光素(FITC)标记的dUTP(fluorescein-dUTP)，从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测，这就是TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)法检测细胞凋亡的原理。 一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(One Step TUNEL Apoptosis Assay Kit)为您提供了一种高灵敏度又快速简便的细胞凋亡检测方法。对于经过固定和洗涤的细胞或组织，只要经过一步染色反应，洗涤后就可以通过荧光显微镜或流式细胞仪检测到呈现绿色荧光的凋亡细胞。 TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂(和细胞凋亡时的断裂方式不同)。这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。极少数细胞凋亡时没有DNA断裂，此时不适用TUNEL法检测。在个别类型的坏死细胞中也发现TUNEL检测呈阳性。在需要严格判断细胞凋亡的情况下，最好同时检测多个凋亡指标。产品内容： 1.TdT酶100μl 2.荧光标记液900μl 3.TdT酶稀释液(选用)500μl
Masson三色染色试剂盒说明书 Masson 三色染色试剂盒说明书（南京森贝伽生物科技有限公司） 【产品介绍】 Masson 染液是显示组织中纤维染色的主要方法之一，是胶原纤维染色权威而经典的技术方法。该法染色原理与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关。分子的大小由分子量来体现，小分子量易穿透结构致密、渗透性低的组织，而大分子量则只能进入结构疏松的、渗透性高的组织。淡绿分子量最大。因此Masson 染色肌纤维红色，胶原纤维绿色，主要用于区分胶原纤维和肌纤维。 【用途】主要用于胶原纤维染色。 【产品特点】 ①染色稳定；②分化时间短，1～2 分钟；③色彩清晰鲜艳；④适用范围广，适宜于组织的石蜡切片、冰冻切片等染色；⑤所染切片保存时间长且不易褪色。 固定：甲醛升汞或甲醛盐溶液。 切片：所有类型。 【产品组成】 编号名 SBJ0126 （7×50ml）SBJ0126 （7×100ml） SBJ0126 （7×500ml） Storage 试剂（A） A1：苏木素染色液25ml 100ml 500ml RT A2：三氯化铁水溶液25ml 100ml 500ml RT 临用时取A1、A2 等量混合，成为试剂（A），不可预先配制后放置，因染色液的色素根与铁 会化合，形成不容性沉淀，等量混合后，一般24h 后失去染色力。 试剂（B）: 盐酸乙醇分化液50ml 100ml 500ml RT 试剂（C）: 氨水水溶液50ml 100ml 500ml RT 试剂（D）: 丽春红酸性品红染色液50ml 100ml 500ml RT 试剂（E）: 乙酸水溶液50ml 100ml 500ml RT 试剂（F）: 磷钼酸水溶液50ml 100ml 500ml RT 试剂（G）: 苯胺蓝染色液50ml 100ml 500ml RT 【参考操作步骤】 1、切片脱蜡至水。 2、试剂（A）染色5min～10min。 3、试剂（B）分化、水洗，试剂（C）返蓝、水洗。 4、蒸馏水或者去离子水洗1min。 5、试剂（D）染色5～10min。 6、试剂（E）洗1min。 7、试剂（F）洗1～2min。 8、试剂（E）洗1min。
细胞凋亡检测方法 一、细胞凋亡的形态学检测 1 光学显微镜和倒置显微镜 （1）未染色细胞：凋亡细胞的体积变小、变形，全面皱缩，细胞膜完整但出现发泡现象，细胞凋亡晚期可见凋亡小体，凋亡小体为数个圆形小体围绕在细胞周围。贴壁细胞出现皱缩、变圆、脱落。 （2）染色细胞： 姬姆萨（Giemsa）染色、瑞氏染色等：正常细胞核色泽均一；凋亡细胞染色质浓缩、边缘化，核膜裂解、染色质分割成块状和凋亡小体等典型的凋亡形态；坏死细胞染色浅或没染上颜色。 苏木素-伊红（HE）染色：细胞核固缩碎裂、呈蓝黑色、胞浆呈淡红色（凋亡细胞），正常细胞核呈均匀淡蓝色或蓝色，坏死细胞核呈很淡的蓝色或蓝色消失。 2 荧光显微镜和共聚焦激光扫描显微镜 一般以细胞核染色质的形态学改变为指标来评判细胞凋亡的进展情况。 常用的DNA特异性染料有：Hoechst 33342，Hoechst 33258，DAPI。三种染料与DNA 的结合是非嵌入式的，主要结合在DNA的A-T碱基区。紫外光激发时发射明亮的蓝色荧光。 Hoechst是与DNA特异结合的活性染料，能进入正常细胞膜而对细胞没有太大细胞毒作用。Hoechst 33342在凋亡细胞中的荧光强度要比正常细胞中要高。 DAPI为半通透性，用于常规固定细胞的染色。 PI和Hoechst33342双标：PI、Hoechst33342均可与细胞核DNA（或RNA）结合。但PI不能通过正常细胞膜，Hoechst则为膜通透性荧光染料，故细胞在处于坏死或晚期调
亡时细胞膜被破坏，这时可为PI着红色。正常细胞和中早期调亡细胞均可被Hoechst着色，但是正常细胞核的Hoechst着色的形态呈圆形，淡兰色，内有较深的兰色颗粒；而调亡细胞的核由于浓集而呈亮兰色，或核呈分叶，碎片状，边集。故PI着色为坏死细胞；亮兰色，或核呈分叶状，边集的Hoechst着色的为调亡细胞。 凋亡细胞体积变小，细胞质浓缩。细胞凋亡过程中细胞核染色质的形态学改变分为三期：Ⅰ期的细胞核呈波纹状（rippled）或呈折缝样（creased），部分染色质出现浓缩状态；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚、边缘化；Ⅱb期的细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体(图1)。 3 透射电子显微镜观察 凋亡细胞体积变小，细胞质浓缩。凋亡Ⅰ期（pro-apoptosis nuclei）的细胞核内染色质高度盘绕，出现许多称为气穴现象（cavitations）的空泡结构(图2)；Ⅱa期细胞核的染色质高度凝聚、边缘化；细胞凋亡的晚期，细胞核裂解为碎块，产生凋亡小体。 二、磷脂酰丝氨酸外翻分析（Annexin V法） 磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine, PS）正常位于细胞膜内侧，但在细胞凋亡早期，PS可从细胞膜内侧翻转到细胞膜表面，暴露在细胞外环境中。磷脂酰丝氨酸的转位发生在凋亡早期阶段，先于细胞核的改变、DNA断裂、细胞膜起泡。体内的吞噬细胞可通过识别
凯基TUNEL细胞凋亡原位检测试剂盒(通用)（BIOTIN标记POD法,适用于细胞、组织样本） 使用说明书 一、TUNEL制品说明 凯基TUNEL细胞凋亡检测试剂盒是用来检测细胞在凋亡过程中细胞核DNA 的断裂情况，其原理是生物素（biotin）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下,可以连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3‘－OH末端，并可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH 形成，很少能够被染色。 本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。 本试剂盒特点 ●操作简便：使用Ready-to-Use型试剂，并配有Proteinase K 和DAB。 ●高灵敏度：可以单一检出初期的凋亡细胞。 ●高特异性：能特异性染色凋亡细胞。 ●快速操作：整体操作约需3小时。 ●用途广泛：可应用于组织切片、细胞样本等。 ●方便观察：使用光学显微镜观察实验结果。 ●高正确性：有阳性对照片的制备方法，可以确认试剂盒的有效性
使用注意事项 1．使用前请认真阅读本说明书，提前准备好相关试剂。 2．因本试剂盒中组分均为微量，使用前请离心集液。 3．为避免试验误差、降低试剂的损耗，建议使用精密度高的进口微量移液枪及枪头。 4． TdT 酶反应液最好在使用前根椐样本数量集中配制，再分别滴加于各样本片上，避免每个样本单独配制而产生的试剂损耗。 5. 为防止样本脱落，请使用硅烷（Silane）处理的载玻片或采用多聚赖氨酸铺片。 6. 固定好的样本可以在-20℃的70%乙醇中放置30分钟或至过夜，以改善细胞的渗透性。 7. 使用PBS清洗细胞样本时，不要直接加在细胞样本上，以防止细胞样本的脱落。 8. 进行PBS清洗时，以5分钟清洗3次为标准。 9. DAB为固体粉末，使用前加入PBS配制成20×DAB（10 mg/ml）后，按说明书显色使用。 二、TUNEL试剂盒组分 试剂盒以外自备仪器和试剂
流式细胞仪 1，使用特定的方法诱导细胞凋亡，设置一个没有处理的control组 2，在一定孵育期后收获细胞，用冰冷的PBS清洗 3，准备1X的annexin结合液，例如，对于10个实验来说，加1ml 5X annexin 结合液（组分C）到4ml 去离子水中 4，准备一个100ug/ml的PI工作液，例如，通过稀释5ul 1mg/ml的PI储存液（组分B）到45ul 1X annexin 结合液中。没有使用的这部分工作液用于以后的实验。 5，再次离心2步骤中洗过的细胞，弃上清用1X annexin 结合液重悬。调整细胞密度，用1X的annexin 结合液稀释到大约1x106/ml，为每个实验准备100ul 足够的体积。 6，加5ul Alexa Fluor 488 annexin V(组分A)和1ul 100ug/ml PI工作液（4步骤中准备的）到每100ul的细胞悬液中。 7，室温孵育细胞15min. 显微镜观察 1，使用特定的方法诱导细胞凋亡，设置一个没有处理的control组 2，在一定孵育期后收获细胞，用冰冷的PBS清洗 3，准备1X的annexin结合液，例如，配置1ml，加200ul 5X annexin 结合液（组分C）到800ul去离子水中 4，准备一个100ug/ml的PI工作液，例如，通过稀释5ul 1mg/ml的PI储存液（组分B）到45ul 1X annexin 结合液中。没有使用的这部分工作液用于以后的实验。 5，再次离心2步骤中洗过的细胞，弃上清用1X annexin 结合液重悬。调整细胞密度，用1X的annexin 结合液稀释到大约1x106/ml，为每个实验准备足够的体积。 6，加5-25ul的annexin V缀合物（组分A）和1-2ul(100ug/ml)PI工作液到100ul 的细胞悬液中。高浓度的annexinV缀合物会产生较好的结果；最佳染色浓度需要凭借经验 7，室温孵育细胞15min 8，1X annexin 结合液清洗细胞 9，用一个合适方法使细胞固定在载玻片上，用一个适当的滤镜观察荧光效果。 细胞应该被分成3组：活细胞，凋亡细胞和死细胞。活细胞在细胞膜上有微弱的annexin V染色，而凋亡细胞在膜上有一个显著亮度，死亡细胞在膜上有annexin染色和核上的PI染色。
实验14 细胞凋亡的诱导和检测 20世纪60年代人们注意到细胞存在着两种不同形式的死亡方式：凋亡（apoptosis）和坏死（necrosis）。细胞坏死指病理情况下细胞的意外死亡，坏死过程细胞膜通透性增高，细胞肿胀，核碎裂，继而溶酶体、细胞膜破坏，细胞容物溢出，细胞坏死常引起炎症反应。 细胞凋亡apoptosis一词来源于古希腊语，意思是花瓣或树叶凋落，意味着生命走到了尽头，细胞到了一定时期会像树叶那样自然死亡。凋亡是细胞在一定生理或病理条件下遵守自身程序的主动死亡过程。凋亡时细胞皱缩，表面微绒毛消失，染色质凝集并呈新月形或块状靠近核膜边缘，继而核裂解，由细胞膜包裹着核碎片或其他细胞器形成小球状凋亡小体凸出于细胞表面，最后凋亡小体脱落被吞噬细胞或邻周细胞吞噬。凋亡过程中溶酶体及细胞膜保持完整，不引起炎症反应。细胞凋亡时的生化变化特征是核酸切酶被激活，染色体DNA被降解，断裂为50～300 kb长的DNA片段，再进一步断裂成180～200bp整倍数的寡核苷酸片断，在琼脂糖凝胶电泳上呈现“梯状”电泳图谱(DNA Ladder)。细胞凋亡在个体正常发育、紫稳态维持、免疫耐受形成、肿瘤监控和抵御各种外界因素干扰等方面都起着关键性的作用。 1．细胞凋亡的检测方法 凋亡细胞具有一些列不同于坏死细胞的形态特征和生化特征，据此可以鉴别细胞的死亡形式。细胞凋亡的机制十分复杂，一般采用多种方法综合加以判断，同时不同类型细胞的凋亡分析方法有所不同，方法选择依赖于具体的研究体系和研究目的（表？）。
形态学观察方法：利用各种染色法可观察到凋亡细胞的各种形态学特征： （1）DAPI时常用的一种与DNA结合的荧光染料。借助于DAPI染色，可以观察细胞核的形态变化。 （2）Giemsa染色法可以观察到染色质固缩、趋边、凋亡小体形成等形态。 （3）吖啶橙(AO)染色，荧光显微镜观察，活细胞核呈黄绿色荧光，胞质呈红色荧光。凋亡细胞核染色质呈黄绿色浓聚在核膜侧，可见细胞膜呈泡状膨出及凋亡小体。 （4）吖啶橙(A())／溴化乙啶(EB)复染可以更可靠地确定凋亡细胞的变化，AO只进入活细胞，正常细胞及处于凋亡早期的细胞核呈现绿色；EB只进入死细胞，将死细胞及凋亡晚期的细胞的核染成橙红色。 （5）台盼蓝染色对反映细胞膜的完整性，区别坏死细胞有一定的帮助，如果细胞膜不完整、破裂，台盼蓝染料进入细胞，细胞变蓝，即为坏死。如果细胞膜完整，细胞不为台盼蓝染色，则为正常细胞或凋亡细胞。使用透射电镜观察，可见凋亡细胞表面微绒毛消失，核染色质固缩、边集，常呈新月形，核膜皱褶，胞质紧实，细胞器集中，胞膜起泡或出“芽”及凋亡小体和凋亡小体被临近巨噬细胞吞噬现象。 （6）木精-伊红（HE）染色是经典的显示细胞核、细胞质的染色方法，染色结果清晰。发生凋亡的细胞经HE染色后，其细胞大小的变化及特征性细胞核的变化：染色质凝集、呈新月形或块状靠近核膜边缘，晚期核裂解、细胞膜包裹着核碎片“出芽”凸出于细胞表面形成凋亡小体等均可明显显示出来。 DNA凝胶电泳：细胞发生凋亡或坏死，其细胞DNA均发生断裂，细胞小分子 质量DNA片段增加，高分子DNA减少，胞质出现DNA片段。但凋亡细胞DNA断裂点均有规律的发生在核小体之间，出现180～200 bp DNA片段，而坏死细胞的DNA断裂点为无特征的杂乱片段，利用此特征可以确定群体细胞的死亡，并可与坏死细胞区别。
一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒 产品简介： 碧云天生产的一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(One Step TUNEL Apoptosis Assay Kit)为您提供了一种高灵敏度又快速简便的细胞凋亡检测方法。对于经过固定和洗涤的细胞或组织，只要经过一步染色反应，洗涤后就可以通过荧光显微镜或流式细胞仪检测到呈现绿色荧光的凋亡细胞。 细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。细胞凋亡时抽提DNA进行电泳检测，可以发现180-200bp的DNA ladder。基因组DNA断裂时，暴露的3’-OH可以在末端脱氧核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)的催化下加上绿色荧光探针荧光素(FITC)标记的dUTP(fluorescein-dUTP)，从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测，这就是TUNEL(T dT-mediated d U TP N ick-E nd L abeling)法检测细胞凋亡的原理。 注：FITC是fluorescein isothiocyanate的缩写，实际上大多数情况下所谓的FITC即为fluorescein。 本试剂盒有如下优点。(1) 高灵敏度：可以在单细胞水平检测到细胞凋亡，同时由于凋亡早期就有DNA断裂，可以检测到早期的细胞凋亡。(2) 特异性：TUNEL检测时通常更容易标记凋亡细胞，而不容易标记坏死细胞。(3) 快速：仅需约1-2个小时即可完成。(4) 方便：只需一步染色反应，洗涤后即可观察，不必使用二抗等进行多步操作。(5) 应用范围广：可以用于检测冷冻或石蜡切片中的细胞凋亡情况，也可以检测培养的贴壁细胞或悬浮细胞的凋亡情况。 TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂(和细胞凋亡时的断裂方式不同)。这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。 极少数细胞凋亡时没有DNA断裂，此时不适用TUNEL法检测。在个别类型的坏死细胞中也发现TUNEL检测呈阳性。在需要严格判断细胞凋亡的情况下，最好同时检测多个凋亡指标。 本试剂盒足够检测20个样品。 保存条件： -20℃保存，荧光标记液需避光保存。 注意事项： 需自备用于洗涤细胞的PBS或HBSS，用于封片的抗荧光淬灭封片液(P0126)，用于固定的4%多聚甲醛或向碧云天订购免疫染色固定液(P0098)，同时需自备含0.1％ Triton X-100的PBS或向碧云天订购免疫染色洗涤液(P0106)。 如果用于石蜡切片的检测，需自备蛋白酶K，二甲苯。蛋白酶K(ST533)可以向碧云天订购。 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 使用说明： 1.对于贴壁细胞或细胞涂片： a.PBS或HBSS洗涤一次。 b.如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。 c.用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。 d.用PBS或HBSS洗涤一次。 e.加入含0.1％ Triton X-100的PBS或碧云天生产的免疫染色洗涤液(P0106)，冰浴孵育2分钟。 f.转步骤5。 2.对于悬浮细胞或细胞悬液： a.收集细胞(不超过200万细胞)，PBS或HBSS洗涤一次。 b.用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。为防止细胞聚集成团，宜在侧摆摇床或 水平摇床上缓慢摇动的同时进行固定。 c.用PBS或HBSS洗涤一次。
AB-PAS 染色试剂盒操作步骤及注意事项 AB-PAS 染色试剂盒货号:G1285 有效期：6个月有效。 产品简介: 糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质。 阿利新蓝和PAS 技术联合使用可鉴别同一组织切片中的中性黏蛋白和酸性黏蛋白。这种技术也常用作广泛检测黏蛋白的手段。该技术染色阴性，可明确断定该物质不是黏蛋白。在大多数方法中，切片先经标准的阿利新蓝（pH 值为2.5）染色，在使用PAS 技术。阿利新蓝可将唾液黏蛋白、硫黏蛋白和蛋白多糖染成蓝色。PAS 技术可将中性黏蛋白染成深红/红紫色，同时将既含中性黏蛋白有含酸性黏蛋白的组织和细胞染成深浅不同的紫色，这是有于阿利新蓝与Schiff 试剂结合并反应。上述染色常可出现在含有中性黏蛋白和唾液黏蛋白的小肠杯状细胞中。 阿利新蓝是类铜钛花青染料，这种阳离子染料与酸性基团结合，也即阿利新蓝与组织内含有的阴离子基团如羧基和硫酸根形成不溶性复合物。分子中带正电荷的盐键与酸性黏蛋白多糖物质中带负电荷的酸性基团结合形成不溶性的复合物而呈蓝色，再于PAS 进行复合染色，就 编号 名称 6×50ml 6×100ml Storage 试剂（A ）阿利新蓝染色液50ml 100ml 4℃避光试剂（B ）过碘酸溶液50ml 100ml 4℃避光试剂（C ）Schiff Reagent 50ml 100ml 4℃避光试剂（D ）苏木素染色液50ml 100ml 4℃避光试剂（E ）酸性分化液50ml 100ml RT 试剂（F ）Scott 蓝化液50ml 100ml RT
凯基Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂盒 （Annexin V-FITC Apoptosis Detection Kit） Cat number：KGA For Research Use Only Store at4℃for one year Expire date： 一、试剂盒说明 在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸（PS）只分布在细胞膜脂质双层的内侧，而在细胞凋亡早期，细胞膜中的磷脂酰丝氨酸（PS）由脂膜内侧翻向外侧。Annexin V是一种分子量为35~36kD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力，故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。因此Annexin V 被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。将Annexin V进行荧光素（EGFP、FITC）标记，以标记了的Annexin V作为荧光探针，利用荧光显微镜或流式细胞仪可检测细胞凋亡的发生。 碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但对凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。因此将Annexin V与PI匹配使用，就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。 本试剂盒可应用于培养细胞凋亡检测（不推荐用于检测组织样本）。 二、试剂盒组份 组份Cat: KGA105 (10 assays) Cat: KGA106 (20 assays) Cat: KGA107 (50 assays) Cat: KGA108 (100 assays) 储存条件 AnnexinV-FITC 50μL 100μL 250μL 500μL 4℃避光 Propidium Iodide 50μL 100μL 250μL 500μL 4℃避光 Binding Buffer 5 mL 10.0 mL 25 mL 50 mL 4℃ 三、试剂盒以外自备仪器和试剂 流式细胞仪或荧光显微镜、低速离心机、微量移液器 1.5m L Microtube、载玻片、盖玻片（荧光显微镜观察需用）、PBS、不含EDTA的胰酶消化液 四、使用注意事项 1．微量试剂取用前请离心集液。 2．Annexin V-FITC，Propidium Iodide （PI）避光保存及使用。 3．Propidium Iodide （PI）有毒，操作时要戴手套。 4．本试剂盒适用于检测活细胞，流式细胞仪检测时，细胞数量不以应低于1×105，，不推荐用于检测组织样本。 5．推荐使用悬浮培养细胞。如果是贴壁细胞，需用不含EDTA的胰酶消化，如消化不当，可能引起假阳性，而用细胞刮子会造成细胞粘连成团，而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA 的PBS中，防止进一步的损伤。 6．细胞固定后可能导致荧光的淬灭，请不要固定样品。 7．因检测细胞的类型、凋亡诱导剂种类、使用的检测仪器不同，因而流式检测的荧光补偿也不同，因此建议每次检测均需使用未经凋亡诱导处理的细胞作为对照，进行荧光补偿的调节。 五、操作方法 1．悬浮细胞离心（2000rpm离心5min）收集；贴壁细胞用不含EDTA的胰酶消化收集（注：胰酶消化时间不易过长，否则容易引起假阳性）； 2．用PBS洗涤细胞二次（2000rpm离心5min）收集1~5×105细胞；
7-AAD染色试剂盒 凯基7-AAD染色试剂盒 (Cell Apoptosis 7-AAD Detection Kit) Cat number：KGA For Research Use Only Store at4℃for one year Expire date： A．试剂盒说明 7-AAD （7-amino-actinomycin D）是一种核酸染料，它不能通过正常质膜，随着细胞凋亡、细胞死亡过程，质膜对7-AAD的通透性逐渐增加，结合细胞凋亡中DNA的有控降解，在合适波长激发光的激发下可发出明亮的红色荧光，通过7-AAD标记DNA的强弱，将细胞分为三群：7-AAD强为死亡细胞，7-AAD弱是凋亡细胞，7-AAD-为正常活力细胞。7-AAD同PI 有着相似的荧光特性，但其发射波谱较PI窄，对其他检测通道的干扰更小，在多色荧光分析中是PI 的最佳替代品，可与Annexin V-EGFP/FITC/PE联合使用。 本试剂盒适用于培养的细胞染色，可应用于荧光显微镜、激光共聚焦计或流式细胞仪检测。 二、试剂盒组份 1×10倍。 三、试剂盒以外自备仪器和试剂 流式细胞仪、激光共聚焦或荧光显微镜：激发波长546nm，发射波长647 nm 微量移液器、1.5m L Microtube、载玻片 四、使用注意事项 1．微量试剂取用前请离心集液。 2．7-AAD避光保存及使用。 3．7-AAD为潜在致癌物，操作时请采取防护措施，穿防护服、戴手套等。 4．本试剂盒适用于检测活细胞，流式细胞仪检测时，细胞数量不以应低于1×105，，不推荐用于检测组织样本。 五、操作方法 1．悬浮细胞离心（2000rpm离心5min）收集；贴壁细胞用胰酶消化收集用PBS洗涤细胞二次（2000rpm离心5min）收集1~5×105细胞； 2．加入5μL 7-AAD染液，混匀；室温、避光、反应5～15min； 3．加入500μL的1×Assays Buffer悬浮细胞； 4．请在1 hour内，进行下述荧光显微镜或流式细胞仪的观察和检测。 A．荧光显微镜观察 1．滴一滴上述染色后的细胞悬液于载玻片上，并用盖玻片盖上细胞； 2．对于贴壁细胞来说，也可直接用盖玻片来培养细胞并诱导细胞凋亡； （1）将细胞于盖玻片上生长，用适当的凋亡诱导剂诱导细胞凋亡，并设立阴性对照组； （2）用PBS洗涤细胞两次； （3）在500μL 的1×Assays Buffer中加入5μL7-AAD染液，混匀； （4）将上述溶液滴加于盖玻片表面，使长有细胞的盖玻片表面均匀覆盖； （5）避光、室温反应5 min。 3．将盖玻片倒置于载玻片上，于荧光显微镜下观察激发波长546nm，发射波长647nm，7-AAD 荧光信号呈红色。 B．流式细胞仪分析 用流式细胞仪检测，激发波长Ex=546 nm; 发射波长Em=647 nm。 7-AAD红色荧光建议使用FL3通道检测。
细胞凋亡的几种检测方法 1、形态学观察方法 （1）HE（苏木精—伊红染色法）染色、光镜观察：凋亡细胞呈圆形，胞核深染，胞质浓缩，染色质成团块状，细胞表面有“出芽”现象。 （2）丫啶橙（AO)染色，荧光显微镜观察：活细胞核呈黄绿色荧光，胞质呈红色荧光。凋亡细胞核染色质呈黄绿色浓聚在核膜内侧，可见细胞膜呈泡状膨出及凋亡小体。 （3）台盼蓝染色：如果细胞膜不完整、破裂，台盼蓝染料进入细胞，细胞变蓝，即为坏死。如果细胞膜完整，细胞不为台盼蓝染色，则为正常细胞或凋亡细胞。此方法对反映细胞膜的完整性，区别坏死细胞有一定的帮助。 （4）透射电镜观察：可见凋亡细胞表面微绒毛消失，核染色质固缩、边集，常呈新月形，核膜皱褶，胞质紧实，细胞器集中，胞膜起泡或出“芽”及凋亡小体和凋亡小体被临近巨噬细胞吞噬现象。 2、DNA凝胶电泳 细胞发生凋亡或坏死，其细胞DNA均发生断裂，细胞内小分子量DNA片断增加，高分子DNA减少，胞质内出现DNA片断。但凋亡细胞DNA断裂点均有规律的发
生在核小体之间，出现180－200bpDNA片断，而坏死细胞的DNA断裂点为无特征的杂乱片断，利用此特征可以确定群体细胞的死亡，并可与坏死细胞区别。正常活细胞DNA 电泳出现阶梯状（LADDER)条带；坏死细胞DNA电泳类似血抹片时的连续性条带 3、酶联免疫吸附法（ELISA)核小体测定 凋亡细胞的DNA断裂使细胞质内出现核小体。核小体由组蛋白及其伴随的DNA片断组成，可由ELISA法检测。 检测步骤 1、将凋亡细胞裂解后高速离心，其上清液中含有核小体； 2、在微定量板上吸附组蛋白体’ 3、加上清夜使抗组蛋白抗体与核小体上的组蛋白结合‘ 4、加辣过氧化物酶标记的抗DNA抗体使之与核小体上的DNA结合’ 4、加酶的底物，测光吸收制。 用途 该法敏感性高，可检测5*100/ml个凋亡细胞。可用于人、大鼠、小鼠的凋亡检测。该法不需要特殊仪器，